骨髓细胞染色体的制备与观察
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实验五骨髓细胞染色体的制备及组型分析一、实验目的初步掌握骨髓细胞染色体的制片及染色技术,学习染色体组型分析方法,观察动物细胞染色体的数目和形态。
二、实验原理真核细胞染色体的数目和结构是重要的遗传指标之一。
制备染色体标本是细胞遗传学最基本的技术,优良的染色体制片是进行染色体显带、组型分析、原位杂交的先决条件。
染色体的制备在原则上可以从所有发生有丝分裂的组织和细胞悬浮液中得到。
最常用的途径是从骨髓细胞、血淋巴细胞和组织培养的细胞中制备染色体。
小型动物的染色体制片最好最有效的材料就是骨髓组织。
利用骨髓的制片技术虽然需要离心以及细致的操作,但其基本程序是简便的。
另外,在骨髓细胞中,有丝分裂指数相当高,因此可以直接得到中期细胞而不必象淋巴细胞或其它组织那样要经过体外培养。
主要的中期相来自成红细胞系统,也来自各种骨髓母细胞。
单核细胞和淋巴细胞的分裂相是较少的。
不过,在染色体制片上已无法区别上述来源。
多倍体的中期相(4n、8n和16n)往往来自于巨核细胞。
对大型动物通常采用对骨骼、脊柱或胸骨穿刺术吸取红骨髓,小型动物多采用剥离术取股骨以获得骨髓细胞。
通过骨髓得到的染色体是比较简便的,一般也无需无菌操作。
在临床上多用于白血病的研究。
在实验条件下,这种染色体是机体内真实情况的反映,因此在药品检验、环境监测、食品检验等工作以及致畸、致癌、致突变等研究中,利用骨髓制片的方法易于观察毒性物质在体内对细胞和染色体的影响。
不过,在有些情况下,穿刺取骨髓较困难,或者希望对同一个体材料进行连续的对比取材,以观察药物或环境因素对人类或动物的影响及染色体的动态变化。
这时,采用外周血细胞而不伤害供血者直接制备染色体的技术就十分有利了。
在动物实验时,可在取材前经腹腔注射有丝分裂抑制剂,一般常用秋水仙素。
秋水仙素是从百合科秋水仙属的一个种——秋水仙的器官和种子内提炼出来的一种植物碱。
因有剧毒,故使用时要特别注意,切勿使药液进入眼内或口中。
实验七小鼠骨髓细胞染色体标本的制备一、实验目的1. 学会小鼠骨髓细胞的采集和处理方法。
2. 掌握细胞较好的贴壁与生长条件,以保证细胞的好。
3. 学会最常用的Gimsa染色方法,使出现的幻觉具有明朗的色调,以便细胞的编号与统计。
二、实验原理骨髓细胞是一种多能性细胞,可分化为血液成分或骨骼系统的成分。
骨髓细胞被用于检测细胞遗传学异常,在染色体物质遗传及细胞迁移等方面具有潜在用处,并可为结构遗传学提供信息。
作为染色体标本制备的来源,一般选用小鼠骨髓细胞是最为经常采用的试验模型之一,常常作为各类染色体研究、映射和诊断的标本;其区别如来源易得、繁殖成本低、染色体数量较少,易于研究、成熟度高等因素显得优越。
三、实验步骤1. 实验前准备工作(1)保存干燥灭菌的小鼠骨髓细胞培养基,避免接触灰尘。
(2)检查各种器械的完整性,保证手段的杀菌处理。
(3)使用有缩小五倍功能的显微镜,以确保细胞图片清晰度与细胞形态的准确。
(4)打开红外线灯,以增强视觉效果并避免光损伤。
(5)按实验方案准备各种试剂和设备。
(6)实验室内准备50 mL恒温水浴和常规离心机。
2. 骨髓细胞的采集(1)设备:小鼠解剖刀片、50mL离心试管、海绵、抽管等。
(2)用70%酒精清洗瓶子的注射器,使用注射器收集小鼠间隔内的骨髓,放入存储试管中。
(3)轻轻摇动骨髓,使其中的细胞与上清液充分混合均匀。
3. 细胞的处理(1)细胞浓度的调整:从建立骨髓细胞培养物开始,骨髓细胞培养物可以在50mL培养基中存在。
使用试管取出足量细胞,可用比值0.2 mL的浓度悬液被移入12孔文化板中,吸入的细胞细胞数为2×106个左右。
(2)添加培养基到细胞培养物中,以充分覆盖细胞。
(3)将板加入约为35℃,5%二氧化碳环境下的恒温培养箱中,进行配队。
(4)半小时后使用显微镜检查细胞的附着,然后循环补充适量接种。
在24小时之前,每隔2小时更换于第一个。
4. Gimsa染色法(1)准备细胞标本:从培养基中取出涂片架,然后“组织培养板”模式的检测做法,将液体在上面包括涂片架移至吸满液体。
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
实验目的:
本实验的目的是利用正常小鼠的骨髓细胞制备染色体标本,并通过显微镜观察染色体的形态和数量,并了解染色体的组成和结构。
实验原理:
染色体是细胞核中最大的有组织结构,由DNA和蛋白质组成。
染色体的数量和形态是每个物种独特的标志之一。
在有丝分裂过程中,染色体的形态和数量的变化可以反映出细胞的分裂状态。
为了制备染色体标本,需要通过细胞的裂解,释放和固定染色体,然后在显微镜下观察染色体的形态和数量。
实验步骤:
1. 取出小鼠的股骨,并在无菌条件下对其进行消毒。
2. 使用消毒的剪刀剪下股骨两端,将骨髓剪下,加入RPMI-1640培养液中,使髓液悬浮,然后用细胞培养器将其孵育2-3天,使骨髓细胞增殖。
3. 用离心机将骨髓细胞离心,去除培养液,用磷酸盐缓冲液进行细胞裂解。
4. 将制备好的染色体悬液滴在预先涂上盐酸聚赖氨酸溶液的载玻片上,让其固定,然后通过染色体芝士和琼脂糖溶液对细胞进行染色。
5. 用显微镜观察染色体标本,记录染色体的数量和形态,并观察细胞的分裂状态。
实验结果:
制备的染色体标本在显微镜下观察。
通过对标本的观察,我们可以看到染色体形态和数量的变化,以及细胞分裂状态的变化。
同时,我们可以从染色体上观察到细胞的遗传信息,包括基因序列和调控因子等。
结论:
本实验成功制备了小鼠骨髓细胞染色体标本。
观察染色体形态和数量的变化,可以从中了解细胞的遗传信息和分裂状态变化。
同时,该实验也展示了染色体的重要性和组成结构,加深了对细胞生物学的理解。
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
通过制备动物骨髓细胞染色体标本,进一步了解细胞染色体的形态和结构,以及染色体在遗传学研究中的应用。
实验原理
动物骨髓细胞是一种快速分裂细胞,其中染色体数目和结构较为清晰,因此通常用于染色体分析和遗传学研究。
为了制备动物骨髓细胞染色体标本,需要经过细胞取样、细胞处理与固定、染色和镜检等几个步骤。
实验步骤
1. 取样:在实验动物体内取出一小段骨髓组织,置于离心管中,加入10ml生理盐水,轻轻摇晃,使细胞均匀分散。
2. 细胞处理和固定:取出适量的细胞液,加入等体积的去离子水后进行处理。
将细胞液滴于预先贴有载玻片上的正常细胞培养液中,使其渐渐均匀分散。
将玻片放置在室温下,使细胞贴附在玻片上并进行细胞固定。
细胞固定可用10%甲醛或70%乙醇,也可用50%醋酸处理。
3. 染色:将固定的细胞标本先置于1%琼脂糖中5~10分钟,用注射器吸取琼
脂糖,并把细胞标本冲洗干净,然后用生理盐水洗净。
若要染色,则滴上适量的霉素酚-吡啶溶液或可以染细胞核者,如吉姆萨红溶液或乙酰苯胺-三甲胺水溶液等,等颜色形成后即可洗净。
4. 镜检:放入顶匣,用显微镜观察染色后细胞形态和染色体。
如果需要拍照,则可利用显微摄影技术,对样本进行记录。
实验结果
通过实验可以观察到动物骨髓细胞染色体的形态、数量和结构,进一步了解染色体在遗传学研究中的应用。
同时,该实验对熟悉细胞培养和染色技术也有一定帮助。
实验结论
通过本次实验,我们可以获得动物骨髓细胞染色体标本,并学习了细胞处理、固定、染色和镜检等关键步骤。
实验结果可以为生物学研究提供相关实验基础。
小鼠骨髓细胞染色体标本制作与观察试验目的把握动物骨髓染色体标本制备基本过程,了解操作步骤的原理试验原理小鼠骨髓细胞中的造血干细胞是生成各种血细胞和原始细胞,具有高度的分裂力量,本试验采纳这一材料,通过前处理,低渗,固定,制片,染色等步骤制得染色体标本,可观看到很多处于分裂中期的染色体,可以进行染色体组型分析。
试验原理制备方法包括以下几个要点:1. 用肯定剂量的秋水仙素破坏纺锤丝的形成,使细胞分裂停滞在中期, 使中期染色体停留在赤道面处2. 用低渗法使将细胞膨胀, 以至于在滴片时细胞被胀破, 使细胞的染色体铺展到载玻片上3. 空气干燥法可使使细胞的染色体在载片上展平, 经Giemsa染色后便可观看到染色体的显微图象试验用品1.材料:小白鼠2.器具:注射器(1ml,5ml)剪刀镊子玻璃吸管10ml刻度的离心管离心机载玻片盖玻片显微镜滤纸擦镜纸纱布恒温水浴锅3.药品:0.01%秋水仙素0.075MKCl 固定液(甲醇:冰醋酸=3:1)2%柠檬酸钠改良石炭酸品红试验步骤预处理取股骨冲洗骨髓离心低渗离心固定离心滴片染色观看1.预处理:试验前2.5-3小时,按每克体重注射0.02ml,给小白鼠腹腔注射秋水仙素。
2.取股骨:断颈处死小鼠后,剔去肌肉组织,洗净3.冲洗骨髓:剪去两端的股骨头,吸取10ml 2%柠檬酸钠,注射器针头插入股骨一端,反复冲洗两根股骨,洗液收集到10ml的离心管中4 .离心:1000r/min 离心10 min ,弃上清5 .低渗:加入8ml 0.075mol/LKCl溶液,滴管吹散,37℃水浴低渗30 min ,中间(约15 min )再吹散一次,使细胞分散,悬浮于溶液中6.离心:1000r/min离心10 min,弃上清7.固定:沉淀加8ml固定液,并用吸管轻轻吹匀,进行固定,中间(约15 min )再吹散一次试验步骤8. 离心:1000r/min 离心10 min ,留1 ml 左右上清,轻轻吹打成细胞悬液9. 滴片:用吸管吸取细胞悬液,高度30-40 cm,滴在预冷的载玻片上,在酒精灯火焰上微微加热,室温晾干10. 染色:改良石炭酸品红染色10-20 min11. 观看:低倍高倍。
人类骨髓细胞染色体制备技术及其临床应用
人类骨髓细胞染色体制备技术是一种通过处理骨髓细胞样本以获得其染色体的方法。
这个技术的过程包括采集骨髓细胞样本、处理样本以释放染色体、制备染色体幻灯片,并使用染色技术着色突出染色体结构。
这种技术通常通过高分辨率的显微镜观察和分析染色体,以检测存在的异常。
人类骨髓细胞染色体制备技术在临床应用中有多种用途。
其中最主要的应用是诊断和评估染色体异常相关疾病,例如染色体易位、缺失或复制。
这些染色体异常与许多遗传性疾病和癌症有关。
通过检测和分析患者的骨髓细胞染色体,医生可以确定染色体异常的类型和数量,并根据这些结果提供准确的诊断和预后。
此外,人类骨髓细胞染色体制备技术还被用于评估治疗效果和预测患者的疾病进展。
一些药物和治疗方法可能对染色体异常相关疾病有不同的影响,通过监测患者骨髓细胞染色体的变化,医生可以评估治疗的有效性并调整治疗方案。
总而言之,人类骨髓细胞染色体制备技术在临床上起着重要的作用,可以用于诊断、评估和监测染色体异常相关疾病,指导治疗和预测患者的疾病进展。
它为医生提供了重要的信息,帮助他们做出更准确的诊断和治疗决策。
第1篇一、实验目的1. 了解骨髓细胞染色体制备的基本原理和操作步骤。
2. 掌握染色体制片技术,观察骨髓细胞染色体结构。
3. 熟悉显微镜的使用方法,提高观察细胞结构的能力。
二、实验原理骨髓细胞染色体制备是研究染色体结构、数量及异常的重要方法。
通过染色体制备,可以在显微镜下观察到细胞的染色体结构,从而分析细胞的遗传特性。
本实验采用小鼠骨髓细胞作为实验材料,通过秋水仙素处理使细胞分裂阻滞在中期,再进行低渗处理、固定、滴片、染色等步骤,制备染色体标本。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:小鼠骨髓细胞、秋水仙素、柠檬酸钠、固定液、染色液等。
2. 实验仪器:显微镜、离心机、载玻片、盖玻片、滴管、烧杯等。
四、实验步骤1. 实验前准备:将小鼠处死,取出骨髓组织,放入装有柠檬酸钠的小烧杯中,用剪刀剪碎,使骨髓细胞游离出来。
2. 低渗处理:将骨髓细胞悬浮液放入离心管中,离心后弃去上清液,加入适量固定液,再次离心,弃去上清液。
3. 染色:将固定后的细胞沉淀用染色液染色,室温放置10-15分钟。
4. 滴片:将染色后的细胞沉淀用滴管滴在载玻片上,盖上盖玻片,用显微镜观察。
五、实验结果与分析1. 观察到细胞呈圆形,细胞核较大,染色质清晰可见,染色体呈X形,可见有丝分裂中期细胞。
2. 观察到染色体数目与小鼠的正常染色体数目一致,染色体结构完整,无断裂、缺失、易位等异常。
六、实验讨论1. 秋水仙素处理:秋水仙素是一种细胞分裂抑制剂,能使细胞分裂阻滞在中期,有利于观察染色体结构。
2. 低渗处理:低渗处理可以使细胞膨胀,便于观察染色体结构。
3. 固定:固定可以使细胞和染色体保持原状,便于观察。
4. 染色:染色可以使染色体着色,便于观察。
七、实验总结本实验成功制备了小鼠骨髓细胞染色体标本,并观察到了染色体结构。
通过本实验,我们掌握了染色体制备的基本原理和操作步骤,提高了观察细胞结构的能力。
在今后的实验中,我们将进一步学习染色体分析技术,为遗传学研究提供有力支持。
实验二小鼠骨髓细胞染色体标本制备实验目的:通过制备小鼠骨髓细胞染色体标本,了解染色体结构、形态和变异等方面的知识,为后续核型分析、染色体异常检测等实验打下基础。
实验原理:小鼠骨髓细胞染色体标本制备是指将小鼠骨髓组织中的细胞进行处理后制备成适合观察的染色体标本。
该标本制备方法包括细胞处理,染色体制备和染色体观察等环节。
1.小鼠骨髓细胞处理将小鼠放入固定夹,使用无菌注射器向小鼠腹腔注入适量的钾盐缓冲液(KCl,0.074mol/L)。
钾盐缓冲液的功能是使细胞发生肿胀,探头区别正常细胞和异常细胞。
此外,钾盐缓冲液也有不利的作用,可以导致一些染色体脱落或断裂。
接下来,在小鼠固定夹上进行剖腹,取出骨髓。
骨髓组织放置在一滴含有10%甘露醇的氯仿中进行易位。
在显微镜下观察细胞的形态结构,进行可行性检测。
2.染色体制备取干净的药片,滴入细胞悬液,热外片变性塔。
药片的材料使用高价值玻璃药片,这样可以保证药片平整和染色体不能和药片表面黏附。
加入甘醇一定要多加就能快速促进水分的蒸发,避免液体反应产生气泡而影响结果。
不需要太用力,在药片的表面轻轻涂抹,使液体均匀分布。
接下来,将药片吸入液、95%甲醇,以及3%乙酸中每个5分钟,直到药片完全干燥。
3.染色体观察将药片上的细胞标本置于显微镜上,根据染色体数目和形态等信息进行染色体分析。
在显微镜下观察染色体的特征,包括染色体数量、形态、大小、位置以及异常情况等。
对观察到的染色体进行记录和描述。
实验结果:通过对小鼠骨髓细胞进行染色体制备和检测,我们可以观察到染色体的结构、形态等方面的特征。
此外,通过对染色体的数量和形态进行观察,还可以发现染色体的变异情况,进一步了解染色体的异常情况。
在实际操作过程中,需要注意细胞处理和染色体制备的每一个环节,以保证实验的准确性和可靠性。
实验七骨髓细胞染色体的制备与观察
[实验目的]
1.小白鼠等骨髓细胞染色体的制备,初步掌握低渗法制备动物骨髓细胞染色体的方法。
2. 熟悉染色体的形态、种类及青蛙、小白鼠等动物染色体的数目或类别。
[实验原理]
骨髓细胞是具有旺盛分裂能力的细胞,从这些分裂细胞中,可观察到处于分裂中期的染色体,能对一种动物染色体的形态特征、数目进行准确的观察和分析。
由于骨髓直接涂片观察到的分裂相少,效果差,因此要对骨髓细胞进行必要的处理。
这个处理方法称为低渗法,其基本要求首先是要获得较多的中期分裂相。
秋水仙素对分裂期纺锤丝的形成具有破坏作用,当动物被注射适量的秋水仙素后,处于分裂增殖中的骨髓细胞由于纺锤丝不能形成,中期染色体不能正常趋向两极,到达后期、末期,因而大量的细胞处于观察染色体形态最佳的分裂中期。
其次是要能够清楚的观察染色体的形态。
为了达到此目的,取出的骨髓细胞要经过低渗(kcl溶液)使细胞膨胀、染色体适当的分散。
固定(甲醇、冰醋酸)使染色体保持完好的形态。
染色(giemsa液)使染色体易分辨、观察。
制备优良的标本可获得满意的观察效果。
利用动物骨髓制作染色体观察标本取材容易,不需培养,不需无菌操作,比较简便,是生物学实验教学中常用的方法。
一般选用的动物有青蛙、蟾蜍、小白鼠、大白鼠等。
[实验用品]
1. 动物:青蛙或小白鼠、大白鼠、蟾蜍,雌雄均可。
2. 试剂:0.02﹪秋水仙素、0.075mol/l氯化钾 (kcl)、3:1甲醇、冰醋酸固定液、吉姆萨(giemsa)染液、香柏油或液体石蜡、二甲苯。
3. 器材:解剖盘、小镊子、剪刀、注射器(2ml、5ml各一支)、刻度离心管、玻璃吸管、预冷载玻片、染色缸、玻片盒、量筒(10ml、50ml、100ml各一支),恒温水浴箱,盘架天平(配备等大的小烧杯两个)、电吹风、显微镜、吸水纸、擦镜纸、酒精灯、火柴。
[实验内容与方法]
一、试剂配制
1. 0.02﹪秋水仙素溶液:秋水仙素2mg,灭活生理盐水(蛙类0.65﹪、哺乳类0.85﹪的nacl)10ml溶解,避光保存。
2. 0.075mol/l kc1溶液:
原液: kcl 11.8g双蒸水100ml溶解。
使用液:原液1份,双蒸馏水19份混合,
3. 吉姆萨 (giemsa)染液:
原液:吉姆萨染粉0.5g,甘油33ml,甲醇33ml,配制时先将giemsa粉置于研体中,加入少量甘油,研磨至无颗粒,再加入余下的甘油,拌匀后放入56℃温箱中保温2小时,然后取出加入甲醇,充分拌匀,滤纸过滤用棕色瓶密封,避光保存,一般要放置2周后才能使用。
使用液:原液1份,ph6.8磷酸缓冲液9份稀释。
使用液不宜长期保存,一般现配现用。
4. ph6.8磷酸缓冲液:该液可先配成甲液和乙液,然后混合使用。
甲液:kh2po4 0.907g蒸馏水100ml溶解。
乙液:na2hpo4·2h20 1.18g(或na2hpo4·12h20 2.38g)加蒸馏水100ml溶解。
使用液 (ph6.8):甲液50.8ml,乙液49.2ml混合,该使用液也不易久放,一般也是现配现用。
二、染色体制备
各种动物骨髓细胞染色体的制备方法基本都采用低渗法,现以青蛙为例,说明其制备的过程。
1. 取健康小鼠一只,按每10g体重由腹腔注入含量为0.02% 的秋水仙素0.3ml(此步在实验前12~24小时完成,哺乳动物在实验前2~4小时完成)。
2. 将青蛙处死,迅速取出后腿长骨,包括股骨和胫骨,为了获得较多的骨髓细胞,前肢亦可使用。
3. 用剪刀、镊子剥离肌肉及结缔组织,剪去两头的骨结,迅速用5ml注射器抽取0.075mol/l 的kcl溶液,从一头插入骨髓腔冲洗,冲洗液接入刻度离心管内,反复多次,直至骨髓腔变白。
此时不要让组织块掉进离心管,如掉入,一定要用镊子或吸管取出。
加低渗液至5ml或8ml刻度,放入37℃恒温水浴箱内低渗处理25分钟。
4. 低渗完毕,取出离心管,向离心管中加入1ml左右3﹕1甲醇、冰醋酸固定液进行预固定。
1~2分钟后,每两支离心管成对放在天平上配平,使两支管的重量相等,然后将这两支管对应的放入离心机内的孔中,以1 500r/min 离心5~8分钟。
5. 取出离心管,弃去上清液,再加固定液至6~8ml,用玻璃吸管沿离心管壁吹打,使沉淀的细胞团块在固定液中充分均匀,然后放入37℃水浴箱中固定15~20分钟。
6. 再取出离心管,配平后离心5~8分钟,转速同样为1 500r/min。
离心完毕,去掉上清液,再加入1ml左右的固定液,用吸管吹打,制成细胞悬液。
7. 取预冷湿玻片一张,用吸管吸取细胞悬液,从30cm左右的高度滴到载玻片上,再用口吹散滴液,置于酒精灯上微微火烤,最后放玻片架或玻片盒中晾干。
8. 将晾干的玻片放入吉姆萨应用液染色缸中,或将玻片平放于桌上,将染液滴在片上染色。
染色10分钟后,用蒸馏水或自来水小心冲去染液,电吹风吹干后镜检。
三、染色体观察
将制好的玻片置于显微镜下,首先观察标本的制备效果,检验操作过程是否正确。
一般来说,制得好的标本应是细胞多、颜色为紫红色。
此时间期细胞由于低渗和固定处理,细胞膜和质已被去掉,镜下看到的仅为膨胀后呈圆形的细胞核。
分裂期细胞染色体集中在一起,其外也无细胞膜包裹,染色体之间无重叠,易分辨,臂的长度适中。
但最重要的是分裂相要多。
分裂相的多
少主要取决于秋水仙素的用量和时间。
秋水仙素还影响染色体的形态,如用量过大,常使染色体过于缩短,不利于观察。
青蛙体细胞的染色体数目(2n)为26条,性染色体机制为xx - xy,即雌性为xx,雄性为xy。
染色体的形态随青蛙种类不同略有差异,主要表现为亚中着丝粒染色体的序号和数目不同,如黑斑蛙的亚中着丝粒染色体为3、7、8、11、12等5对染色体,金线蛙为3、7、11、12等4对染色体,虎纹蛙为3、6两对染色体。
小白鼠的染色体数目(2n)为40条,但全部为端着丝粒染色体,大小区别不明显,较难分组编号。
图 6-1 小鼠染色体核型
大白鼠的染色体(2n)为42条,家兔的染色体(2n)是44条。
观察染色体时,不需加盖玻片,镜下先用低倍镜调好焦距,找到无离散,无重叠,形态好,可记数的一个分裂相,然后转高倍镜或油镜观察、记数,观察完毕后也不需擦试玻片,这样的玻片可保存数月。
表6-1 几种动物染色体形态特征
动物名称染色体数染色体类型x染色体形态y染色体形态
青蛙26中央、亚中央着丝粒染色中央着丝粒染色中央着丝粒染色
体体,介于6~7号体,介于8~9号小白鼠40全部为近端着丝粒染色体大小介于5~6号大小介于19~20
号
大白鼠42中央、亚中央近端着丝粒
染色体近端着丝粒染色
体,介于4~5号
近端着丝粒染色
体,介于18~19号
家兔44中央、亚中央近端着丝粒
染色体亚中央着丝粒染色
体,介于5~6号
近端着丝粒染色
体,介于19~20号
[注意事项]
1. 腹腔注射秋水仙素溶液时,注意不要使针头损伤动物内脏。
2. 制片所用离心管、吸管等勿必洗涤干净,否则细胞会滞留于管壁收集不到细胞导致实验失败。
3. 离心时,离心管一定要先平衡,然后在离心机中对应放置。
4. 使用药品时要注意药名标签,注意使用正确浓度。
5. 观察计数染色体数目时,观察的分裂相一般要在10个以上,这样计数才比较准确。
[实验报告与思考题]
绘图
绘制一个你所观察到的动物骨髓细胞染色体分裂相。
思考题
1. 简述青蛙骨髓细胞染色体的制备过程。
2. 制片过程中为什么要进行低渗处理?低渗的时间长短对染色体制片效果有何影响?
3. 在取骨髓前为什么要给动物注射秋水仙素?。