qPCR实验步骤
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Q-PCR实验流程
一、总RNA抽提
1)细胞培养皿中细胞样品用1X PBS洗两次后，用1ml枪将PBS吸干净，加入1ml Trizol (invitrogen)溶液，吹打混匀，并吸至1.5ml RNase free EP管中使细胞充分裂解，室温静置5min;
组织样品用液氮充分研磨，加入1ml Trizol (Invitro gen)溶液，混匀，室温放置5min使其充分裂解;(管盖与管壁都需标记样品名称)
2)加入200μl氯仿（5X），剧烈振荡混匀1min，使水相和有机相充分接触，室温静置3-5min;(离心时离心管按顺序排放，离心完毕，离心管的顺序也按顺序排好，与第一步的顺序一致)
3)4℃下，14000g离心5min，可见分为三层，RNA在上层水相，移至另一个新的RNase free EP管;(用20-200ul的枪吸取上清，吸上清时，枪头应沿着液面上层吸取上清，枪头不可碰到、吸到中间层)
4)沉淀RNA：加入等体积（1:1）异丙醇，轻柔地充分混匀(颠倒6-8次)(不应用振荡器混匀)，室温静置10min;
5)4℃下，14000g离心15min，收集RNA沉淀(如离心后仍不见EP管底部有沉淀，应将EP管放置在-80度冰箱过夜，继续在4℃下，14000g离心10min，收集RNA 沉淀)，去上清;
6)用75%乙醇洗涤两次，12000g离心5min(加入乙醇后只需轻轻颠倒EP管即可，不用振荡器震荡或枪头吸打沉淀)，弃去上清液，空甩一次，以完全去除乙醇，开盖晾3~5min，反复2次，挥干，使样品变透明。
7)视沉淀量加入适量DEPC水(至少15ul)溶解沉淀。
，打散，备用。
二、反转录
1) 在RNase free的PCR管中配置下列溶液.
2) 将上述溶液吹打均匀，置70℃保温5min，使RNA变性。
随后4℃，保持5min，以防止RNA复性;
3) 在该PCR管中加入下列试剂
4) 将上述20μl反应溶液混匀，空甩，开始反转录：
25℃保温10min;
42℃保温60min;
70℃保温15min;
4℃，∞。
三、调cDNA浓度
反转结束后，每个样品加入80 ul的超纯水，混匀，用微量分光光度计检测浓度，先用超纯水校准。
20 ul（cDNA）+ 80 ul超纯水→100 ul（cDNA）
然后将各样品的cDNA浓度调至150 ng/ul.
初始浓度 X 100 = 150 X （水 + 100）
加水量 = 初始浓度 X 100/150 – 100.
四、PCR:
离心甩匀后，放入PCR扩增器中，设置反应体系。
五．电泳
配胶：1.5%
80 ml 1 X TBE + 1.2 g 琼脂
微波3 min，使之澄清，加入8 ul Gelred摇匀（与TBE 1:10000），加入板上，排除气泡，放入梳子，静置。
垂直拔出梳子，倒入TBE使之没过所有孔，上样，注意每行预留Marker位置，加样完成后，120 V 跑胶。
