下载文档原格式
水果、蔬菜汁类胡萝卜素含量的测定1 主题内容与适用范围本标准规定了水果、蔬菜汁中类胡萝卜素的分离提取方法及提取物中类胡萝卜素总量的测定方法。
本标准适用于水果、蔬菜汁中类胡萝卜素总量的测定。
2 原理果蔬滤液通过溶剂萃取,分离提取类胡萝卜素,在特定波长下用分光光度法测其吸光度。
该吸光度与类胡萝卜素含量成线性关系,通过换算即可得知类胡萝卜素之含量。
3 试剂和溶液本标准所用试剂除特殊规定外,均使用符合国家标准的分析纯试剂,均采用蒸馏水。
3.1 石英砂(Q/HG 22--467)；3.2 萃取剂,2/1(v/v)氯仿(GB 682)-甲醇(GB 683)混合。
4 仪器设备4.1 抽滤器；4.2 无灰分滤纸；4.3 分液漏斗：250mL；4.4 容量瓶,100mL；4.5 移液管,20mL；4.6 烧杯,50mL；4.7 分光光度计,使用的测量波长为440±10nm。
5 分析步骤注：由于类胡萝卜素本身性状的不稳定性,即见光易氧化分解,建议所有操作应避光进行。
5.1 试样的制备5.1.1 液体样品：混合均匀后取样。
5.1.2 固体样品：捣碎机捣碎后,纱布挤汁。
5.2 用移液管吸取20mL样液置50mL烧杯中。
5.3 过滤：在烧杯(5.2)中加入3g石英砂,摇动后用布氏漏斗过滤(布氏漏斗预先铺有无灰滤纸,纸上铺有2g石英砂),然后再用5mL水冲洗滤渣3次。
5.4 萃取：在250mL的分液漏斗中倒入滤液(5.3),再加入20mL萃取剂(3.2),振摇后静置,收集下部分有机相,再用20mL萃取剂提取两次,将三次萃取所得有机相合并,用萃取剂定容为100mL。
注：对果胶含量大的果蔬,萃取时,将三次合并的有机相重新倒回原分液漏斗,继续用20mL萃取洗涤一次,然后用萃取剂定容至100mL。
5.5 测定：在440±10nm波长下测定提取液的最大吸光度A。
6 结果的计算和表示类胡萝卜素总量用mg/L表示,按下式计算：类胡萝卜素(mg/L)＝A×20式中：A——测定的最大吸光度；20——换算系数。
一、实验目的1. 学习胡萝卜素的提取方法。
2. 掌握胡萝卜素含量的测定方法。
3. 了解胡萝卜的营养价值。
二、实验原理胡萝卜素是一种脂溶性色素，广泛存在于胡萝卜、菠菜、甘蓝等植物中。
胡萝卜素具有丰富的营养价值，对人体健康具有重要作用。
本实验采用有机溶剂提取胡萝卜素，并通过比色法测定胡萝卜素的含量。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：新鲜胡萝卜、无水乙醇、蒸馏水、三氯甲烷、无水硫酸钠、硅胶、标准胡萝卜素溶液等。
2. 实验仪器：电子天平、离心机、分光光度计、研钵、烧杯、试管、漏斗、滤纸等。
四、实验步骤1. 胡萝卜素的提取（1）将新鲜胡萝卜洗净，去皮，切成小块，放入研钵中。
（2）加入适量无水乙醇，研磨成匀浆。
（3）将匀浆倒入漏斗中，用滤纸过滤，收集滤液。
（4）将滤液倒入烧杯中，加入适量无水硫酸钠，搅拌均匀，静置。
（5）待滤液分层后，取出上层清液，用分液漏斗分离。
（6）将分离出的上层清液倒入试管中，加入适量硅胶，搅拌均匀，静置。
（7）待硅胶沉淀后，取出上层清液，用分光光度计测定其吸光度。
2. 胡萝卜素含量的测定（1）将标准胡萝卜素溶液稀释成一系列浓度，分别测定其吸光度。
（2）以吸光度为纵坐标，浓度为横坐标，绘制标准曲线。
（3）根据实验测得的胡萝卜素吸光度，从标准曲线上查得胡萝卜素含量。
五、实验结果与分析1. 胡萝卜素的提取通过实验，成功提取了胡萝卜素，提取率为（此处填写提取率）。
2. 胡萝卜素含量的测定根据标准曲线，计算出实验样品中胡萝卜素的含量为（此处填写含量）mg/g。
六、实验结论1. 本实验成功提取了胡萝卜素，提取率为（此处填写提取率）。
2. 通过比色法测定，实验样品中胡萝卜素的含量为（此处填写含量）mg/g。
3. 胡萝卜中含有丰富的胡萝卜素，具有很高的营养价值。
七、实验讨论1. 实验过程中，提取胡萝卜素的关键步骤是研磨、过滤和分离。
在研磨过程中，要注意研磨时间不宜过长，以免胡萝卜素氧化降解。
2. 在分离过程中，要注意分液漏斗的使用，避免混合液分离不完全。
胡萝卜实验报告数据引言胡萝卜是一种常见的蔬菜，富含维生素A、维生素C、纤维素等营养物质，并且具有抗氧化和免疫增强的功效。
为了研究胡萝卜中维生素含量与颜色的关系，我们进行了一项实验。
本报告旨在介绍实验的设计和结果分析，以及对实验结果的讨论。
实验设计我们从市场上购买了不同颜色的胡萝卜，包括红色、橙色和黄色三种。
为了保证实验的准确性和可比性，我们选择了相同规格和品种的胡萝卜，将它们均分为若干组，每组含有相同数量的胡萝卜。
在实验中，我们选取了三个不同的处理组：对照组、煮熟组和蒸煮组。
对照组的胡萝卜没有进行任何处理，只是晾晒后保存。
煮熟组的胡萝卜用开水煮熟后晾晒保存，而蒸煮组的胡萝卜则是用蒸锅蒸煮后晾晒保存。
实验步骤1. 将胡萝卜按照颜色分类切割成相同大小的块状。
2. 将每组胡萝卜放置于通风良好的地方晾晒48小时。
3. 称量每组胡萝卜的质量，并记录下来。
4. 使用高效液相色谱仪测定每组胡萝卜中维生素A和维生素C的含量。
5. 对照组的维生素含量作为基准，计算煮熟组和蒸煮组的维生素损失率。
实验结果通过高效液相色谱仪的测定，我们得到了不同处理组中胡萝卜维生素含量的数据。
胡萝卜颜色对照组(mg/100g) 煮熟组(mg/100g) 蒸煮组(mg/100g)红色 2.1 1.7 1.9橙色 1.8 1.4 1.6黄色 1.5 1.2 1.4根据实验结果，我们可以得出以下结论：1. 经过煮熟和蒸煮处理后，胡萝卜中的维生素A和维生素C的含量都有所下降。
相较于对照组，煮熟组和蒸煮组的胡萝卜中维生素的损失率略高一些。
2. 在三种颜色的胡萝卜中，红色胡萝卜的维生素含量最高，黄色胡萝卜的维生素含量最低。
这可能与胡萝卜颜色中的类胡萝卜素含量有关。
结论与讨论综合实验结果，我们可以得出如下结论：1. 胡萝卜中的维生素含量受到处理方法的影响，煮熟和蒸煮处理会导致维生素的损失。
2. 在胡萝卜的颜色方面，红色胡萝卜相较于橙色和黄色胡萝卜，含有更多的维生素。
本科生毕业论文（设计）鉴定表题目胡萝卜营养成分分析测定姓名王晴晴学号200912401009 院系生命科学学院专业生物工程指导教师蒋娟职称讲师年月日曲阜师范大学杏坛学院教务处制目录摘要 (1)关键词 (1)Abstract (1)Key words (1)引言 (2)1材料与方法 (2)1．1实验材料 (2)1．2实验器材与试剂 (2)1．3实验方法 (3)1．3．1可滴定酸酸度测定 (3)1．3．2可溶性固形物测定 (3)1．3．3可溶性蛋白质含量的测定 (3)1．3．4 总糖含量的测定 (4)1．3．5 胡萝卜素含量的测定 (5)2结果与分析 (5)2．1可滴定酸和可溶性固形物测定与分析 (5)2．2可溶性蛋白质含量测定与分析 (6)2．2．1 可溶性蛋白质含量测定 (6)2．2．2 可溶性蛋白质含量分析 (7)2．3总糖含量测定与分析 (7)2．3．1 总糖含量测定 (7)2．3．2 总糖含量分析 (8)2．4胡萝卜素含量测定与分析 (8)2．4．1 胡萝卜素含量测定 (8)2．4．2 胡萝卜素含量分析 (8)2．5胡萝卜各段营养成分分析 (8)3讨论 (9)3．1胡萝卜营养成分分析的结果 (9)3．2胡萝卜营养成分分析的意义 (9)致谢 (11)参考文献 (12)胡萝卜营养成分分析测定生物工程专业学生王晴晴指导教师蒋娟摘要：以胡萝卜为主要原料，对可滴定酸、可溶性固形物、可溶性蛋白质、总糖和胡萝卜素等营养成分含量进行分段测定。
结果：三部分营养成分含量相差不大，整体来看pH值为6.26，可溶性固形物为10.3%，可溶性蛋白质含量为0.18g/100g，总糖含量为6.82g/100g，胡萝卜素含量为3.8mg/100g。
关键词：胡萝卜营养成分分析Analysis and Determination of Nutritional Components inDaucus CarrotStudent majoring in bioengineering Wang QingqingTutor Jiang JuanAbstract：To determine and evaluate titratable acidity, soluble solids, soluble protein, total sugar and carotene of daucus carrot. Results:the contents of titratable acidity and soluble solids in the carrot were 6.26,10.3% respectively. The amounts of soluble protein and total sugar in 100g fresh weight of carrots were 0.18g,6.82g respectively. In addition, the amounts of carotene in 100g fresh weight of carrots were 3.8mg.Key words: daucus carota nutrients analysis引言胡萝卜(Daucus carota L. var. sativa DC.) 原产于亚洲西南部、中亚西亚地区，元末传入我国，故称胡萝卜，又名甘荀、金笋、丁香萝卜，为伞形科胡萝卜属两年生草本植物，我国各地均有种植，素有“小人参”的美誉，是一种富含蛋白质、糖类、维生素和胡萝卜素等营养成分的蔬菜。
对Β-胡萝卜素测定方法的认识姓名：***班级：应用化学122班学院：化学工程学院学校：新疆农业大学对β-胡萝卜素测定方法的认识摘要：食品中的β-胡萝卜素可以用纸上层析法、薄层色谱法、分光光度法及高效液相色谱法等方法测定。
本文简述了这些方法的原理条件及优缺点，并谈了谈自己的认识。
Β-胡萝卜素作为维生素A的前体，是人体重要营养素，也能够影响蛋白质的合成和利用，促进体内软组织的生长发育。
同时，β-胡萝卜素还有一定的防癌作用。
因此，对β-胡萝卜素的研究倍受广注。
β-胡萝卜素分子中存在多个共轭双键结构，对许多物理、化学、生物等因素都不稳定，例如光辐射、高温、酸、碱、游离卤素、水分等，但氧是影响胡萝卜素稳定的主要因素。
它不溶于水、丙二醇、甘油、酸和碱，溶于二硫化碳、苯、氯仿、己烷及植物油等，几乎不溶于甲醇和乙醇。
1 测定方法1·1 天然β-胡萝卜素的提取取切碎混匀的菜样30g，加入适量水(一般约l：0.5—2)，于捣碎机中捣碎，使匀浆呈稠糊状。
因β-胡萝卜素对弱碱比较稳定，所以选用氨水：乙醇（5:35）作为稳定剂。
稳定剂可以加快沉淀且使沉淀完全，从而减少β-胡萝卜素损失，提高提取率。
加入2%的CaCl2·2H2O其沉淀量最大，且β-胡萝卜素的含量最高。
因β-胡萝卜素是脂溶性物质，可以溶解在有机试剂中，根据相似相溶规律和β-胡萝卜素的理化性质，我们选用亲脂性较强的有机溶剂。
为避免β-胡萝卜素的不必要损失，在除去溶剂时应避免高温，故应优先选择低沸点的溶剂。
同时，根据β-胡萝卜素在不同溶剂中的溶解度；可以得出石油醚可以作为很好的β-胡萝卜素的溶剂。
因为蔬菜糊中含有大量的水分，直接选用石油醚很难从其中萃取β-胡萝卜素，选用水溶性的丙酮和石油醚的混合液萃取，这样丙酮会有效地使渣干燥因而在随后的萃取中，色素可以高效地进入萃取液，提高了萃取率。
故在萃取过程中，为了提高萃取率，应加入氨水：乙醇（5:35）作为稳定剂，2%的CaCl2·2H2O作为沉淀剂；用石油醚和丙酮混合物作为提取剂。
食物中胡萝卜素的测定方法Method for determination of carotene in foods1 主题内容与适用范围本标准规定了食物中胡萝卜素的测定方法——纸层析法。
本标准适用于植物性食物和含有植物性食物的混合食物中胡萝卜素的测定，其最小检出限为0.11μg。
2 原理以丙酮和石油醚提取食物中的胡萝卜素及其他植物色素，以石油醚为展开剂进行纸层析，胡萝卜素极性最小，移动速度最快，从而与其他色纱分离；剪下含胡萝卜素的区带，洗脱后于450nm波长下定量测定。
3 试剂3.1 石油醚（沸程30～60℃）：同时是展开剂。
3.2 丙酮：分析纯。
3.3 丙酮-石油醚混合液：3：7（V/V）。
3.4 无水硫酸钠：分析纯。
3.5 5%硫酸钠溶液。
3.6 1：1氢氧化钾溶液：取50g氢氧化钾溶于50mL水。
3.7 无水乙醇：需经脱醛处理。
3.8 β-胡萝卜素标准溶液：取5mgβ-胡萝卜素标准品，溶于10mL三氯甲烷中，浓度约为500μg/mL，准确测其浓度。
取标准溶液10.0μL，加正己烷3.00mL，混匀，测吸光值，比色杯厚度1cm，以正己烷为空白，入射光波长450nm，平行测定三份，取均值。
计算公式： (1)式中：X1——胡萝卜素标准溶液浓度，mg/mL；A——吸光值；E——β-胡萝卜素在正己烷溶液中，入射光波长450nm，比色杯厚度为1cm，溶液浓度为1ppm的吸光系数，为0.2638；——将ppm,换算成mg/mL;——测定过程中稀释倍数的换算。
3.9 β-胡萝卜素标准使用液：将已标定的标准液用石油醚准确稀释后，每毫升溶液相当50μg，避光保存于冰箱中。
4 仪器和设备4.1 实验室常用设备。
4.2 玻璃层析缸。
4.3 分光光度计。
4.4旋转蒸发器：具150mL球形瓶。
4.5 恒温水浴锅。
4.6 皂化回馏装置。
4.7 点样器或微量注射器。
4.8 新华滤纸：定性，快速或中速，101号。
5 样品的采集和处理5.1 粮食：样品用水洗三次，置60℃烤箱中烤干，磨粉，储于塑料瓶内，放一小包樟脑精，盖紧瓶塞保存，备用。
5.2 蔬菜与其他植物性食物：取可食部用水冲洗三次后，用纱布吸去水滴，切碎，用匀浆器制成匀浆，贮于塑料瓶内，冰箱内保存备用。
6 测定步骤（以下步骤需在避光条件下进行）6.1 样品提取6.1.1 取适量样品，相当于原样1～5g（含胡萝卜素约20～80μg）的匀浆，粮食样品视其胡萝卜素含量而定，置100mL带塞锥形瓶中，加入丙酮20mL，石油醚5mL，振摇1min，静置5min，将提取液转入盛有100mL5%硫酸钠溶液的分液漏斗中，再于锥形瓶中加入10mL丙酮-石油醚混合液，振摇1min，静置5min，将提取液并入分液漏斗中。
如此提取2～3次，直至提取液无色为止。
6.1.2 植物油和高脂肪样品：需先皂化，取适量样品（＜10g＝，加脱醛乙醇30mL，再加10mL1：1氢氧化钾溶液，回流加热30min，然后用冰水使之迅速冷却，皂化后样品用石油醚提取，直至提取液无色为止。
6.2 洗涤6.2.1 将提取液（6.1.1）静置分层，弃去下层水溶液，反复用5%硫酸钠溶液振摇洗涤，每次约15，直至下层水溶液清亮为止。
6.2.2 将皂化后样品提取液（6.1.2）用水洗涤至中性。
6.2.3 将6.2.1或6.2.2的石油醚提取液通过盛有10g无水硫酸钠的小漏斗，漏入球形瓶，用少量石油醚分数次洗净分液漏斗和无水硫酸钠层内的色素，洗涤液并入球形瓶内。
6.3 浓缩与定容将上述球形瓶内的提取液于旋转蒸发器上减压蒸发，水浴温度为60℃，蒸发至约1mL时，取下球形瓶，用氮气吹干，立即加入2.00mL石油醚定容，备层析用。
6.4 纸层析6.4.1 点样：在18cm×30cm滤纸下端距底边4cm处作一基线，在基线上取A、B、C、D四点（如图1所示），吸取0.100～0.400mL浓缩液(6.3)在AB和CD间迅速点样。
图16.4.2 展开：待纸上所点样液自然挥发干后，将滤纸卷成圆筒状，置于预先用石油醚饱和的层析缸中，进行上行展开。
6.4.3 洗脱：待胡萝卜素与其他色素完全分开后，取出滤纸，自然挥发干石油醚，将位于展开剂前沿的胡萝卜素层析带剪下，立即放入盛有5mL石油醚的具塞试管中，用力振摇，使胡萝卜素完全溶入溶剂中。
6.5 比色测定用1cm比色杯，以石油醚调节零点，于450nm波长下，测吸光度，以其值从标准曲线上查出β-胡萝卜素的含量，供计算时使用。
6.6 标准曲线绘制取–胡萝卜素标准使用液（浓度为50μg/mL）1.00、2.00、3.00、4.00、6.00、8.00mL分别置于100mL具塞锥形瓶中，按样品测定步骤进行操作，点样体积为0.100mL，标准曲线各点胡萝卜素含量依次为2.50、5.00、7.50、10.00、15.00、20.00μg。
为测定低含量样品，可在0至2.50μg间加做几点，以胡萝卜素含量为横坐标，以吸光度为纵坐标绘制标准曲线（见图2）。
图2 实测图例胡萝卜素标准曲线图7 计算 (2)——样品中胡萝卜素的含量，以β-胡萝卜素计，mg/100g；式中：X2——在标准曲线上所查得的胡萝卜素的含量，μg；——点样体积，mL；——样品石油醚提取液浓缩后的定容体积，mL；——样品质量，g。
8 结果的允许差同一实验室平行测定或重复测定结果的相对偏差绝对值、应用范围该方法用于预混料中β－胡萝卜素的定量分析2、原理样品被KOH水溶液皂化，β－胡萝卜素被乙醇和环己烷萃取出来，用乙醇和异丙醇稀释后，用分光光度计测定β－胡萝卜素含量。
3、分析过程3.1 3mol/L的KOH溶液：将34.0gKOH溶于水，然后定容到200.0ml3.2 样本溶液配制精确称取含大约10mgβ－胡萝卜素到锥形瓶中。
加入20ml 3mol/L的KOH溶液，在65℃（超声或水浴中震摇）15min，冷却后加入50.0ml环己烷和50.0ml无水乙醇，用磁搅拌子以700转/分的速度搅拌至少5min，（或强烈震摇10min,使均匀），取该溶液1ml用异丙醇定容到10ml 在最大波长452nm测定吸光度，用异丙醇做空白。
4、计算结果A（吸光度）×稀释量×0.955（校正因子）取样量（mg）×250A（吸光度）×50（环己烷量）×10（异丙醇定容量）×0.955（校正因子）取样量（mg）×2501％β－胡萝卜素取0.10－0.12gGB/T5009.83--2003 食物中胡萝卜素的测定本方法检出限：高效液相色谱法为5.0mg/kg（L），线性范围为0~100mg/L；纸层析法为0.11μg，线性范围1 ng～20ng。
第一法高效液相色谱法2. 原理试样中的β-胡萝卜素，用石油醚丙酮（80 20）混合液提取，经三氧化二铝柱纯化，然后以高效液相色谱法测定，以保留时间定性，峰高或峰面积定量。
3 试剂3.1石油醚：沸程 30℃~60℃。
3.2甲醇：色谱纯。
3.3丙醇。
3.4己烷。
3.5四氢呋喃。
3.6三氯甲烷。
3.7乙腈：色谱纯。
3.8三氧化二铝：层析用，100-200目，140℃活化2h，取出放入干燥器备用。
3.9含碘异辛烷溶液：精确称取碘1mg，用异辛烷溶解并稀释至25mL，摇匀备用。
3.10α-胡萝卜素标准溶液：精确称取1mgα-胡萝卜素，加入少量三氯甲烷溶解，然后用石油醚溶解并洗涤烧杯数次，溶液转入25mL容量瓶中，用石油醚定容，浓度为40μg/mL，放入-18℃储存备用。
3.11β-胡萝卜素标准溶：精确称取β-胡萝卜素12.5mg于烧杯中，先用少量三氯甲烷溶解，再用石油醚溶解并洗涤烧杯数次，溶液转入50mL容量瓶中，用石油醚定容，浓度为250μg/mL。
-18℃储存备用。
二个月内稳定。
根据所需浓度取一定量的β-胡萝卜素标准液用移动相稀释成100μg/mL。
3.12β-胡萝卜素标准使用液：分别吸取β-胡萝卜素标准溶液0.5、1.0、2.0、 3.0、4.0、5.0mL于10mL容量瓶中，各加移动相至刻度，摇匀后，即得β-胡萝卜素标准系列，分别含β-胡萝卜素5、10、20、30、40、50μg/mL。
3.13β-胡萝卜素异构体：精确称取1.5mgβ-胡萝卜素于10mL容量瓶中，充入氮气，快速加入含碘异辛烷溶液10mL，盖上塞子，在距20W的荧光灯30cm处照射5分钟，然后在避光处用真空泵抽去溶剂，用少量三氯甲烷溶解结晶，再用石油醚溶解并定容至刻度，浓度为150μg/mL，-18℃保存。
4仪器4.1高效液相色谱仪4.2离心机4.3旋转蒸发仪5分析步骤5.1试样提取5.1.1淀粉类食品：称取10.0g试样于25mL带塞量筒中（如果试样中β-胡萝卜素量少，取样量可以多些），用石油醚或石油醚丙酮（80 20）混合液振摇提取，吸取上层黄色液体并转入蒸发器中，重复提取直至提取液无色。
合并提取液，于旋转蒸发器上蒸发至干（水浴温度为30℃）。
5.1.2液体食品：吸取10.0mL试样于250mL分液漏斗中，加入石油醚丙酮（80 20）20mL提取，然后静置分层，将下层水溶液放入另一分液漏斗中再提取，直至提取液无色为止。
合并提取液，在旋转蒸发器蒸发至干（水浴温度为40℃）。
5.1.3油类食品：称取10.0g试样于25mL带塞量筒中，加入石油醚丙酮（80 20）提取。
反复提取，直至上层提取液无色。
合并提取液，于旋转蒸发器蒸发至干。
5.2纯化将5.1.1，5.1.2，5.1.3的试样提取液残渣，用少量石油醚溶解，然后进行氧化铝层析。
氧化铝柱为1.5cm（内径）×4cm（高）。
先用洗脱液丙酮石油醚（5：95）洗氧化铝柱，然后再加入溶解试样提取液的溶液，用丙酮石油醚（5：95）洗脱β-胡萝卜素，控制流速为20滴/min，收集于10mL容量瓶中，用洗脱液定容至刻度。
用0.45um微孔滤膜过滤，滤液作HPLC分析用。
5.3测定5.3.1HPLC参考条件：色谱柱： Spherisorb C18柱 4.6 mm×150mm。
流动相：甲醇乙腈（90 10）流速：1.2mL/min波长：448nm5.3.2试样测定：吸取“5.2”项已纯化的溶液20ul依法操作，从标准曲线查得或回归求得所含β-胡萝卜素的量。
5.3.3标准曲线：分别进标准使用液20ul，进行HPLC分析，以峰面积对β-胡萝卜素浓度画标准曲线。
6结果计算见式（1）。
V×C 1X=--------×1000×------------ (1)m 1000×1000式中：X－试样中β-胡萝卜素的含量，单位为克每千克或克每升（g/kg或g/l）；V－定容后的体积，单位为毫升（mL）；C－试样中β-胡萝卜素的量（在标准曲线上查得），单位为微克每毫升（μg/mL）；m－试样的量，单位为克或毫升（g或mL）；计算结果保留两位有效数字。
