林下山参的人参皂苷含量分析和指纹图谱研究
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实验六人参中人参皂苷的提取分离及鉴定(共享)一、实验介绍人参是一种传统的中药材,具有滋补强壮、改善免疫功能、抗氧化、抗疲劳等保健作用。
人参中的主要活性成分为人参皂苷,是一类四环倍半萜类化合物,已经被证明具有多种药理活性,包括治疗心血管疾病、神经系统疾病、肿瘤等。
本实验将通过浸提、分离纯化和质谱鉴定等方法,提取并鉴定人参中的人参皂苷。
二、实验原理1、浸提法浸提法是将药材浸入某种合适的溶剂中,使药材中的有效成分与溶剂发生物理或化学变化,达到提取目的的一种分离方法。
2、硅胶柱层析法硅胶柱层析法是将样品溶液通过硅胶柱,利用在硅胶表面的物理吸附或化学吸附作用,将混杂在一起的化合物分离开的方法。
3、质谱鉴定质谱鉴定是一种能够确定样品化学结构和分子质量的分析技术。
常用的质谱仪有基质辅助激光解吸/电离质谱仪(MALDI-TOF MS)、毛细管电泳-电喷雾离子化质谱仪(CE-ESI-MS)、气相色谱-质谱联用仪(GC-MS)等。
三、实验步骤1、人参皂苷的浸提提取取50克粉碎后的人参,加入500 mL纯水,加热至60℃灌装入烧杯中,自然冷却至室温,用纱布过滤液体,重复浸提两次,将过滤液集合并浓缩至100 mL,抽取所有成分并将溶剂蒸干,得到人参的浸提液。
将人参浸提液溶于甲醇,用硅胶柱层析法进行分离。
在硅胶柱中注满硅胶,静置,再用甲醇将硅胶冲洗至洗液pH值小于7,并流至平衡,用稀甲酸使硅胶柱的pH值保持在4.5左右,注入30 ml的样品溶液后,按照乙醇-水(5:95)逐步更换溶剂进行洗提。
收集各部分2 mL溶液,检测其皂苷浓度。
将含有人参皂苷的溶液分别离子化并进入质谱仪,分别进行质谱分析,并比对和参考相关文献,确定人参皂苷的种类及分子质量。
四、实验结果浸提液得率为12.5%,色深浅不一,澄清程度良好。
利用硅胶柱进行层析分离,得到了包含人参皂苷的溶液。
收集了各部分的溶液,并测定了其皂苷浓度,得到各部分的含人参皂苷浓度、总皂苷脂含量和分离效果。
参在医疗或养生方面都有可观的价值,而不同产地的人参由于环境、气侯、水土等因素影响,其成分也有所不同,故市场上流通的人参存在不少非原产地以次充好,以假乱真的现象。
目前中药指纹图谱中应用最多的方法是高效液相色谱法,因为其对样品挥发度和热稳定性限制小,兼具高柱效、高选择性、灵敏度高的优点,比较适合中药材复杂体系的分析。
所以,在参考前人的研究基础上,利用高效液相色谱法对人参药材进行多维谱图条件研究,寻找不同产地人参之间的识别因子以及通过人参药材与制剂指纹图谱的相关性分析,能科学评价及有效控制人参质量。
仪器与试剂仪器。
美国Agilent 1200 高效液相色谱仪;德国sar-torius CP224S电子分析天平;天津奥特赛恩斯AS20600B-DT超声波清洗仪;上海菲恰尔TDL-5A离心机。
试剂。
乙腈(色谱纯,美国TEDIA公司);磷酸(优级纯,国药集团化学试剂有限公司);甲醇(分析纯,广州化学试剂厂);乙醇(分析纯,广州化学试剂厂);人参皂苷Rb1、Rb2、Rb3、Re、Rf、Rg1(中国药品生物制品检定所);Rc、Rd、Rh1(北京恒元启天化工技术研究院)样品。
本实验共收集人参药材26批,其中吉林12批,辽宁10批,北京、山东、加拿大、东北各1批。
药用部位均为人参主根。
实验方法色谱条件。
色谱柱:phenomenex Kinetex C18 100Å(100×4.6mm,2.6μm);检测波长:203nm;柱温:25℃;流速:1.0mL/min;流动相:以乙腈为流动相A,0.1%磷酸溶液为流动相B,洗脱程序:0~17.5min,乙腈19%,17.5~22.5min,乙腈变化到29%,22.5~35min,乙腈保持在29%,35~50min,乙腈变化至40%;分析时间:50min;进样量:5μL。
对照品溶液的制备。
精确称取人参皂苷Rb1、Rb2、Rb3、Rc、Rd、Re、Rh1、Rf、Rg1对照品适量,加甲醇溶解分别制成0.2mg/mL的对照品溶液。
实验六人参中人参皂苷的提取分离及鉴定人参为五加科植物人参(Panax ginseng C.A.Mey.)的干燥根,是传统名贵中药,始载于我国第一部本草专著《神农本草经》。
其栽培者称为“园参”,野生者称为“山参”。
人参具有大补元气、复脉固脱、补脾益肺、生津、安神之功能,用于体虚欲脱、肢冷脉微、脾虚食少、肺虚喘咳、津伤口渴、内热消渴、久病虚羸、惊悸失眠、阳痿宫冷、心力衰竭、心源性休克等的治疗。
人参的化学成分很复杂,有皂苷、挥发油、糖类及维生素等。
经现代医学和药理研究证明,人参皂苷为人参的主要有效成分,它具有人参的主要生理活性。
人参的根、茎、叶、花及果实中均含有多种人参皂苷(ginsenosides)。
到目前为止,文献报道从人参根及其它部位已分离确定化学结构的人参皂苷有人参皂苷-Ro、-Ra1、-Ra2 、-Rb1、-Rb2、-Rb3、-Rc、-Rd、-Re、-Rf、-Rg1、-Rg2、-Rg3、-Rh1、-Rh2及-Rh3 等50余种人参皂苷。
根据皂苷元的结构可分为A、B、C三种类型:①人参二醇型-A 型,②人参三醇型-B型,③齐墩果酸型-C型。
A型和B型皂苷均属四环三萜皂苷,其皂苷元为达马烷型四环三萜,A型皂甙元称为20(S)-原人参二醇[20(S)-protopanaxadiol]。
B型皂甙元称为20(S)-原人参三醇[20(S)-protopanaxatriol]。
C型皂苷则是齐墩果烷型五环三萜的衍生物,其皂苷元是齐墩果酸(oleanolic acid)。
[目的要求]1.通过实验进一步掌握三萜类化合物的理化性质及提取、分离和检识方法。
2.学习和掌握简单回流提取法、两相溶剂萃取法、旋转蒸发器、大孔树脂柱色谱等基本实验操作技能。
[实验原理]人参的主要成分为人参皂苷,总皂苷含量约4%,人参皂苷大多数是白色无定形粉末或无色结晶,味微甘苦,具有吸湿性。
人参皂苷易溶于水,甲醇、乙醇,可溶于正丁醇、乙酸、乙酸乙酯,不溶于乙醚、苯等亲脂性有机溶剂。
林下山参与园参理化性质的比较研究杨文志;娄子恒;王明芝;杜跃中;潘晓鹏;张引;张立臣;高宇【摘要】目的通过比较研究林下山参与园参理化性质的特点,进一步认识林下山参与园参的内在区别.方法通过比较林下山参与园参的皂苷含量,皂苷HPLC图谱,皂苷TLC图谱,乙醚浸出物的含量及参粉的密度,得出林下山参与园参相区别的重要特征.结果二者在总皂苷的含量,皂苷Rb1的含量,以及总皂苷的HPLC检测图谱及参粉密度的区别特征突出,可作为林下山参与园参之间的鉴别依据.结论林下山参与园参在理化性质方面存在一定的区别.【期刊名称】《人参研究》【年(卷),期】2018(030)001【总页数】5页(P17-21)【关键词】高效液相色谱;薄层色谱;总皂苷;皂苷Rb1;乙醚浸出物;密度【作者】杨文志;娄子恒;王明芝;杜跃中;潘晓鹏;张引;张立臣;高宇【作者单位】吉林人参研究院·吉林通化·134001;吉林人参研究院·吉林通化·134001;吉林人参研究院·吉林通化·134001;吉林人参研究院·吉林通化·134001;吉林人参研究院·吉林通化·134001;吉林人参研究院·吉林通化·134001;吉林人参研究院·吉林通化·134001;吉林人参研究院·吉林通化·134001【正文语种】中文林下山参一词来源于中国药典。
2005年中国药典在人参项下规定了“播种在山林野生状态下自然生长的”人参称为“林下参”,习称“籽海”,而将栽培的人参称为“园参”,至此野生种植方式下所生产的人参有了自己的名字。
2010年版中国药典延用林下参的定义,但将“林下参”改为“林下山参”;2015年版中国药典延用了“林下山参”的名称。
林下山参与园参相比较有三个基本特点,一是生长环境是自然的野生环境,散播并与其它植物伴生生长;二是生长期间不进行人工管理,不除草,不打药,不追肥,任其自然生长;三是生长时间长,一般要15年采收。
第29卷 第3期2009年 5月河北大学学报(自然科学版)JournalofHebeiUniversity(NaturalScienceEdition)Vol.29No.3May2009人参HPLC指纹图谱的研究阎 正1,苑若瑶1,王春云1,蔡立鹏1,王继坤2(1.河北大学化学与环境科学学院,河北保定 071002;2.北京中防昊通防伪技术中心,北京 100025) 摘 要:建立了人参的高效液相指纹图谱.研究了不同的预处理方法、流动相组成、最佳检测波长、色谱柱温度等操作因素对人参指纹谱图的影响,并对不同产地和种类的人参药材的指纹图谱进行了比较.色谱条件为:色谱柱为不锈钢填充柱(InertsilODS‐3,250mm×4.6mm,5μm);检测波长为203nm;流动相为乙腈‐(质量分数为0.05%)磷酸水溶液梯度洗脱;流速1mL/min;分析时间90min;柱温为30℃.关键词:人参;HPLC;指纹图谱中图分类号:O657.7 文献标识码:A 文章编号:1000-1565(2009)03-0278-06StudyofFingerprintofGinsengbyHPLCYANZheng1,YUANRuo‐yao1,WANGChun‐yun1,CAILi‐peng1,WANGJi‐kun2(1.CollegeofChemistryandEnvironmentalScience,HebeiUniversity,Baoding071002,China;2.CenterofZhongfangHaotongAnticounterfeitTechnologyofBeijing,Beijing100025,China)Abstract:ThispaperdescribedananalyticalmethodoffingerprintofGinsengbyHPLC.Westudieddifferentsamplepretreatment,detectionwavelength,mobilephase,temperatureandcomparedthefinger‐printchromatogramsofGinsengfromsixdifferentareasandkinds.InertsilODS‐3column(250mm×4.6mm,5μm)wasusedwiththemixtureofacetonitrile‐0.05%phosphoricacidasmobilephase;thede‐tectionwavelengthwas203nm;theflowratewas1mL/minandthecolumntemperaturewas30℃.Keywords:Ginseng;HPLC;fingerprint人参为五加科植物的根,具有补气、益肺、祛暑、生津、滋补、强壮、抗疲劳等多方面的作用,临床上主要用于治疗津伤口渴,四肢倦怠等症状.因此,人参在医学以及养生方面具有可观的价值.而不同产地的人参,由于环境气候水土等条件的影响,它所含有的成分不尽相同,因而也就导致了临床疗效的差异.很多不法商贩用一些非原产地的人参以次充好,以假乱真,极大地危害到了消费者的身心健康.目前,高效液相色谱法测量人参常规组分具有流动相简单、精密度高、分离效果好、准确性高等特点.高阳、袁永越等曾利用高效液相色谱法标示出人参药材指纹图谱中的18个共有峰并且测定其相似度[1],但是并未对不同产地与种类人参的区别进行考察.所以本课题组参考已有文献,利用高效液相色谱法对人参样品进行了多维谱图条件研究,试图寻找不同产地产品之间的特征识别因子,并且取得了一定的进展,可为区别原产地与非原产地高端保健品人参提供参考. 收稿日期:2008-09-02 基金项目:“十一五”国家科技支撑计划项目(2006BAK02A17) 第一作者:阎 正(1958-),男,河北保定人,河北大学副教授,主要从事色谱分析技术研究.第3期阎 正等:人参HPLC指纹图谱的研究1 实验部分1.1 仪器及试剂1.1.1 仪器Waters600E高效液相色谱仪(PAD,美国Waters公司);自动控温溶剂回流液固提取器(自制);电子天平(AG245,MettlerToledo);旋转蒸发器RE‐52A(上海亚荣生化仪器厂);鼓风式干燥箱(上海分析仪器厂);SK5200H超声振荡器(上海科导超声仪有限公司).1.1.2 试剂及样品样品:生晒园参、生晒移植山参、生晒白参(原产地长白山,国家质监总局提供)、生晒园参(辽宁)、生晒园参(吉林)、养殖人参(购于保定药店).试剂:人参皂苷Re,Rb1,Rb2,Rb3,Rf标准品(中国药品生物制品检定所提供);乙腈(色谱纯,天津市科密欧化学试剂开发中心);磷酸(分析纯,天津市鼎盛化工试剂厂);甲醇(色谱纯,天津市科密欧化学试剂有限公司);二次蒸馏水(0.45μm纤维素膜过滤).1.2 实验方法1.2.1 色谱条件色谱柱:InertsilODS‐3(250mm×4.6mm,5μm);检测波长:203nm;流动相:乙腈‐(质量分数为0.05%)磷酸水溶液梯度洗脱;流速:1mL/min;洗脱程序:0~7min,乙腈(体积分数)0,7~10min,乙腈变至(体积分数)10%,10~30min,乙腈变至(体积分数)30%,30~40min,乙腈变至(体积分数)35%,40~45min,乙腈变至(体积分数)50%,45~60min,乙腈变至(体积分数)70%,60~90min,乙腈变至(体积分数)90%;进样量:20μL;柱温:30℃.1.2.2 对照品溶液的制备精确称取人参皂苷Re对照品适量,加甲醇溶解制成1.00g/L的对照品溶液.1.2.3 供试品溶液的制备将人参样品置于60℃干燥箱中加热4h至恒重,粉碎过筛,收集80目(孔径0.018mm)以下的粉样.准确称量2.0g人参粉样置于自动控温溶剂回流液固提取器内,加入100mL甲醇提取5h.提取液旋转蒸发回收溶剂,浓缩液倒入10mL容量瓶中.用甲醇清洗旋转蒸发器内壁,每次2mL,共清洗3次,清洗液也倒入容量瓶中,并稀释至刻度.0.45μm滤膜滤过,取续滤液作为供试品溶液.2 结果与讨论2.1 方法学考察2.1.1 指纹图谱建立与分析精密吸取各供试品溶液和对照品溶液适量,注入液相色谱仪,记录90min的色谱图.根据多批样品的指纹图谱给出的相关参数,所有组分在90min全部出峰.选取分离度以及峰形均较好的15~90min比较供试品谱图,其中11个峰为共有峰(单峰面积大于10%),如图1所示.其中,根据保留时间和峰高加高法确定3号峰为人参皂苷Re,是人参的指标成分之一,将其作为内参比峰.2.1.2 方法精密度的测定取同一长白山园参供试品溶液,按1.2.1色谱条件,连续进样5次,计算各共有峰相对于内参比峰的相对保留时间和相对峰面积值(人参产地:长白山).结果见表1.・972・河北大学学报(自然科学版)2009年图1 最佳检测条件下的长白山园参指纹图谱(15~90min)Fig.1 TheHPLCFingerprintofGinseng(Changbaishan)(15~90min)表1 方法精密度的测试Tab.1 Resultsofinjectionprecision共有峰序号相对保留时间12345RSD/%相对峰面积12345RSD/%10.4950.4960.4950.4950.4930.220.6090.6030.5870.6110.6071.620.5910.5900.5890.5930.5920.270.4850.4980.4990.4900.5001.331.0001.0001.0001.0001.0000.001.0001.0001.0001.0001.0000.0041.3121.3131.3121.3111.3100.090.6440.6430.6470.6500.6490.4751.3451.3431.3431.3421.3410.110.5820.5800.5840.5780.5830.4161.3631.3621.3631.3641.3650.080.7260.7340.7350.7300.7380.6471.3721.3711.3701.3721.3740.110.3460.3450.3400.3370.3451.181.3991.3991.3981.3961.4000.110.5480.5530.5520.5470.5400.9491.9691.9681.9701.9661.9670.080.1930.1900.1910.1940.1910.86102.2682.2702.2682.2692.2670.050.5390.5350.5380.5320.5350.52112.4872.4892.4882.4892.4850.070.7460.7450.7430.7370.7460.20结果显示,相对峰面积的RSD为0.20%~1.6%,相对保留时间的RSD为0.05%~0.27%,表明方法精密度良好.2.1.3 方法重现性的测定取同一产地长白山园参样品5份,按1.2.3方法制备供试品溶液,按1.2.1色谱条件,分别进样,计算各共有峰相对于内参比峰的相对保留时间和相对峰面积值(人参产地:长白山).结果见表2.・082・第3期阎 正等:人参HPLC指纹图谱的研究表2 方法重现性的测试结果Tab.2 Resultsofreproducibility共有峰序号相对保留时间12345RSD/%相对峰面积12345RSD/%10.4950.4950.4950.4950.4950.000.6090.6010.6180.5910.5931.920.5910.5900.5900.5900.5910.090.4850.5030.4970.4900.4971.431.0001.0001.0001.0001.0000.001.0001.0001.0001.0001.0000.0041.3121.3141.3151.3131.3140.090.6440.6720.6620.6600.6571.551.3451.3461.3471.3461.3420.140.5820.6090.5990.5940.5981.661.3631.3641.3641.3671.3410.160.7260.7620.7450.7360.7562.071.3721.3731.3731.3731.3710.070.3460.3580.3450.3380.3502.181.3991.3991.4001.3971.4000.090.5380.5540.5360.5320.5471.691.9691.9691.9701.9661.9690.080.1930.1900.1900.1920.1910.68102.2682.2692.2692.2682.2700.040.5390.5380.5300.5330.5360.69112.4872.4882.4882.4892.4880.030.7460.7470.7460.7450.7430.20结果显示,相对峰面积的RSD为0.20%~2.1%,相对保留时间的RSD为0.03%~0.16%,说明方法重现性良好.2.1.4 样品稳定性的测定取同一长白山园参供试品溶液,按1.2.1色谱条件,在0,4,12,24,48h进样,计算各共有峰相对于内参比峰的相对保留时间和相对峰面积值(人参产地:长白山).结果见表3.表3 样品稳定性的测试Tab.3 Samplestabilitytestprecision共有峰序号相对保留时间04h12h24h48hRSD/%相对峰面积04h12h24h48hRSD/%10.4950.4950.4960.4950.4950.090.6090.5760.6030.6170.5872.820.5910.5900.5920.5930.5900.220.4850.4790.4980.5000.4762.231.0001.0001.0001.0001.0000.001.0001.0001.0001.0001.0000.0041.3121.3121.3131.3101.3140.110.6440.6470.6430.6480.6400.5051.3451.3451.3461.3431.3420.120.5820.5810.5800.5850.5840.3661.3631.3631.3621.3641.3610.080.7260.7320.7340.7330.7390.6471.3721.3721.3731.3751.3710.110.3460.3440.3450.3580.3511.781.3991.3991.4001.3971.3980.080.5380.5350.5530.5370.5401.391.9691.9671.9701.9661.9670.080.1930.1910.1900.1900.1920.68102.2682.2642.2672.2652.2680.080.5390.5270.5310.5300.5330.84112.4872.4832.4892.4842.4850.100.7460.7460.7400.7370.7440.54结果显示,相对峰面积的RSD为0.36%~2.8%,相对保留时间的RSD为0.08%~0.22%,说明样品至少在48h内稳定.2.2 实验条件的选择与确定2.2.1 检测波长的选择为了在指纹图谱中获得最丰富的人参化学成分信息,参照文献对人参指纹图谱的检测波长进行了选择,・182・河北大学学报(自然科学版)2009年范围为190~300nm,对此范围内全部波长进行扫描,结果显示在203nm下指纹图谱的色谱峰数目最多,代表的化学成分信息量最大,峰的分离也较好,所以确定203nm为检测波长.2.2.2 样品预处理方法的选择取同一样品4份,分别以乙醇回流、甲醇单次和多次超声萃取、甲醇自动控温溶剂回流液固提取4种方式处理样品.结果显示,相比于文献中多次用到的乙醇溶液普通热回流以及超声萃取等提取方式,利用实验室自行改进的自动控温溶剂回流液固提取器对样品进行处理,提取溶剂为甲醇,方法更为简单高效,样品溶液更为清澈,样品能够得到更有效的提取,提取得到的色谱图反应的化学信息量最大,所以确定用此方法对人参进行提取.之后又对提取时间(3h,4h,5h)和提取温度(140℃,150℃,160℃)进行优化.结果显示,150℃×5h效果最佳.故本实验采用自动控温溶剂回流液固提取器在150℃条件下甲醇提取5h作为人参的预处理方法.2.2.3 流动相的选择分别以乙腈‐水以及甲醇‐水体系为流动相进行等度洗脱色谱分析,结果显示用以上溶剂系统进行等度洗脱时,峰形堆积,分离度不好,并且色谱峰数目较少.采用以上溶剂系统进行梯度洗脱时,以乙腈‐水溶剂系统所得谱图比上述等度洗脱体系有较大改善,但是分离度依然不够理想.尝试在水相中添加磷酸溶液改善分离,分别尝试了乙腈‐(质量分数为0.05%)磷酸溶液以及乙腈‐(质量分数为0.1%)磷酸溶液体系.结果显示,以乙腈‐(质量分数为0.05%)磷酸溶液作为流动相峰形较好,分离度好,色谱峰信息较多.所以选用乙腈‐(质量分数为0.05%)磷酸溶液系统作为本实验的流动相.2.3 结果2.3.1 谱图中主要组分峰的确定分别精确称取人参皂苷Re、人参皂苷Rb1、人参皂苷Rb2、人参皂苷Rb3以及人参皂苷Rf标准品适量,加甲醇溶解制成1.00g/L的溶液,在1.2.1色谱条件下,分别进样,根据保留时间确定以上各种人参皂苷在谱图中的位置.结合实验所研究各地人参的指纹图谱,可确定在人参的11个共有峰中,3号峰为人参皂苷Re,4号峰为人参皂苷Rf,5号峰为人参皂苷Rb1,6号峰为人参皂苷Rb2,7号峰为人参皂苷Rb3.2.3.2 不同产地以及种类保健品人参指纹图谱的比较及结论对原产地长白山园参、山参以及白参,非原产地吉林、辽宁园参以及购于保定药店的人参进行了HPLC指纹图谱比对.结果显示因样品的个体差异,共有峰的含量有极为明显差异,如表4,图2所示.表4 不同产地及种类人参指纹图谱检测Tab.4 ResultesofGinsengfromdifferentareasandkinds共有峰序号相对保留时间园参白参山参辽宁吉林保定RSD/%相对峰面积园参白参山参辽宁吉林保定RSD/%10.4950.4950.4960.4950.4940.4940.150.6091.2940.8280.7450.5190.4744020.5910.5900.5890.5890.5870.5920.300.4851.9810.3960.6180.2630.3269631.0001.0001.0001.0001.0001.0000.001.0001.0001.0001.0001.0001.0000.0041.3121.3151.3131.3131.3171.3120.150.6440.6170.4250.5581.3730.4325351.3451.3471.3461.3451.3471.3440.090.5820.4660.4260.2860.5840.2633261.3631.3641.3631.3631.3641.3620.060.7260.7630.3250.3730.8270.4153971.3721.3741.3741.3741.3741.3720.080.3460.3650.3130.4700.7600.2814281.3991.3991.3991.3991.3991.3980.030.5380.4230.1400.0800.3810.1896291.9691.9671.9651.9641.9651.9690.110.1930.6370.1240.2931.5200.316102102.2682.2652.2612.2592.2612.2680.170.5391.3500.6651.0031.5071.31237112.4872.4822.4802.4782.4802.4850.140.7460.7450.5970.5230.7030.34626・282・第3期阎 正等:人参HPLC指纹图谱的研究图2 不同产地与种类的人参指纹图谱Fig.2 TheHPLCFingerprintofGinsengfromdifferentareasandkinds 由图表可知,几种产地及种类的人参药材的HPLC指纹图谱共有峰的相对保留时间重现性很好(RSD为0.03%~0.30%),但是相对峰面积值存在极为显著差异(RSD为26%~102%),这说明以上6个产地及种类的人参药材由于生长的地理环境和气候的不同而导致主要化学成分含量差别很大.该实验方法所建立的人参的HPLC的指纹图谱预处理方法简单,峰数多且分离度较好,可为区别原产地与非原产地高端保健品人参提供参考依据,并为其他中药材指纹图谱的建立提供借鉴.参 考 文 献:[1]高 阳,袁永越,于治国,等.人参药材色谱指纹图谱分析方法研究[J].中成药,2006,28(4):473-477.[2]孙永慧,李文春.不同工艺人参提取物的指纹图谱初探[J].现代中药研究与实践,2006,20(1):39-41.[3]谢培山.中药制剂色谱指纹图谱(图象)鉴别[J].中成药,2000,22(6):391-395.[4]聂 晶,田颂九,王国荣.中药指纹图谱的研究现状[J].中草药,2000,31(12):881-884.[5]于世林.高效液相色谱方法及应用[M].北京:化学工业出版社,2001:11-41.[6]靳朝东.人参化学成分分析方法的研究进展[J].中草药,1996,27(10):631-633.[7]任 杰,窦德强,赵春杰,等.高效液相色谱法测定人参提取物及其胶囊中人参皂苷Rb1[J].人参研究,2003(3):5-9.[8]于 超,刁长发,夏文娟,等.反相高效液相色谱法测定人参及其制剂中人参皂苷Rg1含量[J].中成药,2000,20(4):263-265.[9]曹 东,黄喜茹,王 伟,等.反向高效液相色谱法测定不同产地和种属丹参饮片中3种脂溶性成分[J].化学试剂,2006,28(5):298-300.(责任编辑:梁俊红)・382・。
人参药材HPLC-ELSD指纹图谱研究蔡艳;贾继明;刘兴国;郑亚杰;王贵金;郭文胜;宋剑【期刊名称】《时珍国医国药》【年(卷),期】2011(22)3【摘要】目的 HPLC-ELSD法建立人参药材指纹图谱。
方法采用Waters Symmetry C18(4.6 mm×250 mm,5μm)色谱柱,以乙腈-水梯度洗脱,流速为1.0 ml/min,柱温25℃,气体压力25psi、增益500、加热器级别66%、漂移管温度75℃。
结果以人参皂苷Rb1为参照物,通过对10批吉林通化产的不同批次的人参药材进行指纹图谱研究,标定了9个共有峰,并利用《中国药典》中药色谱指纹图谱相似度评价系统A版,计算出其相似度均在0.99以上。
结论该方法可为更好地控制人参药材的内在质量提供科学依据。
【总页数】3页(P742-744)【关键词】人参;指纹图谱;高效液相色谱法【作者】蔡艳;贾继明;刘兴国;郑亚杰;王贵金;郭文胜;宋剑【作者单位】河北以岭医药集团研究院【正文语种】中文【中图分类】R283;R284.1【相关文献】1.不同产地浙贝母药材HPLC-ELSD指纹图谱的研究 [J], 朱广磊;睢宁;张春椿;俞冰;李石清;张水利;熊耀康2.黄芪及相关药材HPLC-ELSD色谱指纹图谱研究 [J], 王敏;李翔;王逢春3.河北道地药材远志HPLC-ELSD指纹图谱研究 [J], 孟岩;范丽芳;朱梦楚;生宁;何玉芳;张兰桐4.锁阳药材HPLC-ELSD特征指纹图谱的研究 [J], 李倩; 卫阳飞; 黄瑞萍; 安琼5.基于HPLC-ELSD指纹图谱和含量测定的薏苡仁药材质量评价研究 [J], 王燕雄;李振雨;童培珍;陈向东;孙冬梅;魏梅;罗文汇因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
林下参的化学成分研究钟方丽1,刘金平2,卢丹2,李平亚2*(11吉林化工学院,吉林吉林132022;21吉林大学再生医学科学研究所,吉林长春130021)摘要:目的对林下参P anax ginseng的化学成分进行研究。
方法采用硅胶柱色谱法及制备H PL C法进行分离纯化,根据理化性质和光谱方法鉴定化合物的结构。
结果从林下参乙醇提取物中分离得到10个单体化合物,并鉴定为20(S)-人参皂苷Rg3(Ñ)、20(S)-人参皂苷Rh1(Ò)、20(R)-人参皂苷R h1(Ó)、20(S)-人参皂苷Rg2 (Ô)、20(S)-人参皂苷R h2(Õ)、人参皂苷Rb3(Ö)、豆甾醇-3-O-B-D-吡喃葡萄糖苷(×)、5,6-二氢豆甾醇-3-O-B-D-吡喃葡萄糖苷(Ø)、B-胡萝卜苷(Ù)、B-谷甾醇(Ú)。
结论10个化合物均为首次从林下参中分离得到。
关键词:林下参;人参皂苷;皂苷中图分类号:R28411文献标识码:A文章编号:02532670(2009)06086903林下参系五加科人参属林下参P anax g inseng C1A1Meyer cv1Silvatica的根,是人为地把园参的种子撒播到自然的环境里,任其自然生长,不移栽、不搭棚、不施肥、不打药、不锄草、不动土,10年后才上山收取的半野生山参。
林下育参缓解了高经济效益人参种植业与高生态效益的林业之间的矛盾[1]。
近年来,林下参种植业发展迅速,仅长白山区蕴藏量商业价值约50亿元人民币。
林下参的种植与应用日渐广泛,而有关其基础研究却相对滞后。
笔者在分离出已知人参皂苷和其他化合物基础上[2],进一步分离得到10个化合物,均为首次从林下参中分离得到。
1实验部分111仪器与试剂:上海精密科学仪器有限公司显微熔点仪;柱色谱用硅胶(200~300目,300~400目)和薄层色谱用硅胶均为青岛海洋化工公司产品。