微生物标本采集原则

微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。

下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。

采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。

采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。

送检尽快送检，一般不超过2小时。

若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。

微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。

2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。

4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。

5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。

6.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

7.采样后应立即送检，最好在2h内。

如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。

对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。

8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。

微生物培养标本留取的注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。

正确的采集、运送、保存与处理临床微生物检验标本，对于保证临床微生物检验工作质量至关重要。

采集标本的一般原则1、采集最佳时间是病程早期、急性期，最好在使用抗菌药物之前采集，以提高病原菌的检出率。

2、用于微生物培养的标本在收集时应注意严格的无菌操作和及时送检。

3、无菌操作采集标本时应尽量避免或减少感染部位附近皮肤或黏膜常居菌群的污染，以防止外源性细菌污染标本。

在采集血液、脑脊液、胸腹水或关节液等无菌标本时，应注意对周围和局部皮肤的消毒，严格执行无菌操作。

对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道等，为防止受皮肤表面正常菌群的污染，应从窦道底部采集标本送检，而非从窦道口取标本，以免造成病原菌与正常菌群相混淆致使临床误诊。

采集标本均应盛于无菌容器内送检，盛装标本的容器不能使用消毒剂处理，标本中也不得添加防腐剂，以免降低病原菌的分离率。

临床标本的采集1、下呼吸道分泌物（痰液）:要求患者早上起床后用净水漱口，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。

对于咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，待咳嗽后用无菌棉拭子采集标本。

气管镜下采集:用气管镜在肺炎病灶附近用导管吸引，或者使用支气管刷直接取得标本。

2、尿液（中段尿）:早晨起床后第一次尿，取中断尿留于专用尿培养杯中（注意无菌操作），女性病人应清洗外阴部后再留取；标本需及时送检。

3、尿道分泌物:男性患者用75%酒精棉球消毒尿道外口后，轻轻积压阴茎体，继而流出来的分泌物，需用无菌男性拭子蘸取分泌物,半小时内送检。

4、阴道、子宫颈分泌物:应由医生采集，标本采集前24h-48h禁欲、禁盆浴、禁阴道灌洗及局部上药。

标本采集时，常规无菌操作消毒外阴或尿道口，用扩阴器扩张阴道，用无菌棉拭子拭取宫颈口或宫颈后穹窿的分泌物，不可碰及阴道壁，放入无菌拭子管中。

5、脓液：先尽可能的除去坏死的脓液，然后用蘸有生理盐水的棉拭子蘸取感染灶血肉交接部位标本，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。

临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则：1.1 严格的无菌操作，避免污染，避免来自寄生菌的污染，应当保证每份样本代表感染过程｡1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术，采集样本。

1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。

1.4 要收集足够量的样本，量少可能导致假阴性结果。

1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。

1.7 导尿留取样本时，不可从尿袋中采集样本。

引流液样本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。

1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌（煮沸、高热、或高压灭菌），但不得用消毒剂或酸类处理。

1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位，如伤寒沙门菌的阳性检出率，发病的第1～2 周采集血液，第3～4 周采集大便和尿液，阳性率较高。

1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。

1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检，应置室温保存（但不得超过24 小时）。

禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。

1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时，样本不能放4℃条件保存，应在30min内送检，并注意保温。

1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，应立即送检，因为这些细菌在自然环境中极易死亡。

1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检，应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水，以免导管干燥，病原微生物死亡。

1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检，如样本较小或不能在规定时间内送检，应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水，以免样本干燥，病原微生物死亡。

不可用纱布包裹组织样本。

2 常见临床微生物标本的采集方法。

2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目：血液及骨髓培养。

2.1.2 适应症病人出现以下临床表现：发热（38℃）或低温（36℃）、寒战、白细胞增多（白细胞数>10×109/L，特别有“核左移”时）、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。

一、我院微生物标本的采集和运送基本原则1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。

2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。

5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。

6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。

中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取（在仓库领取）。

静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。

7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院微生物标本采集送检方法1．血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。

切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

②采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。

血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。

③每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。

对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。

⑤每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。

多次多部位采血可提高阳性率。

⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml 作增菌培养。

2．尿液①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1％新洁尔灭消毒尿道口．灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。

②导尿管导尿采样可减少污染。

对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。

一、我院微生物标本的采集和运送基本原则1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。

2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。

5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。

6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。

中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取（在仓库领取）。

静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。

7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院微生物标本采集送检方法1．血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。

切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

②采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。

血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。

③每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。

对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。

⑤每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。

多次多部位采血可提高阳性率。

⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml 作增菌培养。

2．尿液①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1％新洁尔灭消毒尿道口．灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。

②导尿管导尿采样可减少污染。

对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。

病原微生物标本采集运送IMB standardization office【IMB 5AB- IMBK 08- IMB 2C】病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。

一、标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。

2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。

采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。

3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。

4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。

5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。

二、标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。

2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。

三、不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针征当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。

微生物标本采集微生物标本采集是一项基础且重要的工作，对于临床诊断、疾病防控以及科学研究都具有至关重要的作用。

本文将详细介绍微生物标本采集的基本原则、采集方法、注意事项以及标本的保存与运送。

一、微生物标本采集的基本原则1.及时性：微生物标本采集应在患者出现症状或怀疑感染微生物时尽快进行，以便获取具有代表性的标本。

2.无菌操作：采集微生物标本时，必须遵循无菌操作原则，避免污染标本，确保检测结果的准确性。

3.适量：采集的微生物标本应足够进行所需检测，同时避免过量采集，减少对患者造成的不适。

4.适宜的标本类型：根据微生物的生长特性、感染部位以及检测目的，选择适宜的标本类型。

5.标本标识：采集的微生物标本应进行清晰、准确的标识，包括患者姓名、标本类型、采集时间等信息。

二、微生物标本采集方法1.皮肤、黏膜表面：使用无菌棉签或无菌注射器，轻轻擦拭或抽取皮肤、黏膜表面的分泌物。

2.血液：采用无菌注射器抽取静脉血，避免皮肤消毒剂污染。

3.呼吸道标本：采用无菌吸痰管或纤维支气管镜采集呼吸道分泌物；咳痰患者应采集清晨第一口痰。

4.尿液：采集清洁中段尿，必要时可采用导尿术。

5.粪便：采集粪便标本时，应避免粪便与尿液混合，采用无菌容器。

6.生殖道分泌物：男性患者采用无菌拭子采集尿道口分泌物；女性患者采集宫颈分泌物。

7.组织标本：在无菌条件下，切取感染部位的组织，放入无菌容器。

三、微生物标本采集注意事项1.采集前准备：了解患者的病情、用药情况以及采集部位，确保采集时机适宜。

2.消毒：采集部位应进行充分消毒，避免污染标本。

3.避免污染：采集过程中，避免触及非无菌部位，确保无菌操作。

4.采集量：根据检测需求，采集适量的标本。

5.标本保存：采集后的微生物标本应尽快送检，无法及时送检的标本应妥善保存。

四、微生物标本保存与运送1.温度：根据微生物的生长特性，选择适宜的保存温度。

一般而言，细菌标本应在4℃保存，病毒标本应在-70℃保存。

SOP_15-5 病原微生物标本的采集运送标准操作程序一、病原微生物标本采集和运送基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。

2.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。

3.在感染的急性期、使用抗生素前或伤口局部治疗前收集样本。

4.收集真正感染的病灶处的样本，且避免邻近区域常居菌群的污染。

5.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

6.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收集样本。

7.采样后立即送检，最好在2h内。

为保持微生物活性，棉拭子等标本宜放入恰当的运送培养基送检。

如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。

8.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

（要标明病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、采集时间等）二、血培养标本采集和运送1.采集指征：临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血流感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。

及时、准确地从患者血液中分离出病原菌,才能正确实施有效地抗菌治疗,从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。

2.采集方法：1.采血时机:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。

2.采血次数及间隔:在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本。

对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。

对发热原因不明者两次抽血间隔60min;必要时于24～48h后再抽血2次。

因为1次血培养不足以说明问题,且会遗漏阳性结果。

国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%,2次检出90%,3次检出99%。

国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%,18家医院2次以上血培养阳性率14.8%。