家兔呼吸运动的调节

云南师范大学生命科学学院08生科A龚兴鹏（084120010）实验报告家兔呼吸运动的调节一实验目的1 掌握家兔耳缘静脉注射法家兔颈部手术操作、神经血管分离、气管插管技术。

2记录家兔呼吸曲线观察增加无效腔、气道阻力、肺牵张反射、开放性气胸等因素对呼吸运动的影响迷走神经对呼吸运动的调节。

3了解各种因素影响呼吸运动的机制。

二实验原理☐人体及高等动物的呼吸运动能持续有节律的进行，是由于体内调节机制的存在。

正常节律性呼吸运动是在呼吸中枢神经系统参与下，通过多种传入冲动的作用，反射性调节呼吸的频率和深度来完成的。

☐呼吸运动受神经以及血液中O2，CO2，[H+]等物质浓度调节。

☐肺的牵张反射通过迷走神经传导调节信号，通过这个反射弧来参与呼吸节律的调节。

三实验材料1、动物：家兔2、器械：动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针, 丝线，注射器，兔台），气管插管，体重秤，张力换能器，生理信号采集系统，医用橡皮管，纱布，20 ml 注射器，玻璃分针。

3、药品和试剂：20%氨基甲酸乙酯，0.9%生理盐水，医用酒精。

四试验方法1. 称重、麻醉一只手轻抓住兔子颈部皮肤，另一只托住兔子尾部，将兔子自笼中取出称重；称重后使用20%氨基甲酸乙酯麻醉(给药量：5 ml/kg WT，耳缘静脉注射) 。

2. 家兔固定和剪毛家兔麻醉后，使其腹部朝上仰卧于兔台上，用线固定四肢和头部；用金冠剪刀贴在皮肤表面剪除手术部位的毛发。

3. 颈部手术颈部正中切口—分离软组织—暴露气管—钝性分离气管，底下穿棉线备用—气管倒T形切口，插入Y形气管插管，棉线固定；钝性分离气管双侧迷走神经—各自穿线备用（粗—迷走神经，中—交感神经，细—减压神经）。

家兔气管插管过程注意事项插管的手术切口可以在气管软骨环间，也可以在软骨环上。

切口若在软骨环间，容易做切口，但易出血；切口若在软骨环上，出血较少，但切口难度较大；插管时如果发现气管内有血，一定要先将血液清除；插管的深度不可过浅，至少要插入3个软骨环以上；结扎棉线一定要结扎在软骨环之间，这样插管结扎得比较牢固。

实验三家兔呼吸运动的调节摘要目的为观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H﹢]）改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响；观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用；掌握气管插管术和神经血管分离术。

方法通过在气管插管的情况下通过增大无效腔气量、增加吸入PCO2、注射乳酸、剪断迷走神经、电刺激迷走神经远心端以及迷走神经近心端等方法，用微机生物信号处理系统观察家兔呼吸运动的变化。

结果实验显示增大无效腔气量、提高PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快，而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使其呼吸变浅，频率变慢。

结论提高吸入气体PCO2，降低PO2可导致呼吸加深加快；迷走神经是呼吸运动调节反射中的传入神经，剪断一侧迷走神经呼吸频率加快，切断两侧迷走神经后，吸气变深，频率变慢；刺激迷走神经外周端，无明显反应，刺激中枢端后呼吸频率加快，呼吸变浅。

关键词呼吸运动迷走神经CO2分压H﹢浓度无效腔1.材料和方法：1.1.材料1.1.1.对象：家兔；1.1.2.试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；1.1.3.仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。

1.2.方法1.2.1.手术准备1.2.1.1.麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。

待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。

1.2.1.2.手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6 ~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。

分离气管，在气管下穿一根粗棉线备用。

1.2.1.3.气管插管在在暴露的气管上1/3处，做倒T形剪口，将气管切开之后尽量将气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用一粗棉线将插管口结扎固定，同时再将剩余线头将通气口固定，防止T型气管插管移动。

家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。

实验材料与方法。

1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。

2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。

接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。

实验结果。

1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。

2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。

3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。

实验分析。

1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。

2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。

实验结论。

家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。

同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。

结语。

通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。

希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。

呼吸运动的调节一、实验目的观察体内外有关因素的改变对呼吸运动的影响。

二、实验材料1、实验动物：家兔1只。

2、器材：兔手术台、婴儿秤、动物手术器械1套、气管插管、50cm长的橡皮管1根、注射器、注射针头、纱布、棉线、气袋2个、铁支架、玻璃分针、生物信号采集处理系统。

3、药品：20%乌拉坦溶液、3%乳酸溶液、氮气、CO2气体。

三、实验方法和步骤1、麻醉和固定：家兔称重后（2.4kg），20%乌拉坦按5ml/kg 剂量（12ml）经耳缘静脉注射，仰卧位固定于兔手术台上，去颈部被毛。

2、颈部手术：从甲状软骨向下做5~7cm长的颈正中切口，分离两侧迷走神经和气管。

3、气管插管时，注意清理气管中的血块。

待气管插管成功后，接上与生物信号采集处理系统相连的三通的其中一条橡皮管。

4、记录正常呼吸的曲线中吸气、呼气的波形方向，观察记录曲线的节律、频率与幅度，作为后续曲线的正常对照。

5、增大无效腔：将一根50cm长胶管连接在气管插管的一侧开口，夹闭另一侧开口。

观察家免的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。

待呼吸发生明显改变后撤除胶管，使呼吸恢复正常进行下一项实验。

6、增加吸入气中CO2/N2含量：夹闭气管插管的一侧开口，将装有CO2/N2的气袋管口对准气管插管的另一侧开口(中间留有2~3cm间隙)，缓慢增加吸入气中CO2/N2含量，观察家兔的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。

撤除CO2/N2气袋后观察呼吸恢复正常的过程。

7、血液中酸性物质增加对呼吸运动的影响：由耳缘静脉注射3%乳酸2ml，观察家兔的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。

待呼吸恢复正常后进行下一项实验。

8、迷走神经在呼吸作用中的作用：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化；再切断另一侧迷走神经，观察家兔的呼吸作用，记录呼吸曲线的变化。

四、实验结果图1正常呼吸图2增大无效腔（家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加，呼吸加深）图3吸入二氧化碳（反射性地使家兔呼吸运动加深加快）图4吸入氮气（家兔呼吸运动增强）图5注射乳酸（家兔呼吸运动加深加快）图6剪断一侧迷走神经（不明显的慢而深的呼吸运动）图7剪断两侧迷走神经（明显的慢而深的呼吸运动）五、实验讨论呼吸运动调节机制有哪些？答：机体正常呼吸运动的维持，是由于体内存在完善的呼吸调节机制，使得呼吸有节律的进行，以适应机体代谢的需要。

家兔呼吸运动调节，捉拿时应注意哪些事项回答PCO2水平：主要通过刺激中枢化学感受器，然后再兴奋延髓呼吸中枢；或者是刺激周围化学感受器，通过窦神经和主动脉神经传入延髓呼吸中枢，使呼吸运动加强。

H+浓度：血液中H+浓度增加，呼吸加深加快；H+浓度降低，呼吸受到抑制。

一、家兔呼吸运动调节1、PCO2水平（1）一定水平的PCO2（二氧化碳分压，指溶解在血液中的二氧化碳分子产生的压力），对于保持呼吸和呼吸中枢的兴奋性是必要的。

（2）主要通过刺激中枢化学感受器，然后再兴奋延髓呼吸中枢；或者是刺激周围化学感受器，通过窦神经和主动脉神经传入延髓呼吸中枢，使呼吸运动加强。

2、H+浓度（1）血液中H+浓度增加，呼吸加深加快；H+浓度降低，呼吸受到抑制。

（2）当血液中的H+浓度升高时就会刺激到外周化学感受器和中枢化学感受器（中枢化学感受器对于H+的敏感性比周围要高，约为25倍左右），但是H+不容易通过血-脑屏障，因此，主要通过刺激外周化学感受器，使膈肌、肋间外肌收缩，从而使肺通气量增加，加快呼吸。

3、迷走神经（1）迷走神经对于呼吸节律的产生和调节起着重要的作用。

（2）当切断一侧迷走神经以后，会阻碍到该侧迷走神经的神经冲动传递，从而影响到呼吸运动的调节，但随后因另一侧迷走神经为混合神经，此时会起到呼吸调节的作用，加速呼气和吸气的交替（即呼吸频率加快）。

但如果切断两侧的迷走神经后，兔子的呼吸运动变得慢而深。

二、捉拿家兔时应注意哪些事项1、捉拿家兔时，应当注意家兔的爪子，避免被其抓伤。

2、捉拿家兔时不宜抓取家兔的耳朵部位，容易导致兔子耳朵受伤；不宜抓取兔子的腰部和四肢，容易伤到肾脏，造成皮下出血。

3、捉拿家兔时，一般用右手抓住家兔的脊背靠近颈部的皮肤，轻轻提起，然后用左手托住家兔的臀部，呈坐位姿势，让家兔的体重主要落在左手上。

家兔呼吸运动的调节实验目的：1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。

2.掌握气管插管术和神经血管分离术。

实验材料：对象：家兔；试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。

实验方法：1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。

待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。

2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。

在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。

在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。

将T型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。

手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。

3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。

打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。

4．观察项目（1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。

（2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。

（3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。

记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。

家兔呼吸运动的调节【实验目的】1、学习记录家兔呼吸运动的方法2、.观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用3、观察并分析肺牵张反射及其他因素对呼吸运动的影响【实验原理】人体及高等动物的呼吸运动之所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。

正常节律性呼吸运动是在中枢神经系统参与下，通过多种传入冲动的作用，反射性调节呼吸的频率和深度来完成的。

体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。

肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。

【实验材料、器具和试剂】家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、支架、气管插管、橡皮管、Pc-Lab 生物信号采集系统、张力传感器、保护电极、纱布、棉球、细棉线、注射器（20ml）、生理盐水等【实验步骤】；1、麻醉：取家兔一只称重，按4-5ml/Kg耳缘静脉注射25%氨基甲酸乙酯进行麻醉。

2、固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部被毛。

3、手术分离气管与颈部神经：A、颈部皮肤切口5-7cm：B、分离肌肉层：钝性分离C、行气管插管：倒“T”切口，插管固定D、分离双侧迷走神经4、手术分离家兔剑突软骨5、用金属钩钩住游离的剑突软骨，连接至张力换能器上。

6、打开PcLab生物信号采集系统，接通第一通道，输入张力信号、记录正常的呼吸曲线。

7、观察实验项目（1）记录正常的呼吸曲线，并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。

（2）增加无效腔对呼吸运动的影响。

（3）CO2对呼吸运动的影响。

（4）缺氧对呼吸运动的影响。

（5）增加气道阻力对呼吸运动的影响。

（6）肺牵张反射（7）同时结扎双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

（8）再次观察肺的牵张反射。

（9）剪断双侧迷走神经，分别刺激中枢端和外周端，观察呼吸运动的变化。

（10）缓慢放血20ml观察呼吸运动曲线的变化。

【实验结果】图1 家兔正常呼吸运动平静呼吸时，家兔的呼吸肌有节律的收缩和舒张，其波形也是有节律的周期性的移动文件1图2 家兔呼吸运动增加无效腔增大无效腔后，家兔的呼吸加深，呼吸频率加快；文件1图3家兔呼吸运动牵张反射（打起）肺牵张反射吸气过长过深，促使吸气及时转入呼气，呼气加长图4家兔呼吸运动牵张反射（抽气）肺牵张反射吸气过长过深，促使吸气时间加长。

实验9 家兔呼吸活动的调节一、实验目的1．对家兔进行全身麻醉、进行兔颈部急性手术；2．学习记录家兔呼吸运动的方法；采用呼吸传感器直接记录家兔的呼吸频率与幅度3. 研究在增加呼吸无效腔、CO2、乳酸、缺氧呼吸活动的改变，观察肺牵张反射。

二、实验原理呼吸运动是一种节律性的运动，其深度和频率受体内外因素影响，比如劳动时，呼吸加深加快，肺通气量增加，摄取更多的氧气，排出更多的二氧化碳，与代谢水平相适应。

呼吸的节律性主要来源于基本呼吸中枢脑桥和延髓，并受体内外各种因素影响。

呼吸中枢分布于大脑皮层，间脑，桥脑，延髓，脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。

呼吸中枢可接受来自不同感受器的传入冲动，反射性地影响呼吸运动，以适应机体需要。

三、实验材料和器材1、实验材料：家兔2、实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、止血钳、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布。

四、实验步骤（一）准备家兔1、家兔的麻醉（1）取一只家兔，称重之后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。

（2）用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25％氨基甲酸乙酯(1g／kg体重)进行麻醉。

要从远心端注射，注射时速度要慢，并随时观察动物情况。

当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。

2.家兔的固定当兔子已经麻醉成功后，将兔子固定在手术台上，四肢都要固定好，并且用线将门牙也绑好，固定在铁架上。

3、剪毛用剪刀将兔子颈部的毛小心地剪去，注意不要剪到肌肉。

4、切开皮肤一手的拇指和示指按住家兔颈部两侧，另一手持手术刀，在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5～7cm的皮肤切口。

然后用止血钳或手术剪分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。

5、分层分离肌肉（1）术者与助手分别持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉，然后用手术剪在两止血钳夹住的肌肉之间，纵向将肌肉层剪开一个小口。

呼吸运动调节实验报告（五篇）第一篇：呼吸运动调节实验报告呼吸运动的调节【实验目的】1、学习呼吸运动的记录方法2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用【实验对象】家兔重量：1.9kg【实验器材和药品】哺乳动物手术器械（主要用到手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针、），兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，N 2 气囊，CO 2 气囊等。

【实验方法与步骤】1.取家兔并称重，由家兔腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml，（因注射过程中出现差错，后补注入20%氨基甲酸乙酯溶液8ml）待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。

2.剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。

分离气管并穿线备用。

分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。

以倒T 型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。

手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术范围。

3.实验装置（1）将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。

（2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。

（3）采样项目①缺氧对呼吸运动的影响：方法同上，将氮气气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的氮气，造成缺氧，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。

②CO 2 对呼吸运动的影响：将二氧化碳气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的二氧化碳，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。

③增大无效腔对呼吸运动的影响：将橡皮管连接于气管插管的一个侧管上，观察此时呼吸运动的变化。

变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动的恢复过程。

④迷走神经在呼吸运动调节中的作用：先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。