实验三家兔呼吸运动的调节培训课件
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家兔呼吸运动的调节PPT课件
28
七、观察项目（注意标记）
（1）增加吸入气中CO2浓度（二氧化碳发生装置 ） （2）缺氧：简易缺02装置 （3）增大无效腔：连接橡皮管 （4）窒息：堵塞气管插管口 （5）切断一侧迷走神经 （6）切断另一侧迷走神经
每次做完一个项目后应待呼吸恢复正常平稳 后做下一个项目
29
八、测定胸膜腔内压
在右侧腋前线第6、7肋间用边接水检压 计的针头穿刺激胸腔，注意落空感，即穿 入胸膜腔，可见水检压计U形管液面在负压 水平下随呼吸而波动，即可测定正常胸腔 腔内压，记录其数值
呼吸运动的调节、胸膜 腔内压的测定
1
肺牵张反射（pulmonary strech reflex）
1868年,Breuer和Hering,在麻醉动物发现:由肺扩张或肺萎陷引起 的吸气抑制或吸气兴奋的反射称为肺牵张反射.
2
肺扩张反射
吸气 肺扩张 气管、支气管SM的牵张感受器 迷走N传入 延髓吸气切断机制 吸气转入呼气 加快呼吸频率（特点： 是牵张感受器，适应慢，阈值低；平静呼吸并不参与调节,仅在肺 顺应性降低时才参与调节呼吸运动；）
颈动脉体 主动脉体
适宜刺激： PO2↓ PCO2↑ [H+]↑
5
2.中枢化学感受器
Ⅵ
Ⅶ Ⅷ
Ⅸ Ⅹ
ⅪⅫ
影响呼吸的 化学敏感区
呼吸有 关核团
H+ HCO3H2CO3
H2O+CO2
中枢化学感受器位于延髓腹外侧浅表部位,左右对称,可分为头、中、尾三个区
6
中枢化学感受器: 延髓腹外侧区域 适宜刺激： H+高度敏感， 对缺O2不敏感 脑脊液中AC量少 CO2的间接作用慢
25
6.插气管插管并固定 7.检查呼吸道是否通畅
七、观察项目（注意标记）
（1）增加吸入气中CO2浓度（二氧化碳发生装置 ） （2）缺氧：简易缺02装置 （3）增大无效腔：连接橡皮管 （4）窒息：堵塞气管插管口 （5）切断一侧迷走神经 （6）切断另一侧迷走神经
每次做完一个项目后应待呼吸恢复正常平稳 后做下一个项目
29
八、测定胸膜腔内压
在右侧腋前线第6、7肋间用边接水检压 计的针头穿刺激胸腔，注意落空感，即穿 入胸膜腔，可见水检压计U形管液面在负压 水平下随呼吸而波动，即可测定正常胸腔 腔内压，记录其数值
呼吸运动的调节、胸膜 腔内压的测定
1
肺牵张反射（pulmonary strech reflex）
1868年,Breuer和Hering,在麻醉动物发现:由肺扩张或肺萎陷引起 的吸气抑制或吸气兴奋的反射称为肺牵张反射.
2
肺扩张反射
吸气 肺扩张 气管、支气管SM的牵张感受器 迷走N传入 延髓吸气切断机制 吸气转入呼气 加快呼吸频率（特点： 是牵张感受器，适应慢，阈值低；平静呼吸并不参与调节,仅在肺 顺应性降低时才参与调节呼吸运动；）
颈动脉体 主动脉体
适宜刺激： PO2↓ PCO2↑ [H+]↑
5
2.中枢化学感受器
Ⅵ
Ⅶ Ⅷ
Ⅸ Ⅹ
ⅪⅫ
影响呼吸的 化学敏感区
呼吸有 关核团
H+ HCO3H2CO3
H2O+CO2
中枢化学感受器位于延髓腹外侧浅表部位,左右对称,可分为头、中、尾三个区
6
中枢化学感受器: 延髓腹外侧区域 适宜刺激： H+高度敏感， 对缺O2不敏感 脑脊液中AC量少 CO2的间接作用慢
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6.插气管插管并固定 7.检查呼吸道是否通畅
家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全课件
家兔呼吸机能不全
家兔呼吸运动的调节
目的
通过研究家兔呼吸运动的调节和呼吸机能不全，深入了解呼吸系统的生理和病理机制，为临床治疗提供理论依据和实践指导。
目标
掌握家兔呼吸系统的基本结构和功能，理解呼吸运动的调节机制，掌握家兔呼吸机能不全的表现、原因和治疗方法，提高对呼吸系统疾病的认识和治疗水平。
02
CHAPTER
家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全课件
目录
引言家兔呼吸系统的基本结构家兔呼吸运动的调节机制呼吸机能不全的病理生理学家兔模型在呼吸机能不全研究中的应用总结与展望
01
CHAPTER
引言
研究家兔呼吸系统的生理机制，包括呼吸中枢、呼吸肌和呼吸道的结构和功能，以及如何调节呼吸运动的频率、深度和节奏。
探讨家兔在各种病理条件下，如肺炎、肺水肿、慢性阻塞性肺疾病等，出现的呼吸机能不全的表现、原因和治疗方法。
呼吸机能不全的防治
针对家兔呼吸机能不全，应采取综合防治措施，包括改善饲养环境、加强饲养管理、及时治疗呼吸道疾病等。
03
开发新型防治方法
针对家兔呼吸机能不全，开发新型的防治方法，如药物治疗、基因治疗等。
01
深入研究家兔呼吸运动的调节机制
进一步探讨中枢化学感受器在呼吸运动调节中的作用，以及物理因素如何影响呼吸运动。
03
CHAPTER
家兔呼吸运动的调节机制
血液中的CO2浓度是调节呼吸运动的重要化学因素。CO2刺激呼吸运动的作用是通过刺激中枢化学感受器实现的，它能够将CO2转化为H+，进而影响呼吸中枢的活动。
CO2
血液中的O2浓度也对呼吸运动产生影响，低氧刺激可以增加通气量，以维持足够的O2供应。
O2
家兔的呼吸肌（如膈肌和肋间肌）具有自身的收缩机制，能够根据需要调整肌肉张力，从而改变肺通气量。
家兔呼吸运动的调节
目的
通过研究家兔呼吸运动的调节和呼吸机能不全，深入了解呼吸系统的生理和病理机制，为临床治疗提供理论依据和实践指导。
目标
掌握家兔呼吸系统的基本结构和功能，理解呼吸运动的调节机制，掌握家兔呼吸机能不全的表现、原因和治疗方法，提高对呼吸系统疾病的认识和治疗水平。
02
CHAPTER
家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全课件
目录
引言家兔呼吸系统的基本结构家兔呼吸运动的调节机制呼吸机能不全的病理生理学家兔模型在呼吸机能不全研究中的应用总结与展望
01
CHAPTER
引言
研究家兔呼吸系统的生理机制，包括呼吸中枢、呼吸肌和呼吸道的结构和功能，以及如何调节呼吸运动的频率、深度和节奏。
探讨家兔在各种病理条件下，如肺炎、肺水肿、慢性阻塞性肺疾病等，出现的呼吸机能不全的表现、原因和治疗方法。
呼吸机能不全的防治
针对家兔呼吸机能不全，应采取综合防治措施，包括改善饲养环境、加强饲养管理、及时治疗呼吸道疾病等。
03
开发新型防治方法
针对家兔呼吸机能不全，开发新型的防治方法，如药物治疗、基因治疗等。
01
深入研究家兔呼吸运动的调节机制
进一步探讨中枢化学感受器在呼吸运动调节中的作用，以及物理因素如何影响呼吸运动。
03
CHAPTER
家兔呼吸运动的调节机制
血液中的CO2浓度是调节呼吸运动的重要化学因素。CO2刺激呼吸运动的作用是通过刺激中枢化学感受器实现的，它能够将CO2转化为H+，进而影响呼吸中枢的活动。
CO2
血液中的O2浓度也对呼吸运动产生影响，低氧刺激可以增加通气量，以维持足够的O2供应。
O2
家兔的呼吸肌（如膈肌和肋间肌）具有自身的收缩机制，能够根据需要调整肌肉张力，从而改变肺通气量。
生理实验六呼吸运动的调节精品PPT课件
⒈正常呼吸曲线的频率和幅度
7. 观察呼吸运动的影响因素
1. 增加无效腔（观察呼吸频率和幅度变化） 2. 窒息：夹闭两侧气管软管（几秒到几十秒，时间不要太长，否则会引起
窒息死亡）（观察呼吸频率和幅度变化） 3. 吸入 CO2：肺活量较大的同学呼出的CO2，10s以上吹气（不要对着软
管直接吹，用手捧住软管，相对密闭，吹气）。（观察呼吸频率和幅 度变化） 4. 吸气末吹气，呼气末抽气。 5. 静脉内注入3％乳酸 2ml（观察呼吸频率和幅度变化） 6. 切断右侧迷走神经，观察呼吸频率和幅度。再切断左侧迷走神经，观察 呼吸频率和幅度变化。 连续电脉冲刺激迷走神经中枢端（靠近头部的一端）， 观察呼吸频率 和幅度变化。
如麻醉较浅，动物出现挣扎或呼吸急促等，需 补充麻醉药以维持适当的麻醉。一次补充药量 不宜超过原总用药量的五分之一；
麻醉过程中，应随时保持呼吸道通畅，并注意 保温；
麻醉效果的观察
呼吸：深慢而平稳 角膜反射：明显迟钝 肌张力：全身肌肉松弛 皮肤夹捏反射消失。
3. 家兔固定和剪毛
固定用细绳—回收 固定头部要点： ✓门牙—拉直以使颈部挺 起，便于手术
学习总结
经常不断地学习,你就什么都知道。你知道得越多,你就越有力量 Study Constantly, And You Will Know Everything. The More
You Know, The More Powerful You Will Be
结束语
当你尽了自己的最大努力时，失败也是伟大的 ，所以不要放弃，坚持就是正确的。
➢ 设定记录呼吸运动的参数
2、捉拿、称重、麻 醉
捉拿：实验家兔多数
饲养在笼内，所以抓 取较为方便，一般以 右手抓住兔颈部的毛 皮提起，然后左手托 其臀部或腹部，让其 体重重量的大部分集 中在左手上，这样就 避免了抓取过程中的 动物损伤。不能采用 抓双耳或抓提腹部。
7. 观察呼吸运动的影响因素
1. 增加无效腔（观察呼吸频率和幅度变化） 2. 窒息：夹闭两侧气管软管（几秒到几十秒，时间不要太长，否则会引起
窒息死亡）（观察呼吸频率和幅度变化） 3. 吸入 CO2：肺活量较大的同学呼出的CO2，10s以上吹气（不要对着软
管直接吹，用手捧住软管，相对密闭，吹气）。（观察呼吸频率和幅 度变化） 4. 吸气末吹气，呼气末抽气。 5. 静脉内注入3％乳酸 2ml（观察呼吸频率和幅度变化） 6. 切断右侧迷走神经，观察呼吸频率和幅度。再切断左侧迷走神经，观察 呼吸频率和幅度变化。 连续电脉冲刺激迷走神经中枢端（靠近头部的一端）， 观察呼吸频率 和幅度变化。
如麻醉较浅，动物出现挣扎或呼吸急促等，需 补充麻醉药以维持适当的麻醉。一次补充药量 不宜超过原总用药量的五分之一；
麻醉过程中，应随时保持呼吸道通畅，并注意 保温；
麻醉效果的观察
呼吸：深慢而平稳 角膜反射：明显迟钝 肌张力：全身肌肉松弛 皮肤夹捏反射消失。
3. 家兔固定和剪毛
固定用细绳—回收 固定头部要点： ✓门牙—拉直以使颈部挺 起，便于手术
学习总结
经常不断地学习,你就什么都知道。你知道得越多,你就越有力量 Study Constantly, And You Will Know Everything. The More
You Know, The More Powerful You Will Be
结束语
当你尽了自己的最大努力时，失败也是伟大的 ，所以不要放弃，坚持就是正确的。
➢ 设定记录呼吸运动的参数
2、捉拿、称重、麻 醉
捉拿：实验家兔多数
饲养在笼内，所以抓 取较为方便，一般以 右手抓住兔颈部的毛 皮提起，然后左手托 其臀部或腹部，让其 体重重量的大部分集 中在左手上，这样就 避免了抓取过程中的 动物损伤。不能采用 抓双耳或抓提腹部。
家兔呼吸运动的调节.
肺容积
肺容积有4部分：
– 潮气量：平静呼吸时，每次吸入或呼出的气体量。 – 补吸气量：平静吸气末再用力吸入的最大气量。 – 补呼气量：平静呼气末再用力呼出的气量。 – 余（残）气量： 用力呼气后，仍然残留在肺内无法呼 出的气量。 肺活量：潮气量、补吸气量和补呼气量总称为肺活量 无效腔：呼吸时存在于呼吸道内的气量
2. 剑突软骨分离术 切开胸骨下端剑突部位的皮肤，并 沿腹白线再切开长约2cm的切口。细心分离剑突表面的 组织，并暴露剑突软骨。
方法与步骤
3. 将系有棉线的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端 系于张力传感器的应变梁上。
4. 开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，
调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。 同时记录膈肌放电。
动物与器材
家兔
兔体手术台、常用手术器械、动物呼吸传感器 （张力传感器）、压力传感器、引导电极、刺 激电极、计算机采集系统、气管插管、动脉夹、 注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐 水、肝素、石蜡油。
方法与步骤
本实验通过张力传感器记录膈肌的运动。
1. 将动物麻醉后，背位固定于手术台上。剪去颈部与剑 突腹面的被毛，切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插 管。 再分离出一侧颈总动脉与双侧迷走神经， 穿线备用。
（4）待呼吸运动恢复正常后，结扎颈部单侧迷走神经， 观察并记录呼吸运动和血压的变化。再结扎另一侧 迷走神经，观察并记录呼吸运动和血压的变化。 （5）分别刺激迷走神经中枢端与外周端，观察并记录 呼吸运动和血压的变化。
注意事项
分离剑突表面的组织时勿伤及胸腔。 肺牵张反射时注意，注气与抽气时间仅限于三个呼 吸节律的时间，然后立即打开夹闭的侧管。 结扎迷走神经时，第一结一定要紧、狠，务必阻断 神经冲动的传导。
最新家兔呼吸运动的调节课件-药学医学精品资料
图5 气管插管术示意图-示固定插管
3/12/2019
（四）分离神经
• 由里向外翻出气管一侧组织——颈动脉鞘：
粗 — 迷走神经 中 — 交感神经
细 — 减压神经
3/12/2019
图6 神经分离示意图
3/12/2019
图7 神经分离示意图-示迷走神经
3/12/2019
（五）连接实验装置
（三）气管插管术 • 手术刀割开皮肤
一手绷紧皮肤， 另一手用力一次性割开皮肤
• 分离气管
用剪刀、镊子分离出气管 除净气管外表的结缔组织等 棉花条清除气管内的淤血、粘液等
3/12/2019
图3 气管插管术示意图
3/12/2019
图4 气管插管术示意图-示气管切口
3/12/2019
3/12/2019
（一）麻醉
• • • 兔耳缘静脉注射：3%戊巴比妥钠 1ml/kg体重； 抽吸麻醉液时先取下针头，多吸一部分；
（1）注射液剂量
（2）进针—注射姿势调整 • • • • 选择耳缘静脉 从远心端开始；左右耳 针头扎进1/3至1/2，并用拇指固定住 注射时推动液体慢一点 — 呼吸急促时可稍停 — 急救。
液，保持气管插管通畅。
• 实验观察中，在刺激开始、撤除时，应做好标记。
3/12/2019
六、结果和目标
• 观察、记录正常呼吸的曲线，了解其特性和规律； • 观察、记录各种影响因素所造成的呼吸曲线的变化。
3/12/2019
七、思考题
• • 分析增加吸入气中CO2浓度对呼吸运动的调节。 分析增加呼吸无效腔，呼吸运动改变的原因。
• BL—420生物机能实验系统、张力换能器。
• 哺乳动物手术器械：兔体手术台、圆头手术镊、手术 剪、手术刀、止血钳、弯剪、气管插管、橡皮管、玻
机能学实验家兔呼吸运动的调节及其影响因素ppt课件
外周化学感受器
颈动脉体和自动脉体〔调理呼吸和循环〕 PaO2↓、PaCO2 ↑ 或 [H+] ↑：激动经窦神经和迷 走神经传入延髓，反射性地引起呼吸加深加快； 反之 ，呼吸浅慢。
中枢化学感受器
• 延髓腹外侧浅表部位，左右对称，可以分为头、 中、尾三个区，仅头端和尾端区有化学感受性反 射
• 中枢化学感受器不感受缺O2的刺激，但对CO2的 敏感性比外周的强
④ 先结扎一侧迷走N并将其切断 ⑤ 再结扎另一侧迷走N并将其切断 ⑥ 电刺激一侧迷走N中枢端
本卷须知
• 每一项察看要素完成后，都应等动物呼吸 根本恢复正常后再做后续察看要素
结果预测及分析
(1)吸入N2: PaO2↓ 呼吸加深、加快，肺通气添加
(2)吸入CO2 : PaCO2↑ 呼吸加深加快，肺通气量添加
家兔呼吸运动的调理及其影响要素
实验报告
• 实验标题 • 实验目的 • 实验对象 • 实验步骤与察看工程 • 实验结果 • 实验讨论 • 实验结论
呼吸
呼吸：机体与外界环境之间的气体交换过程
机体经过肺通气实现外界空气与肺之间的气 体交换，完成这一交换的原动力是呼吸运 动。
呼吸运动的调理主要是经过化学感受性呼吸 反射、肺牵张反射等来调理
气管旁血管〕，在其下穿一线备用。 9. 两侧迷走N分别：穿2根线备用
⑥插管
⑦衔接BL-420生物信息采集与处置系统，翻开“呼吸 实验〞内模块，监测正常呼吸曲线。
察看工程
① 吸入N2: PiO2↓, PaO2 ↓ ② 吸入CO2 : PaCO2↑ ③ 添加无效腔：长约0.5m橡皮管连于气管
插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧 管， 使无效腔添加
(3)增大无效腔
PaCO2↑+ PaO2↓ 呼吸加深、加快，肺通气添加
实验三 家兔呼吸运动的调节PPT学习课件
1. 掌握家兔耳缘静脉注射操作 2. 掌握戊巴比妥钠静脉注射麻醉流程 3. 掌握家兔颈部手术操作、神经血管分离和气管插管技术 4. 学会观察和记录家兔呼吸运动（曲线）的实验方法，理解各种因
素对呼吸运动的影响及其机制 ① 无效腔 ② 化学感受性反射：PCO2，PO2 ③ 气胸 ④ 肺牵张反射
2
实验原理 • 呼吸运动是受呼吸中枢调控的呼吸肌节律性收缩舒张引起的胸
做倒t形剪口清除血凝块后向心方向插入气管插管绑线固定在气管两侧识别颈总动脉及其周围神经束并游离一侧迷走神经穿线备用暴露并游离剑突用小钩钩住剑突细线连接张力换能器调节至适当高度运行机能实验系统程序在第一通道记录张力信号121314151617181920实验步骤
实验三 家兔呼吸运 动的调节
1
实验目的
廓容积变化，是肺通气的直接动力。
• 自动节律性呼吸运动受体内外各种因素的影响，它们主要通过 化学感受性神经反射和机械感受性反射在延髓呼吸中枢的整合 作用下对呼吸的频率和幅度进行适应性调节；血液中的PCO2 ， PO2和[H+]是主要的化学因素。
• 肺牵张反射的传入神经是迷走神经，此反射参与家兔节律性呼 吸的维持和调节。
• 胸膜腔的密闭性和负压的维持是呼吸运动正常进行的必要调节， 气胸是胸膜腔功能被破坏的临床表现。
3
4
实验动物、器械和仪器
• 实验动物：家兔 • 实验用具
1. 哺乳动物常规手术器械
2. 玻璃解剖分离针
3. 兔气管插管
4. 张力换能器
5. 金属钩及连线
6. 30cm橡胶管
7. 二氧化碳Βιβλιοθήκη 囊8. 碳石灰呼吸瓶注意：以上每一步骤施加实验因素时均需在呼吸曲线上添加标记
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17
素对呼吸运动的影响及其机制 ① 无效腔 ② 化学感受性反射：PCO2，PO2 ③ 气胸 ④ 肺牵张反射
2
实验原理 • 呼吸运动是受呼吸中枢调控的呼吸肌节律性收缩舒张引起的胸
做倒t形剪口清除血凝块后向心方向插入气管插管绑线固定在气管两侧识别颈总动脉及其周围神经束并游离一侧迷走神经穿线备用暴露并游离剑突用小钩钩住剑突细线连接张力换能器调节至适当高度运行机能实验系统程序在第一通道记录张力信号121314151617181920实验步骤
实验三 家兔呼吸运 动的调节
1
实验目的
廓容积变化，是肺通气的直接动力。
• 自动节律性呼吸运动受体内外各种因素的影响，它们主要通过 化学感受性神经反射和机械感受性反射在延髓呼吸中枢的整合 作用下对呼吸的频率和幅度进行适应性调节；血液中的PCO2 ， PO2和[H+]是主要的化学因素。
• 肺牵张反射的传入神经是迷走神经，此反射参与家兔节律性呼 吸的维持和调节。
• 胸膜腔的密闭性和负压的维持是呼吸运动正常进行的必要调节， 气胸是胸膜腔功能被破坏的临床表现。
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实验动物、器械和仪器
• 实验动物：家兔 • 实验用具
1. 哺乳动物常规手术器械
2. 玻璃解剖分离针
3. 兔气管插管
4. 张力换能器
5. 金属钩及连线
6. 30cm橡胶管
7. 二氧化碳Βιβλιοθήκη 囊8. 碳石灰呼吸瓶注意：以上每一步骤施加实验因素时均需在呼吸曲线上添加标记
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生理学实验：家兔呼吸运动的调(精品课件)
实验数据分析1.正常的家兔呼吸曲线图1.正常的家兔呼吸曲线曲线由图可知，本组选取的家兔自身呼吸频率较快，幅度加大，后续增强呼吸的因素作用不是十分明显。
2.接空气气囊的家兔呼吸曲线图2.接空气气囊的家兔呼吸曲线曲线由图可知，改接空气气囊后，家兔呼吸幅度和频率均未出现太大变化。
3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线CO2图3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线由图可知，接CO2气囊后，家兔呼吸曲线幅度增大，频率加快。
这是因为CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，不但对呼吸有很强的刺激作用，而且对维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动是必须的。
当呼入气体中CO2浓度升高，血液中CO2浓度随之升高，CO2透过血脑屏障使脑脊液的CO2浓度也升高。
CO2与水反应生成H2CO3，随后水解成HCO3-和H+，由H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过一系列调控使得呼吸作用加强。
此外，当CO2浓度增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。
4.接N2气囊的家兔呼吸曲线N2图4.接N2气囊的家兔呼吸曲线由图可知，接N2气囊后，家兔呼吸曲线幅度略有增大。
这是因为吸入纯N2时，因吸入气体中缺乏O2，肺泡气O2浓度下降，导致动脉血中O2浓度下降；而CO2浓度却基本不变（CO2扩散速度较快）。
随着动脉血中O2浓度下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线图5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线由图可知，增长解剖无效腔后，家兔呼吸幅度略有下降，而呼吸频率则稍稍上升，这是因为实验中通过插管的方式增大无效腔，也就是减小了进入肺泡的潮气量，即每次的有效气体更新变小。
结果促使O2分压下降，CO2分压上升，使其反射性的调节使呼吸加深加快。
所以膈肌放电的变化幅度加大，频率有微量增大。
反映到膈肌的收缩曲线，由于收缩频率的增大，为了维持正常的肺部通气量，所以收缩强度减弱。
家兔呼吸运动PPT课件
12
(6)剪开并剪断右侧肋骨，造成人工开放性气胸，观察并记 录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频率并测量及强度，分 析该因素引起呼吸运动变化的机制。
13
观察过程中的注意事项
用生理盐水湿润过的纱布盖住颈部手术部位； 连接张力传感器时确定家兔以完全麻醉，否则家兔的剧烈挣扎易 损坏张力传感器； 每一项实验前，要待家兔已经恢复正常呼吸后才能开始，并且描 记一段正常的呼吸曲线作为对照。每项实验观察时间不宜过长， 出现效应后应立即去掉刺激因素；
家兔呼吸运动的调节1ppt课件实验目的掌握家兔耳缘静脉注射法家兔颈部手术操作神经血管分离气管插管技术记录家兔呼吸曲线观察增加无效腔气道阻力肺牵张反射开放性气胸等因素对呼吸运动的影响了解各种因素影响呼吸运动的机制2ppt课件实验原理?人体及高等动物的呼吸运动能持续有节律的进行是由于体内调节机制的存在
家兔呼吸运动的调节
呼吸运动受神经以及血液中O2，CO2，[H+]等物质浓度调 节。
肺的牵张反射通过迷走神经传导调节信号，通过这个反射 弧来参与呼吸节律的调节。
3
实验材料
1、动 物：家兔 2、器 械：动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、
玻璃分针, 丝线，注射器，兔台），气管插 管，体重秤，张力换能器，生理信号采集系 统，医用橡皮管，纱布，20 ml 注射器， 玻璃分针。
10
③ 气道阻力对呼吸运动的影响：待呼吸运动恢复 正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒。 观察并记录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频 率并测量强度，分析该因素引起呼吸运动变化 的机制；
11
④ 肺牵张反射对呼吸运动的影响：待呼吸运动平稳后，夹闭气 管插管的一侧管，用20 ml 注射器吸入20 ml 空气，在吸气 末期通过另一侧管徐徐向肺内注入，观察并记录家兔的运动 呼吸曲线，计算呼吸频率并测量及强度。实验后立即打开夹 闭的侧管，使呼吸恢复正常。同法，于呼气末期用注射器抽 取肺内气体，观察并记录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频 率并测量强度，分析该因素引起呼吸运动变化的机制（注气 与抽气的时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立即打开夹 闭的侧管）；
(6)剪开并剪断右侧肋骨，造成人工开放性气胸，观察并记 录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频率并测量及强度，分 析该因素引起呼吸运动变化的机制。
13
观察过程中的注意事项
用生理盐水湿润过的纱布盖住颈部手术部位； 连接张力传感器时确定家兔以完全麻醉，否则家兔的剧烈挣扎易 损坏张力传感器； 每一项实验前，要待家兔已经恢复正常呼吸后才能开始，并且描 记一段正常的呼吸曲线作为对照。每项实验观察时间不宜过长， 出现效应后应立即去掉刺激因素；
家兔呼吸运动的调节1ppt课件实验目的掌握家兔耳缘静脉注射法家兔颈部手术操作神经血管分离气管插管技术记录家兔呼吸曲线观察增加无效腔气道阻力肺牵张反射开放性气胸等因素对呼吸运动的影响了解各种因素影响呼吸运动的机制2ppt课件实验原理?人体及高等动物的呼吸运动能持续有节律的进行是由于体内调节机制的存在
家兔呼吸运动的调节
呼吸运动受神经以及血液中O2，CO2，[H+]等物质浓度调 节。
肺的牵张反射通过迷走神经传导调节信号，通过这个反射 弧来参与呼吸节律的调节。
3
实验材料
1、动 物：家兔 2、器 械：动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、
玻璃分针, 丝线，注射器，兔台），气管插 管，体重秤，张力换能器，生理信号采集系 统，医用橡皮管，纱布，20 ml 注射器， 玻璃分针。
10
③ 气道阻力对呼吸运动的影响：待呼吸运动恢复 正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒。 观察并记录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频 率并测量强度，分析该因素引起呼吸运动变化 的机制；
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④ 肺牵张反射对呼吸运动的影响：待呼吸运动平稳后，夹闭气 管插管的一侧管，用20 ml 注射器吸入20 ml 空气，在吸气 末期通过另一侧管徐徐向肺内注入，观察并记录家兔的运动 呼吸曲线，计算呼吸频率并测量及强度。实验后立即打开夹 闭的侧管，使呼吸恢复正常。同法，于呼气末期用注射器抽 取肺内气体，观察并记录家兔的运动呼吸曲线，计算呼吸频 率并测量强度，分析该因素引起呼吸运动变化的机制（注气 与抽气的时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立即打开夹 闭的侧管）；
实验家兔呼吸运动的调节(共7张PPT)
9〕剪断双侧迷走神经，分别刺激中枢端和外周端， 肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
9〕剪断双侧迷走神经，分别刺激中枢端和外周端，观察呼吸运动的变化。 3、手术别离气管与颈部神经：
观察呼吸运动的变化。 B、别离肌肉层：钝性别离
3〕CO2对呼吸运动的影响。 4、手术别离家兔剑突软骨 记录实验观察工程中的各项结果。
第2页，共7页。
【实验动物及器材】
家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、 支架、气管插管、橡皮管、Pc-Lab生物信号采集系 统、张力传感器、保护电极、纱布、棉球、细棉线、 注射器〔20ml〕、生理盐水、20%-25%氨基甲酸 乙酯、装有钠石灰的气袋及装有二氧化碳/CO2的气 袋。
第3页，共7页。
2、固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部被毛。
4〕缺氧对呼吸运动的影响。 1〕记录正常的呼吸曲线，并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
5〕增加气道阻力对呼吸运动的影响。 3、手术别离气管与颈部神经：
1〕记录正常的呼吸曲线，并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
10〕缓慢放血20ml观察呼吸运动曲线的变化。
3、手术别离气管与颈部神经： 8〕再次观察肺的牵张反射。
4、手术别离家兔剑突软骨 C、行气管插管：倒“T〞切口，插管固定
A、颈部皮肤切口5-7cm： B、别离肌肉层：钝性别离
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
B、别离肌肉层：钝性别离 【实验原理】 人体及高等动物的呼吸运动之所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。 B、别离肌肉层：钝性别离
3〕CO2对呼吸运动的影响。
第5页，共7页。
6〕肺牵张反射
8B〕、再别次离观肌7察肉〕肺层的：牵同钝张性反别时射离。结扎双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
9〕剪断双侧迷走神经，分别刺激中枢端和外周端，观察呼吸运动的变化。 3、手术别离气管与颈部神经：
观察呼吸运动的变化。 B、别离肌肉层：钝性别离
3〕CO2对呼吸运动的影响。 4、手术别离家兔剑突软骨 记录实验观察工程中的各项结果。
第2页，共7页。
【实验动物及器材】
家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、 支架、气管插管、橡皮管、Pc-Lab生物信号采集系 统、张力传感器、保护电极、纱布、棉球、细棉线、 注射器〔20ml〕、生理盐水、20%-25%氨基甲酸 乙酯、装有钠石灰的气袋及装有二氧化碳/CO2的气 袋。
第3页，共7页。
2、固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部被毛。
4〕缺氧对呼吸运动的影响。 1〕记录正常的呼吸曲线，并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
5〕增加气道阻力对呼吸运动的影响。 3、手术别离气管与颈部神经：
1〕记录正常的呼吸曲线，并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
10〕缓慢放血20ml观察呼吸运动曲线的变化。
3、手术别离气管与颈部神经： 8〕再次观察肺的牵张反射。
4、手术别离家兔剑突软骨 C、行气管插管：倒“T〞切口，插管固定
A、颈部皮肤切口5-7cm： B、别离肌肉层：钝性别离
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
B、别离肌肉层：钝性别离 【实验原理】 人体及高等动物的呼吸运动之所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。 B、别离肌肉层：钝性别离
3〕CO2对呼吸运动的影响。
第5页，共7页。
6〕肺牵张反射
8B〕、再别次离观肌7察肉〕肺层的：牵同钝张性反别时射离。结扎双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
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文档仅供参考，不能作为科学依据，请勿模仿；如有不当之处，请联系网站或本人删除。
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文档仅供参考，不能作为科学依据，请勿模仿；如有不当之处 实验观察项目 ① 观察和记录正常呼吸运动曲线 ② 增大无效腔：将胶管连接气管插管，观察呼吸运动变化 ③ 增加吸入气CO2：夹闭一侧气管插管进气口，将二氧化碳气囊出 气口靠近另一侧进气口，缓慢释放少量二氧化碳，待观察到明 显呼吸运动变化后立即撤离 ④ 减少吸入气O2：夹闭一侧气管插管进气口，将另一侧进气口与 碳石灰呼吸瓶相接，待观察到明显呼吸运动变化后立即撤离 ⑤ 人工气胸及恢复：在第五肋间穿刺，针尖进入胸膜腔（刺穿皮 肤和肋间肌）后推入15-20ml空气，针尖留置，观察呼吸运动 变化；抽出同等体积气体，观察气胸恢复现象 ⑥ 迷走神经功能：结扎一侧迷走神经后剪断外周短，观察呼吸运 动变化；将刺激电极置于迷走神经中枢残端，施加连续电刺激 ，观察呼吸运动变化
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实验步骤
1. 抓取家兔，称重 2. 耳缘静脉暴露、穿刺和注射麻醉药（1ml戊巴比妥钠溶液/KgBW） 3. 确定麻醉深度后，仰卧位固定于兔台
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插管，绑线固定 ⑥ 在气管两侧识别颈总动脉及其周围神经束，并游离一侧迷走神
经，穿线备用 6. 暴露并游离剑突，用小钩钩住剑突，细线连接张力换能器，调节至
适当高度 7. 运行机能实验系统程序，在第一通道记录张力信号
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实验目的
1. 掌握家兔耳缘静脉注射操作 2. 掌握戊巴比妥钠静脉注射麻醉流程 3. 掌握家兔颈部手术操作、神经血管分离和气管插管技术 4. 学会观察和记录家兔呼吸运动（曲线）的实验方法，理解各种因素
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实验动物、器械和仪器
实验动物：家兔 实验用具
1. 哺乳动物常规手术器械 2. 玻璃解剖分离针 3. 兔气管插管 4. 张力换能器 5. 金属钩及连线 6. 30cm橡胶管 7. 二氧化碳气囊 8. 碳石灰呼吸瓶 9. 50ml注射器 10. 刺激电极
注意：以上每一步骤施加实验因素时均需在呼吸曲线上添加标记
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实验步骤
4. 颈部和剑突处剪毛备皮 5. 颈部手术：
① 从甲状软骨上方开始正中切开颈部皮肤4-5cm ② 钝性分离皮下组织 ③ 沿正中剪开肌层 ④ 钝性分离肌层下组织，游离甲状软骨下气管2.5cm，穿线备用 ⑤ 气管插管：做倒“T”形剪口，清除血凝块后向心方向插入气管
对呼吸运动的影响及其机制 ① 无效腔 ② 化学感受性反射：PCO2，PO2 ③ 气胸 ④ 肺牵张反射
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实验原理
呼吸运动是受呼吸中枢调控的呼吸肌节律性收缩舒张引起的 胸廓容积变化，是肺通气的直接动力。
自动节律性呼吸运动受体内外各种因素的影响，它们主要通 过化学感受性神经反射和机械感受性反射在延髓呼吸中枢的 整合作用下对呼吸的频率和幅度进行适应性调节；血液中的 PCO2 ， PO2和[H+]是主要的化学因素。
肺牵张反射的传入神经是迷走神经，此反射参与家兔节律性 呼吸的维持和调节。
胸膜腔的密闭性和负压的维持是呼吸运动正常进行的必要调 节，气胸是胸膜腔功能被破坏的临床表现。