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药后24、48、72h采集血浆，给药前和给药后采集的血浆均按2.2项方法处理，进样测定，结果见表3。
结果表明，建立的GC法可用于大鼠体内样品的测定。
表3直肠给药鸦胆子油和鸦胆子油乳注射液后大鼠的血药浓度（μg·mL－1）时间（h）鸦胆子油油酸亚油酸鸦胆子油乳注射液油酸亚油酸0276.5282.3288.8296.912322.5333.7352.2379.524440.4476.2428.8500.736702.21049.0794.71210.748510.9712.7558.9777.03讨论已有文献报道采用GC法同时测定鸦胆子中油酸和亚油酸的含量［2］，但未见其应用于体内。
项琪等［3］收稿日期：2011－02－25基金项目：国家自然科学基金资助研究项目（30772836）；江苏省科技计划项目（BE2010769）；江苏省高校自然科学基金项目（09KJD360002）作者简介：刘晓华（1981－），女（满族），河北秦皇岛人，2008级硕士研究生，研究方向：针灸防治老年病及机理研究。
通讯作者：李忠仁（1942－），男，教授，博士研究生导师，研究方向：针灸防治老年病及机理研究。
曾采用HPLC法同时测定大鼠血浆中油酸和亚油酸的浓度，但样品需高温（100ħ）衍生化。
本实验首次建立了大鼠血浆中油酸和亚油酸同时测定的GC法，结果表明该法不仅简单、快捷，而且准确、可靠，为鸦胆子油及其制剂的体内研究奠定了基础。
在测定过程中，酯化是否完全对结果的准确性有较大影响，故采用单因素试验对酯化时间进行了考察。
结果表明，当酯化时间分别选择1、2、4、6、10min，其中为2min时，所测得的峰面积最大，该结果与中国药典［5］一致。
另外，取配制的高、中、低3种浓度的混合对照品（油酸甲酯23．80、595．0、2380μg·mL－1；亚油酸甲酯24．51、613．0、2451μg·mL－1）各3份，按2．2项方法处理进样测定，与未经处理直接进样测定相比较。
“贺氏三通法”针刺不同时间介入对脑缺血再灌注大鼠模型血浆β-EP、ACTH的影响*郭静1张露芬2刘红1孙敬清1马昕宇1[摘要] 目的观察“贺氏三通法”针刺不同时间介入对脑缺血再灌注模型大鼠血清血浆β-EP和ACTH含量变化的影响，探讨针刺对大鼠脑缺血再灌注后机体反应的调节机制。
方法采用线栓法制备大鼠右侧大脑中动脉脑缺血再灌注模型，采用放射免疫法检测血清血浆β-EP和ACTH含量。
结果脑缺血再灌注大鼠血浆β-EP含量明显增高，而ACTH呈下降趋势，不同时间介入“贺氏三通法”针法治疗后血浆β-EP含量下降，ACTH含量增高，而且以3h介入治疗逆转β-EP与ACTH的比值失调更为明显。
结论“贺氏三通法”针法可以调节脑缺血再灌注大鼠β-EP与ACTH的比值失调，且以3小时介入效果最为理想。
[关键词]贺氏三通法/针灸疗法；脑缺血再灌注；β-EP ；ACTH贺普仁教授在50多年的医疗实践中，创立了“病多气滞，法用三通”的中医针灸病机学说和响誉海内外的针灸治疗体系——“贺氏三通法”。
“贺氏三通法”即毫针微通，三棱针强通和艾灸、火针等温通三法。
它在我国针灸界享有盛誉，具有显著的疗效和众多的适应症。
应用于缺血性脑卒中各期疗效显著，临床疗效的验证及总结已在国家中医药管理局课题的支持下完成，经证实能显著提高脑卒中患者的疗效。
本项实验研究以脑缺血再灌注模型作为研究对象，观察血浆β-内啡肽（β-endorphins，β-EP）和促肾上腺皮质激素（adrenocorticotropic hormone，ACTH）含量的变化，旨从应激方面探讨“贺氏三通法”的作用机制。
1 材料与方法1.1 实验动物及分组健康成年SD大鼠，雄性，体重210-240g，清洁级动物，购自中国军事医学科学院动物中心<医动字第005号>。
采取随机抽签的方法将实验动物分为5组，分别为正常对照组（8只）、假手术组（8只）、模型对照组（8只）、针刺治疗组（24只）、药物治疗组（16只）。
电针对大鼠脑缺血再灌注损伤脑组织SOD、MDA代谢的影响发表时间：2011-07-13T17:44:08.640Z 来源：《中外健康文摘》2011年第15期供稿作者：赵创1 沈卫东2 马文2[导读] 目的观察电针对大鼠缺血再灌注损伤脑组织超氧化物歧化酶、丙二醛含量的影响。
赵创1 沈卫东2 马文2(1上海中医药大学附属曙光临床医学院 201203;2上海中医药大学附属曙光医院针灸科 201203)【中图分类号】R454 【文献标识码】A 【文章编号】1672-5085 (2011)15-0132-02【摘要】目的观察电针对大鼠缺血再灌注损伤脑组织超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)含量的影响。
方法 54只成年SD雄性大鼠按完全随机法分为正常组，假手术组每组各12只，模型组、电针组每组各15只。
采用线栓法复制局灶性脑缺血大鼠模型,于脑缺血再灌注3h、15h、27h动态观察各组脑缺血大鼠再灌注损伤脑组织SOD活性和MDA含量。
结果各造模组大鼠血浆SOD活性比正常组均有所降低,模型组与各组比较有显著性差异(P<0.05)；各造模组大鼠血浆MDA的含量比正常组均有所升高, 模型组与各组比较有显著性差异(P<0.01)；电针组与正常组比较有显著性差异(P<0.05)。
结论电针在某种程度上能够抑制自由基的产生及连锁反应的发生，提高SOD活性，降低MDA的含量，从而起到清除氧自由基、减轻再灌注损伤、保护脑细胞的作用。
【关键词】电针大鼠缺血再灌注SOD MDA在缺血再灌注过程中，钙离子超载，氧自由基的大量形成和脂质过氧化的增加是加重脑细胞损伤的主要病理过程，钙离子超载与氧自由基的生成和释放密切相关，两者相互促进。
超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD）是生物体内主要的超氧自由基清除剂，丙二醛（malonyl-diadehyde，MDA）是脂质过氧化反应的最终产物。
电针对脑缺血再灌注大鼠脑内血管新生影响的研究的开题报告一、选题背景脑缺血再灌注损伤（IRI）是中风、心脏手术等条件下的常见疾病。
在IRI过程中，缺血引起的脑血管损伤是导致神经细胞死亡和病理改变的根本原因之一。
因此，防止和改善IRI后遗症的治疗方法一直是研究的热点。
电针作为一种传统中医疗法，已被证明对中风、脑白质损伤等脑损伤疾病有较好的治疗效果。
近年来，已有研究表明电针也对IRI有一定的治疗作用，但其具体机制仍不清楚。
众所周知，血管新生是组织修复和再生的关键过程。
因此，研究电针对IRI中血管新生的影响可以为其治疗机制的研究提供新思路，同时为脑血管损伤的治疗提供理论依据。
二、研究目的本研究旨在探究电针对脑缺血再灌注大鼠脑内血管新生的影响，为电针治疗IRI提供新的治疗机制。
三、研究内容及方法1. 实验设计本实验采用大鼠模型，将大鼠随机分为电针组和对照组，每组10只。
对照组不接受任何手术和治疗，电针组在IRI后24h、48h和72h进行电针治疗。
电针组的电针治疗地点为“百会”、“神阙”和“涌泉”穴，治疗时间为30min/次，每周3次，治疗持续4周。
采用HE染色法观察脑组织形态学变化，采用免疫组化方法观察血管相关标志物的表达（包括CD31、VEGF和Ang-2等）。
2. 数据统计及分析采用SPSS 20.0统计软件进行数据处理和统计分析，采用t检验和方差分析等方法对数据进行比较和分析，P<0.05为统计学差异有显著性。
四、研究意义本研究旨在探究电针在脑缺血再灌注损伤修复中的作用和机制，为电针在脑损伤和缺血性疾病治疗中的临床应用提供新思路和理论依据。
同时，该研究可以为脑缺血再灌注损伤的治疗提供新的治疗方案并为科学家们提供研究思路。
电针对局灶性脑缺血再灌注大鼠脑内HO-1mRNA表
达的影响的开题报告
一、研究背景
缺血性脑卒中是临床上较为常见的疾病之一，其主要特点是缺血和
再灌注所导致的神经元损伤和神经功能障碍。
针刺作为一种传统的治疗
手段，已经被广泛应用于临床治疗中，并取得了很好的疗效。
尤其是电
针在脑缺血的治疗中具有独特的优势，目前已经被应用于临床中。
但是，电针对脑缺血病理生理变化的影响机制还不清楚，需要进一步探讨。
二、研究目的
本研究的目的是探究电针对局灶性脑缺血再灌注大鼠脑内HO-
1mRNA表达的影响机制。
三、研究内容和方法
1. 实验动物：选择60只SD大鼠，雄性和雌性各半。
2. 实验组与对照组：60只大鼠随机分为实验组和对照组，每组30只。
3. 操作方法：
①对照组：不进行任何操作。
②实验组：采用局部缺血再灌注模型，分别在左侧脑半球中央动脉
血管上结扎造成缺血，30分钟后再解除结扎，造成再灌注。
4. 电针治疗方法：对实验组进行电针治疗，治疗时间为30分钟，频率为100hz，脉冲宽度为0.3ms，脉冲电流为1mA.
5. HO-1mRNA表达测定：术后24h处死60只大鼠，分别取左右脑
半球进行HO-1mRNA表达测定。
利用RNA提取试剂将总RNA提取出来，
然后进行孪生荧光实时PCR测定，最后进行相对表达量计算并对结果进行统计分析。
四、预期成果
预期通过本次研究，可以探究电针对局灶性脑缺血再灌注大鼠脑内HO-1mRNA表达的影响机制，为临床电针治疗提供新的思路和方案。
12第15卷 第3期 2013 年 3 月辽宁中医药大学学报JOURNAL OF LIAONING UNIVERSITY OF TCMVol. 15 No. 3 Mar .，2013研究发现一些药物如水合氯醛、巴比妥类药物等，具有脑保护作用，这与脑温降低的机制有关。
目前，国内局部脑缺血/再灌注模型（MCAO）制作大都采用腹腔注射麻醉，但模型制作过程中，存在许多理化指标不稳定等缺点。
而国外在建立该模型时，现已多采用吸入麻醉剂（如氟烷、异氟醚等）[1]。
选择合适的麻醉剂，麻醉中保持稳定的脑部温度，无疑是取得正确实验结果的前提。
1 材料与方法取SPF 级SD 雄性大鼠64只，体重为260~300 g，由军事医学科学院实验动物中心提供。
将实验大鼠随机分为腹腔麻醉组和吸入麻醉组，每组32只。
主要仪器：动物呼吸机（浙江医科大学仪器实验厂生产，DH-140B）、大鼠立体定向仪（中国淮北正华生物仪器设备有限公司，WDT-V）、多道生理监测仪（SIEMENS SC600C）、Image-Pro Plus Analysis Software 计算机图像分析系统（美国，Larser Sharp）、便携式数字式测温仪（天津今明仪器有限公司）、血气分析仪（RADIOMETER ABL77）、点式针状（ø=0.5mm）测温仪（北京工业大学环能学院制冷实验室制作）。
室温控制在23~25 ℃。
1.1 麻醉和模型制作 腹腔麻醉组：使用10%水合氯醛（300 mg/kg）腹腔注射麻醉。
吸入麻醉组：使用2%七氟烷（Sevoflurane，日本丸石制药株式会社）混合30%氧气吸入，经气管插管吸入麻醉，呼吸机辅助呼吸。
参照Longa 的线栓法进行模型制作[2]，采用Longa 建立的神经系统功能缺损程度的分级评定标准进行评价[2]。
两组大鼠缺血3 h 后，拔出线栓，再灌注后大鼠存活48 h。
1.2 脑温、肛温的测定 栓塞后2.5 h，大鼠麻醉后，固定于立体定向仪上，用点式针状测温仪，分别持续监测再灌注前和再灌注后1 h 的梗死区皮质和纹状体温度的变化。
