常用实验动物模型模板

二十种常见实验动物模型一、缺铁性贫血动物模型缺铁性贫血(irondeficiencyanemia,IDA)是体内用来合成血红蛋白(HGB)的贮存铁缺乏，HGB合成减少而导致的小细胞低色素性贫血，主要发生于以下情况：(1)铁需求增加而摄入不足，见于饮食中缺铁的婴幼儿、青少年、孕妇和哺乳期妇女。

(2)铁吸收不良，见于胃酸缺乏、小肠粘膜病变、肠道功能紊乱、胃空肠吻合术后以及服用抗酸和H2受体及抗剂等药物等情况。

(3)铁丢失过多，见于反复多次小量失血，如钩虫病、月经量过多等。

IDA是一种多发性疾病，据报道，在多数发展中国家，约2/3的儿童和育龄妇女缺铁，其中1/3患IDA，因此，研究IDA的预防和治疗具有重要的意义。

在这些研究中，缺铁性贫血的动物模型(AnimalmodelofIDA)，又是实施研究的基础工具。

常见的IDA动物模型的构建技术如下：实验动物：一般选用SD大鼠，4周龄，雌雄不拘，体重65g左右，HGB$130g/L。

建模方法：低铁饲料加多次少量放血法。

低铁饲料一般参照AOAC 配方配制，采用EDTA浸泡处理以去除饲料中的铁，饲料中的含铁量是诱导SD大鼠形成缺铁性贫血模型的关键，现有研究表明，饲喂含铁量＜15.63mg/Kg的饲料35天，SD大鼠出现典型IDA表现，而饲喂含铁40.30mg/Kg的饲料SD大鼠出现缺铁，但并不表现贫血症状。

建模时一般采用去离子水作为动物饮水，以排除饮水中铁离子的影响。

少量多次放血主要用于模拟反复多次小量失血导致的铁丢失，还可以加速贫血的形成。

放血一般在低铁饲料饲喂2周后进行，常用尾静脉放血法，1〜1.5ml/次，2次/周。

模型指标：(1)HGBW100g/L；(2)血象：红细胞体积较正常红细胞偏小，大小不一，中心淡染区扩大，MCV减小、MCHC降低；(3)血清铁(SI)降低，常小于10umol/L,血清总铁结合力(TIBC)增咼，常大于60umol/L。

需要指出的是，以上模型不能用于铁吸收不良相关IDA的防治研究。

一、常用肿瘤模型实验动物介绍：1、BALB/c 小鼠(近交系)特性与用途：◇其发病率低，但对致癌因子敏感。

乳腺肿瘤发生率约为10﹪~20﹪。

◇有一定数量的卵巢、肾上腺和肺部肿瘤的发生，对放射线极度敏感。

易患慢性肺炎。

◇多数个体于6月龄以后出现免疫球蛋白过多症。

主要是IgG1和IgA量的增加。

◇免疫球蛋白的绝对量依饲养条件而异。

腹腔注射矿物油后可引起浆细胞瘤。

◇广泛地应用于肿瘤学、生理学、免疫学、核医学研究，以及单克隆抗体研究和生产等。

2、DBA/2 小鼠(近交系)特征与用途：◇免疫：在普通饲养条件下三月龄鼠血清免疫球蛋白量为1000ug/ml左右，仅相当C57BL/6，C3H/He和BALB/c的1/2。

其中，IgM值较高，而IgG为低值。

在IgG各亚类中，IgG1最高，IgG2最低。

缺乏补体C5。

对鼠斑疹伤寒补体C5较敏感。

◇肿瘤：对DBA/1 的大部分移植瘤有抗性。

雌鼠白血病发病率为34％，雄鼠为18％，经产母鼠乳腺癌发生率为50- 60％，雌雄鼠中均有淋巴瘤生长。

◇微生物和寄生虫：对疟原虫、利什曼原虫有抗力。

对猫后睾吸虫、曼氏血吸虫较敏感。

对白色念球菌有抗力，由于具有Hc0等位基因，对新型隐球菌有抗力。

◇生理：红细胞多。

血压较低。

维生素Ｋ缺乏，氯仿和氧化乙烯引起的死亡率高。

肾上腺脂质贮存少，心脏有钙盐沉着。

具低嗜酒性及吗啡嗜好。

对百日咳组织胺易感因子敏感。

◇病理：听源性癫痫发作率在35日龄时为100％，55日龄时为5％，约一半动物肝可出现由巨噬细胞构成的蜡样质的肉芽肿。

3、ICR 小鼠(封闭群)特征与用途：◇适应性强，体格健壮，繁殖力强，生长速度快，实验重复性较好。

◇雌鼠自发性畸胎瘤和管状腺瘤发病率为0%~1%，用氨基甲酸乙酯诱发时，11~16天胚胎期畸胎瘤和管状腺瘤发病率为5.9%，离乳个体管状腺瘤和囊瘤发生率为30%,孕鼠为3%。

◇是国际通用的封闭群小鼠(封闭群又称远交群，是指以非近亲交配方式进行繁殖生产的一个实验动物种群，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4代以上)◇是进行免疫药物筛选，复制病理模型较常用的实验动物。

第章实验动物模型第一节实验动物选择的原则第二节生物科学研究中的动物模型实验动物模型选择什么样的实验动物作实验是生物医学研究工作中一个重要环节，不能随便选用一种实验动物来作科学研究，因为在不适当的动物身上进行实验，常可导致实验结果的不可靠，甚至使整个实验徒劳无功，直接关系到科学研究的成败和质量。

事实上，每一项科学实验都有其最适宜的实验动物。

第一节实验动物选择的原则•科学研究工作中实验动物的选择，首先应根据实验目的和要求来选择，其次再参考是否容易获得、是否经济，是否容易饲养和管理等情况。

•在实验动物选择上必须注意三点，即实验动物的种类（Species）；品种（Breed）或品系（Strain）；质量和实验动物的健康状态。

尽量选择与研究对象的机能、代谢、结构及疾病特点相似的实验动物；•生物医学研究的根本目的是要解决人类疾病的预防和治疗问题。

因此，在选择实验动物时应优先考虑的问题是动物的种系发展阶段。

在可能的条件下，尽量选择那些机能、代谢、结构和人类相似的实验动物作实验。

一般来说，实验动物愈高等，进化愈高，其机能、代谢、结构愈复杂，反应就愈接近人类，猴、狒狒、猩猩、长臂猿等灵长类动物是最近似于人类的理想动物。

第二节生物科学研究中的动物模型一、动物模型的意义和优越性•生物科学研究的进展常常依赖于使用动物模型作为实验假说和临床假说二者的试验基础。

人类各种疾病的发生发展是十分复杂的，要深入探讨其疾病的发病机理及疗效机理不能也不应该在病人身上进行。

可以通过对动物各种疾病和生命现象的研究，进而推用到人类，探索人类生命的奥秘，以控制人类的疾病的衰老，延长人类的寿命。

人类疾病的动物模型•人类疾病的动物模型（Animal Model of Human Diseases）：是生物医学科学研究中所建立的具有人类疾病模似性表现的动物实验对象和材料。

•使用动物模型是现代生物医学研究中的一个极为重要的实验方法和手段，有助于更方便、更有效地认识人类疾病的发生、发展规律和研究防治措施。

动物实验模型是一种常用的生物医学研究方法，通过模拟人体内的生理环境，对药物、医疗器械、生物材料等产品的安全性、有效性进行评估。

以下是一个动物实验模型的范文，供您参考：
实验名称：药物安全性动物实验模型
实验目的：评估某新药在动物体内的安全性、耐受性和药效
实验对象：大鼠
实验方法：将大鼠随机分为实验组和对照组，给实验组大鼠连续注射新药，观察其生理指标的变化，并记录不良反应。

同时，对大鼠进行药效测试，观察药物对疾病的疗效。

实验流程：
1. 准备工作：准备实验器材、药物、动物饲料等，确保实验条件符合要求。

2. 分组与给药：将大鼠随机分为实验组和对照组，并按照实验方案给实验组大鼠注射新药。

3. 观察与记录：每天观察大鼠的生理指标变化，如体重、心率、血压、呼吸等，并记录不良反应。

同时，对大鼠进行药效测试，观察新药对疾病的疗效。

4. 数据整理与分析：将观察和记录的数据进行整理和分析，评估新药的安全性和有效性。

注意事项：
1. 确保实验环境的卫生和安静，防止动物受到惊吓。

2. 定期监测动物的生理指标，确保实验数据的准确性。

3. 确保动物的生活条件良好，避免影响实验结果。

实验结果：通过实验数据的分析，发现新药在动物体内的安全性较好，未出现明显的不良反应。

同时，新药对疾病的疗效也得到了验证。

总结：本实验成功地模拟了人体内的生理环境，对某新药的安全性和有效性进行了评估。

实验结果为新药的进一步研究和应用提供了有力支持。

在今后的研究中，可以进一步完善实验方案，提高实验结果的准确性和可靠性。

一. 背景：本次动物实验相关疾病介绍、国内外相关治疗及研究的现状及结果（含临床、基础）、相关引文摘要等。

二、实验所用器械简介：三、实验目的1、使用猪或其他适宜动物为实验模型, 按照临床要求对产品进行模拟使用，对* *器械的* *性能、* *效应进行测试。

2、通过动物实验取得数据和经验, 以便为产品的临床使用撰写详尽的使用指南。

3、确定* *器械置入猪后的最长可回收天数, 以便为临床使用的最长可回收时间提供参考。

4、研究* *器械置入* *天后的可回收性, 以回答以往实验中未能解决的* *器械在置入* * 天后是否可取出的问题。

四、实验模型和材料1、实验模型(1). 动物模型：猪, 体重: 25～35KG。

(2). 体外模型: 拟采用透明塑料软管作成的20mm、25mm两种直径的下腔静脉模型。

2、材料：（1）* *器械采用XX公司研发生产的器械。

（2）其他手术配套器械采用临床通用器械。

3. 过程要求：本实验开始前必须取得动物道德委员会的许可。

（注：国外有此要求，国内仅少数几家大医院有动物伦理委员会）五. 实验设计动物数量及分组方法：实验动物共22头，在置入器械后分为A和B两组. A组动物采用介入方法取出滤器，B组动物采用外科方法经腹切开方法取出滤器. 下腔静脉滤器置入后饲养观察时间为7、10、12、14、16、20、30、60和90天，具体分组方法见下表。

分组（头）时间（天）A B7 1 110 1 112 3 114 3 116 1 120 3 130 0 260 0 190 0 1六、实验方法：1、随机选取实验动物以1:1的比例进行* *实验，并记录* * ，总结出的操作要求。

7～20天实验用以观察器械置入后的可回收期，30、60、90天实验用以观察器械置入后的长期通畅情况。

2、所有动物器械取出前应造影复查，并与器械置入时的资料进行对比，判断器械置入后有无移位、穿孔等异常情况。

3、A组动物均采用方法取出器械，器械回收取出时均应按无困难、轻度困难、困难、无法取出四个级别进行回收取出难度的评价。