酪氨酸酶抑制剂筛选
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postmitotic differentiating cells.J Invest Dermatol,2000,114(3): 413-420.5Pellegrini G,Dellambra E,G olisano O,et al.p63identifies ker2 atinocyte stem cells.Proc Natl Acad Sci USA,2001,98(6):3156-3161.6Christensen R,Jensen UB,Jensen TG.Cutaneous gene therapy2an update.Histochem Cell Biol,2001,115(1):73-82.7Kuhn U,Terunuma A,Pfutzner W,et al.In vivo assessment of gene delivery to keratinocytes by lentiviral vectors.J Virol,2002, 76(3):1496-1504.8Ghazizadeh S,Taichman LB.Multiple classes of stem cells in cuta2 neous epithelium:a lineage analysis of adult mouse skin.EMBO J, 2001,20(6):1215-1222.9Morris RJ.K eratinocyte stem cells:targets for cutaneous carcino2 gens.J Clin Invest,2000,106(1):3-8.10van Ruissen F,de Jongh G J,van Erp PE,et al.Cell kinetic charac2 terization of cultured human keratinocytes from normal and psoriatic individuals.J Cell Physiol,1996,168(3):684-694.11Bata2Csorgo Z,Hammerberg C,Voorhees JJ,et al.K inetics and regulation of human keratinocyte stem cell growth in short2term pri2mary ex vivo culture.Cooperative growth factors from psoriatic le2 sional T lymphocytes stimulate proliferation among psoriatic unin2 volved,but not normal,stem keratinocytes.J Clin Invest,1995,95(1):317-327.12Finch PW,Murphy F,Cardinale I,et al.Altered expression of ker2 atinocyte growth factor and its receptor in psoriasis.Am J Pathol, 1997,151(6):1619-1628.13Haase I,Hobbs RM,Romero MR,et al.A role for mitogen2activat2 ed protein kinase activation by integrins in the pathogenesis of psoria2 sis.J Clin Invest,2001,108(4):527-536.14Gniadecki R.Effects of1,25-dihydroxyvitamin D3and its20-epi analogues(MC1288,MC1301,KH1060),on clonal keratinocyte growth:evidence for differentiation of keratinocyte stem cells and analysis of the modulatory effects of cytokines.Br J Pharmacol, 1997,120(6):1119-1127.15Javier AF,Bata2Csorgo Z,Ellis CN,et al.Rapamycin(sirolimus) inhibits proliferating cell nuclear antigen expression and blocks cell cycle in the G1phase in human keratinocyte stem cells.J Clin Invest, 1997,99(9):2094-2099.(收稿日期:2002-09-23)・综述・酪氨酸酶抑制剂及对黑素生物合成的影响闫军陈声利李春阳摘要 酪氨酸酶是皮肤黑素生物合成的关键酶、限速酶,可以酪氨酸酶为靶点筛选增白美容的药物,用于治疗色素沉着性皮肤病。
遗传学研究中的抑制剂筛选和评价抑制剂是指一类能抑制生物体内特定酶或蛋白质活性的化合物,在药物研发和基因治疗等领域具有广泛的应用。
遗传学研究中,抑制剂的使用可以帮助科学家深入探索不同基因的作用机制。
这一篇文章将着重讨论如何从抑制剂中筛选出合适的化合物,并对其效果进行评价。
一、抑制剂筛选抑制剂的筛选一般涉及以下几个方面:1. 靶点的确定首先需要确定研究的靶点。
一般而言,基因组学研究中可以通过CRISPR/Cas9技术沉默不同的基因,然后观察其对细胞或生物体影响的变化来确定靶点。
抑制剂的使用可以进一步验证这些基因的作用机制。
2. 抑制剂库的构建确定了靶点后,接下来需要构建抑制剂库,即收集可能有抑制作用的化合物。
这个过程一般有两种方法,一是通过现有的文献数据或其他资源进行预测,二是进行高通量筛选,即在大量化合物中对其作用进行快速筛选,沉淀出具有潜力的抑制剂。
无论采用哪种方法,抑制剂库的建立对于后期的抑制剂评价具有非常重要的意义。
3. 抑制剂的筛选与鉴定将抑制剂添加到细胞或生物体中,通过测定抑制剂对靶点的作用程度,确定哪些抑制剂具有潜力。
鉴定合适的抑制剂可以使用多种方法,如荧光素酶法、荧光标记探针等。
二、抑制剂效果评价抑制剂的效果评价主要关注三个方面:1. 抑制剂的效力使用荧光素酶法、RNA测序等技术,来测试抑制剂的效力。
2. 抑制剂的选择性选择性指抑制剂对其他酶或蛋白质的干扰程度。
一般而言,选择性越高,抑制剂对靶点的效果就越显著。
3. 抑制剂的毒性除了考虑抑制剂对靶点的作用,还需要考虑其对整个细胞的影响。
抑制剂毒性的测定可以通过细胞存活率、细胞缺陷等多种方法来进行评估。
总之,在遗传学研究中,抑制剂的作用机制非常复杂。
只有在确定了靶点的基础上,对抑制剂进行快速筛选和评价,才能为研究提供更可靠的数据支撑。
随着技术的不断发展,人们在抑制剂筛选和评价方面也会有更多的进步。
对香豆酸、阿魏酸和低聚糖阿魏酸酯对酪氨酸酶的抑制效果易晶晶;欧仕益;董颖妍;陈秋明【摘要】通过测定酶的稳态活力、迟滞时间和动力学参数,研究对香豆酸、阿魏酸及低聚糖阿魏酸酯对酪氨酸酶的抑制效果。
结果表明,3种物质对酪氨酸酶单酚酶活性均有抑制作用,其中对香豆酸的抑制作用最强,其次为低聚糖阿魏酸酯和阿魏酸。
对香豆酸、低聚糖阿魏酸酯和阿魏酸对单酚酶的IC 50值分别为0.75,3.20,9.30 mmol/L。
对香豆酸和阿魏酸抑制二酚酶活性,IC 50值分别为4.3,12.7 mmol/L;但低聚糖阿魏酸酯对二酚酶活力没有影响。
对香豆酸能明显延长单酚酶反应的迟滞时间,阿魏酸影响很小,而低聚糖阿魏酸酯则缩短迟滞时间。
动力学研究结果显示,阿魏酸和低聚糖阿魏酸酯对单酚酶的抑制作用表现为混合性抑制,而对香豆酸为竞争性抑制。
%This study investigated the inhibitory effects of p-coumaric acid,ferulic acid and feruloylated oligosaccharides on catalytic activi-ties of tyrosinase by analysising tyrosinase steady state activity and enzyme kinetics.The results showed that the three compounds were found to efficiently inhibit tyrosinase monophenolase activities.The p-Coumaric acid was the strongest inhibitor followed by feruloylated oligosaccharides and ferulic acid,with the IC 50 value of 0.75,3.20, 9.30 mmol/Lrespectively.Moreover,p-coumaric acid and ferulic acid were found to inhibit the activities of diphenolase with IC 50 value of 4.3,12.7 mmol/L respectively;however,feruloylated oligosac-charides showed no inhibitory effect on diphenolase activity.p-Cou-maric acid increased the lag time of monophenolase activity,but fer-ulic acid showed little effect;while feruloylated oligosaccharides re-duced the lag time of monophenolaseactivity.Enzyme kinetics analy-sis indicated that p-coumaric acid is a competitive inhibitor of the monophenolase,while ferulic acid and feruloylated oligosaccharides showed a mixed inhibitory effect.【期刊名称】《食品与机械》【年(卷),期】2016(032)011【总页数】5页(P9-12,63)【关键词】对香豆酸;阿魏酸;低聚糖阿魏酸酯;酪氨酸酶【作者】易晶晶;欧仕益;董颖妍;陈秋明【作者单位】暨南大学食品科学与工程系,广东广州 510632;暨南大学食品科学与工程系,广东广州 510632;暨南大学食品科学与工程系,广东广州 510632;暨南大学食品科学与工程系,广东广州 510632【正文语种】中文酪氨酸酶(EC 1.14.18.1)是一种多酚氧化酶,其活性中心有两个铜离子,可催化单酚类物质(单酚酶活性)和二酚类物质氧化为醌类(二酚酶活性)[1],在黑色素形成的反应前期起着非常重要的作用,是人体黑色素合成的限速酶。
高校生物化学专业酶抑制剂筛选实验方案为了研究酶抑制剂在生物化学领域的应用,本实验旨在筛选具有抑制特定酶活性的化合物,以便深入了解其生物活性和可能的药理效应。
以下是本实验的详细方案:实验材料:1. 目标酶:选择具有明确酶活性的酶作为目标,如乙酰胆碱酯酶(AChE)或蛋白酪氨酸激酶(PTK)等。
2. 酶底物:适合目标酶反应的底物,如乙酰胆碱对于AChE活性的检测。
3. 酶抑制剂样本:准备一系列有机化合物作为潜在的酶抑制剂,如天然产物或化学合成物。
4. 阳性对照组:包含已知具有抑制目标酶活性的化合物作为阳性对照,用于验证实验方法和设定阈值。
5. 阴性对照组:包含不具有抑制目标酶活性的化合物或溶剂,用于验证实验方法和排除假阳性结果。
6. 试剂:如缓冲液、底物浓度递增液、酶抑制剂稀释液等。
实验步骤:1. 预处理:根据实验需要,将目标酶、底物、酶抑制剂样本以及阳性、阴性对照组等准备好。
2. 负对照组实验:a. 在微量试管中加入适量缓冲液作为空白对照组,并记录酶活性测定结果。
b. 加入适量目标酶,使其达到最佳反应条件,并记录酶活性测定结果。
3. 阳性对照组实验:a. 在微量试管中加入适量缓冲液、阳性对照组样本和目标酶,使其达到最佳反应条件。
b. 加入适量底物,启动酶反应,并根据实验方法测定酶活性,作为阳性对照组结果。
4. 酶抑制剂筛选:a. 在微量试管中加入适量缓冲液、酶抑制剂样本和目标酶,使其达到最佳反应条件。
b. 加入适量底物,启动酶反应,并根据实验方法测定酶活性。
c. 比较各个酶抑制剂样本组的酶活性与负对照组的差异,确定是否具有抑制目标酶活性的效果。
5. 数据分析:a. 将实验结果转化为定量数据,如化合物浓度与酶活性的相关性。
b. 统计和分析每个酶抑制剂样本与目标酶的抑制作用,确定有效的化合物。
实验注意事项:1. 严格遵循实验操作规程,使用个人防护装备,如实验手套和防护眼镜等。
2. 每个实验步骤都要准确记录实验条件、操作过程和结果,以备后续分析。
表皮生长因子受体酪氨酸激酶抑制剂的研究进展一、本文概述表皮生长因子受体(EGFR)酪氨酸激酶抑制剂(TKIs)是一类针对EGFR信号通路的关键药物,广泛应用于非小细胞肺癌、结直肠癌、头颈癌等多种癌症的治疗。
本文旨在综述近年来EGFR TKIs的研究进展,包括其作用机制、药物研发、临床应用以及面临的挑战等方面。
通过深入了解EGFR TKIs的研究现状和发展趋势,有望为癌症治疗提供新的思路和方法,进一步改善患者的生活质量和预后。
本文将从EGFR TKIs的作用机制出发,阐述其如何通过抑制EGFR 的酪氨酸激酶活性来阻断癌细胞的增殖和转移。
接着,我们将回顾EGFR TKIs的药物研发历程,介绍目前市场上主流的EGFR TKIs药物及其特点。
在此基础上,我们将重点关注EGFR TKIs在临床试验中的应用情况,包括其疗效、安全性以及耐药性等问题。
我们将探讨EGFR TKIs面临的挑战和未来发展方向,包括如何克服耐药性、提高治疗效果以及拓展新的适应症等。
通过本文的综述,我们希望能够为相关领域的研究者和临床医生提供有价值的参考信息,推动EGFR TKIs在癌症治疗中的进一步应用和发展。
二、EGFR-TK抑制剂的分类与机制表皮生长因子受体酪氨酸激酶抑制剂(EGFR-TK抑制剂)是近年来癌症治疗领域的重要突破,其通过抑制表皮生长因子受体(EGFR)的酪氨酸激酶活性,从而阻断细胞的生长、增殖和转移过程。
根据药物的作用机制和化学结构,EGFR-TK抑制剂主要分为两大类:可逆性抑制剂和不可逆性抑制剂。
可逆性抑制剂,如吉非替尼和厄洛替尼,能够与EGFR的ATP结合位点形成可逆性结合,从而竞争性地抑制酪氨酸激酶的活性。
这类药物对于EGFR敏感突变的非小细胞肺癌具有较好的疗效,但在长期治疗过程中,患者往往会出现耐药现象。
不可逆性抑制剂,如阿法替尼和奥希替尼,能够与EGFR的ATP 结合位点形成共价键,导致EGFR的永久性失活。
酪氨酸酶活性抑制实验方法一、试剂:酪氨酸酶、酪氨酸、磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、阳性对照(熊果苷粉末)、样品、去离子水二、试剂配制:1、磷酸盐缓冲溶液(PH=6.8):先分别配制0.2M的磷酸二氢钠和0.2M的磷酸氢二钠。
0.2M磷酸二氢钠:称取 71.6g Na2HPO4-12H2O,溶于 1000ml 去离子水;0.2M磷酸氢二钠:称取 31.2g NaH2PO4-2H2O,溶于1000ml 去离子水;取51ML磷酸二氢钠+49ML磷酸氢二钠即得0.2M、PH=6.8的磷酸缓冲液。
2、L-酪氨酸溶液:称取L-酪氨酸25.6 g,用磷酸缓冲液定容于50mL容量瓶中,即得L-酪氨酸溶液。
3、酪氨酸酶溶液:将马铃薯洗净,于4℃预冷4h左右。
去皮,切成约1.0 cm3丁状,于-20℃冷冻过夜。
称重,按1:1(W:V )的比例加入4℃预冷的磷酸钠缓冲液,用组织捣碎机制成匀浆,3层纱布过滤,滤液于4000 r/min离心10min,上清液即为所得的酪氨酸酶粗酶液,4℃保存,2h内用完。
4、受试液的配制:将原先所配5mg/ml的溶液用甲醇稀释到1mg/ml.。
5、阳性对照:取熊果苷粉末0.01g,溶于10ml的甲醇溶液,即得1mg/ml的对照品溶液。
三、实验方法:依下表所示向试管中依次加入磷酸盐缓冲溶液、样品溶液、酪氨酸溶液,于35℃水浴10分钟。
然后加入酪氨酸酶液,混匀,再在35 ℃下孵育30min,迅速转移至比色皿中,在475nm处测定吸光值。
受试组用空白对照组1调零,阴性对照组用空白对照组2调零,阳性对照组用空白对照组3调零。
受试组吸光值为A1,阴性对照组吸光值为A2,阳性对照组吸光值为A3。
抑制率=1-[(A1-A2)/(A3-A2)]×100%=(A3-A1)/(A3-A2)×100% 注:受试液组共四种样品。