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浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶，直接在采样点装满水，加10-15ml的鲁哥试剂，摇匀。
鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中，待其完全溶解后，将4g碘充分摇动，待其完全溶解后，定容至100ml，即配成鲁哥氏液。
二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。
三、浮游动物定量
表层取水样10L（中层和底层取20L水样）过25号浮游生物网，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，4%添加的福尔马林溶液。
福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1：9的比例混合配制而成。
四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。
水质浮游植物的测定 0.1 ml计数框-显微镜计数法1 适用范围本标准规定了测定水中浮游植物的0.1 ml计数框-显微镜计数法。
本标准适用于地表水中浮游植物的密度测定。
样品浓缩50倍时，对角线方式计数方法检出限为9.2×103cells/L；行格方式计数方法检出限为3.0×103 cells/L；全片方式计数方法检出限为9.2×102 cells/L；随机视野方式计数的方法检出限与观察的视野数、显微镜视野面积有关，按附录A计算。
2 规范性引用文件本标准引用了下列文件或其中的条款。
凡是注明日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本标准。
凡是未注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。
GB/T 14581水质湖泊和水库采样技术指导HJ/T 91地表水和污水监测技术规范HJ 494水质采样技术指导3 术语和定义下列术语和定义适用于本标准。
3.1浮游植物 phytoplankton在水中营浮游生活的微小藻类植物，通常浮游植物就是浮游藻类，包括原核的蓝藻和其它各类真核藻类。
3.2显微镜计数视野 microscope counting field显微镜视野中限定一定面积的区域，用于定量计数浮游植物。
3.3检出限 detection limit单次计数过程中，发现的概率不低于99%时最低的浮游植物密度。
4 方法原理在显微镜下，利用0.1 ml计数框对样品中的浮游植物进行人工分类和计数，计算单位体积样品中各种类浮游植物的细胞数量。
5 试剂和材料除非另有说明，分析时均使用符合国家标准的分析纯试剂，实验用水为新制备的去离子水或蒸馏水。
5.1 碘（I2）。
5.2 碘化钾（KI）。
5.3 甲醛溶液：w(HCHO)＝37%～40%。
5.4 丙三醇（HOCH2CHOHCH2OH）。
5.5 鲁哥氏碘液：称取60 g碘化钾（5.2），溶于100 ml水中，再加入40 g碘（5.1），充分搅拌使其完全溶解，加水定容至1000 ml，转移至棕色磨口玻璃瓶，室温避光保存。
浮游菌检测标准1 取样前准备工作1.1 依据检测区域的取样点数，按照《培养基配制、灭菌标准操作程序》制备适量的营养琼脂培养基。
1.2 在超净工作台内，以无菌操作法将配制好的营养琼脂培养基以每皿约15ml的装量分装，待培养基凝固后移出洁净区。
1.3 将制备的营养琼脂平皿倒置于隔水式恒温水浴培养箱内于30～35℃培养48小时。
取出逐个检查，确认无菌落数后即可使用。
1.4 采样：将上述制备好的营养琼脂平皿交与QA人员取样。
2 仪器、设备和培养基2.1 所用的仪器、设备和培养基2.1.2 浮游菌采样器2.1.3 培养皿（φ90mm×15mm）2.1.4 培养基（营养琼脂培养基）2.1.5 恒温培养箱2.2 仪器、设备、培养基的要求2.2.1 浮游菌采样器2.2.1.1 浮游菌采样器必须要有流量计和定时器。
2.2.1.2 应严格按仪器说明书的要求进行操作。
2.2.1.3 采样器必须按仪器的检定周期，定期对仪器作检定，以保证测试数据的可靠性，检验项目有：定时器，转盘转速，流量计。
2.2.1.4 每次测试前应先接通电源，启动真空抽气泵，然后调节流量计和定时器。
2.2.1.5 空气采样量根据需要选定，已知采样器的流量（L/min）,设定采样时间（min）两者相乘即得采样量（L）。
2.2.1.6 采样口必须用便于消毒及化学性能稳定的材料制造，采样管严禁渗漏，内壁应光滑，采样管的长度应根据测定点的高度定，尽量减少弯曲。
3 测试方法3.1 测试用仪器、培养皿表面必须严格消毒。
3.1.1 采样器进入被测房间前先用消毒剂灭菌。
3.1.2 用消毒剂擦净培养皿的外表面。
3.1.3 采样前，先用消毒剂消毒采样器的顶盘、转盘以及罩子的内外面，采样结束再用消毒剂轻轻喷射罩子的内壁和转盘。
3.1.4 采样口及采样管使用前必须高温灭菌，如用消毒剂对采样管的外壁、内壁进行消毒，应将管中的残留液倒掉并晾干。
3.1.5 采样者应穿戴与被测洁净区域相应的工作服，在转盘上放入或调换培养皿前，双手用消毒剂消毒。
GB/T14518浮游植物的采集
不同水体，不同种类的藻类在个体上有很大差异，仅仅用数量就很难评价。
这就要求，浮游植物的定量工作，必须以测算生物量为日标。
选择采样点的原则是，采样点在平面上的分布要有代表性。
根据调查的目的而定。
般要求湖心、库心、江心必须采样，有条件时采样点可适当多设一些，如大的湖湾、库湾、河流的上、中、下游水体的沿岸带、浅水区等也要设点采集。
凡水深不超过2米者，可于采样点水下0.5m处采水，
水深2~10米以内，应距底0.5米处另采一个样，
水深超过10米时。
应于中层增采一个水样。
1.池塘：样点可设在距岸边1m处。
水深小于2m时采一中
层水样。
若水深大于2m时，最好采上、中、下层水样。
亚表层：水下20cm左右。
中层：水体中间部分。
下层：离底20cm左右
2.水库及河流：样点可设在上、中、下游。
上游：设十个点（亚表层或中层）
中游：水在2-3米深时设一个点，采2个样（上中层和中下层)
下游：设2-3个样点。
中心点3个样（上、中、下层），
两测点各一个样（中层）。
sl 733-2016 内陆水域浮游植物监测技术规程概述说明1. 引言1.1 概述本文旨在介绍中国国家标准SL 733-2016《内陆水域浮游植物监测技术规程》的概况和说明。
该技术规程旨在指导和标准化内陆水域浮游植物监测工作，确保获取数据的准确性和可比性。
通过对内陆水域浮游植物的监测，可以全面了解水体生态系统的健康状况、水质污染程度以及环境变化对水生生物的影响，为环境保护和生态修复提供科学依据。
1.2 文章结构本文主要分为以下部分进行阐述：引言、正文、浮游植物监测技术规程、监测要点一、监测要点二、监测要点三以及结论。
首先，我们将简要介绍本文的背景和目的，然后逐步详细说明相关内容。
读者可根据自身需求选择所需具体内容进行阅读。
1.3 目的本文的目的是向读者传达SL 733-2016内陆水域浮游植物监测技术规程的重要性和应用价值，并提供一个整体框架，并深入介绍其中的关键要点。
通过阅读本文，读者将了解到该技术规程的制定背景、内容和应用范围，以及为什么监测内陆水域浮游植物对于环境保护至关重要。
此外，读者还能够掌握该技术规程中具体的监测要点和方法，从而在实际工作中能够准确可靠地进行内陆水域浮游植物监测工作。
通过本文的阐述，我们希望引起公众和相关从业人员对内陆水域环境保护的关注，并提高其对于SL 733-2016技术规程的认识和理解。
最终，我们期待通过更加科学有效的监测方法，提高内陆水域生态环境管理水平，为建设美丽中国做出努力和贡献。
2. 正文在内陆水域监测中，浮游植物的存在和分布是非常重要的指标之一。
浮游植物主要由微小的藻类组成，包括硅藻、绿藻、蓝藻等。
它们在水体中广泛分布，并且对水质、生态系统和生物多样性具有重要影响。
浮游植物监测技术规程SL 733-2016于2016年发布，并被广泛应用于国内内陆水域的监测工作中。
该技术规程旨在提供一套标准方法和准则，以确保监测结果的可靠性和可比性。
根据该技术规程，监测过程首先需要选择合适的监测点位。
水体浮游植物分析规范
参考淡水生物资源调查技术规范DB43/T 432-2009
➢水层设置
水深小于3m时，只在中层采样，混合均匀水体，可以只采表层（0.5m）水样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下除特殊需要外一般不采样，对于深水湖泊，取样的水层可以将取样间隔加大，如0m,10m,20m,50m, 100m。
➢采样
定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。
泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。
分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。
大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。
➢固定
浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。
如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。
现行的一些规律性的方法为：取水样，500ml,加入5ml鲁格，虹吸到30-50ml,加入1ml甲醛。
➢水样的沉淀和浓缩
固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置24h。
充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。
虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。
吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25（或30～40）mL，放入30（或50）mL的定量样品瓶中。
用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30（或50）mL。
如样品的水量超过30（或50）mL，可静置24 h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。
浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见表3，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。
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2 ➢ 计数
● 计数框行格法
计数前需先核准浓缩沉淀后定量瓶中水样的实际体积，可加纯水使其成30mL 、50mL 、100mL 等整量。
然后将定量样品充分摇匀，迅速吸出0.1mL 置于0.1mL 计数框内（面积20mm ×20mm ）。
盖上盖玻片后，在高倍镜下选择3行～5行逐行计数，数量少时可全片计数。
1L 水样中的浮游植物个数（密度）可用下列公式计算：
01n 10
N V N =P N V ⋅⋅………………………………………………（1） 式中:
N ——1L 水样中浮游生物的数量，个/L ；
N 0——计数框总格数；
N 1——计数过的方格数；
V 1——1L 水样经浓缩后的体积，mL ；
V 0——计数框容积，mL ；
P n ——计数的浮游植物个数。
● 计数框整体计数法
对计数框内所有物种进行鉴定，然后进行计算。
➢ 结果整理
分析浮游植物物种组成，分类单元确定到属或以下，给出结果。
