2.γ-氨基丁酸(GABA)的分布及测定方法
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高效液相色谱法测定莜麦米酒中γ-氨基丁酸刘文勃;易好诚;李苏红;徐杰;王俊伟;张雷【摘要】建立紫外—高效液相色谱测定莜麦米酒中的γ-氨基丁酸(γ-Aminobutyric acid,GABA)含量的分析方法.利用碱性条件下,GABA可与邻苯二甲醛(OPA)发生衍生化反应,生成具有较强紫外吸收的衍生物.采用紫外—高效液相色谱仪检测,色谱条件:Eclipse XDB-C18分析柱(5μm,4.6×150 mm),以50 mmol/L 的乙酸钠(pH6.8)—甲醇—四氢呋喃(THF,A相,82∶ 17∶1;B相,22∶ 77∶1,V/V)为流动相进行梯度洗脱,可检测到GABA在0.04~0.5 g/L范围内与GABA峰面积的线性关系良好R2=0.9985,样品衍生时间1 min最佳,平均回收率为99.5%,精密度相对标准偏差(RSD)为1.6%,重复性(RSD)为0.66%,最低检出限为0.0254 g/L.方法简单快捷、重复性好、灵敏度高,可用于莜麦、莜麦发酵酒等中GABA含量测定.【期刊名称】《粮油食品科技》【年(卷),期】2013(021)001【总页数】4页(P67-70)【关键词】莜麦米酒;γ-氨基丁酸;紫外检测;高效液相色谱【作者】刘文勃;易好诚;李苏红;徐杰;王俊伟;张雷【作者单位】沈阳师范大学粮食学院,辽宁沈阳 110034;沈阳师范大学粮食学院,辽宁沈阳 110034;沈阳师范大学粮食学院,辽宁沈阳 110034;沈阳师范大学粮食学院,辽宁沈阳 110034;沈阳师范大学粮食学院,辽宁沈阳 110034;沈阳师范大学粮食学院,辽宁沈阳 110034【正文语种】中文【中图分类】TS207.3γ-氨基丁酸(γ-Aminobutyric acid,简称GABA)是一种非蛋白质氨基酸,为哺乳动物中枢神经系统内重要的氨基酸类神经递质[1],分布非常广泛,在动物、植物、微生物中均有GABA存在。
二、γ-氨基丁酸的高效液相色谱测定法本方法适用于保健食品中γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid)的测定。
本方法γ-氨基丁酸的检出限为10ng。
1.方法提要γ-氨基丁酸用异硫氰酸苯酯柱前衍生,衍生物采用氨基酸分析柱分离,二元流动相梯度洗脱,248nm波长下紫外检测器检测,以保留时间定性,以峰面积外标法定量。
2.仪器(1)高效液相色谱仪,配紫外检测器。
(2)旋涡混合器3.试剂本方法除非另有说明,所有试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。
(1)乙腈:色谱纯。
(2)异硫氰酸苯酯乙腈溶液:吸取0.5mL异硫氰酸苯酯,加入40mL乙腈溶解。
(3)盐酸溶液(0.1mol/L):取分析纯浓盐酸8.3mL,加水稀释至1L。
(4)三乙胺-乙腈溶液:15mL三乙胺与85mL乙腈混合而成。
(5)γ-氨基丁酸标准品:纯度99.9%,Sigma公司。
(6)γ-氨基丁酸标准溶液:精确称取γ-氨基丁酸10mg,置于10mL容量瓶中,加0.1mol/L 盐酸溶液溶解并稀释到刻度,摇匀,得浓度为1mg/mL的标准储备溶液。
将此标准储备液用0.1mol/L盐酸溶液稀释成浓度分别为10.0μg/mL、20.0μg/mL、40.0μg/mL、80.0μg/mL的标准溶液系列。
(7)醋酸钠溶液:0.05mol/L,用作流动相A。
(8)乙腈-水溶液:乙腈-水(80+20),用作流动相B。
(9)正己烷。
4.测定步骤(1)供试样品溶液的制备1)提取:称取适量样品(相当于γ-氨基丁酸4mg,精密至0.001g),置于100mL三角烧瓶中,加入盐酸溶液(0.1mol/L)适量,40℃超声提取20min,冷却,转移至100mL容量瓶,加盐酸溶液(0.1mol/L)至刻度,摇匀,静置,取适量过滤,得样品提取液。
2)衍生化:取样品提取液0.2mL,置于5mL具塞试管中,加异硫氰酸苯酯-乙腈溶液0.4mL,再加三乙胺-乙腈溶液1.4mL,摇匀,放置1小时,然后加入正己烷2mL,漩涡混合1min,静置,取下层液体作为待测溶液。
γ-氨基丁酸(GABA)的分布及测定方法周青生物化工2110805057一、分布:γ-氨基丁酸在动、植物体内都有分布,在动物体内,GABA主要分布于神经组织中,在哺乳动物的脑组织内分布最为集中,其含量是单胺类含量的1000倍,而在外围器官中含量很少。
在植物体内,GABA是细胞自由氨基酸库的重要组分,胞液中有几种构型,可形成类似脯氨酸的环状结构。
高等植物组织中GABA含量通常在0.3~32.5μmol/g之间,超过许多蛋白质类氨基酸的含量。
在一些与根瘤菌共生固氮植物的根瘤中,GABA以结合态形式存在,苜蓿中结合态形式的GABA高达干重的6.6%[1]。
除此之外,GABA还存在于以下植物中,见表一。
①薄层色谱:原理:用一定波长的光照射在经薄层层析后的层析板上,对具有吸收或能产生荧光的层析斑点进行扫描,用反射法或透射法测定吸收的强度,以检测其浓度。
方法:展开剂是正丁醇:醋酸:水=4:1:1。
分别吸取5μl γ-氨基丁酸标准品溶液和样品洗脱液,点于自制的硅胶薄层板上,以正丁醇:醋酸:水体积比为4:1:1为展开剂展开,取出晾干,用体积分数0.2%茚三酮乙醇溶液显色,105℃烘数分钟,直至获最大斑点,用Camag TLC scanner 3 扫描仪扫描。
扫描条件为:反射式双波长锯齿扫描,扫描波长λS=515nm,参比波长λR=680nm,狭缝50×0.45 mm。
黄怀生用最小二乘法对标准溶液点样量和色谱峰面积值进行回归分析,其相关系数可达到0.99以上[14]。
黄美娥[15]用此方法测得得蕨菜叶、茎中γ-氨基丁酸的质量分数分别为0.319%、0.141%。
采用双波长扫描法[16],可以避免分离度不佳的其他氨基酸的相互干扰;二、双波长扫描可以排除背景干扰使基线平直;三、能提高灵敏度。
②纸电泳法:原理:纸上电泳法,以纸为支持剂,使带电的γ-氨基丁酸于纸上在外电场作用下定向移动,从而达到分离目的。
方法:取上清液用于点样于滤纸上,以标准GABA溶液做对照,在电压300V、室温条件下电泳60min,电泳缓冲液为吡啶-冰醋酸混合溶液[吡啶:冰醋酸:蒸馏水(体积比)=2:2:121,pH4.7]。
γ-氨基丁酸的有关研究与进展1.引言γ-氨基丁酸(gamma-aminobutyric acid),简称GABA,别名氨酪氨酰或哌啶酸,是一种广泛分布于哺乳动物、植物和微生物中的四碳非蛋白质氨基酸,主要由谷氨酸(glutamic acid,Glu)经谷氨酸脱羧酶(glutamate decarboxylase,简称GAD 或GDC)催化而来[1,2]。
GABA 是哺乳动物中枢神经中的一种重要神经抑制性介质,介导了40% 以上的神经抑制性信号[3]。
GABA在人体内发挥着极其重要的生理功能,主要功能是降血压[3],另外也可以促进脑的活化,镇静、抗惊厥、抗癫痫,促进睡眠,延缓脑衰老,补充人体抑制性神经递质,同时还能抑制脂肪肝及肥胖症,活化肝功能等[3-5]。
GABA因其较好的生理功能和应用前景,已受到世界学术和企业界越来越多的关注和研究。
而与国外相比,我国有关GABA的研究开发报道较少,有待大力研究开发。
GABA作为一种新型的功能性因子正越来越引起国内人们的关注,对GABA的保健功能和作用机理的进一步深入探讨,必将对其应用起到极大的推动作用。
2.GABA的物化特性GABA为白色结晶或结晶性粉末,熔点202℃,极易溶于水,微溶于热乙醇。
GABA在绝大多数状态下是以带正电的氨基和带负电的羧基的两性离子形式存在的。
GABA的存在状态决定了分子构象:气态时,由于两个带电基团的静电作用,分子构象高度折叠,固态时,由于两个基团构象产生的分子间相互作用,分子构象伸展;液态时,这两种分子构象同时存在。
GABA多变的构象便于和不同的受体蛋白结合,从而发挥其不同的生理功能[6]。
3.GABA的生物活性GABA是哺乳动物脑组织中重要的起抑制作用的神经抑制剂。
根据对激动剂和拮抗剂敏感性的不同,GABA受体可以分为A型(GABAA)、B型(GABAB)、C 型(GABAC)这三种类型[4,6]。
哺乳动物大脑中含量最多的也是最重要的GABA受体是GABAA。
高效液相色谱法测定发芽麦粒中γ-氨基丁酸GABA含量张志清;徐杰;丛军;任飞【摘要】建立了一种测定发芽麦粒中γ-氨基丁酸(GABA)含量的HPLC方法,并对四川10个小麦品种中GABA含量差异及其发芽培养期间变化规律进行了分析.采用FDNB(2,4-二硝基氟苯)为柱前衍生剂,色谱条件为:色谱柱Luna C18(2)(150 mm×4.60 mm,5μm),乙腈-0.02 mmol/L乙酸铵混合溶液为流动相(V: V=15: 85),柱温30℃,流速1.0 mL/min,测定波长320 nm.结果表明,在0.025 5~0.127 6μg 范围内,呈良好的线性关系,最低检出限1.081×10-5 μg/mL,方法的平均加标回收率为97%.采用建立的方法测定不同小麦品种在萌发12 h后的GABA含量在0.238~5.26 mg/100 g之间,不同品种间GABA的含量差异显著,在萌发的0~12h内,GABA含量呈现先上升后下降的趋势,在8h时含量达到最高.【期刊名称】《中国粮油学报》【年(卷),期】2015(030)011【总页数】5页(P135-139)【关键词】发芽麦粒;γ-氨基丁酸(GABA);高效液相色谱法【作者】张志清;徐杰;丛军;任飞【作者单位】四川农业大学食品学院,雅安625014;四川农业大学食品学院,雅安625014;四川农业大学食品学院,雅安625014;四川农业大学食品学院,雅安625014【正文语种】中文【中图分类】TS210γ-氨基丁酸(GABA)是一种非蛋白质氨基酸和重要的神经递质[1],广泛存在于植物和动物体内,具有抗焦虑[2],抗氧化[3]和生殖生理作用[4]。
GABA的制备主要有化学法、微生物法和植物富集法。
然而前2种方法各有欠缺,化学法条件苛刻,耗能大,且有化学物质的残留;微生物法效率较高,但高产菌株难以获得。
有学者报道可通过基因工程的办法来重组高产的大肠埃希氏菌富集GABA,但其能力仍不及通过植物富集的方法[6]。
收稿日期:2008-05-19作者简介:黄亚辉,男(1969-),研究员,主要从事茶叶加工及生化研究。
E mail:yahuihuangzz@ 。
基金来源:国家科技部项目(2001BA535L -18)研究内容之一。
G ABA 茶中γ-氨基丁酸的T LC 测定及提纯研究黄亚辉1,曾 贞1,郑红发2,黄怀生2(1华南农业大学园艺学院,广州,510642;2湖南省茶叶研究所,长沙,410125)摘要:本文对G ABA 茶中有效成分γ-氨基丁酸的薄层扫描(T LC )检测以及提取、分离、纯化进行了研究,结果表明:正丁醇ν醋酸ν水体积比为4ν1ν1展开剂分离效果较好,Rf 值为0.46。
采用双波长扫描法检测,扫描波长分别为λS =515n m,λR =680n m,检测线性范围:0.5μL ~15μL,样品平均回收率为98.75%。
采用水提取法比乙醇提取法γ-氨基丁酸含量提高20%左右,732阳离子树脂对γ-氨基丁酸的静态最大吸附量为32.9mg ・g -1,1h 内其吸附速度较快,达吸附量的70%。
样液pH 值、流速等因子对树脂的吸附效率有影响,当pH 值为3.0,流速3m l ・m in -1时,树脂的吸附量达到最大值。
采用柠檬酸缓冲液和NH 3・H 2O 进行洗脱,当pH 为8.0~9.0时,γ-氨基丁酸洗脱率达94.68%。
关键词:γ-氨基丁酸;测定;提取;分离;纯化中图分类号:Q503文献标识码:A文章编号:1006-8376(2008)03-0011-05γ-氨基丁酸(G ABA )广泛存在于哺乳动物脑和脊髓中,是一种重要的抑制性神经传递物质,具有降血压、抗惊厥、镇痛和改善记忆等生理活性[1]。
最新研究表明还有调节激素分泌,改善更年期综合症,促进酒精代谢以及高效减肥等活性[2~4]。
日本茶学研究者首先发现,将茶鲜叶经过一定时间的厌氧处理会产生大量的γ-氨基丁酸,以此加工成的绿茶富含γ-氨基丁酸(含量一般在0.15%以上),并且将这种茶命名为G ABA 茶[5],经试验证实这种茶具有明显的降血压效果。
[转载]抑制性递质——γ-氨基丁酸(GABA)原⽂地址:抑制性递质——γ-氨基丁酸(GABA)作者:浙江嘉兴王甫荣试题问题:试题中出现了抑制性递质——γ-氨基丁酸(GABA),来源、分布、机理和应⽤如何?⼀、发现过程1950 年有⼈发现哺乳动物正常脑内的 GABA 的浓度很⾼,但⽣理意义不明。
随后,有⼈从⽜脑中提取出⼀种能抑制螯虾牵张感受器神经元产⽣冲动提取液,发现其具有抗⼄酰胆碱及对脉⿏和家兔的回肠有收缩作⽤,并证明此提取液中起抑制作⽤的组分就是 GABA。
Segal等⼜证实 GABA 对哺乳动物的中枢神经具有普遍抑制作⽤,将⽤离⼦电泳分离得到的 GABA 注射于猫⽪层⼗字沟周围的神经元,可引起神经元的超极化,其电位与刺激⽪层表⾯突触所产⽣的抑制性电位相同,并发现⽤电刺激猫的⼩脑浦⽒细胞时第四脑室灌流液中的 GABA 含量增加 3 倍,因⽽推测浦⽒神经元释放的化学递质是 GABA。
⼆、来源和分布GABA由⾕氢酸经过⾕氨酸脱羧酶作⽤⽣成。
γ-氨基丁酸(GABA)是⼀种天然活性成分,⼴泛分布于动植物体内。
植物如⾖属、参属、中草药等的种⼦、根茎和组织液中都含有GABA。
在动物体内,GABA⼏乎只存在于神经组织中,其中脑组织中的含量最多,免疫学研究表明,其浓度最⾼的区域为⼤脑中⿊质。
三、⽣理作⽤γ-氨基丁酸是中枢神经系统中很重要的抑制性神经递质,它是⼀种天然存在的⾮蛋⽩组成氨基酸,具有极其重要的⽣理功能。
能促进脑的活化性,健脑益智,抗癫痫,促进睡眠,美容润肤,延缓脑衰⽼机能,能补充⼈体抑制性神经递质,具有良好的降⾎压功效。
促进肾机能改善和保护作⽤。
抑制脂肪肝及肥胖症,活化肝功能。
每⽇补充微量的γ-氨基丁酸有利于⼼脑⾎压的缓解,⼜能促进⼈体内氨基酸代谢的平衡,调节免疫功能。
GABA受体⼏乎分布于中枢神经系统内的所有神经元,主要存在于神经元的细胞膜上。
GABA受体分为GABAA、GABAB和GABAC三种亚型。
快速测定红曲中γ-氨基丁酸含量的薄层色谱-比色法研究李利;陈莎;赵颖;陈福生【摘要】通过对红曲中γ氨基丁酸(GABA)的提取方法、薄层色谱(TLC)展开剂及其显色斑洗脱液的比色法测定波长及范围的研究,建立了一种简便、快速测定红曲中GABA含量的方法.结果表明,红曲中GABA最佳提取方法为水提法,TLC分离的最佳展开剂为95%乙醇:25%氨水=4:1,GABA显色斑洗脱液的最大吸收波长为512nm,在2~10μg范围内GABA的含量同洗脱液光密度的线性关系良好(R2=0.9983).此方法对红曲样品中GABA的测定结果与高效液相色谱法0致性好,回收率为91.00%~96.33%,适合于大批量菌株筛选和发酵条件优化实验中GABA含量的定量分析.【期刊名称】《长江大学学报(自科版)农学卷》【年(卷),期】2012(009)012【总页数】4页(P23-26)【关键词】红曲;γ-氨基丁酸;薄层色谱;分光光度法【作者】李利;陈莎;赵颖;陈福生【作者单位】华中农业大学食品科学与技术学院,湖北武汉 430070【正文语种】中文【中图分类】TS201.2红曲亦名丹曲,是以大米为原料,经红曲菌(Monascus spp.)发酵而成的米曲。
红曲在我国的应用至今已有一千多年的历史,它广泛用于酿酒、食品着色、发酵及中药等方面[1]。
γ-氨基丁酸(GABA)被认为是红曲中降压的主要成分[2-4]。
研究证明,GABA是哺乳动物中枢神经系统的抑制性神经递质,是一种生理活性物质,能够降低血压、促使精神安定、促进脑部血流、增进脑活力、改善脑机能、增加生长激素分泌,以及改善更年期综合症等[3,5-6]。
由于GABA对于电化学和紫外、可见光等不灵敏,因此,对其进行直接检测存在一定困难。
目前,国内外报道的GABA检测方法有高效液相色谱法[5,7]、毛细管电泳法[8]、放射受体法[9]、酶法[10]、纸层析法[11]等,但这些方法大多价格昂贵,多应用于医学领域。
γ氨基丁酸鉴定方法
γ-氨基丁酸(GABA)是一种重要的神经递质,在中枢神经系统中具有多种生理功能。
因此,对GABA的鉴定方法进行研究具有重要的意义。
以下是γ-氨基丁酸鉴定方法的详细介绍:
一、概述
γ-氨基丁酸鉴定方法主要包括化学分析法、色谱法、质谱法等。
这些方法各有优缺点,需要根据具体需求和条件进行选择。
二、化学分析法
化学分析法是鉴定GABA的经典方法之一,主要包括滴定法、分光光度法等。
滴定法是通过滴定反应来确定GABA的含量,具有操作简便、结果准确等优点。
分光光度法则是通过测定GABA在特定波长下的吸光度来确定其含量,具有灵敏度高、操作简便等优点。
三、色谱法
色谱法是一种分离和鉴定复杂混合物中各组分的方法,包括高效液相色谱法(HPLC)、气相色谱法(GC)等。
HPLC具有分离效果好、分辨率高等优点,常用于分离和鉴定GABA及其代谢物。
GC则主要用于分析气体样品,如呼吸气等,可直接检测样品中的GABA。
四、质谱法
质谱法是一种基于质荷比进行物质鉴定的方法,具有灵敏度高、分辨率高等优点。
通过质谱法可以鉴定GABA的分子量、分子式等信息,有助于深入了解其结构特征和性质。
五、其他方法
除了以上方法外,还有核磁共振法、红外光谱法等可用于鉴定GABA。
这些方法各有特点,可以根据具体需求进行选择。
γ-氨基丁酸(GABA)的研究进展
周俊萍;徐玉娟;温靖;吴继军;余元善;李楚源;翁少全;赵敏
【期刊名称】《食品工业科技》
【年(卷),期】2024(45)5
【摘要】γ-氨基丁酸(GABA)是一种广泛分布于动、植物和微生物体内的非蛋白氨基酸,于2009年被我国卫健委批准为“新资源食品”,在食品、医药、饲料等领域具有十分广阔的应用前景,近年来有关GABA的研究也逐渐成为热点。
本文阐述了GABA的生物合成与代谢途径,归纳了GABA的化学合成、植物富集方法及目前常用的GABA检测技术,并对比分析其优缺点。
此外,本文对GABA的主要生理功能及其作用机制进行总结,并对GABA的未来研究和发展趋势进行展望,以期为今后GABA的研究与应用提供参考。
【总页数】9页(P393-401)
【作者】周俊萍;徐玉娟;温靖;吴继军;余元善;李楚源;翁少全;赵敏
【作者单位】广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所;华南农业大学食品学院;广州王老吉大健康产业有限公司
【正文语种】中文
【中图分类】TS201.2
【相关文献】
1.新资源食品--γ-氨基丁酸(GABA)的研究进展
2.富含γ-氨基丁酸(GABA)的巨胚功能稻研究进展
3.谷物中γ-氨基丁酸(GABA)富集工艺的研究进展
4.γ-氨基丁酸
(GABA)形成机理及富集方法的研究进展5.糙米发芽过程中γ-氨基丁酸(GABA)富集工艺的研究进展
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桑叶中γ—氨基丁酸含量及富集方法的研究进展作者:冯胜利等来源:《湖南农业科学》2014年第24期摘要:综述桑叶中γ-氨基丁酸(GABA)的含量及富集方法的研究进展,介绍了桑叶品种、叶龄、叶位和不同采摘季节对桑叶中γ-氨基丁酸含量的影响;厌氧、添加外源物、低温冷激、红外线照射等处理可提高桑叶γ-氨基丁酸的含量。
桑叶作为一种富含γ-氨基丁酸的蛋白质资源,具有可观的开发前景。
在桑叶中γ-氨基丁酸的富集方法,如红外线照射处理、低温冷激处理等方面还有进一步研究的空间。
关键词:桑叶;γ-氨基丁酸;富集方法;综述中图分类号:S888.32 文献标识码:A 文章编号:1006-060X(2014)24-0007-02Abstract:This paper reviewed the research progress of γ-aminobutyric acid content in mulberry leaves and enrichment methods. Comprehensive analysis of previous research results showed that different varieties’ mulberry leaf, leaf age, leaf position and different harvest season had different effect on γ-aminobutyric acid content in mulberry leaves. Treatments such as anaerobic, adding exogenous material, low temperature co ld shock and infrared irradiation could improve γ-aminobutyric acid extraction content from mulberry leaves. Mulberry leaf was a protein resource with rich γ-aminobutyric acid for considerable development prospects. Enrichment methods of γ-aminobutyric acid in mulberry leaves, such as infrared irradiation treatment, low temperature cold shock treatment and so on, deserved further research.Key words:mulberry leaf;γ-aminobutyric acid(GABA); enrichment method; reviewγ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,简称GABA)是一种非蛋白质组成的天然氨基酸,分布十分广泛,在动物、植物和微生物中均有GABA存在[1],是一种重要的抑制性神经传递物质[2-3]。
人体γ-氨基丁酸测定方法
人体γ-氨基丁酸(γ-Aminobutyric acid,简称GABA)是一
种重要的神经递质,在中枢神经系统中发挥着重要的调节作用。
测
定人体γ-氨基丁酸的方法有多种,下面我将从多个角度介绍几种
常用的测定方法。
1. 高效液相色谱法(HPLC):HPLC是一种常用的分离和测定
化合物的方法,可以用于测定人体中的γ-氨基丁酸。
该方法通过
将样品中的γ-氨基丁酸与特定的色谱柱相互作用,实现化合物的
分离和定量测定。
2. 气相色谱法(GC):GC也是一种常用的分析方法,可以用
于测定人体中的γ-氨基丁酸。
该方法通过将样品中的γ-氨基丁酸
蒸发成气体,然后通过柱子进行分离,并利用检测器进行定量测定。
3. 酶联免疫吸附法(ELISA):ELISA是一种常用的免疫分析
方法,可以用于测定人体中的γ-氨基丁酸。
该方法利用特异性抗
体与γ-氨基丁酸结合,形成免疫复合物,然后通过颜色反应或荧
光信号进行定量测定。
4. 质谱法(MS):质谱法是一种高灵敏度的分析方法,可以用于测定人体中的γ-氨基丁酸。
该方法通过将样品中的γ-氨基丁酸离子化,然后利用质谱仪进行分析和定量测定。
需要注意的是,不同的测定方法在准确性、灵敏度、特异性和操作难度上可能有所差异。
因此,在选择合适的测定方法时,需要考虑具体的实验条件、设备和实验目的,以确保得到可靠的测定结果。
新资源介绍之-γ-氨基丁酸GABA1、化学结构与理化性质γ-氨基丁酸简称为GABA,又称为氨酪酸,哌啶酸。
化学名称为4-氨基丁酸,分子式为C4H9NO2,分子量为103.1,CAS号为56-12-2。
通常为小叶状结晶(甲醇--乙醚),针状结晶(水-乙醇),熔点为202℃(在快速加热下分解)。
易溶于水,微溶于热乙醇,不溶于其他有机溶剂。
在熔点以上分解为吡咯烷酮和水。
2、主要来源与生产制备方法γ-氨基丁酸主要分布于动植物体内,植物如豆属、参属、中草药等的种子和根茎中,种子发芽会使含量增高。
在动物体内,γ-氨基丁酸几乎广泛分布于大脑皮层、海马和小脑神经组织中,其中脑组织中的含量为0.1-0.6mg/g。
主要制备方法有生物合成和发酵法,发酵法所用的菌种有乳酸菌、酵母菌、曲霉菌、希氏乳杆菌等一些安全性高的微生物。
3、生理功能及作用①镇静神经、抗焦虑。
医学家已经证明GABA是中枢神经系统的抑制性传递物质,是脑组织中最重要的神经递质之一。
其作用是降低神经元活性,防止神经细胞过热,GABA能结合抗焦虑的脑受体并使之激活,然后与另外一些物质协同作用,阻止与焦虑相关的信息抵达脑指示中枢。
②降低血压。
GABA能作用于脊髓的血管运动中枢,有效促进血管扩张,达到降低血压的目的。
据报道,黄芪等中药的有效降压成分即为GABA。
GABA能作用于脊髓的血管运动中枢,有效促进血管扩张,达到降低血压的目的。
③缓解神经系统疾病症状。
1997年,大熊诚太郎的研究表明GABA与某些疾病的形成有关,帕金森病人脊髓中GABA的浓度较低,癫痫病患者脊髓液中的GABA 浓度也低于正常水平。
日本大阪大学医学院的研究显示GABA对Kupperman综合症具有显著的改善效果。
另外,神经组织中GABA的降低也与Huntington疾病、老年痴呆等神经衰败症的形成有关。
③降低血氨。
我国的临床医学和日本的研究者也都认为,GABA能抑制谷氨酸的脱羧反应,使血氨降低。
人(Human)γ氨基丁酸(GABA)ELISA检测试剂盒说明书人(Human)γ氨基丁酸(GABA)ELISA检测试剂盒说明书检测原理试剂盒采纳双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验(ELISA)。
往预先包被γ氨基丁酸(GABA)抗体的包被微孔中,依次加入标本、标准品、HRP标记的检测抗体,经过温育并彻di洗涤。
用底物TMB显色,TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最后的黄色。
颜色的深浅和样品中的γ氨基丁酸(GABA)呈正相关。
用酶标仪在450nm 波长下测定吸光度(OD 值),计算样品浓度。
样品收集、处理及保存方法1. 血清:使用不含热原和内毒素的试管,操作过程中避开任何细胞刺激,收集血液后,3000转离心10分钟将血清和红细胞快速当心地分别。
2. 血浆:EDTA、柠檬酸盐或肝素抗凝。
3000转离心30分钟取上清。
3. 细胞上清液:3000转离心10分钟去除颗粒和聚合物。
4. 组织匀浆:将组织加入适量生理盐水捣碎。
3000转离心10分钟取上清。
5. 保存:假如样本收集后不适时检测,请按一次用量分装,冻存于20℃,避开反复冻融,在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。
自备物品1. 酶标仪(450nm)2. 高精度加样器及枪头:0.510uL、220uL、20200uL、2001000uL3. 37℃恒温箱操作注意事项试剂盒保存在28℃,使用前室温平衡20分钟。
从冰箱取出的浓缩洗涤液会有结晶,这属于正常现象,水浴加热使结晶完wan全溶解后再使用。
试验中不用的板条应立刻放回自封袋中,密封(低温干燥)保存。
浓度为0的S0号标准品即可视为阴性对比或者空白;依照说明书操作时样本已经稀释5倍,最结束果乘以5才是样本实际浓度。
严格依照说明书中标明的时间、加液量及次序进行温育操作。
全部液体组分使用前充分摇匀。
试剂盒构成名称 96孔配置 48孔配置备注微孔酶标板 12孔×8条 12孔×4条无标准品 0.3mL*6管 0.3mL*6管无样本稀释液 6mL 3mL 无检测抗体HRP 10mL 5mL 无20×洗涤缓冲液 25mL 15mL 按说明书进行稀释底物A 6mL 3mL 无底物B 6mL 3mL 无停止液 6mL 3mL 无封板膜 2张 2张无说明书 1份 1份无自封袋 1个 1个无注:标准品(S0S5)浓度依次为:0、0.5、1、2、4、8μmol/L试剂的准备20×洗涤缓冲液的稀释:蒸馏水按1:20稀释,即1份的20×洗涤缓冲液加19份的蒸馏水。
⼩⿏γ氨基丁酸(GABA)说明书⼩⿏γ氨基丁酸(GABA)酶联免疫分析(ELISA)试剂盒使⽤说明书本试剂仅供研究使⽤⽬的:本试剂盒⽤于测定⼩⿏⾎清,⾎浆及相关液体样本中γ氨基丁酸(GABA)含量。
实验原理:本试剂盒应⽤双抗体夹⼼法测定标本中⼩⿏γ氨基丁酸(GABA)⽔平。
⽤纯化的⼩⿏γ氨基丁酸(GABA)抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加⼊γ氨基丁酸(GABA)抗原,再与HRP标记的GABA抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物TMB显⾊。
TMB在HRP酶的催化下转化成蓝⾊,并在酸的作⽤下转化成最终的黄⾊。
颜⾊的深浅和样品中的γ氨基丁酸(GABA)呈正相关。
⽤酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中γ氨基丁酸(GABA)浓度。
试剂盒组成:试剂盒组成48孔配置96孔配置保存说明书1份1份封板膜2⽚(48)2⽚(96)密封袋1个1个酶标包被板1×481×962-8℃保存标准品:9µmol/L0.5ml×1瓶0.5ml×1瓶2-8℃保存标准品稀释液 1.5ml×1瓶 1.5ml×1瓶2-8℃保存酶标试剂3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存样品稀释液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存显⾊剂A液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存显⾊剂B液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存终⽌液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存浓缩洗涤液(20ml×20倍)×1瓶(20ml×30倍)×1瓶2-8℃保存样本处理及要求:1.⾎清:室温⾎液⾃然凝固10-20分钟,离⼼20分钟左右(2000-3000转/分)。
仔细收集上清,保存过程中如出现沉淀,应再次离⼼。
酶标仪法测定γ-氨基丁酸梁慧;薛正莲;周扬;汪冬冬;叶杨【摘要】通过诱变所获得的乳酸菌突变株较多,经96孔板发酵后用传统的分光光度计法测定γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)的含量效率低、成本高.为快速、高效地测定GABA的含量,基于Berthelot反应,该实验采用酶标仪法测定GABA含量并对影响该方法的主要因素进行优化.确定了在测定GABA的适宜反应体系中0.2 mol/L pH10.0硼酸盐缓冲液为0.75 mL,6%的重蒸苯酚为2.5 mL,有效氯5.2%的NaClO溶液为2 mL时,酶标仪测定可获得较高的GABA含量,同时进行了精密度试验.最后,通过对诱变后的75株突变株经96孔板发酵后,分别使用分光光度计与酶标仪测定发酵液中GABA的含量并进行拟合,以验证该方法的可行性.得出2种方法的相关系数R=0.949 3,显示2种测定方法具有很好的一致性.该实验结果表明酶标仪法能简便、快速、准确地测定发酵液中GABA的含量,为后续高通量选育GABA乳酸菌奠定了基础.【期刊名称】《食品与发酵工业》【年(卷),期】2014(040)007【总页数】5页(P156-160)【关键词】γ-氨基丁酸;测定;分光光度计;酶标仪;优化【作者】梁慧;薛正莲;周扬;汪冬冬;叶杨【作者单位】安徽工程大学生物与化学工程学院,微生物发酵安徽省工程技术研究中心,安徽芜湖,241000;安徽工程大学生物与化学工程学院,微生物发酵安徽省工程技术研究中心,安徽芜湖,241000;安徽工程大学生物与化学工程学院,微生物发酵安徽省工程技术研究中心,安徽芜湖,241000;安徽工程大学生物与化学工程学院,微生物发酵安徽省工程技术研究中心,安徽芜湖,241000;安徽工程大学生物与化学工程学院,微生物发酵安徽省工程技术研究中心,安徽芜湖,241000【正文语种】中文γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)是一种非蛋白质天然氨基酸,又称哌啶酸、氨酪酸,化学名4-氨基丁酸,是一种非蛋白质组成的天然氨基酸,在动物、植物和微生物中广泛存在[1-2]。
γ-氨基丁酸(GABA)的分布及测定方法周青生物化工2110805057一、分布:γ-氨基丁酸在动、植物体内都有分布,在动物体内,GABA主要分布于神经组织中,在哺乳动物的脑组织内分布最为集中,其含量是单胺类含量的1000倍,而在外围器官中含量很少。
在植物体内,GABA是细胞自由氨基酸库的重要组分,胞液中有几种构型,可形成类似脯氨酸的环状结构。
高等植物组织中GABA含量通常在0.3~32.5μmol/g之间,超过许多蛋白质类氨基酸的含量。
在一些与根瘤菌共生固氮植物的根瘤中,GABA以结合态形式存在,苜蓿中结合态形式的GABA高达干重的6.6%[1]。
除此之外,GABA还存在于以下植物中,见表一。
①薄层色谱:原理:用一定波长的光照射在经薄层层析后的层析板上,对具有吸收或能产生荧光的层析斑点进行扫描,用反射法或透射法测定吸收的强度,以检测其浓度。
方法:展开剂是正丁醇:醋酸:水=4:1:1。
分别吸取5μl γ-氨基丁酸标准品溶液和样品洗脱液,点于自制的硅胶薄层板上,以正丁醇:醋酸:水体积比为4:1:1为展开剂展开,取出晾干,用体积分数0.2%茚三酮乙醇溶液显色,105℃烘数分钟,直至获最大斑点,用Camag TLC scanner 3 扫描仪扫描。
扫描条件为:反射式双波长锯齿扫描,扫描波长λS=515nm,参比波长λR=680nm,狭缝50×0.45 mm。
黄怀生用最小二乘法对标准溶液点样量和色谱峰面积值进行回归分析,其相关系数可达到0.99以上[14]。
黄美娥[15]用此方法测得得蕨菜叶、茎中γ-氨基丁酸的质量分数分别为0.319%、0.141%。
采用双波长扫描法[16],可以避免分离度不佳的其他氨基酸的相互干扰;二、双波长扫描可以排除背景干扰使基线平直;三、能提高灵敏度。
②纸电泳法:原理:纸上电泳法,以纸为支持剂,使带电的γ-氨基丁酸于纸上在外电场作用下定向移动,从而达到分离目的。
方法:取上清液用于点样于滤纸上,以标准GABA溶液做对照,在电压300V、室温条件下电泳60min,电泳缓冲液为吡啶-冰醋酸混合溶液[吡啶:冰醋酸:蒸馏水(体积比)=2:2:121,pH4.7]。
电泳完毕后取出电泳纸,水平摆放,室温下自然晾干,再在80℃电烘箱中风干,挥发掉残留吡啶和醋酸。
用喷雾法向电泳纸上均匀喷洒显色剂,于电热恒温干燥箱中90℃烘10 min,即显出在有氨基酸区域呈紫红斑点的层析图谱。
将与GABA标准品位置一致的斑点剪下,加4ml洗脱液(洗脱液由0.1%硫酸铜溶液和75%乙醇溶液按1:19的体积比混合而成)洗脱90min,在520nm波长处比色测定洗脱液的吸光度[17,18]。
③纸层析法原理:纸层析是以滤纸作支持物,用一定的溶剂系统展开,利用不同物质在固定相中的分配系数不同,而使混合样品达到分离的层析方法。
方法:展开剂V(正丁醇):V(醋酸):V(水)=4:1:3,茚三酮溶解于展开剂中,质量浓度为0.4g/L,在展开过程中,茚三酮随着展开剂沿滤纸向上移动。
点样后的滤纸条在展开剂中展开、风干显色,将与标准品位置一致的斑点剪下,用洗脱液[V(1 g/L硫酸铜):V(体积分数75%乙醇)=2:38]洗脱,520nm处比色测定[19,20]。
④比色法:原理:利用苯酚和次氯酸钠与游离氨反应显色。
方法:先做GABA标准曲线:取不同浓度的GABA标准液0.4ml,加0.2mol/L(pH 9.0)硼酸盐缓冲液0.6 mL,摇匀,加5%苯酚溶液2mL,摇匀,加质量分数6%次氯酸钠溶液1mL,摇匀,放人沸水浴加热5min,立即置冰浴中5min,待溶液出现蓝绿色后,加入2.0mL60%酒精,进行波谱扫描,在最大吸收峰处测定溶液的吸光度,以吸光度为纵坐标,GABA的含量为横坐标,绘制标准曲线。
把处理的样品按以上方法测吸光度,求出样品中GABA的含量。
赵大伟[21]用此方法测得大麦籽粒γ-氨基丁酸含量地区顺序为中国>美国;类型顺序为裸>皮,多棱>二棱。
冀宪领[22]测得相同叶位桑叶中GABA的含量为早期叶片高于后期叶片,同一时期不同叶位桑叶中GABA的含量随叶龄的增加逐渐降低,桑叶中GABA的含量在一天中以5:30时含量最低,17:00时含量最高。
彭光荣[23]用此方法测得糙米发芽γ-氨基丁酸含量从7.24±0.02mg/100g增加到43.51±0.03mg/100g,当采用10mg/L硒处理后,富硒发芽糙米γ-氨基丁酸38.83±0.12mg/100g。
史小峰[24]通过此方法测得明传统发酵豆制品中腐乳汤汁和坯所含GABA的量为最高1225.7mg/L和735.2mg/kg,而豆酱中的较低仅为368mg/kg 。
测定微生物中谷氨酸脱羧酶的活力也可以用此方法,如孙波[25]利用比色法测定L-谷氨酸在谷氨酸脱羧酶催化下生成γ-氨基丁酸含量,实验确定测定γ-氨基丁酸适宜反应条件为酶反应液1.0 mL ,1.0 mol /L Na2CO 溶液0.2 mL ,1.0 mL 四硼酸钠缓冲液(0.01mol/L,pH9.18),6%苯酚溶液1.0 mL ,7.5%NaClO 溶液5.0 mL ,沸水浴10 min ,冰浴5min ,60%乙醇溶液2.0 mL ,并与氨基酸分析仪法测定进行比较,测得结果相对误差<5%,表明两种测定方法没有显著性差异。
王芳权和许建军也通过此方法测得酶转化中GABA 含量[26,27],此方法快速,常用于米胚芽和谷氨酸脱羧酶转化体系中GABA 质量浓度的定量测定。
⑤氨基酸分析仪测定原理:利用各种氨基酸的两性离子特性、极性和分子大小等性质的不同,使用阳离子交换树脂进行色谱分析,采用不同pH 和离子强度的缓冲溶液依次进行洗脱。
氨基酸洗脱的顺序为:酸性氨基酸、中性和芳香族氨基酸,最后是碱性氨基酸;相对分子质量小的氨基酸比相对分子质量大的氨基酸先洗脱下来。
被洗脱的氨基酸与茚三酮进行柱后衍生,大多数衍生物呈蓝紫色,在570nm 处有最大吸收;脯氨酸,羟脯氨酸与茚三酮反应生成黄色物质,在440nm 处有吸收峰,用紫外可见光检测器进行测定[28]。
方法:以日立835—30型氨基酸分析仪为例,先按仪器说明配制缓冲溶液及茚三酮溶液,标准GABA 溶液用0.02mol /L 盐酸配制成不同浓度,测得峰面积,绘制标准曲线。
把处理的样品按以上方法测峰面积,求出样品中GABA 的含量[29]。
钱爱萍[30]等人用此方法对γ-氨基丁酸标准品作精密度和回收率试验,结果表明:峰位置重现性变异系数为0.17,峰面积重现性变异系数为0.23,回收率97.89%~101.2%。
说明此方法稳定、快速,准确。
张华[31]和何轶[32]通过此方法测得南瓜中GABA 含量为2.956%和沙棘果汁GABA 含量为13.4mg/100ml 。
Chen [33]和Komatsuzaki [34]也采用氨基酸分析仪检测发酵牛奶中GABA 含量和发芽糙米经过浸泡和厌氧处理后GABA 含量,结果显示用乳酸菌发酵的牛奶和发芽糙米处理后GABA 含量为80.6mg/ 100g 和24.9 mg/100 g 。
还有报导[35,36]可以检测米胚芽、茶叶中GABA 含量。
⑥毛细管电泳-电化学检测该方法使用比较少。
孔令瑶[37]用亚硫酸钠替代硫醇试剂使GABA 与OPA 反应,生成稳定具有电化学活性的衍生物,然后采用毛细管电泳-电化学检测(CE —ED)法测定发芽黑米胚芽中GABA 的含量。
他以自制碳圆盘电极为工作电极,以50mmol /L 的硼砂-硼酸缓冲液为运行缓冲液,采用电动进样,检测池为阴极电泳槽。
⑦高效液相色谱法该方法精密度和灵敏度高,常被用来测定GABA 含量,主要有以下几种方法:1. γ-氨基丁酸与邻苯二甲醛(OPA)衍生原理:γ-氨基丁酸与邻苯二甲醛(0PA)衍生反应生成稳定的荧光物质,且在λex (最大激发波长)=348nm ,λem (最大发射波长)=450nm 波长下有很强的发射,可以准确测定其含量。
其反应如下: CHOCHO +SH-CH 2-CH 2-OH NH 2-CH 2-CH 2-CH 2+2-CH 2-OHCH 2-CH 2-CH 2-COOH衍生剂的配制:称取10mgOPA,加0.5ml甲醇溶解后,加入2ml 0.4mol/L硼酸盐缓冲液(pH9.4)和30μl 2-巯基乙醇,此衍生剂溶液可保持2d。
样品衍生:取样品或标准溶液10μl,加入上述溶液100μl,混匀,反应1min后进样。
黄怀生采用分离柱ISC--07Na型,流动相:02M柠檬酸钠缓冲液,pH3.25~10.0,pH梯度洗脱测定Gabaron茶中的γ-氨基丁酸[38]。
葛菁萍也利用邻苯二甲醛柱前衍生高效液相色谱法定量测定短乳杆菌发酵液中γ-氨基丁酸含量,利用C18色谱柱,以50mmol/L的乙酸钠(pH6.8)-甲醇-四氢呋喃(A相,82:17:1;B相,22:77:1,V/V)为流动相进行梯度洗脱,可以检测到痕量γ-氨基丁酸(2.2mg /100g)[39]。
2. γ-氨基丁酸与2,4-二硝基氟苯(FDNB)衍生:样品衍生化及预处理:以1%FDNB的乙腈溶液作为衍生剂,取配制好的标准GABA溶液或待测样品1mL置于10mL棕色量瓶中,加入0.5mol/L NaHCO3 (pH=9.0)溶液1mL,再加入1%2,4-二硝基氟苯的乙腈溶液1mL,置于60℃水浴中暗处加热1h后取出,冷却,添加pH=7.0的磷酸盐缓冲液至刻度,混匀,过0.45μm 滤膜。
不用时样品于4℃下避光保存。
吕莹果采用C18柱检测植物中谷氨酸脱羧酶活力,流动相:由A、B双组分组成,A为V(CH3CN):V(H2O)=1:l;B为pH=7.0的磷酸盐缓冲液。
流速为1.0 mL /min;检测波长:360nm;柱温:35℃;进样量:5μL。
洗脱条件如表二。
在一个月内都能保持稳定[40]。
孟祥勇采用2,4—二硝基氟苯柱前衍生法测定发芽前后糙米中GABA的含量,结果显示:糙米中的γ-氨基丁酸由5.01 mg/100g 提高到35.03mg/100g[41]。
3.γ-氨基丁酸与异硫氰酸苯酯(PITC)衍生NH-C=SN=C=S+NHCH2-CH2-CH2-COOH归纳有两种不同的衍生方法:方法一:样品衍生化:精密量取供试品贮备液适量(80~400μl),置1mL量瓶中,加异硫氰酸苯酯—乙腈溶液(25μl:2mL)200μl,加三乙胺—乙腈溶液(1.4:8.6)稀释至刻度,摇匀,放置1 h,转移至试管中,加正己烷1mL,振摇,分取下层液体,滤过,取续滤液作为待测溶液。
陈文琼等人用此方法,利用Venusil—AA氨基酸分析柱(250mm ×4.6mm,5μm),用二元梯度洗脱,流动相A为0.05mol/L醋酸钠溶液(pH=6.5),流动相B 为乙腈-水(80:20),检测波长为248nm,得到γ-氨基丁酸的检测浓度在2.056~12.336μg/ L范围内与峰面积积分值呈较好的线性关系[42]。