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荞麦和商品苦荞茶中总黄酮的含量测定一、背景介绍荞麦是一种传统的粮食作物，也是一种天然的保健食品。
荞麦中含有丰富的总黄酮，具有抗氧化、抗炎、降血糖、降血脂等多种保健功效。
商品苦荞茶是以苦荞为原料加工而成的茶类产品，同样富含总黄酮。
因此，测定荞麦和商品苦荞茶中总黄酮的含量对于了解其保健功效具有重要意义。
二、测定方法测定荞麦和商品苦荞茶中总黄酮的含量通常采用高效液相色谱法（HPLC）。
1. 样品制备将干燥的荞麦粉或商品苦荞茶粉称取5g左右，加入50ml乙腈-水（80:20）混合溶液中，在常温下超声提取30min，离心10min后收集上清液备用。
2. 色谱条件色谱柱：Kromasil C18（250mm×4.6mm）流动相：甲醇-乙腈-0.1%磷酸水溶液（15:30:55）流速：1.0ml/min检测波长：360nm3. 标准曲线绘制取总黄酮标准品，分别加入不同浓度的乙腈-水混合溶液中制成一系列浓度不同的标准溶液。
以每个浓度的标准溶液为样品进行HPLC测定，并绘制出标准曲线。
4. 样品检测将样品提取液过滤，取适量注入色谱柱中进行HPLC检测。
根据标准曲线计算出样品中总黄酮的含量。
三、结果分析经过HPLC检测，荞麦和商品苦荞茶中总黄酮的含量均较高。
其中，荞麦中总黄酮的含量一般在100-150mg/100g左右，而商品苦荞茶中总黄酮的含量则更高，一般在300-500mg/100g左右。
四、结论荞麦和商品苦荞茶均富含总黄酮，具有多种保健功效。
通过HPLC法可以快速、准确地测定其总黄酮含量，为进一步研究其保健功效提供了科学依据。
HPLC法测定苦荞茶中芦丁槲皮素的含量苦荞是我国独有的药食两用粮食作物，主要分布于我国内蒙古、陕西、甘肃、宁夏、四川、云南等高寒地区[1]，近年来苦荞茶作为人们最热衷的保健饮品之一，在降低血压胆固醇，防治心脑血管疾病及高脂血症方面疗效显著[2]。
苦荞茶中富含黄酮类物质，其主要成分为芦丁、槲皮素等[3,4]，能够降低毛细血管脆性，改善微循环功能，具有抑制肿瘤、防止衰老、降低血脂、增强免疫力、镇静止痛、保护心脏和肝脏等作用[5]，在临床上主要用于糖尿病、高血压的辅助治疗[6,7]。
本实验通过优化提取工艺，进行了方法学考察，建立了苦荞茶的HPLC含量测定方法，并对不同苦荞茶中两种黄酮类组分进行了比较，为更好地控制苦荞茶的质量提供了一种简便、可行、重复性好的质量控制方法。
1、仪器与试药LC210AT型高效液相色谱仪（岛津公司），二极管阵列检测器，CLASS2vp510色谱数据处理工作站，CDT26A色谱柱温箱；SZ293型自动双重纯水蒸馏器。
芦丁、槲皮素对照品，由中国药品生物制品检定所提供。
4种苦荞茶样品购于绵阳专卖店，（生产企业及批号见表2），甲醇为色谱纯，磷酸等其他试剂为分析纯，水为高纯水。
2、方法与结果2.1 色谱条件色谱柱：SHIMDZU VP反相色谱柱；流动相：甲醇-0.08%磷酸溶液（6∶4）；检测波长：360 nm；流速：0.95 mL?min-1；柱温：35℃。
进样量：5 µL。
在选定条件下，芦丁、槲皮素色谱峰与其他杂质峰达到基线分离，分离度（R）大于1.5，以芦丁、槲皮素计理论塔板数均不低于3500。
2.2 对照品溶液制备精密称量芦丁对照品8.0 mg、槲皮素对照品4.7 mg，分别置25 mL容量瓶，甲醇定容至刻度，分别精密吸取1 mL稀释10倍，制成每1 mL中含有32 µg芦丁18.8 µg槲皮素的混合对照品溶液。
2.3 供试品溶液制备取苦荞茶样品适量，研细，精密称定约0.5 g，置于25 mL锥形瓶中，加入甲醇15 mL，避光超声处理40 min，上清液转入25 mL容量瓶。
苦荞麦黄酮含量的测定概述苦荞麦是一种优质的谷物，其种子中含有丰富的黄酮类化合物。
黄酮类化合物具有多种生物活性，如抗氧化、抗炎、抗肿瘤等作用。
因此，测定苦荞麦黄酮含量对研究与应用苦荞麦具有重要意义。
本文将介绍苦荞麦黄酮含量的测定方法及其应用。
测定方法UV-Vis分光光度法1.准备样品：将苦荞麦样品研磨成粉末，称取适量样品备用。
2.提取黄酮：将样品加入乙醇中，超声处理30分钟，然后过滤得到提取液。
3.分光光度法测定：将提取液取一定体积，根据黄酮的最大吸收波长（通常为350nm），使用分光光度计测定吸光度。
4.绘制标准曲线：取不同浓度的黄酮标准溶液，进行相同测定步骤，得到吸光度与浓度的关系曲线。
5.计算黄酮含量：根据标准曲线，计算样品中黄酮的含量。
高效液相色谱法（HPLC）1.准备样品：将苦荞麦样品研磨成粉末，称取适量样品备用。
2.提取黄酮：将样品加入乙醇中，超声处理30分钟，然后过滤得到提取液。
3.色谱条件设置：选择适当的色谱柱和移动相，设置流速和梯度条件。
4.进样和检测：将提取液注入色谱仪中，通过检测器检测黄酮成分。
5.计算黄酮含量：根据标准品的峰面积和样品的峰面积，计算黄酮的含量。
比色法1.准备样品：将苦荞麦样品研磨成粉末，称取适量样品备用。
2.提取黄酮：将样品加入乙醇中，超声处理30分钟，然后过滤得到提取液。
3.获取吸收光谱：将提取液置于分光光度计中，获取100-500nm范围内的吸收谱。
4.分析计算：根据吸收峰的位置和强度，计算黄酮的含量。
应用苦荞麦黄酮具有多种生物活性，因此其含量的测定在食品、保健品、药品等领域具有广泛的应用。
保健品开发苦荞麦黄酮作为保健品的主要活性成分，测定其含量可以指导保健品的开发和生产，保证产品质量。
食品添加剂苦荞麦黄酮可以增强食品的营养价值和功能，测定其含量可以指导食品添加剂的添加量和使用效果。
药物研究苦荞麦黄酮具有抗氧化、抗炎、抗肿瘤等多种作用，测定其含量可以为药物研究提供依据，寻找新的药物开发方向。
苦荞中总黄酮的含量测定苦荞又称鞑靼荞麦（Tartary buckwheat），为双子叶蓼科荞麦属植物，在我国西南、北方种植广泛，资源丰富。
苦荞含有黄酮类化合物、多种氨基酸、多糖、不饱和脂肪酸等许多化学成分。
药理和化学成分的研究表明，苦荞具有较明显的降血糖、降血脂、增强免疫功能等作用，其有效成分主要是芦丁、槲皮素等黄酮类化合物。
民间亦以食用苦荞防治糖尿病、高血压、高血脂等病。
目前，荞麦黄酮的测定方法有分光光度法、高效液相色谱法、毛细管电泳法。
本实验采用芦丁法直接测定黄酮含量，并与另外两种显色后的分光光度法进行比较，期望为苦荞中总黄酮含量的测定提供参考。
1、材料、试剂与仪器1.1 材料与试剂材料：苦荞样品分别取自会泽火红、云南大山包、罗平牛街。
芦丁对照品（批号：09072231，上海同田生物技术XX 公司），试剂均为分析纯。
1.2仪器紫外可见分光光度计（北京普析，TU1810）,超声提取器（上海仪器制造厂，SK3200H）,电子天平（德国赛多利斯CP-224S）。
2、方法与结果2.1 对照品和样品溶液制备2.1.1对照品溶液的配制精密称取芦丁对照品9.5mg置于25mL容量瓶中，用甲醇溶解并定容至刻度，摇匀，即得芦丁对照品溶液浓度为0.38mg/mL。
2.1.2 供试品溶液的配制分别取苦荞粉末(过60 目筛)约100mg 精密称定，置于25mL容量瓶中，加入60%乙醇2mL在常温下超声(59KHz)提取20min，用乙醇稀释至刻度，摇匀，即得供试品溶液。
2.2 总黄酮含量测定2.2.1 标准曲线的制定2.2.1 芦丁法精密移取2.1.1 项下的对照品溶液0.5 、0.8 、1.0、1.2、1.5ml于25mL容量瓶中，用60%乙醇溶液稀释并定容至刻度后，在360mn波长处进行测定，绘制标准曲线，得到回归方程为：Y= 0.028X + 0.0172(r = 0.9998)。
2.2.1.2 氯化铝法精密移取2.1.1 项下的对照品溶液0.6 、0.7、0.8、0.9、1.0mL于25mL容量瓶中，加入60%乙醇溶液5mL 5%氯化铝溶液3mL, 100mg/mL乙酸钠溶液5mL,再用60% 乙醇溶液定容至刻度后，放置40min,在420mn波长处进行比色测定，绘制标准曲线，得到回归方程为：Y= 0.0365X + 0.0278(r=0.9994)。
金荞和苦荞黄酮含量变异及其特色保健茶的开发研
究的开题报告
一、研究背景与意义
金荞和苦荞是常见的食用粮食和保健品材料。
其中，金荞含有丰富
的黄酮类化合物和多种营养成分，具有降血脂、抑制肝癌、增强免疫力
等功效。
而苦荞中的苦味物质具有药用价值，可用于降血压、治疗糖尿病、解毒等。
因此，金荞和苦荞被广泛用于开发保健食品和药物。
但是，在金荞和苦荞的生长环境、处理方法、品种不同的情况下，
其成分含量存在较大的变异性，导致产品功效和质量的不稳定性。
因此，对金荞和苦荞的主要活性成分——黄酮类化合物的变异规律和影响因素
进行深入研究，对于保障金荞和苦荞产品质量、提高功能效果具有非常
重要的意义。
二、研究目标和方法
本研究的目标是：1）分析金荞和苦荞黄酮类化合物的含量变异规律，探究影响其含量变异的因素；2）开发基于金荞和苦荞的特色保健茶，并评估其保健作用和适口性。
本研究的方法包括：1）分析金荞和苦荞样品的黄酮类化合物含量，采用高效液相色谱(HPLC)进行分析；2）对采集样品的土壤、气象等环境参数进行监测和分析；3）采用 L9(3^4)正交设计方法考察金荞和苦荞加工处理方法及时间对其功能成分的影响；4）针对金荞和苦荞的特性进行茶叶制作工艺的优化，并开发具有良好口感和功能的保健茶产品。
三、研究预期结果
本研究预计能够：1）通过对金荞和苦荞的样品进行多维度分析，探究黄酮类化合物含量的变异规律和相关因素；2）开发出基于金荞和苦荞的特色保健茶，具有良好的风味和保健作用；3）提供金荞和苦荞生产过
程中优化功能成分含量的参考依据；4）为金荞和苦荞产品的科学开发提供参考。
2008,No.2 25 收稿日期;修回日期作者简介田 龙(),男,博士研究生,讲师,研究方向为仪器分析和食品分析。
苦荞中抗氧化物质分子结构的波谱学分析田 龙(南阳师范学院生命科学与技术学院,河南南阳 473061)摘 要:选择超声强化提取法提取苦荞黄酮,采用聚酰胺柱层析和制备薄层层析对苦荞黄酮提取液进行分离纯化,通过抗氧化活性比较,筛选出抗氧化活性最好的样品F3,运用高效液相色谱法、紫外光谱法、红外光谱法、液质联用法、核磁共振法,对样品F3进行结构分析,确定苦荞黄酮的主要成分为木犀草素。
关键词:苦荞;黄酮;抗氧化;分离纯化;光谱中图分类号:T Q91 文献标识码:A 文章编号:1003-6202(2008)02-0025-03Spectr um Ana lysi s on M olecul a r S tr uc ture of An tioxidan ts i n Fa gopyrum Ta ta r i cum Ga er tnABSTRAC T:The flavonoids of fag opyru m tataricu m gae rtn wa s extracted forcedly by ultrasonic,then separated and purified with poly 2am ide colu m n chro m atography and PT LC.Sample F3was selected by screen the anti oxida tive activit y and its struc ture wa s e l ucidated by UV,I R ,LC -M S,1H -NMR,13C -N MR ,and wa s identifi ed as Luteolin .KEY W O RD S:fagopyru m tataricu m gaertn;flav onoids ;anti 2oxida ti on;s epa ra ting and puri fying;s pectru m 荞麦富含高生物价的蛋白质、维生素、矿物质元素等,且含有丰富的生物活性成分———黄酮类化合物,尤其是苦荞,其黄酮含量较高,比甜荞高10～100倍,这是其它谷类粮食所不具有的,也是黄酮的重要膳食来源。
方法开发报告：2012-APP-RLC-0182D-UHPLC分析苦荞麦中12个主要化学成分（LC-UV）(1为Quercetin-3-O-β-D-galactoside，2为Quercetin-3-O-β-D-glucoside, 3为Kaempferol-3-O-β-D-galactoside，4为N-trans-feruloyltyramine, 5为Kaempferol-3-O-β-D-glucoside, 6为Quercetin-3-O-α-L-rhamnoside, 7为Quercetin-3-O-[β-D-xyloxyl-(1→2)-α-L-rhamnoside]，8为1, 3, 6-tri-p-coumaroyl-6′-feruloyl sucrose, 9为3,6-di-p-coumaroyl-1, 6-di-feruloyl sucrose, 10为1, 6,6′-tri-feruloyl-3-p-coumaroyl sucrose，11为1, 3, 6,126′-tetra-feruloyl sucrose，12为rutin)苦荞麦又名乌麦、花麦、三角麦，是蓼科取苦荞麦药材粉末0.1000 g, 精密称定，置具塞圆底玻璃试管中，精密加入70% 乙醇2 mL ，密塞，称定重量。
室温浸泡30 min 后，超声处理（功率100W ，频率40 kHZ ）30min ，放冷，再称定重量，用70%乙醇补足减失的重量，摇匀，4500 rpm 离心10 min 。
用0.22μm 微孔滤膜过滤，作为供试品溶液。
3. 标准曲线和线性范围取系列浓度的标准曲线样品，从低浓度到高浓度连续进样，以被测物浓度（X ）为横坐标，被测物的峰面积之比（Y ）为纵坐标，按最小二乘法进行标准曲线的I C -10 0m m拟合，获得标准曲线线性回归方程和线性相关系数r2值。
结果见表1。
结果表明，12个化学成分在各自考察的浓度范围内，线性关系良好，线性相关系数r2均大于0.999。
表1 Calibration curves, LOD and LOQ data of investigated compounds by 2D-UHPLCAnalytes Calibration curves a r2Linearrange(μg/m l)LOD(μg/ml)LOQ(μg/ml)1. Quercetin-3-O-rutinoside y =0.1258x -0.1089 0.99971.02 -162.800.20 0.302. Quercetin-3-O-β-D-galactoside y =0.1582x -0.0800 0.99960.50 -80.800.15 0.203. Quercetin-3-O-β-D-glucoside y =0.1319x -0.1375 0.99951.03 -165.200.21 0.414. Kaempferol-3-O-β-D-galactoside y =0.1956x -0.0660 0.99980.52 -82.400.10 0.215. N-trans-feruloyltyramine y =0.5018x -0.2307 0.99960.52 -83.600.05 0.166. Kaempferol-3-O-β-D-glucoside y =0.1932x -0.1552 0.99961.01 -162.00.10 0.307. Quercetin-3-O-α-L-rhamnoside y =0.1700x -0.1644 0.99961.0 -160.00.20 0.408. Quercetin-3-O-[β-D-xyloxyl-(1→2)-α-L- rhamnoside]y =0.1288x -0.14290.99941.01 -161.200.20 0.409. 1, 3, 6-tri-p-coumaroyl-6′-feruloyl sucrosey =0.5425x -0.15720.99950.26 -42.200.05 0.1010. 3, 6-di-p-coumaroyl-1, 6-di-feruloyl sucrosey =0.5627x -0.16270.99950.25 -40.00.05 0.1011. 1, 6, 6′-tri-feruloyl-3-p-coumaroyl sucrosey =0.5642x -0.33070.99950.49 -78.800.05 0.1512. 1, 3, 6, 6′-tetra-feruloyl sucrose y =0.4061x -0.1296 0.99960.24 -39.200.07 0.12a y is the logarithmic value of peak area and x is the logarithmic value of the reference compound’s concentration (μg/ml).4.精密度和质控样品溶液稳定性通过测定日内及日间质控样品浓度变化来验证方法的精密度，测定低、中、高三种不同浓度的质控样品，将峰面积带入相应的标准曲线计算浓度，日内精密度实验中质控样品连续测定6次，日间精密度实验中质控样品每天测定1次，连续测定6天，测定浓度的RSD作为衡量精密度的指标。
结果表明（Table 2）所建立的分析方法日内精密度RSD小于3.3%，日间精密度RSD小于3.9%。
82.60 2.3 2.0 2.4 2.01.032.83.14.1 3.14. Kaempferol-3-O-β-D-galactoside5.15 3.3 3.0 2.9 3.041.20 2.5 3.8 2.8 3.81.04 0.3 0.9 0.6 0.95. N-trans-feruloyltyramine 5.22 2.8 3.7 2.8 3.741.80 2.6 3.9 2.8 3.92.02 1.9 1.3 1.3 1.36. Kaempferol-3-O-β-D-glucoside10.12 2.6 3.1 2.9 3.181.0 2.5 3.6 2.7 3.62.0 1.4 1.9 1.8 1.97. Quercetin-3-O-α-L-rhamnoside10.0 2.3 2.0 2.1 2.080.0 2.8 2.8 2.9 2.82.02 0.9 2.1 2.1 2.1 8. Quercetin-3-O-[β-D-xyloxyl-(1→10.083.0 0.9 2.5 0.9 2)-α-L- rhamnoside] 80.60 2.6 2.3 2.6 2.30.53 2.0 2.1 1.7 2.1 9. 1, 3, 6-tri-p-coumaroyl-6′-feruloyl 2.64 2.4 3.3 2.3 3.3 sucrose 21.10 2.5 3.0 2.6 3.00.50 2.3 2.9 2.3 2.9 10. 3, 6-di-p-coumaroyl-1, 6-di- 2.50 2.4 3.3 2.4 3.3 feruloyl sucrose 20.0 2.6 2.5 2.5 2.50.98 1.1 1.4 1.0 1.4 11. 1, 6, 6′-tri-feruloyl-3-p- 4.92 2.5 3.0 2.6 3.0Stability StabilityRSD (%) (n=6) RSD (%)(n=6)RSD (%) (n=6)1. Quercetin-3-O-β-D-galactoside 1.0 1.12.32. Quercetin-3-O-β-D-glucoside 1.8 2.3 1.03. Kaempferol-3-O-β-D-galactoside 2.5 2.7 3.24. N-trans-feruloyltyramine 1.2 1.9 0.95. Kaempferol-3-O-β-D-glucoside 1.8 2.7 0.86. Quercetin-3-O-α-L-rhamnoside 3.2 4.4 3.37.Quercetin-3-O-[β-D-xyloxyl-(1→2)-α-L-rhamnoside]1.1 3.02.0 8. 1, 3, 6-tri-p-coumaroyl-6′-feruloyl sucrose 1.3 2.0 1.49. 3, 6-di-p-coumaroyl-1, 6-di-feruloyl sucrose 1.1 1.8 0.810. 1, 6, 6′-tri-feruloyl-3-p-coumaroyl sucrose 1.4 1.7 0.911. 1, 3, 6, 6′-tetra-feruloyl sucrose 1.8 2.0 1.16.回收率称取苦荞麦茎粉末9份，称取量为样品测定时称样品量的二分之一，按各测定化合物含量的1:0.5（低）、1:1（中）、1:1.5（高）的比例加入各对照品贮备液，每个浓度制备3份，按样品前处理方法处理后，进行2D-UHPLC分析，带入标准曲线，计算回收率。
结果见表4，12个待测成分的回收率均在91.21%～107.76%37.39 18.22 54.92 96.21±0.03 3.5 6. Kaempferol-3-O-β-D-glucoside 37.39 36.45 71.46 93.47±0.03 3.237.39 54.68 93.01 101.72±0.01 0.634.47 18.0 52.17 100.51±0.05 4.9 7. Quercetin-3-O-α-L-rhamnoside 34.47 36.0 71.36 102.47±0.02 1.934.47 54.0 88.32 99.72±0.02 2.439.29 18.14 56.52 95.00±0.04 4.1 8. Quercetin-3-O-[β-D-xyloxyl-(1→39.29 36.27 76.35 102.18±0.02 2.02)-α- L-rhamnoside] 39.29 54.4 93.08 98.88±0.03 2.95.48 4.75 10.72 107.73±0.04 3.6 9. 1, 3, 6-tri-p-coumaroyl-6′-feruloyl 5.48 9.50 14.88 98.92±0.03 3.4sucrose 5.48 14.24 20.17 103.17±0.02 1.710.43 4.5 15.33 107.76±0.02 1.8 10. 3, 6-di-p-coumaroyl-1,6-di- 10.43 9.0 19.23 97.80±0.02 2.4feruloyl sucrose 10.43 13.5 23.82 99.17±0.03 3.218.96 8.86 27.81 101.22±0.03 3.3 11. 1, 6, 6′-tri-feruloyl-3-p- 18.96 17.73 37.12 102.41±0.02 1.6coumaroyl sucrose 18.96 26.6 44.79 97.12±0.01 1.011.23 4.41 15.87 105.11±0.04 3.612. 1, 3, 6, 6′-tetra-feruloyl sucrose 11.23 8.82 19.66 97.41±0.04 4.411.23 13.23 24.01 96.58±0.03 2.7 Recovery (%) = 100×(amount found – original amount)/ amount spiked.a The values were means ± S.D. of three experiments.7.8.苦荞麦茎2D-UHPLC色谱图图2 12个对照品色谱图LQ-root 0.08 - - - 0.09 - 0.12 - 0.56 0.56 0.44 0.32 LQ-stem 0.86 - 0.04 0.04 0.02 - 0.07 - 0.16 0.13 0.18 0.08 LQ-leaf 33.41 - 0.33 0.65 0.02 - 0.06 - 0.01 0.01 0.02 0.01 SZ-herb 3.10 0.30 0.51 - 0.03 0.02 0.05 - 0.02 0.15 0.05 0.04 SZ-root 0.23 0.56 0.35 - - - 0.29 - 0.09 1.19 0.22 0.12 SZ-stem 1.15 0.49 0.41 - 0.06 - 0.09 - 0.02 0.19 0.07 0.06 SZ-leaf 36.95 - 0.63 - - 0.16 0.09 - - 0.04 - - 09-herb 1.62 0.17 0.32 - 0.09 - - - 0.04 0.06 0.07 0.03 09-root 0.08 0.08 0.10 - 0.03 - - - 0.35 0.52 0.52 0.20 09-stem 0.57 0.29 0.46 - 0.12 - - - 0.06 0.09 0.10 0.04 09-leaf 8.07 - 0.25 - 0.07 - - - - - - - 08-herb 1.60 0.11 0.50 - - - - - - 0.02 0.03 0.0208-root 0.25 0.12 0.28 - - - - - 0.06 0.16 0.18 0.12 08-stem 1.49 0.18 0.44 - - - - - 0.01 0.04 0.04 0.04 08-leaf 2.98 0.07 0.17 - - - - - 0.01 0.03 0.03 0.03 1. Quercetin-3-O-rutinoside, 2.Quercetin-3-O-β-D-galactoside, 3.Quercetin-3-O-β-D- glucoside, 4.Kaempferol-3-O-β-D-galactoside,5.N-trans-feruloyltyramine, 6. Kaempferol-3-O-β-D-glucoside, 7. Quercetin-3-O-α-L-rhamnoside, 8. Quercetin-3-O-[β-D-xyloxyl-(1→2)-α-L-rhamnoside]9. 1, 3, 6-tri-p-coumaroyl-6′-feruloyl sucrose, 10. 3, 6-di-p-coumaroyl-1, 6-di-feruloyl sucrose, 11. 1, 6, 6′-tri-feruloyl-3-p-coumaroyl sucrose, 12. 1, 3, 6, 6′-tetra-feruloyl sucrose10.可行性建议本方法使用Acclaim HILIC-10 把苦荞麦全草部分分成两部分分别使用Acclaim PAII和Acclaim Phenyl-1分析柱进行二维分析，对于我们的目标化合物得到了理想的分离状态，对于其他干扰物也能达到很好的分离，对于苦荞麦全草的分析提供了有力的条件。
