组蛋白修饰
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组蛋白修饰在染色体功能中的作用组蛋白是构成染色体的主要蛋白质,它们有着重要的功能,如压缩DNA、影响转录、调节基因表达等。
然而,组蛋白中的一些修饰可以进一步调控这些作用。
在本文中,我们将探讨组蛋白修饰在染色体功能中的作用。
一、什么是组蛋白修饰?组蛋白修饰是指在组蛋白分子上添加化学修饰基团,从而影响其功能和结构。
修饰可以包括乙酰化、甲基化、磷酸化等。
乙酰化是指在组蛋白N末端的赖氨酸残基上添加乙酰化基团,这通常会解开组蛋白中的紧密结构,从而使DNA更加容易被转录因子识别和结合。
甲基化是指在组蛋白的赖氨酸残基上添加甲基基团。
这是一种影响基因表达的修饰。
它可以增强或减小特异转录因子对DNA结合的亲和力。
磷酸化是指添加磷酸根,这种修饰可以减弱各种蛋白质之间的相互作用,从而改变DNA中的染色体结构。
二、组蛋白修饰在基因转录中的作用组蛋白修饰在基因表达方面扮演着非常重要的角色。
许多研究表明,组蛋白修饰可以影响染色体区域的可接近性和转录调节因子的结合亲和力。
当染色体区域上的组蛋白受到不同类型的修饰时,它们可能会显现出异构性。
这种异构性可以与转录因子结合,进而调节基因的转录水平。
因此,组蛋白修饰对哪些基因被表达、哪些基因被沉默,起到了至关重要的作用。
三、组蛋白修饰在遗传学中的作用组蛋白修饰对遗传学也有着深刻的影响。
组蛋白修饰遗传元素可以通过染色体构象的变化,从而影响染色质的可达性和稳定性。
值得注意的是,组蛋白修饰在性质上是可以遗传的。
一些组蛋白上的化学修饰可以被记忆,并将遗传给下一代。
这种修饰不仅会影响染色质的稳定性,还可以诱导表观遗传状态的改变。
四、组蛋白修饰在发育中的作用组蛋白修饰在发育过程中也扮演着非常重要的角色。
实验表明,组蛋白修饰可以影响特定基因的表达,在胚胎发育和生殖细胞发育中起到至关重要的作用。
比如,组蛋白H3K27me3 在某些特定发育阶段与基因沉默有关。
该修饰通过影响转录因子和染色体可达性调节某些基因的表达。
组蛋白的甲基化和乙酰化组蛋白是一种存在于细胞核中的蛋白质,它在维持染色体结构和功能中起着重要的作用。
组蛋白的甲基化和乙酰化是两种常见的修饰方式,对基因表达和细胞功能具有重要调控作用。
甲基化是指在组蛋白上加上一个甲基(CH3)基团的化学修饰过程。
这个过程由一系列酶催化,并且可以在不同的位点上进行。
甲基化可以起到两种不同的作用:一种是直接影响DNA的结构,抑制基因的转录和表达;另一种是通过与其他蛋白质结合,招募特定的蛋白复合物来调节染色体的结构和功能。
甲基化的位点和程度可以决定基因的启动或关闭,从而影响细胞的发育和分化。
乙酰化是指在组蛋白上加上一个乙酰基(CH3CO)基团的修饰过程。
乙酰化主要发生在组蛋白的氨基酸残基上,特别是赖氨酸残基。
乙酰化可以通过增加组蛋白的正电荷来改变其电荷性质,从而影响染色体的结构和功能。
乙酰化还可以提供特定的结合位点,招募其他蛋白质结合并调节基因的表达。
乙酰化的位点和程度也可以决定基因的启动或关闭,从而影响细胞的功能和命运。
组蛋白的甲基化和乙酰化在细胞中是高度动态的过程,可以受到内外环境的调控。
甲基化和乙酰化的酶活性可以受到DNA序列、细胞因子和信号通路的调控。
这些修饰可以在细胞分裂、细胞分化和细胞应激等过程中发生变化,从而影响基因的表达和细胞的功能。
甲基化和乙酰化在遗传学、表观遗传学和癌症研究中具有重要意义。
通过研究组蛋白的甲基化和乙酰化状态,可以揭示基因组的结构和功能,理解基因调控的机制。
甲基化和乙酰化的异常可以导致基因的异常表达和细胞功能的异常,进而导致疾病的发生和发展。
因此,研究组蛋白的甲基化和乙酰化对于深入了解生物学和疾病机制具有重要意义。
组蛋白的甲基化和乙酰化是细胞基因表达和功能调控的重要机制。
这些修饰可以通过改变染色体的结构和功能来影响基因的表达和细胞的命运。
研究组蛋白的甲基化和乙酰化状态对于理解生物学和疾病机制具有重要意义,有望为疾病的诊断和治疗提供新的靶点和策略。
组蛋白修饰及其在基因转录调控中的作用DNA是我们身体中存储遗传信息的载体,但与其直接决定我们的生理和心理特征的,更准确的是基因表达。
基因表达指的是基因通过转录产生mRNA,进而转化为蛋白质的过程。
该过程需要启动子附近的基序和调节元件以及转录因子等多个因素协作进行。
除了基因序列和转录因子之外,还有一种被认为对基因转录起着非常重要调控作用的分子,这就是组蛋白修饰。
组蛋白修饰是一种对染色质中组蛋白进行的化学修饰,可以影响染色质的紧密度和可达性,在基因转录调控中扮演着重要的角色。
1. 组蛋白修饰的类型组蛋白修饰主要可以分为乙酰化、甲基化和泛素化三类。
乙酰化是指赋予组蛋白乙酰基,使烟花染色质张开,基因更容易被转录因子和RNA聚合酶识别并与之相互作用。
甲基化主要指在组蛋白上加上一个或多个甲基,可以使组蛋白更紧密地缠绕成压缩染色质状态,从而阻碍RNA聚合酶与基因的结合。
泛素化是指将组蛋白与泛素结合,可以促进转录因子和RNA聚合酶与组蛋白结合,从而增加基因转录的可能性。
2. 组蛋白修饰的作用组蛋白修饰影响了染色质的物理状态和化学性质,从而影响了基因转录。
在基因转录的启动过程中,组蛋白修饰扮演着“剪刀”和“黏土”的角色。
组蛋白修饰可以将染色质张开或紧密,从而直接或间接地影响RNA聚合酶与基因片段的接触,影响RNA聚合酶的接近和起始。
例如,在乙酰化的情况下,组蛋白具有更高的亲和力,RNA聚合酶与基因结合也会更容易。
此外,甲基化还可以影响DNA序列的可检测性,并负责调节启动子和调节元件之间的相互作用。
组蛋白修饰在基因转录调控中的作用可以概括为三个方面:首先,它可以实现区分在不同组织或状态下相同DNA序列的基因的目的,从而能够通过组蛋白修饰调控基因在不同环境下的表达;其次,组蛋白修饰可以协助转录因子识别和与合适的基因DNA结合;最后,可以通过调节和组织三维结构,影响转录和表达区域的相对位置。
3. 组蛋白修饰在疾病中的作用组蛋白修饰异常可以与疾病的发生和发展相关。
组蛋白的修饰和功能调节组蛋白是一种重要的蛋白质,它占据了染色体的绝大部分。
组蛋白具有重要的生理和生化功能,包括染色质的稳定和紧密的包裹染色质,以及在基因表达中调节的重要作用。
组蛋白分子的功能表现与它们的修饰有关,这种修饰调节染色质的结构和功能。
组蛋白是一个非常复杂的蛋白质家族。
它们的修饰可以分为多种类型,包括乙酰化、甲基化、泛素化、ADP-核糖基化(PARylation)等。
这些修饰可以改变组蛋白的结构和功能,从而影响调节基因表达的能力。
其中最常见的组蛋白修饰是乙酰化和甲基化。
乙酰化是指乙酰辅酶A(acetyl-CoA)与组蛋白结合,形成醋酸基团,这个修饰可以增强染色质的松弛程度并增强基因转录的活性。
甲基化是指一种或多种甲基基团的累积,在某些情况下会抑制基因表达。
另一种重要的组蛋白修饰是泛素化。
泛素是一种小分子蛋白,它可以粘附到其他蛋白质上,改变它们的结构和功能。
泛素化通常被认为是一种蛋白质的降解信号,但最近研究表明,泛素化也能够影响染色质构象和基因表达级别。
此外,ADP-核糖基化也是一种重要的组蛋白修饰方式。
这个修饰会在DNA损伤和基因表达调控中发挥作用。
ADP-核糖基化可以调节染色质异构化结构和其他蛋白质和染色质之间的相互作用,从而影响基因表达和染色质的稳定性。
这些修饰的不同组合和位置可以调节染色质构象和功能。
例如,在一些情况下,乙酰化和甲基化可以有互补的效应,进一步增强或抑制基因表达。
泛素化和ADP-核糖基化也可能会影响这些组蛋白和其他蛋白质之间的相互作用。
另外,组蛋白修饰也可以受到其他蛋白质的调节。
例如,组蛋白去乙酰化酶(HDACs)和组蛋白甲基转移酶(HMTs)是两种常见的蛋白质,它们可以控制组蛋白修饰的水平和具体位置。
这些酶类的活性变化可以通过信号通路的调节而被调控。
总之,组蛋白的修饰对于基因表达调控和染色质构象的调节非常重要。
对于我们的理解遗传和细胞增殖的过程以及一些疾病的发生可能都有重要的影响。
组蛋白修饰的化学机制组蛋白修饰是指细胞内染色质上的组蛋白蛋白质通过化学反应而发生的修饰。
这些修饰可以影响染色质的结构和功能,进而调控基因的表达和遗传信息的传递。
组蛋白修饰的化学机制对于生命科学和医学级别的研究具有非常重要的指导意义。
一、组蛋白修饰的种类和作用组蛋白修饰主要包括磷酸化、甲基化、乙酰化、泛素化等多种化学反应。
这些修饰会改变组蛋白的电荷状态、构象和活性中心的结构,会影响到染色质的紧密度和结构。
磷酸化是通过激酶酶催化组蛋白上的羟基、醇基等进行的一种化学修饰。
通过磷酸化,组蛋白蛋白质上的亚细胞定位和相互作用发生改变,从而影响染色质的结构、巨核细胞的分化和细胞周期的调控。
甲基化是一种通过酶催化组蛋白上的氨基酸进行的化学修饰。
乙酰化则是酰化酶催化组蛋白上的醇基或羟基进行的化学修饰。
这两种修饰都会影响组蛋白的染色质紧密度和原核生物状况的调控。
泛素化也是一种组蛋白修饰的化学反应。
泛素是一种小分子蛋白,通过泛素连接酶连接到组蛋白蛋白质上的特定亚基上,可以调节基因表达、DNA损伤修复和免疫应答等生命过程的参与。
二、组蛋白修饰的化学机制组蛋白修饰的化学机制是通过化学反应进行的。
磷酸化、甲基化、乙酰化、泛素化等修饰都是由特定的酶催化完成。
这些酶通常能够在具体的位点定向地作用于组蛋白上。
以染色质结构的调控为例,甲基化是通过了解组蛋白蛋白质上某些氨基酸的分布并寻找甲基化酶来实现的。
这些甲基化酶在细胞中都有固定的分布,可以通过定向抑制或激活这些酶来改变特定的染色质结构,进而调节基因的表达。
乙酰化是由某些酰化酶催化组蛋白蛋白质上的醇基或羟基进行的化学修饰。
乙酰化反应可以通过某些抑制剂或激动剂调控。
泛素化也是通过特定的酶催化完成,可以通过针对泛素连接酶定向抑制或阻断泛素连接的特定位点来实现染色质结构的调控。
三、组蛋白修饰的应用组蛋白修饰在许多科学领域都有着广泛的应用。
在生命科学领域中,组蛋白修饰可以用于调控基因的表达、探索细胞的信号传递机制和定位重要蛋白质。
常见组蛋白修饰1、H3K27ac组蛋白H3上的第27位赖氨酸残基发生乙酰化,与较高的转录激活有关,因此被定义为活性增强子信号,H3K27ac在TSS(转录起始位点)的近端远端都有发现。
1.1、赖氨酸的乙酰化与去乙酰化蛋白质通常在赖氨酸残基上发生乙酰化,这个反应依赖于乙酰辅酶A作为乙酰基团的供体。
在组蛋白乙酰化和去乙酰化过程中,组蛋白在N-末端赖氨酸残基上乙酰化和去乙酰化,是基因调控的一部分。
这些反应是由具有组蛋白乙酰转移酶(HAT)或组蛋白去乙酰化酶(HDAC)活性的酶催化的,尽管HATs和HDACs也可以改变非组蛋白的乙酰化状态。
通过乙酰化和去乙酰化对转录因子、效应蛋白、分子伴侣(molecular chaperones)和细胞骨架蛋白的调控是一种重要的翻译后调控机制。
这些调节机制类似于激酶和磷酸酶作用下的磷酸化和去磷酸化。
蛋白质的乙酰化状态不仅可以改变其活性,而且最近有研究表明,这种翻译后修饰还可以与磷酸化、甲基化、泛素化、素酰化等相互作用,以动态控制细胞信号转导。
1.2、与H3K4me1的平衡由于H3K27ac和H3K27me3修饰在组蛋白尾部的相同位置,它们相互拮抗。
H3K27ac常用于寻找活性增强子和平衡增强子,这些增强子是由含有所有增强子的另一个增强子标记H3K4me1减去的1.3、基因上调乙酰化通常与基因的上调有关。
H3K27ac是一个积极的增强标记。
它存在于基因的远端和近端区域。
它在转录起始位点(TSS)中富集。
H3K27ac与H3K27me3共享一个位置,它们之间存在拮抗作用。
2、H3K27me3H3K27me3是组蛋白H3上的27位赖氨酸发生三甲基化,这种三甲基化通过形成异染色质区域下调附近基因。
2.1 机制与功能在赖氨酸27上放置抑制标记需要通过转录因子募集染色质调节子。
这些修饰物要么是组蛋白修饰复合物(这些复合物可以共价修饰组蛋白以在核小体周围移动并打开染色质),要么是染色质重塑复合体(涉及核小体的移动而无需直接修饰它们)。
组蛋白修饰与染色质重塑的研究进展随着生物学研究的深入,科学家们对于基因的表达调控机制越来越关注。
在基因的表达调控机制中,组蛋白修饰与染色质重塑是影响基因表达的两个重要因素。
本文将从这两个方面介绍组蛋白修饰与染色质重塑的研究进展。
一、组蛋白修饰组蛋白修饰是生物体调控基因表达的重要机制之一。
组蛋白修饰主要对组蛋白的N端尾巴进行化学修饰,包括磷酸化、乙酰化、丝氨酸/苏氨酸磷酸化等。
组蛋白修饰能够影响染色质的结构和功能,从而调控基因的表达。
1.1 乙酰化图1. 组蛋白乙酰化在基因表达调控中的作用示意图。
组蛋白乙酰化是组蛋白修饰中的一种重要形式,能够影响基因的转录和转录后修饰。
组蛋白乙酰化通常发生在组蛋白的N端尾巴上,可以促进染色质松弛和开放,使得转录因子能够更容易地进入到基因的启动子附近,从而促进基因的转录。
1.2 磷酸化图2. 组蛋白磷酸化在基因表达调控中的作用示意图。
组蛋白磷酸化是组蛋白修饰中的另一种形式,其能够影响基因的转录、DNA 损伤修复和核小体装配。
通过组蛋白磷酸化,细胞能够调节基因的表达,对环境刺激作出及时反应。
1.3 多种组蛋白修饰的相互作用自然界中的一些生物体还能够进行多种组蛋白修饰,而且这些组蛋白修饰之间还能够相互作用和调节。
例如,组蛋白的乙酰化和甲基化可以相互协同作用,从而对DNA的可及性和基因的表达产生更复杂的调节作用,保证基因在不同发育阶段和生物过程中适当地表达。
二、染色质重塑组蛋白修饰是影响染色质结构和功能的机制之一,而染色质重塑更是可以改变染色质的结构和功能,对基因的表达产生重要影响。
染色质重塑具有复杂性、可塑性和灵活性。
2.1 重塑蛋白图3. 重塑蛋白在染色质结构调控中的作用示意图。
重塑蛋白(chromatin remodelers)是一类通过ATPase酶活动和其他机制,促进染色质结构转换和DNA可及性调节的蛋白质。
重塑蛋白能够将组蛋白移位或者去除,从而改变染色质紧密程度和复杂性,影响DNA的可达性和基因的表达。
组蛋白修饰在发生生物学中的重要作用组蛋白修饰是指对染色质上的组蛋白进行化学修饰的一类共享特征,主要包括乙酰化、甲基化、磷酸化、泛素化和腺苷酸化等修饰方式。
这些修饰可以通过改变组蛋白的化学性质,从而调节染色质的结构和功能。
组蛋白修饰在细胞生物学中起着重要的作用,可以影响基因表达水平、细胞分化和发育、DNA复制和修复、染色体结构和功能以及疾病的发生发展等方面。
首先,组蛋白修饰对基因表达水平的调控具有重要作用。
组蛋白的乙酰化修饰可以松弛染色质结构,使DNA更易向转录因子提供访问位点,从而增加基因的转录活性。
而甲基化修饰则可使染色质更为紧凑,难以访问,从而抑制转录因子的结合。
这些修饰方式的协调作用,能够调节基因的开放状态和关闭状态,影响基因的表达水平和模式,从而在细胞分化和发育的调控中发挥重要作用。
其次,组蛋白修饰也参与了细胞分化和发育的调控。
乙酰化修饰在胚胎发育和器官形成中发挥着重要作用,通过调节基因表达,促进细胞分化和组织形成。
磷酸化修饰在细胞信号转导过程中起着重要作用,参与调控细胞周期、细胞增殖和细胞分化等过程。
泛素化修饰可以介导改变染色质结构和功能的酶的降解,从而调节细胞分化和发育。
此外,组蛋白修饰还参与了DNA的复制和修复过程。
磷酸化修饰可以在DNA复制和DNA损伤应答过程中调节DNA复制酶和修复蛋白的活性和定位。
此外,组蛋白修饰还可以通过改变DNA结合蛋白的亲和性和结合模式,调节DNA复制和修复的进行。
最后,组蛋白修饰也与疾病的发生发展密切相关。
许多疾病,如癌症、心血管疾病和神经退行性疾病等,都存在组蛋白修饰异常。
例如,组织特异性甲基化修饰的失调会导致基因表达异常,进而引发癌症的发生。
而乙酰化修饰的异常则与炎症和免疫系统相关疾病的发生发展有关。
综上所述,组蛋白修饰在生物学中起着重要的调控作用。
通过改变染色质的结构和功能,组蛋白修饰调节了基因的表达水平、细胞分化和发育、DNA复制和修复、染色体结构和功能以及疾病的发生发展等方面。
组蛋白修饰的检测方法
组蛋白修饰的检测方法是在生物学研究中非常重要的一项技术。
组蛋白是核糖体的主要组成部分,也是染色质的基本结构单元。
通过对组蛋白的修饰状态进行检测,可以了解到基因表达的调控机制,以及相关疾病的发生和发展过程。
一种常用的组蛋白修饰检测方法是免疫沉淀技术。
这种方法利用特异性抗体与目标修饰的组蛋白结合,在特定条件下将修饰的组蛋白沉淀下来,然后进行进一步的分析。
例如,可以使用抗体对特定修饰位点进行免疫沉淀,然后通过Western blot、质谱分析等技术手段来确定修饰的类型和位置。
此外,染色质免疫共沉淀(ChIP)是另一种常见的组蛋白修饰检测方法。
ChIP 技术可以检测特定蛋白与染色质上的特定区域结合的情况。
通过修饰特异性抗体结合目标修饰的组蛋白,然后将修饰的组蛋白与相应的染色质区域共沉淀下来。
通过PCR、测序、芯片等方法对共沉淀下来的染色质进行分析,可以确定修饰的状态和作用区域。
最近,近年来发展起来的新一代测序技术也被广泛应用于组蛋白修饰的检测。
通过这种技术,可以对全基因组范围内的组蛋白修饰进行高通量的测定,包括甲基化、乙酰化、磷酸化等多种修饰。
这种方法不仅能够获取修饰的整体图谱,还可以揭示修饰与基因调控之间的关系。
总的来说,组蛋白修饰的检测方法是多种多样的,每种方法都有其独特的优势和适用范围。
通过这些方法,我们可以深入了解组蛋白修饰在生物体内的功能和调控机制,为进一步的研究提供了重要的工具和思路。
质谱检测组蛋白修饰
质谱是对组蛋白翻译后修饰进行全局、无偏、定量分析的强大工具,可以对组蛋白翻译后修饰进行定性、定量和位点鉴定。
百泰派克生物科技提供基于质谱的组蛋白翻译后修饰分析服务。
组蛋白修饰检测
核小体是染色质的最小结构单位,由组蛋白八聚体包裹有147个碱基对的DNA组成。
组蛋白功能由广泛的翻译后修饰(post-translational modification,PTM)介导,这些修饰对于核完整性至关重要,因为它们调节染色质结构并募集参与基因调控、DNA修复和染色体浓缩的酶。
采用基于抗体的技术(如western blot)可以表征组蛋白翻译后修饰的丰度,但这些方法的通量较低且不能识别未知的PTM。
质谱是对
组蛋白翻译后修饰进行全局、无偏、定量分析的强大工具。
质谱方法可对单个样品中的60多个修饰状态进行定量,远远超出了传统蛋白质印迹(western blot)的
能力。
因此,基于质谱的组蛋白分析已成为了解遗传和环境因素如何影响表观遗传状态的一种越来越流行的工具。
质谱检测组蛋白修饰。
质谱检测组蛋白修饰
质谱检测组蛋白修饰常常采用自下而上的策略,将完整的组蛋白用酶消化成短肽。
由于组蛋白富含精氨酸和赖氨酸残基,胰蛋白酶消化会导致产生的肽段太小,因此,消化前可通过丙酸酐衍生化组蛋白未修饰和单甲基化的赖氨酸残基,以防止胰蛋白酶裂解赖氨酸。
在液相色谱与质谱联用(LC-MS)时,产生适当大小的肽,以实现
最佳离子化效果。
组蛋白修饰质谱检测不仅可以对修饰进行定性和定量,还可以进行组蛋白修饰位点鉴定。
组蛋白修饰氨基酸
组蛋白修饰是指影响组蛋白结构和功能的化学修饰。
氨基酸是组蛋白的构成单元之一,因此组蛋白修饰也会涉及到对氨基酸的修饰。
常见的氨基酸修饰包括以下几种:
1. 乙酰化:通过给予赖氨酸或其他特定的氨基酸乙酰基而发生的修饰。
乙酰化会影响组蛋白的电荷分布和结构,进而影响其与其他分子的相互作用。
2. 甲基化:在赖氨酸、精氨酸、组氨酸等氨基酸上加入甲基基团,这种修饰形式常出现在组蛋白的尾端。
甲基化可以调控基因表达和染色质结构。
3. 磷酸化:将磷酸基团加到赖氨酸、丝氨酸和苏氨酸上,这种修饰在信号转导过程中起着重要的作用。
磷酸化可以改变组蛋白的结构和亲和性。
4. 泛素化:将泛素蛋白(Ubiquitin)共价连接到赖氨酸上,泛素化是一种降解信号,它标记被修饰的组蛋白以被泛素-蛋白酶降解。
5. 糖基化:在赖氨酸、赞氨酸和脯氨酸等氨基酸上加入糖基,这种修饰通常与细胞信号传导和细胞黏附相关。
这些氨基酸修饰能够调节组蛋白的结构、功能和相互作用,从
而影响细胞的生物学过程,例如基因表达、染色质组装和细胞分化。
造血干细胞髓系分化中相关基因组蛋白修饰特征的研究
造血干细胞是一种多潜能干细胞,具有自我更新和多向分化潜能。
它的多向分化潜能限定于造血系统的全体细胞包括红系细胞、粒系细胞、巨核系细胞、以及T、B淋巴细胞等。
伴随造血干细胞系特异分化的是多向分化潜能的丢失和系相关基因的活化与非相关基因的沉默。
其具体的调控机制如何,目前尚不清楚。
表观遗传学(epigentics)是研究不改变DNA序列而由于其外部修饰引起的基因开放与否的学科,涉及的主要机制有DNA甲基化、组蛋白修饰、基因印记、RNA干扰等。
其中研究得最多是DNA甲基化和组蛋白乙酰化、组蛋白甲基化,这些修饰与活化或失活染色质的结构形成相关。
目前研究显示表观遗传修饰在胚胎干细胞(embryonic stem cells,ESC)的多潜能性的维持和向各系分化的过程中发挥了重要作用,并提出了共价修饰的模型。
而表观遗传修饰在造血干细胞的多潜能性的维持和系特异分化中对相关基因的调控作用尚不明确。
因此本课题通过从与染色质状态形成密切相关的组蛋白修饰这个角度去观察造血相关基因在富集造血干细胞的CD34+CD38-细胞和系特异分化后细胞中的特征来探讨了染色质构象在造血干细胞多潜能特性的维持和系特异分化中对相关基因的调控作用,为造血发育、造血干细胞的体外扩增与移植和白血病发病机制的研究提供新的思路。
本研究分为以下三部分。
第一部分脐带血来源的CD34+CD38-细胞的体外纯化和向各系的诱导分化目的:建立一个可行的从脐带血中分选出
CD34+CD38-细胞的方法,并在体外摸索出有效的粒系、红系和巨核系的分化体系,为后续实验提供可靠的细胞标本。
方法:①采用免疫磁珠分选法(magnetic activated cell sorting,MACS)正性分选出CD34+细胞,再通过二次负性分选选出CD34+CD38-的细胞并用流式细胞术检测其纯度和用台盼蓝拒染法检测细胞活率。
②在体外应用
SCF+IL-3+G-CSF或EPO或TPO细胞因子的组合分别诱导CD34+CD38-的细胞向粒系、红系以及巨核系分化。
用细胞计数法绘制其各系细胞的增殖曲线及用流式细胞术检测诱导分化的效率。
结果:①用抗CD34磁珠第一次分选CD34+细胞后,CD34+细胞的纯度可达95.24±1.03%;第二次分选后,CD34+/CD38-细胞的纯度为90.23±2.52%。
分选前后细胞活力为均可达99%以上。
②体外诱导分化14天时,粒系细胞数增加了
1186.67±106.1倍,红系细胞数增加了894.67±48.22倍,巨核系细胞数增加了
627±49.65倍。
③流式细胞术检测的结果表明,在诱导分化的第14天,CD15+细胞的比率为91.49%,CD235a+细胞的比率为95.55%,CD41a+细胞的比率为86.520%。
结论:我们建立了有效的MACS分选方法和体外诱导方法,这为我们后续的实验提供了可靠的细胞标本来源。
第二部分微小染色质免疫共沉淀方法的建立目的:染色质免疫共沉淀(chromatin immunoprecipitation assay,ChIP)是目前研究蛋白质与DNA相互作用的强有力的技术之一。
然而目前的ChIP实验方法最大缺陷要求大量的细胞数,而我们分选的细胞很难达到这个要求。
因此我们的目的是建立一种能在少量细胞中进行的ChIP实验方法,称为微小染色质免疫共沉淀(miniChIP)。
方法:综合国外相关文献,在传统ChIP 方法的基础上建立miniChIP实验方法。
并通过运用传统的ChIP实验方法和在此基础建立的miniChIP实验方法对诱导前后的MEL细胞中表达的β珠蛋白基因的不同位点的组蛋白4的乙酰化(acH4)水平进行研究,证实新建的miniChIP实验法方法的可靠性和特异性。
Β珠蛋白基因的不同位点包括高敏位点2(HS2)、βmaj基因启动子区和Ey基因启动子区。
结果:在未处理的MEL细胞中,用miniChIP实验方法观察到HS2和βmaj基因启动子区域存在一定的acH4水平,而Ey基因的启动子区域则检测到极低水平的acH4水平。
MEL 细胞经过诱导后,HS2位点和βmaj基因启动子区域的acH4水平大大增加,分别增加了2.87和2,26倍。
Ey基因的启动子区acH4水平几乎没有变化。
这与我们用传统ChIP实验方法观察到的实验结果一致,也与以前别的研究者用传统ChIP实验方法得出的结果相吻合。
结论:在传统ChIP实验方法的基础上建立了一种可以在少量的细胞中进行的ChIP 实验方法称miniChIP。
并在诱导前后的MEL细胞中对此方法进行了验证,证实了miniChIP 方法的可行性和可靠性。
第三部分造血干细胞髓系分化过程中相关基因的组蛋白修饰特征目的:观察造血分化相关的转录因子和基因在CD34+CD38-细胞中以及分化后细胞中的组蛋白修饰特征,探讨染色质构象在造血干细胞多潜能性特性维持和系特异分化中的可能作用。
方法:①采用qRT-PCR的方法检测了造血分化相关转录因子和基因在不同类型细胞中的mRNA表达水平。
不同类型细胞包括CD34+CD38-细胞和诱导分化后的CD15+细胞、CD235a+细胞、CD41a+细胞。
造血分化相关转录因子和基因包括早期造血相关转录因子HOXA9;粒系分化相关转录因子PU.1,粒系特异基因MPO、CD11b;红系巨核系分化相关转录因子GATA-1、红系特异基因EPOR和巨核系特异基因CD41a;淋系分化相
关转录因子GATA-3、PAX5,淋系特异基因CD3、CD79a。
②我们用miniChIP-qPCR
实验方法在不同类型细胞中观察并比较了造血分化相关转录因子和基因的启动子区的6种
组蛋白修饰的变化。
这6种不同的组蛋白修饰分别为活化性组蛋白修饰包括组蛋白3的乙酰化(acH3)、组蛋白4的乙酰化(acH4)、组蛋白3第4位赖氨酸的二甲基化(H3K4me2)、组蛋白3第4位赖氨酸的三甲基化(H3K4me3)和抑制性组蛋白修饰包括组蛋白3第9位赖氨酸的三甲基化(H3K9me3)、组蛋白3第27位赖氨酸的三甲基化(H3K27me3)。
结果:①在CD34+CD38‘细胞中各系分化相关转录因子和基因存在低水平的mRNA表达或不表达,而与早期造血相关的转录因子HOXA9显示高表达。
当CD34+CD38-细胞向粒系特异分化后,粒系相关基因PU.1、MPO、CD11b表达明显增加;CD34+CD38-细胞向红系特异分化后红系相关基因GATA-1、EPOR表达明显增加;CD34+CD38-细胞向巨核系特异分化后巨核系相关基因GATA-1、CD41a表达显著增加。
同时CD34+CD38-细胞系特异分化后非系相关基因未能检测到,以及HOXA9基因的表达显著下降;②在CD34+CD38-细胞中各系分化相关转录因子和基因都有一定水平的acH4的修饰和稍低水平的acH3的修饰以及高水平的H3K4me2的修饰,但H3K4me3修饰水平很低。
③在CD34+CD38-细胞中各系分化相关转录因子和基因都具有低水平H3K9me3和H3K27me3的修饰;④随着CD34+CD38-细胞系特异分化后,该系特异基因的acH3、acH4和H3K4me2水平略为增加,但H3K4me3的水平明显增加,同时H3K9me3和H3K27me3修饰仍维持在低水平。
非系特异基因的acH3和acH4修饰水平降低,H3K4me3修饰仍维持在低水平,同时有H3K9me3或/和H3K27me3水平的显著增加;⑤在CD34+CD38-细胞向终末细胞分化后,与早期造血相关的转录因子HOXA9的启动子区上活化性组蛋白修饰包括acH3、acH4、H3K4me2、H3K4me3显著降低,同时抑制性组蛋白修饰包括H3K9me3和
H3K27me3明显增加。
结论:①在富含造血干细胞的CD34+CD38-细胞中各系分化相关基因具有一定水平的H3、H4的乙酰化修饰、高水平的H3K4me2修饰以及低水平的
H3K4me3修饰和低水平的组蛋白抑制性修饰。
这些基因表现为低水平表达或者检测不到表达。
②当CD34+CD38-细胞系特异分化后,系相关基因的acH3、acH4、H3K4me2修饰水平维持不变或者略微增加,但H3K4me3修饰水平明显增加,同时保持低水平的抑制性组蛋白修饰,基因表现为高转录状态,而非系相关基因的启动子区上acH3、acH4的修饰
水平降低,H3K4me3水平任然维持在低水平状态,但富集了高水平的抑制性的组蛋白修饰标志,基因表现为沉默。
③当CD34+CD38-细胞向终末细胞分化后,与早期造血相关的基因HOXA9的启动子区上H3K4me3的修饰水平降低,但抑制性组蛋白修饰标志显著增加,表现为基因表达的沉默。
作者唐华容
学科专业内科学
授予学位博士
授予单位中南大学
导师姓名陈方平
学位年度2009
关键词白血病造血干细胞组蛋白修饰转录因子基因表达。