秋水仙素
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高中生物教材中秋水仙素作用机理简介
秋水仙素(学名:α-环糊精)是一种重要的抗癌新药物,它的作用机理主要是通过抑制细胞的增殖和分化、调节癌细胞的凋亡,来延长或紊乱癌细胞的周期,从而起到抑制癌细胞生长的作用。
秋水仙素可以在DNA上寻找导致突变和癌症发生的特定序列,并将其破坏。
一旦破坏完成,细胞表观遗传物质就会抑制细胞以正常方式繁殖,这种抑制现象被称为DNA的组蛋白修饰,此时细胞就会停止生长而死亡。
秋水仙素还能够直接破坏细胞膜,造成细胞膜非正常通透性和渗透性,使细胞间活动性受限,导致细胞流失。
此外,秋水仙素也可以抑制细胞核苷酸和蛋白质合成作用,阻碍细胞的正常新陈代谢和再生。
最后,秋水仙素可以抑制细胞周期参与途径,使DNA不能正常复制,即癌细胞复制其DNA和正常细胞的繁殖过程被受阻。
以上就是秋水仙素的作用机理简介,它的具体机理对于对抗肿瘤有重要的意义,使得秋水仙素成为了治疗肿瘤的重要新药。
秋水仙素抑制的原理
秋水仙素是由秋水仙科植物产生的一种天然毒素,它的主要作用是抑制神经肌肉接头处的乙酰胆碱酯酶活性,从而干扰乙酰胆碱在神经肌肉接头的传递。
乙酰胆碱是一种重要的神经递质,在神经肌肉接头起到传递神经信号的作用。
秋水仙素通过抑制乙酰胆碱酯酶的活性,导致乙酰胆碱在神经肌肉接头中积聚,进而破坏了神经肌肉的正常传导。
这会导致肌肉无法收缩,从而引发一系列中毒症状,如肌肉无力、麻痹、呼吸困难等。
另外,秋水仙素还可以直接刺激神经肌肉接头的兴奋性,导致过度兴奋并引发抽搐等症状。
这是因为秋水仙素可以干扰神经肌肉接头的钠离子通道,改变神经肌肉接头内的电位,使其过度兴奋。
总的来说,秋水仙素的抑制作用主要是通过抑制乙酰胆碱酯酶活性、积聚乙酰胆碱和直接刺激神经肌肉接头的兴奋性来实现的。
这一系列的作用使秋水仙素成为一种非常强有力的神经毒素。
秋水仙素的诱导机理文/吴举宏秋水仙素是1937年发现的,从百合科植物秋水仙种子、球茎中提取出来的一种植物碱,分子式为C22H25O6N。
秋水仙素呈白色或黄色粉末或针状结晶,有剧毒,易溶于冷水、酒精和氯仿,难溶于热水、乙醚等,有效诱导浓度为0.0006%~1.6%,一般以0.2%浓度效果最好。
常被用作多倍体诱导剂,经处理的萌发种子或幼苗细胞染色体数会发生加倍。
其诱导加倍的机理与微管、着丝粒的结构和特性有关。
微管是广泛存在于各种真核细胞中的一种重要细胞结构,细胞分裂中纺锤体就是由微管组成的。
微管管壁由13条原丝纵向平行排列构成,主要成分为微管蛋白,而微管蛋白分α微管蛋白和β微管蛋白两种。
α微管蛋白和β微管蛋白组成的异二聚体构成微管亚单位,若干个异二聚体相接连成原丝。
α微管蛋白与β微管蛋白在化学结构上极为相似,两者相对分子质量均为50000,氨基酸数目分别为450和445个,两者42%序列相同。
其中β微管蛋白肽链中第201位为半胱氨酸,为秋水仙素结合部位。
α微管蛋白和β微管蛋白彼此间具有很强的亲和力,常呈二聚体形式存在。
每一微管蛋白异二聚体上尚有秋水仙素与之结合的部位,如果结合的部位被其结合,微管不仅不能继续聚合,而且会引起原有微管解聚。
故秋水仙素具有干扰微管装配,破坏纺锤体形成和终止细胞分裂的作用。
细胞分裂间期染色体经过复制形成了两条姐妹染色单体,但在进入后期之前,姐妹染色单体在着丝粒区连结在一起。
着丝粒位于染色体上的主缢痕部位,为染色单体的连接结构,而动粒才是动粒纤维附着在染色体的结构。
着丝粒是由一段特殊DNA序列构成,着丝粒DNA具有高度重复序列,如小鼠染色体着丝粒约有300个碱基对重复几千次组成,含量占染色体DNA的5%~10%,而在果蝇细胞中可达40%。
Clarke等学者认为,着丝粒区域DNA可能编码一种特殊信号,使其复制在S期受阻遏,一直到后期这一区域DNA 复制才完成。
着丝粒DNA复制完成也就启动了后期染色单体的分离,故姐妹染色单体分离动力不是来自与两极相连的动粒微管张力。
高中生物秋水仙素知识点
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10. 嘿,可别小瞧了秋水仙素哦!它的本事大着呢!就像一个无声的创造者。
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我的观点结论:秋水仙素在高中生物中是个非常重要且有趣的知识点,它能带来很多奇妙的变化和应用,值得我们好好去了解和探索呀!。
秋水仙素元素组成秋水仙素(Botanic name:Colchicum autumnale L.)又称秋海棠,属十字花科,秋海棠属多年生草本植物,其分布地方广泛,主要分布于欧洲、亚洲、非洲等地区。
药材中包含许多有药用价值的元素,其中有数种主要生物碱,有花青素,乙酰乙酸等均被确认为秋水仙素的主要成分。
秋水仙素所含的主要元素有:一、主要的生物碱芹菜碱(colchinidin)是一种氮环汞烷酰脲类碱,其性质是白色粉末,酸碱性亲水性低,在水中只有10—20%的溶解,在乙醇、乙酸、甲醇和苯中很容易溶解。
其含量约为2—4%,在秋水仙素中含量最多,是许多药效的起因物质。
芹菜碱以外,秋水仙素中还含有次要的生物碱,包括硝基唑类吡唑碱(colchicin)、氨基异唑酮类异唑碱(colchicinone)、芹菜碱的半硝基衍生物等。
秋水仙素药材中含有谷氨酸(glutamic acid),也称为L-谷氨酸,为氨基酸中最常见的氨基酸,可促进新陈代谢,维持神经能量平衡,促进血液中 Albumin 与白蛋白的结合状态,其在抗氧化、代谢紊乱、肝衰竭及血液疾病等方面有良好的作用。
秋水仙素药材中含有大量的酯类物质,其中主要有Bergapten、Terpene、Glycosylated alcoholysis、Acetylated vegetable oils和Cyclic acids等。
它们具有抗菌作用和抗病毒作用,对腐烂病害及其他病害有一定的防护作用。
花青素(flavonoid)是一类多糖醇或多乙醇类化合物,是有机物生物活性指示物之一,具有抗菌,抗氧化、抗癌等作用,在药物药理学中也具有重要的作用。
乙醇酸(ethanol acid)是有机物中的重要成分,有一定的防腐作用,同时可以从其中提取的乙酰基乙醇酸也是一种重要有机酸,能够抑制有害微生物的生长,从而起到抗菌作用。
秋水仙素是一种抗癌药物,它具有良好的抗肿瘤活性,能够有效地抑制肿瘤的生长发展,提高患者的生活质量。
因此,了解其原理对于治疗肿瘤是至关重要的。
首先,秋水仙素具有抗肿瘤作用,主要是通过阻断DNA损伤修复,阻止癌细胞的生长和繁殖。
它可以结合DNA中的嘌呤二核苷酸(dGTP),阻断DNA复制,使癌细胞停止增殖,从而抑制肿瘤生长。
其次,秋水仙素还可以抑制肿瘤细胞凋亡。
它可以通过抑制癌细胞凋亡相关蛋白(如Bax)的表达,增加癌细胞凋亡的抗性,抑制癌细胞的凋亡,从而延长癌细胞的存活时间。
此外,秋水仙素还可以抑制肿瘤细胞的免疫抑制作用。
它可以抑制肿瘤细胞表面的MHC-II表达,从而抑制肿瘤细胞的免疫抑制作用,提高机体对肿瘤的免疫应答。
最后,秋水仙素还可以抑制肿瘤细胞的血管生成。
它可以抑制血管内皮细胞的增殖和迁移,从而阻断肿瘤细胞获得营养和氧气的供给,抑制肿瘤细胞的血管生成。
总的来说,秋水仙素的抗肿瘤作用主要是通过阻断DNA损伤修复、抑制肿瘤细胞凋亡、抑制肿瘤细胞的免疫抑制作用和抑制肿瘤细胞的血管生成等机制实现的。
秋水仙素可以有效抑制肿瘤细胞的生长,提高患者的生活质量,为治疗肿瘤提供了一种有效的治疗方法。
秋水仙素
【中文名称】:秋水仙素
【英文名称】:Colchicine
【C A S号】:64-86-8
【植物来源】:百合科植物丽江山慈菇 Iphigenia indica Kunth et Benth和秋水仙Colchicum autumnale L的球茎。
【别名】:秋水仙碱
【分子式】:C22H25NO6;
【分子量】:399.44
【熔点及溶解度】:142-150℃,易溶于冷水、乙醇和氯仿,在热水中难溶,在乙*中极微溶解,不溶于石油醚。
【结构式】:
【产品简介】:淡黄色结晶性粉末,一种生物碱,无臭,遇光色变深。
【产品规格】:98%,99% HPLC
【药理作用】:抗肿瘤,抗痛风对痛风急性发作有特异性作用,12~24h内减轻炎症并迅速止痛,还可用于治疗慢性肝炎和肝硬化。
【应用剂型】:栓剂、洗剂、注射液、片剂、胶囊等。
【产品保存】:置于阴凉干燥、避光,避高温处。
【保质期】:两年
【生产厂家】:陕西永健制药有限公司。
植物多倍体的诱导与鉴定摘要本试验以大蒜鳞茎作为试验材料,通过使用不同浓度的秋水仙素进行诱变处理,以期获得多倍体的植株。
之后通过植株的形态指标测定,干湿重测定,气孔鉴定,染色体计数等鉴定倍性。
结果表明,0.05%和0.1%浓度的秋水仙素处理24h,有使植物染色体加倍的作用,达到诱导植物多倍体的目的。
相比较而言0.05%浓度的秋水仙素致突变率较高。
且结果显示,0.1%浓度秋水仙素具一定毒害作用,抑制植株的生长。
本次试验使个人掌握了人工诱导多倍体的原理与方法。
倍性育种作为一种快捷的育种方法,创造出的多倍体植物通常具有植株粗壮,花朵硕大,花期长适宜性增强等特点,而且同源多倍体还可以克服远源杂交不育的弊端,形成性状稳定的新品种。
因此,倍性育种在现代植物育种中具有主要地位和广阔前景。
天然多倍体发生频率低,数量有限,不易发现和选择,难以挖掘利用。
随着植物育种技术和多倍体诱导技术的发展,人们常利用人工诱导的方法提高多倍体的发生频率,从而创造植物多倍体类型。
目前,已有研究的有植物多倍体人工诱导技术,各种植物诱导的最好的诱导技术与条件,植物各特征与倍性的关系等等。
[1]本实验以不同浓度秋水仙素为诱变剂,对大蒜鳞茎进行诱变处理。
植物多倍体人工诱导方法主要可分为物理诱导法、化学诱变法、胚乳培养法和细胞融合法等。
其中秋水仙素是应用最广且效果最好的化学诱变剂。
秋水仙素的作用在于当它与正在分裂的细胞接触后,可抑制微管的聚合过程,使细胞中的纺锤丝合成受阻,从而阻止染色体向两极移动,形成染色体加倍的核。
适宜浓度的秋水仙素能阻碍正在分裂的细胞纺锤丝形成,但对染色体的构造无明显影响,仍然保持细胞的活性,细胞经处理后在一定时间内即可恢复正常分裂能力。
对植株的倍性鉴定,本试验采用中期染色体计数,生理生化指标的测定,植株形态指标测量进行。
本试验通过秋水仙素诱导植物多倍体,各方法鉴定倍性,研究了不同浓度诱变剂对植物的诱变作用,秋水仙素的毒害作用。
熟悉人工诱导多倍体的原理,初步掌握用秋水仙素诱发多倍体的方法。
掌握植物多倍体细胞染色体加倍的特点及染色体制片的一般方法1 材料与方法1.1 种子来源正常,均大的大蒜鳞茎。
1.2 实验处理方法1.2.1 大蒜种子先用清水浸泡12小时,催根芽萌动后倒掉水分,分别浸在0.05%,0.1%的秋水仙素溶液24小时(浸没种子的2/3)。
另有一组为对照组,浸在蒸馏水中处理相同时间。
处理种子时使用培养皿,下面铺上滤纸或双层纱布保湿。
1.2.2 24小时后,取出种子,用自来水冲洗种子及根2-3次以去除残留的秋水仙素。
将萌发种子移到清水中培养发芽。
种子根尖长到1cm左右时后取出幼苗盆栽。
栽种前取1~2颗种子的10余个根尖固定后保存于70%乙醇中,用于观察中期染色体加倍情况。
1.2.3 把处理后的幼苗栽种在盆钵内,同期栽种未经处理的的种子作为对照。
(每小组一个长条形盆,栽种时土与肥料比例约5:1)1.2.4 栽种期间给以良好的管理。
定时浇水,每日给予长时间的日照。
1.2.5 处理组与对照组形态及生理生化指标的测定与比较。
(待对照组长至株高15-20cm时,测定生理生化、形态指标。
)1.3 观察方法1.3.1 中期染色体观察1.3.1.1取出早期保存于乙醇中的根尖,投入卡诺氏固定液中固定15min。
1.3.1.2取固定保存的材料放置1N盐酸中于60℃的水浴温度下,处理6~8分钟,至透明为止。
1.3.1.3用清水冲洗干净解离液。
1.3.1.4取洗净的材料,放在载玻片上,用改良品红染色10min。
然后将材料移至另一清洁的载玻片上。
重新用染液装片,覆以盖玻片,以铅笔的橡皮头端轻轻压盖玻片,使材料呈现分散的薄层,置镜下观察。
1.3.2 形态观察测量测定各实验组植株的株高,根数,根长,叶长,叶宽的数值。
每组随机选取3株健壮的植株测量。
其中,株高为自植株基部至顶端的自然高度;叶长为从叶柄到叶尖顶端的长度,本试验统一选用植株的中部进行测量;叶宽为垂直叶柄的宽度。
1.3.3 生理生化指标测定1.3.3.1 萌芽率统计1.3.3.2 植株干、湿重测定1.3.3.3 叶片气孔大小与密度待植株地上部分达15cm长,9:00am 时,每组随机选取3株健壮的植株观察,每株植株选取幼嫩叶片3片,撕取叶片下表皮置于载玻片上,滴 1 滴蒸馏水,盖上盖玻片,显微镜下观察气孔保卫细胞。
分别统计3个不同视野的气孔个数。
2 结果2.1 中期染色体计数图一对照组鳞茎根尖细胞的染色体(10*40)图二 0.05%秋水仙素处理的根尖细胞的染色体(10*40)图三 0.1%秋水仙素浓度处理的根尖细胞染色体(10*40) 图一为对照组未加倍的大蒜鳞茎根尖细胞染色体数目为2n=16,为二倍体。
图二为用0.05%秋水仙素处理24h后的大蒜鳞茎根尖细胞,染色体数目为2n=32,染色体已经加倍。
可以确定该实验组的植株为四倍体,染色体数目是二倍体的两倍。
图三为用0.1%秋水仙素处理24h后的大蒜鳞茎根尖细胞,大部分细胞染色体数目为2n=16,未加倍,仍为二倍体。
少量细胞染色体数目为2n=32,为四倍体。
可见,较低浓度的秋水仙素处理24h能够有效是细胞染色体加倍,但较高浓度下,如0.1%浓度的秋水仙素处理相同时间加倍作用较弱。
浓度植株株高(cm) 根长(cm)根数叶长(cm)叶宽(cm)0 1 5.71 11.51 18.00 14.25 0.812 14.03 6.03 5.00 11.41 0.713 13.41 12.71 20.00 7.18 0.924 19.11 10.71 15.00 10.33 0.835 10.30 16.23 15.00 9.32 1.026 9.31 15.54 25.00 3.92 0.737 15.11 5.42 28.00 5.91 0.858 9.33 1.67 20.00 3.92 0.74 平均值12.94 11.16 20.14 7.43 0.83由表一与图中可以得到结果:与对照组相比较,0.05%浓度处理的大蒜蒜瓣生成的植株生长状况较好,除根长、叶宽有较小差距外,株高、根数、叶长数值都较大。
而0.1%浓度的秋水仙素处理的实验组,除根长与叶宽差别微弱外,各组数据都较对照组与较小浓度处理的实验组小,说明生长状况较差。
低浓度的秋水仙素处理得到的多倍体植物表现出的“巨大性”,主要体现在外形较大,叶片宽,叶色浓绿,根数多。
但在较高浓度的秋水仙素处理下,结果相反,表现出植株矮小,根数少。
这可能是因为变异株受秋水仙素的影响,变异机理不同。
也有可能是秋水仙素的毒害作用,抑制了植株的生长。
2.3 生理生化指标2.3.1 萌芽率统计表二各浓度处理下种子萌芽率1 2 3秋水仙素浓度0 0.05% 0.10%萌芽率100% 100% 87.50% 有实验数据结果可知,较高浓度的秋水仙素对植物的萌发有影响,可能是因为染色体的过多加倍,会使细胞死亡。
2.3.2 干湿重表三各浓度处理下植株干湿重1 2 3秋水仙素浓度0 0.05% 0.1% 湿重(g)58.99 63.39 51.82 干重(g)30.76 55.14 23.32 干湿重比0.52 0.87 0.45 植株的干湿重比可作为衡量植物生长状况的参数。
由表三数据可知,0.05%浓度实验组的植株生长较好,单位植株重量含营养成分较未变异体多,具有多倍体的性质。
而0.1%浓度处理的实验组数据显示,单位植株重量含营养成分营养成分反而少,说明该组植物生长受到负面影响。
3.3 气孔鉴定植物叶表皮保卫细胞密度与其叶片细胞大小成反比, 保卫细胞大小与其叶片细胞大小成正比, 通过观察和测量不同倍性的植物叶表皮上的保卫细胞, 计算保卫细胞的密度和面积, 分析数据, 从而得出相应的结论。
[2]图五对照组无处理植株的气孔(10*40)图六0.05%秋水仙素处理植株气孔(10*40)图七 0.1%秋水仙素处理植株的气孔(10*40)表三不同浓度处理的植株叶片气孔密度视野 1 2 3 秋水仙素浓度0 0.05% 0.10%气孔密度1 28 14 272 30 12 103 15 20 24 平均24 15 20与对照组比较气孔密度,可以判断0.05%秋水仙素处理的多倍体植株细胞较大,表现出多倍体的巨大性。
而诱变未成功的0.1%浓度实验组保卫细胞密度与对照组相近。
通过观察,可以发现0.05%浓度实验组的气孔体积较大,可推断该组的植株细胞较大。
因此气孔的密度与体积大小可以作为多倍体鉴定的依据之一。
3 讨论3.1 结果分析3.1.1 秋水仙素浓度与植物多倍体诱导的关系在本次试验中,0.05%浓度处理的实验组经鉴定为多倍体,细胞内染色体为2n=32,表现出了多倍体的巨大型、营养成分含量高等特征。
说明秋水仙素诱导其变异成功。
可以得到结论:0.05%浓度秋水仙素采用浸泡种子的方法处理24h能够成功地诱变多倍体,但变异率还有待研究。
0.1%浓度处理的大蒜种子出现了萌发率降低,根数减少,植株出现外形矮小,发育不健全的现象。
同时通过倍性鉴定,可以发现0.1%浓度实验组的只有少量细胞染色体发生加倍。
与植株秋水仙素的毒害性较大,如处理不得当,无法使植物细胞加倍的同时,也会对植物外植体材料造成严重的毒害作用,甚至使外植体材料死亡,对诱变效率有较大的影响。
因此我们需要筛选合适的处理浓度及处理时间3.1.2 秋水仙素的毒害作用秋水仙素有剧毒, 对植物体有毒害作用, 常常使材料在处理过程中死亡, 而且抑制种子的萌发和根的生长。
高浓度的秋水仙素处理会抑制植株的生长,可能与秋水仙素抑制细胞分化有关。
同时不能忽略处理时间长短的控制。
在秋水仙素处理植株时,还要注意植株的生长条件,尤其是温度条件的控制,低温会阻碍细胞分裂,过高的温度则使秋水仙素对细胞的损害增大,同时也加速秋水仙素的变性。
[3]3.1.3 嵌合体现象嵌合体是指具有两种或两种以上基因的植株, 在本次试验中,各个实验组都存在。
可能是因为在处理过程中, 并不是全部分生细胞的染色体数都同样的加倍,。
成功的处理使多数细胞都能加倍,可能的减少未加倍的细胞, 这样才能保证加倍的细胞繁殖;否则受环境干扰大, 并且可能产生回复突变。
这可能与处理时外植体所处的生长时期,或者处理的部位对诱变剂的敏感度有关。
3.2 反思3.2.1本实验的成功之处在这次实验中,我们研究了不同浓度相同处理时间对植物倍性的影响,并通过形态观察、生理生化指标测定、染色体计数等鉴定方法对多倍体的初步特征进行了研究。
对秋水仙素作为诱变剂的作用机制有了初步的认识。
并了解了这个诱变方法所存在的问题,如:诱变率不高,容易出现嵌合体;剂量与处理时间的控制,以及其它诸多因素对结果的影响。
3.2.2所存在的不足在本次试验中,应增加对试验材料变异率的测定,统计各浓度下的细胞变异的比例,可以更主观、直接地研究不同浓度诱导剂的作用强度。