叶绿体蛋白的提取

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一.样品的制备
1. 样品的处理
(包括CK和TRE)用20% 的PEG-6000(渗透势大约为-1.88MPa)诱导干旱胁迫(D),直到它们的相对含水量达到83%-86%(一般3天)。

然后高温胁迫(H)处理在光照培养箱中进行,温度40℃,处理时间为24个小时(恢复0h:R0)。

然后R12,R24,R36,R48。

DH处理前,R0,R12,R24,R36,R48:CK,CK+TRE,CK+DH,CK+TRE+DH; DH处理后,取第3 片全展叶为试材,进行叶绿体蛋白组的分析。

每个处理重复3 次。

(CK,CK+TRE,CK+DH,CK+TRE+DH)
2.叶绿体的分离
(1)剪取10g小麦叶片,将叶片剪碎,液氮研磨;
(2)加入5倍体积4℃预冰冷的buffer A(buffer A:50mM Tris-HCl,20mM EDTA 0.5M蔗糖,0.25M Vc,pH3.5),匀浆用8层医用纱布过滤滤液至预冷的50mL离心管中,弃残渣。

(3)滤液1500g/min,15min离心,弃上清,留沉淀。

(4)向沉淀中加入3mL bufferA,充分悬浮,转入10mL离心管中。

(5)2000g/min,15min离心,弃上清,收集沉淀。

(6)加入2mLbufferB,充分悬浮。

(buffer B:50mM Tris-HCl,20mM EDTA,0.5M蔗糖,1%BSA,7mM β-巯基乙醇现用现加)
(7)1500g/min,离心10min,弃上清,收集沉淀,再用bufferB 洗一次。

(8)同上离心,弃上清,再加bufferC洗一次,离心,沉淀大部分为叶绿体。

(buffer C:50mM Tris-HCl pH8.0,20mM EDTA,0.5M蔗糖)
3.叶绿体的纯化
(1)制作不连续的percoll密度梯度,先在超速离心管中加入3mL 的60%的percoll,然后沿管壁缓缓加入4mL的40%percoll,最后加入5ml 20%的percoll。

Percoll浓度(%)706050403020 比重g/ml 1.090 1.077 1.067 1.056 1.043 1.031
问:请问percoll连续梯度怎么配制?比如15%---75%的percoll 连续梯度? 答:根据你需要的具体密度梯度决定的,根据要分离的不同细胞种类,数量等等,也有用原液配的。

也有用80%配的,不一定的。

另外,percoll本身是低渗透压的,要用高渗透压溶液配成生理等渗透压溶液,然后使用,不然,细胞容易破裂。

一般是先用9份Percoll与1份8.5% NaCl或1.5M PBS混合达到生理性渗透压,然后用生理溶液(0.85% NaCl或0.15M PBS)稀释到所需浓度。

即取Percoll原液与10倍浓缩的PBS以9:1的比例混合,此时溶液为100% Percoll,比重是1.127。

(2)将粗提出的叶绿体加入离心管中,8000g/min离心lh。

(3)在20%和40%之间是一些密度较小的细胞器或破碎的叶绿体,在40%和60%之间是纯化的叶绿体,在试管底部还有一些沉淀。

用注射器扎入40%和60%的界面,吸出叶绿体。

(4)加入等体积的bufferC(50 mM Tris-Hcl pH8.0,20 mM EDTA,0.5 M蔗糖),10000rpm离心5min,再用bufferC洗一遍,沉淀即为纯化的叶绿体。

4.叶绿体纯度的鉴定
4.1显微镜观察
用bufferC将叶绿体溶液稀释lO倍,滴到载波片上,可见光下观察叶绿体形态、紫外线下观察叶绿素荧光,比较叶绿体和叶绿素荧光重叠程度。

(荧光显微镜)
4.2特异酶检测
过氧化氢酶活性的检测:先用BCA法测蛋白浓度,然后用过氧化氢酶检测试剂盒检测
5.叶绿体蛋白的提取及溶解
(1)纯化的叶绿体(10g片)加入1.5mL Buffer(100mM Tris,100 mM edta,50mM borax,50mM Vc,1%TritonX-100,2%β-巯基乙醇,30%的蔗糖),将纯化的叶绿体剧烈悬浮,室温5min。

(2)加入等体积Tris饱和酚(pH8.O),剧烈震荡10min。

(3)4℃,15000g离心15min,将上层的酚转移到新的试管中。

(4)加入5倍体积的硫酸铵饱和甲醇沉淀蛋白,-20℃,6h。

(5)15000g,15min,4℃离心。

用冰甲醇洗一次,冰丙酮洗三次沉淀,每次洗涤15000g,4℃ 5min,最终沉淀在空气中干燥。

6.用BCA方法测定蛋白浓度。

7.双向电泳
7.1 IEF
7.2 SDS-PAGE
8.双向电泳凝胶的固定及染色
将凝胶放入400 ml固定液中固定3h。

超纯水振荡洗涤三次,每次20 min。

加入400 ml预染色液,预染色l小时。

加入400 ml考马斯亮蓝染色液,染色3天。

超纯水洗涤两次,每次5 min,10%冰乙酸水溶液中保存。

9.差异蛋白比较和鉴定。