SYBR+Green+I实时PCR对猪细小病毒体外复制动态研究
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458。蟋》2011年学术年会
收毒时间,为疫苗的生产提供了科学依据。该方法还可用于本病体外抗病毒药物的筛选、研制和作 用机制研究。
参考文献
【1】Molitor TW,Oraveerakul K Zhang QQ,et a1.Polymerase chain reaction amplification for the detection of porcine parvovims 【J】.Vir01.Methods.1991,32:201-21 1. [21 Song C,Zhu C,Zhang C,et a1.Detection of porcine parvovirus using
(ns l基因)全长均为1989nt,编码662个氨基酸;编码结构蛋白基因(vp 2基因)全长均为1740nt,编
码579个氨基酸。与GenBank中PPV全基因参考序列比较发现,HNZK-1株和HNAY株llS 1基因、vp 2基因 与其它分离株同源性较高,经系统进化分析显示两毒株间同源性较高,与nanjin9200801株拥有较近的亲 缘关系;整体上我国的猪细小病毒流行毒株在进化树上比较接近。
讨论
目前判定猪细小病毒增殖效果的标准方法是测定其TCID50,但是该方法比较费时、费力,而且 不能精确定量。而荧光PCR更加适合用于病毒的快速、特异定量检测,从而了解病毒体外增殖的动 态规律。笔者所建立的SYBR
Green
I实时PCR可检测PPV HNZK一1株在PK.15细胞上感染后的复
制增殖状况,而且具有较好的特异性和敏感性。通过该方法,笔者也首次绘制了PPV HNZK.1株在 PK.15细胞上的增殖曲线,并利用病毒拷贝数定量的方法确定了HNZK—l株最佳的接毒方法和接毒、
材料方法
根据GenBank所公布的PPV全基因序列设计3对特异性引物,将HNZK-1和HNAY株PPV全部编码基 因及部分3’和5’末端序列组分3个重叠片段进行PCR扩增,PCR产物纯化后进行序列测定并拼接成全 基因序列,通过基因软件进行病毒的系统进化分析。
结果
PPV
HNZK-1和HNAY株全基因组全长分别为4668和4610个核苷酸。其中编码PPVt乍结构蛋白基因
讨论
本研究中HNZK-1株和HNAY株的ns l基因有较高的同源性,与NADL.2株相比两株病毒在氨基酸序
列上分别有6个和7个位点发生了变异,但这并没有引起NS 1蛋白主要结构域和功能位点的改变。PPV的
VP2蛋白能诱导产生中和抗体,是PPV最主荽的中和抗原决定簇,决定PPV的组织嗜性、宿主范围、血 凝性等。Bergeron等发现弱毒与强毒及皮炎型PPV的VP 2蛋白的氨基酸序列之间存在着差异。Simpson
(河南农业大学,河南郑州450002)
目的
为获得猪细小病毒(Porcine
parvovirus
PPV)河南流行株基因组资料,研究其分子特征及变异程度,
进一步的为猪细小病毒病的防治提供基础科学依据,本研究对近年来新分离的两株猪细小病毒河南流行 株(HNZK.1株和HNAY株)进行了全基因克隆与序列分析。
Green vp
2基
I实时PCR方法,研究PPV的体外复制规律,为疫苗的研制提供技术和理论依
材料方法
根据已经发表的猪细小病毒(PPV)的vp 2基因序列,设计一对特异性引物,建立检测PPV 的SYBR 究。
Green
I实时PCR方法。利用该方法对PPV在体外感染PK.15细胞上的复制动态进行研
结果
本研究建立了检测PPV的SYBR
养猪生产与猪病防Biblioteka 专题o457T030099
SYBR Green
I实时PCR对猪细小病毒体外复制动态研究
_-E)ll庆王新卫赵 军 陈 陆杨
顾
帅
霞常洪涛
(河南农业大学,河南郑州450002)
目的
猪细小病毒几乎能在所有猪原代细胞和传代细胞上生长繁殖。目前主要通过免疫荧光方法或 细胞病变观察来了解病毒在体外的复制情况。但上述方法仅能反映病毒在空间E的复制状况,而 不能准确反映病毒在细胞内的增殖规律及向细胞外释放病毒的动态变化规律,往往错过收获病毒 的最佳时期。而实时PCR方法可很好的克服这些问题,其能在不同时间点准确测定病毒复制的拷 贝数,从而了解病毒的体外复制动态。鉴于此,本研究在参考前人的基础卜建立检测PPV 因的SYBR 据。
system incorporating direct RNA preparation.【J】.Viral
one-tube real-time RT-PCR
Methods.2001,91(2):149—155.
T030100
两株猪细小病毒河南流行毒的全基因克隆与序列分析
顾 帅
王川庆赵军
王新卫
陈
陆杨
霞常洪涛
designed for the NSl gene
a
taqman—based real—time PCR with primers and
probe
IJ].Virol J.2010.2:7(1):353.
a
[31 Bisset LR,Bosbach S,Tomasik Z,et a1.Quantification of in vitro retroviral replication using
Green
I实时PCR方法,其最小检出量为12个PPV拷贝。模
板浓度在108范围内稀释呈良好的线性关系,与PCV 2、PRRSV、JEV、CSFV、PRV无交叉反应。 应用本方法对HNZK.1株在PK.15细胞上的复制动态进行了研究,并首次绘制了病毒的体外增殖曲 线:细胞外病毒量在接毒初始的36h逐渐下降,随后开始逐步增加。接毒后84h培养液中病毒含量 (1.739x1010拷贝)逐渐超过细胞内的病毒含量(1.321x1010拷贝),在接毒后108h培养液中病毒含 量达到最高点(7.626 x1010拷贝),随即病毒含量开始快速下降。细胞内病毒粒子在接毒后24h内 为一对数增长期,然后为一缓慢增长期。至接种后72h达到复制最高点(1.425x1010拷贝),接毒后 84h略有降低(1.321x1010拷贝),并维持至接毒后108h。与病毒复制动态变化相对应的细胞病变是 从细胞聚集、开始形成蚀斑到约80%的细胞病变产生。108h之后随着细胞的大量死亡,细胞内、外 病毒数量都开始急剧减少。