脂肪酸合成酶(fatty acid synthase,FAS)
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第3期庄森炀等:磷酸锆辅助催化水解菌糠制备纳米纤维素晶体的性能·871·简便高效、设备腐蚀性小等优点,同时以食用菌产业的废弃物菌糠为原料制备高附加值的纳米纤维素,不仅能延长食用菌产业链条,提高菌糠的利用率,从而提高食用菌生产的效益,而且实现废物再利用,变废为宝,形成农业循环经济,从而净化生产环境,促进生态农业的发展。
(1)通过单因素探索实验及正交实验得较优工艺条件:超声时间5h、温度75℃及稀硫酸浓度为12.269%,CNCs的得率为42.80%。
(2)菌糠纳米纤维素晶体呈棒状,直径10~30nm。
与天然纤维素相比,菌糠纳米纤维素晶体的FTIR谱图的特征峰无明显变化,说明CNCs基本化学结构未改变。
菌糠纳米纤维素晶体仍属于纤维素Ⅰ型,结晶度由63.79% 增加到81.04%。
参考文献[1] TANG L,HUANG B,LU Q,et al. Ultrasonication-assistedmanufacture of cellulose nanocrystals esterified with acetic acid[J].Bioresource Technology,2013,127:100-105.[2] LU Q,TANG L,LIN F,et al. Preparation and characterization ofcellulose nanocrystals via ultrasonication-assisted FeCl3-catalyzedhydrolysis[J]. Cellulose,2014,21(5):3497-3506.[3] TORVINEN K,SIEVÄNEN J,HJELT T,et al. Smooth and flexiblefiller-nanocellulose composite structure for printed electronics applications[J]. Cellulose,2012,19(3):821-829.[4] OKAHISA Y,ABE K,NOGI M,et al. Effects of delignification inthe production of plant-based cellulose nanofibers for optically transparent nanocomposites[J]. Composites Science and Technology,2011,71(10):1342-1347.[5] ZAMAN M,LIU H,XIAO H,et al. Hydrophilic modification ofpolyester fabric by applying nanocrystalline cellulose containing surface finish[J]. Carbohydrate Polymers,2013,91(2):560-567.[6] GAO W,LIANG J,PIZZUL L,et al. Evaluation of spent mushroomsubstrate as substitute of peat in Chinese biobeds[J]. InternationalBiodeterioration & Biodegradation,2015,98:107-112.[7] 汪水平,王文娟. 菌糠饲料的开发和利用[J]. 粮食与饲料工业,2003(6):37-39.[8] 李加友,苗淑杏,姚祥坦. 蘑菇菌糠二次增效发酵及其作物栽培应用[J]. 食用菌学报,2008,15(3):75-79.[9] BAHETI V,ABBASI R,MILITKY J. Ball milling of jute fibrewastes to prepare nanocellulose[J]. World Journal of Engineering,2012,9(1):45-50.[10] 刘鹤,王丹,商士斌,等. 纤维素纳米晶须与水性聚氨酯复合材料的性能[J]. 化工进展,2010,29(s1):236-239.[11] NIDETZKY B,STEINER W. A new approach for modelingcellulase-cellulose adsorption and the kinetics of the enzymatic hydrolysis of microcrystalline cellulose[J]. Biotechnology and Bioengineering,1993,42(4):469-479.[12] 饶小平. 晶态混合磷酸锆的超分子插层组装[D]. 重庆:西南师范大学,2004.[13] 李颖,刘可,华伟明,等. 苯磺酸修饰的层柱磷酸锆的制备及催化应用[J]. 高等学校化学学报,2011,32(3):731-737. [14] 卢麒麟. 巨菌草制备纳米纤维素的研究[D]. 福州:福建农林大学,2013.[15] ALEMDAR A,SAIN M. Isolation and characterization of nanofibersfrom agricultural residues-wheat straw and soy hulls[J]. BioresourceTechnology,2008,99(6):1664-1671.[16] OH S Y,YOO D I,SHIN Y,et al. Crystalline structure analysis ofcellulose treated with sodium hydroxide and carbon dioxide by meansof X-ray diffraction and FTIR spectroscopy[J]. Carbohydrate Research,2005,340(15):2376-2391.[17] QUA E H,HORNSBY P R,SHARMA H S S,et al. Preparation andcharacterisation of cellulose nanofibres[J]. Journal of Materials Science,2011,46(18):6029-6045.CHEMICAL INDUSTRY AND ENGINEERING PROGRESS 2016年第35卷第3期·872·化工进展代谢工程改造酵母生产多不饱和脂肪酸的研究进展孙美莉,刘虎虎,邬文嘉,任路静,黄和,纪晓俊(南京工业大学生物与制药工程学院,材料化学工程国家重点实验室,江苏南京 211816)摘要:多不饱和脂肪酸因其在食品和医药领域的广泛作用而得到人们极大的关注,当前利用微生物发酵生产多不饱和脂肪酸具有诸多优点,由于酵母生产迅速且生物量较高,利用酵母生产多不饱和脂肪酸已成为人们关注的热点。
胆碱对鹅体内脂质代谢及肝脏FAS基因mRNA表达的影响张文旭;王宝维;葛文华;张名爱;李文立【期刊名称】《中国农业科学》【年(卷),期】2013(046)013【摘要】[目的]探讨胆碱对青农灰鹅体内脂质转运、代谢的作用及脂肪酸合成酶FAS (fatty acid synthase)基因表达的影响,确定鹅日粮中胆碱的最适添加量.[方法]将180只1日龄青农灰鹅随机分为6个处理组,每处理组3个重复,每个重复10只.试验在玉米-豆粕型饲粮的基础上各组的胆碱添加量分别为0、600、1 200、1 800、2 400和3 000 mg·kg-1,试验期15周.屠宰后测定肝脏和血清总胆固醇、甘油三酯,血清低密度脂蛋白胆固醇、高密度脂蛋白胆固醇、葡萄糖、胰岛素、胰高血糖素水平,肝脏脂蛋白酯酶、肝脂酶及血清胆碱酯酶活性和肝脏脂肪酸合成酶(FAS)基因表达量.[结果]①4周龄时,饲粮中添加胆碱显著降低肝脏和血清总胆固醇、甘油三酯、血清低密度脂蛋白胆固醇、胰岛素水平和血清胆碱酯酶活性(P< 0.05或P<0.01);显著提高肝脏脂蛋白酯酶、肝脂酶活性和血清胰高血糖素水平(P<0.05);但对血清高密度脂蛋白胆固醇、葡萄糖含量影响不显著(P>0.05).15周龄时,饲粮中添加胆碱显著降低肝脏和血清总胆固醇、甘油三酯、低密度脂蛋白胆固醇含量与胰岛素水平及血清胆碱酯酶活性(P<0.05或P<0.01);显著提高肝脏脂蛋白酯酶、肝脂酶活性和血清高密度脂蛋白胆固醇、胰高血糖素水平(P<0.05);但对血清葡萄糖含量影响不显著(P>0.05).②饲粮中添加胆碱显著提高肝脏FAS基因的表达量(P<0.01),且肝脏脂肪酸合成酶基因表达量随胆碱添加水平呈先下降后上升趋势.[结论]综合考虑胆碱对鹅肝脏脂质代谢的影响,1-4和5-15周龄鹅饲粮中胆碱适宜添加量分别为1 200-1 800和1 200 mg·kg-1.【总页数】11页(P2777-2787)【作者】张文旭;王宝维;葛文华;张名爱;李文立【作者单位】青岛农业大学动物科技学院,山东青岛266109;青岛农业大学优质水禽研究所,山东青岛266109;青岛农业大学优质水禽研究所,山东青岛266109;青岛农业大学优质水禽研究所,山东青岛266109;青岛农业大学动物科技学院,山东青岛266109【正文语种】中文【相关文献】1.添加不同类型脂肪酸对罗非鱼肝脏原代细胞内脂类代谢相关基因表达的影响 [J], 韩春艳;郑清梅;陈桂丹;刘丽霞2.玉米紫色植株色素对氟中毒大鼠肝脏胆固醇代谢基因mRNA表达的影响 [J], 井丽;张卓;席淑华;杨欣欣3.饲料胆碱含量对斜带石斑鱼生长性能、体成分、肝脏胆碱含量及脂肪代谢酶活性的影响 [J], 覃笛根;董晓慧;谭北平;杨奇慧;迟淑艳;刘泓宇;章双;陈效儒4.强冷应激对阿勒泰及杂交种羔羊脂质代谢相关基因mRNA表达量及脂肪沉积的影响 [J], 汪骁轩; 高静雯; 魏殿华; 高健鹏; 章莲; 张莉; 齐亚银5.沉默FASN基因对肝母细胞瘤HepG2细胞的脂质代谢及增殖、迁移和凋亡的影响 [J], 黄慧敏;魏英;王靳琎;冉凤英;陈琴华因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
脂肪酸的合成过程脂肪酸是构成脂质的基本化学组分,它在生物体内也扮演着重要的角色。
脂肪酸的合成过程是指细胞内合成脂肪酸的生化反应过程,本文将简要介绍其基本反应途径。
脂肪酸的合成过程主要发生在动物体内的肝脏和脂肪组织中。
它是一个复杂的过程,需要一系列的酶和辅因子的参与。
核心酶是乙醇酰辅酶A(acetyl-CoA)羧化酶(ACC)和脂肪酰辅酶A合酶(FAS)。
这两种酶协同作用,将乙酰辅酶A逐渐转化为脂肪酸。
合成过程起始于细胞中产生的乙酰辅酶A,它又由异丙酰辅酶(propionyl-CoA)、草酰乙酸(pyruvate)、柠檬酸(citrate)和丙酮酸(acetoacetate)等多种物质在细胞内合成。
在脂肪酸合成的过程中,乙酰辅酶A通过羧化反应转化成丙酰辅酶A,再与另一分子乙酰辅酶A发生缩合反应,生成丁二酰辅酶A。
然后,丁二酰辅酶A 再进行缩合反应,并且不断循环,使得碳数逐渐延长,在一系列加氢及还原等反应的作用下,脂肪酸的链长度得以逐渐增加。
在这个过程中,ACC和FAS是细胞内相关酶的核心,ACC介导羧化反应的进行,而FAS则负责串联两个脂肪酰辅酶A,最后形成长链脂肪酸。
此外,细胞内的三羧酸转运蛋白(CTP)也会通过它的通道,将三羧酸类物质输出出来,为脂肪酸合成的供体提供支持。
总体而言,脂肪酸的合成过程是复杂而高效的。
它是一个高度调控的生化反应,不仅涉及到细胞内酶的协同作用,还涉及到异丙酰辅酶、草酰乙酸、柠檬酸等前体物质的供应,以及脂肪酸的输入输出等生理过程。
这些复杂的细节交织在一起,形成了细胞内生物合成的精密体系。
最后,值得注意的是,脂肪酸的过多摄入会对人体的健康带来负担,因此适当限制脂肪酸的摄入,保持健康的饮食结构是重要的。
短链脂肪酸调控奶牛乳腺乳脂合成作用机制的研究进展。
乳脂是牛奶中重要的营养物质,对于牛奶消费者的营养和健康有着积极影响。
此外,乳脂是牛奶主要的能量物质,与牛奶生产者的经济利益密切相关。
因此,深入了解乳腺中乳脂合成的调节机制对于改善泌乳期间反刍动物的能量平衡和提高牛奶对消费者的营养价值至关重要。
短链脂肪酸(short-chain fatty acids,SCFA)是碳原子数不大于6的饱和脂肪酸,因其具有挥发性,常常被称为挥发性脂肪酸。
奶牛体内的绝大部分SCFA经瘤胃发酵碳水化合物产生,少部分由肠道微生物发酵产生,多以离子的形式存在,由瘤胃上皮或肠道上皮吸收进入不同组织,参与能量代谢和营养物质代谢等机体内多项生理活动。
研究发现,乙酸、丙酸和丁酸是奶牛瘤胃发酵碳水化合物产生的主要代谢产物,能够满足反刍动物60%~80%的能量需求。
其中,丙酸是葡萄糖的主要前体物质,以葡萄糖的形式参与机体能量代谢,而乙酸和丁酸一方面作为乳腺内脂肪酸从头合成的前体物,另一方面作为信号分子调节乳腺内脂肪酸代谢,影响奶牛乳脂的组成和含量。
本文就SCFA对乳脂合成的影响及其调控乳腺乳脂合成的分子机制2方面,综述了SCFA调控奶牛乳腺乳脂合成的作用机制,为奶牛乳脂合成机制的相关研究提供理论依据。
1、SCFA对奶牛乳脂合成的影响Urrutia等在奶牛饲粮中添加乙酸盐和丁酸盐发现,添加 2.9%乙酸盐显著提高了奶牛乳脂率和乳脂产量,分别提高了0.2%和90g/d,而在饲粮中添加等碳当量的丁酸盐对乳脂率和乳脂产量无显著影响。
Matamoros等在奶牛饲粮中添加3.25%乙酸盐显著提高了奶牛乳脂产量,这可能是因为饲粮中添加乙酸盐增加了乳腺的乙酸盐供应,从而刺激脂肪酸从头合成的产生来增加乳脂产量。
Izumi等研究发现,在奶牛饲粮中添加 1.1%的丁酸能增加乳脂产量,在一定程度上缓解高精料饲粮引起的奶牛乳脂抑制。
Seymour等通过综述奶牛瘤胃SCFA含量与乳成分的关系,发现瘤胃内丁酸含量与产奶量呈正相关,瘤胃内乙酸/丙酸与乳脂产量呈正相关。
普安银鲫成熟卵及受精后 FAS 和 ACC 的表达姚俊杰;朱俊华;朱忠胜;田超;王秀龙【摘要】为探明普安银鲫雌鱼不同发育时期与脂代谢相关的脂肪酸合成酶(FAS)、乙酰辅酶 A 羧化酶(ACC)浓度及相对表达量的变化,以了解胚胎早期在脂质合成代谢方面的特点和规律性,采用酶联免疫分析法和实时荧光定量PCR 法,测定成熟卵、受精卵、囊胚期(卵裂期胚胎)的 FAS 和 ACC 代谢水平及基因表达情况。
结果表明:普安银鲫雌鱼成熟卵、受精卵和囊胚期均存在 FAS 和 ACC,FAS 含量在囊胚期显著升高(P <0.05),达到(2.48±0.31)nmol/L;ACC 含量上升但差异不显著(P >0.05)。
普安银鲫成熟卵、受精卵和囊胚期中均存在 FAS 和 ACC 基因表达,相对表达量逐渐增高,但差异均不显著(P >0.05)。
%To explore the variation of concentration and relative transcript level of fatty acid synthetase (FAS)and Acetyl CoA carboxylase (ACC)in different stages of C.auratus,so as to know the features and regularity of lipid anabolism in early stage of embryo,both the enzyme concentration and mRNA expression level of FAS and ACC were determined in mature egg and embryo after fertilization by ELISA and real-time PCR.Results:Enzyme concentration existed in mature egg,fertilized egg and blastula stage embryo.FAS enzyme concentration increased to (2.48 ± 0.31 )nmol/L (P < 0.05 ),ACC enzyme concentration increased gradually (P >0.05).FAS and ACC gene expressed in mature egg,fertilized egg and blastula stage embryo,relative transcript level increased gradually(P >0.05).【期刊名称】《贵州农业科学》【年(卷),期】2015(000)002【总页数】4页(P107-109,114)【关键词】普安银鲫;脂肪酸合成酶;乙酰辅酶A羧化酶;基因表达【作者】姚俊杰;朱俊华;朱忠胜;田超;王秀龙【作者单位】贵州大学动物科学学院水产科学系,贵州贵阳 550025; 高原山地动物遗传育种与繁殖教育部重点实验室,贵州贵阳 550025;贵州大学动物科学学院水产科学系,贵州贵阳550025; 高原山地动物遗传育种与繁殖教育部重点实验室,贵州贵阳 550025;贵州大学动物科学学院水产科学系,贵州贵阳 550025; 高原山地动物遗传育种与繁殖教育部重点实验室,贵州贵阳 550025;贵州大学动物科学学院水产科学系,贵州贵阳 550025; 高原山地动物遗传育种与繁殖教育部重点实验室,贵州贵阳 550025;贵州大学动物科学学院水产科学系,贵州贵阳550025; 高原山地动物遗传育种与繁殖教育部重点实验室,贵州贵阳 550025【正文语种】中文【中图分类】S965.117鱼类胚胎发育同其他卵生动物一样,是消耗利用卵黄物质形成新的组织和器官,从而成为一个新生命体的过程。
Abbreviations: ACP, acyl carrier protein; BC, biotin carboxylase domain; BCCP, biotin carboxyl carrier protein; CT, carboxyl transferase domain; DAGAT, diacylglycerol acyltransferase; DAP, day after pollination; DW, dry weight; EM, embryo morphogenesis; ENR, enoyl-ACP reductase; EREBP, ethylene responsive element- binding protein; FAE, fatty acid elongase complex; FAS, fatty acid synthase; HD, hydroxyacyl-ACP dehydratase; HtACCase, heteromeric acetyl-Coenzyme A carboxylase; KAR, 3-ketoacyl-ACP reductase; KAS, 3-ketoacyl-ACP synthase; LPD, lipoamide dehydrogenase; MAT, malonyltransferase; OPPP, oxidative pentose phosphate pathway; PDC, pyruvate dehydrogenase complex; PDH, pyruvate dehydrogenase; PEP, phosphoenolpyruvate; PKp, plastidic pyruvate kinase; PUFA, polyunsaturated fatty acid; SSP, seed storage protein; RuBisCO, ribulose-1,5- bisphosphate carboxylase/oxygenase; TAG, triacylglycerol; VLCFA, very long-chain fatty acid.缩写:ACP、酰基载体蛋白;BC,生物素羧化酶域;BCCP,生物素羧基载体蛋白;CT, 羧基转移酶域;DAGAT, 二酰基甘油酰基转移酶,DAP,授粉后天数;DW,干重,EM,胚胎形态发生;ENR, 烯酰-ACP还原酶;EREBP, 乙烯反应元件结合蛋白;FAE,脂肪酸延长酶复合体;FAS,脂肪酸合成酶,HD, 羟烷基-ACP脱水酶;HtACCase,杂聚肽乙酰辅酶A羧化酶;KAR,3-酮脂酰-ACP还原酶;KAS,3-酮脂酰-ACP合成酶;LPD, 硫辛酰胺脱氢酶;MAT,丙二酰转移酶;OPPP,氧化磷酸戊糖途径;PDC,丙酮酸脱氢酶复合体;PDH,丙酮酸脱氢酶;PEP,磷酸烯醇丙酮酸;PKp,质体丙酮酸激酶;PUFA,多不饱和脂肪酸;SSP,种子贮藏蛋白; RuBisCO,核酮糖-1,5 -二磷酸羧化酶/加氧酶;TAG,三酰甘油;VLCFA,极长链脂肪酸。
脂肪酸合成的名词解释在生物化学中,脂肪酸合成是指细胞内合成脂肪酸的过程。
脂肪酸是一种重要的生物分子,其主要功能是储存能量和构建细胞膜。
脂肪酸合成通常发生在细胞质中的细胞器称为线粒体和内质网。
本文将详细解释脂肪酸合成的过程以及其中涉及的重要分子和酶。
脂肪酸合成可以简单地分为两个阶段:起始阶段和延长阶段。
在起始阶段,一种称为乙酰辅酶A(acetyl-CoA)的分子被转化为一种称为丙酰辅酶A(malonyl-CoA)的分子,这是脂肪酸合成的起点。
这个转化过程需要一种称为丙酮酸羧化酶(pyruvate carboxylase)的酶的参与,丙酮酸羧化酶能够将乙酰辅酶A与二氧化碳连接,并生成丙酮酸。
接下来,丙酮酸通过丙酮酸转位酶(pyruvate carboxyltransferase)转化为丙酰辅酶A。
在延长阶段,丙酰辅酶A与一种称为丙酰载体蛋白(acyl carrier protein,简称ACP)结合,进而形成一种称为酮酰辅酶A(ketosyl-CoA)的分子。
这个过程需要一系列酶的参与,包括酮酰辅酶A合成酶复合物(fatty acid synthase complex)中的β-羧基辅酶A合成酶(β-ketoacyl-ACP synthase)和β-羧基辅酶A还原酶(β-ketoacyl-ACP reductase),以及其他辅助酶如羟酰载体蛋白还原酶(enoyl-ACP reductase)和酮酸合成酶(thioesterase)。
脂肪酸合成主要发生在线粒体和内质网之间的分区,两个细胞器之间通过一种称为三羟基胆甾酸合成酶(sterol-responsive element binding protein,简称SREBP)的蛋白质进行通信和调节。
SREBP可以促使细胞内胆甾酸的合成,在有足够的胆甾酸时抑制脂肪酸的合成。
此外,还有一种称为瘦素(leptin)的激素可以通过抑制SREBP的活性来调节脂肪酸合成。
248影响肉牛脂肪沉积的遗传和营养因素分析斯琴图雅 梅 花(内蒙古民族大学动物科技学院,内蒙古通辽 028000)摘 要:牛肉是重要的畜产品之一,牛肉中的脂肪及脂肪酸组成是决定牛肉品质的重要因素,尤其是肌内脂肪沉积的含量对牛肉的口感性、嫩度、风味和多汁性等肉品质方面起到重要作用。
本文综述了影响肌内脂肪沉积的遗传因素、营养因素和环境因素,以期为调控肉牛肌内脂肪含量提高牛肉品质提供理论依据。
关键词:牛肉品质;脂肪沉积;遗传因素;营养因素在我国畜牧业不断发展过程中,畜种改良成为工作重点,其重要目的是提高经济效益并且最大程度上满足人们对畜牧业的需求。
近年来,随着人们生活水平的不断改善,人们对生活质量的要求也越来越高。
同时对畜禽产品的质量要求也不断提高。
牛肉作为一种营养丰富的畜产品,其肌内脂肪影响牛肉的口感性、嫩度、风味和多汁性,尤其是大理石花纹的生产起着决定作用[1]。
因此,在畜种改良的过程中利用先进的科学技术,有效合理的提高牛肉肌内脂肪含量可改变牛肉品质。
在调控肌内脂肪含量时,了解影响肌内脂肪沉积的因素及其沉积机理非常重要。
本文对影响肉牛肌内脂肪沉积的因素进行了整理综述。
1 遗传因素1.1 品种、性别及年龄肌内脂肪含量因牛的品种不同而又差异,周磊等的研究结果表明,新疆褐牛牛肉的肉色、嫩度和营养价值等均好于荷斯坦牛和黄牛,而且新疆褐牛的牛肉蛋白含量、肌内脂肪含量高于荷斯坦牛和黄牛[2]。
Greenwood 等研究发现日本 神 户 肉 牛 最 长 肌 脂 肪 含 量 高于 韩 国 肉 牛和安格斯牛 [3]。
研究发现,牦牛肉的脂肪含量比较低,显著低于 黄牛和水牛肉的脂肪含量[4]。
这是因为牦牛为了适应酷寒的高原环境,需要大量消耗脂肪来产生热量,因此导致了脂肪沉积减少。
性别也会影响肉牛肌内脂肪含量,刘永峰等研究发现秦川牛母牛肌内脂肪含量明显优于阉牛和公牛[5]。
Marti 等研究发现韩国牛和荷斯坦牛阉割公牛的最长肌中的肌内脂肪含量通常会高[6]。
生物体内脂肪酸合成途径的研究与进展脂肪酸是生物体内重要的建筑块,它们是合成磷脂、甘油三脂和其他生物活性分子的关键分子。
生物体内的脂肪酸分为外来和内源性两种,其中外来脂肪酸是通过食物摄入进入生物体的,而内源性脂肪酸则是在生物体内部自行合成的。
近些年来,生物体内脂肪酸合成途径的研究受到了广泛关注。
本文将介绍生物体内脂肪酸合成途径的重要研究成果以及未来的发展方向。
1. 脂肪酸合成途径简介生物体内脂肪酸的合成是一个复杂的过程,它由一系列酶催化的反应组成,并涉及到多个途径,其中最具代表性的是脂肪酸合成途径。
在脂肪酸合成途径中,内源性脂肪酸的合成是通过在细胞质中进行酶催化反应来完成的。
在这个过程中,脂肪酸合成通常发生在脂肪酸合成酶复合物(FAS)上,该酶复合物由七种不同的酶组成,包括FAS、酰基载体蛋白、酮酸载体蛋白等。
这些酶分别在不同的生理条件下调控着整个脂肪酸合成途径的进行。
2. 新的研究进展在过去的几年里,研究人员对生物体内的脂肪酸合成途径进行了深入的研究,不断挖掘新的机制和调节因子。
我们将在下面探讨最新的研究进展。
(1)甘油三酯的合成途径生物体内甘油三酯的合成是一个复杂的过程,其中一个重要的步骤是甘油酯化反应。
最近,研究人员发现,脂蛋白酯酶如何在细胞内催化甘油三酯合成的问题一直没有得到解决。
最新的研究表明,甘油三酯合成是由一种酶催化的反应完成的,这种酶叫做甘油三脂合成酶(GPAT)。
其主要功能是在膜上转移酰基,并将酰基转移至甘油分子上。
这项研究对于解决甘油三酯代谢和调节方面的问题有着重要的意义。
(2)微生物合成脂肪酸的途径微生物合成脂肪酸是一种新途径,近年来受到了广泛关注。
它涉及到6个酶和12个底物,是生物合成中最复杂的代谢途径之一。
最近的研究表明,微生物合成脂肪酸的过程中存在一个新的酶,它叫做β-酮酸合成酶(KAS),该酶的作用是促进乙酰辅酶A从C3-C6底物的转化,并合成β-酮烷基。
该项研究为探究微生物合成脂肪酸的新机制提供了重要参考。
植物中脂肪酸合成和代谢途径的研究植物是地球上最为重要的生命形式之一,其影响着全球的生态系统和人类的生存。
而植物中的脂肪酸合成和代谢途径是其生长、发育和适应各种环境的基础。
在这方面的研究不仅有助于深入理解植物生物学的基本原理,同时也为农业、能源、健康等领域做出了重要贡献。
植物中的脂肪酸是构成细胞膜的主要组分之一,以及作为储能物质存在于种子、果实等组织中。
因此,研究植物中的脂肪酸合成和代谢途径对于理解植物生长发育、种子发芽、果实成熟等过程具有非常重要的作用。
脂肪酸合成在植物体内是由fatty acid synthase (FAS)、acetyl-CoA carboxylase (ACC)等一系列酶催化的。
这个合成通常发生在叶绿体和细胞质中。
在叶绿体中,酶群 catalyzes the reversible reaction of fatty acid biosynthesis with the metabolism of malonyl-CoA and acetyl-CoA. 这个叶绿体中的链长度一般是C16或C18的。
而在细胞质中,酶群则通过一种非常特殊的方式将烷基基团加入到酸核框架中来合成长链脂肪酸。
其最终产物为棕榈酸(C16)和硬脂酸(C18),它们是构成植物细胞膜的主要成分之一。
此外,在植物体内,脂肪酸代谢被用于合成各种植物次生代谢产物,如类胡萝卜素、萜类化合物等。
前者不仅有利于植物对光照和氧化压力的适应,而后者则具有 antimicrobial、antifungal 和 insecticidal 的生理作用。
近年来,人们对植物中脂肪酸合成和代谢途径的研究往往集中在利用遗传和生物化学手段,从而发现新的代谢酶和探索其功能机制。
例如,通过基因敲除技术,人们确认了多种催化剂依赖的基因对于代谢过程的调节作用。
在代谢途径的生物转化中,正反应需要以一定的平衡条件进行,对于某些反应过程,平衡关系的再平衡是焦点和挑战。
·综述·胃癌早期诊断相关肿瘤标志物简述陈大鹏,王在标(安徽省亳州市人民医院 普外科,安徽 亳州 236800)0 引言胃癌是常见消化道肿瘤,也是我国及全球高发恶性肿瘤之一,其发病率在全部恶性肿瘤中居第4位,死亡率位列恶性肿瘤第2位[1],早期发现、早期治疗是治疗胃癌的关键,有日本学者统计发现,早期胃癌患者5年生存率高达90%以上,其远高于进展期胃癌患者[2]。
但早期胃癌发现率较低,多数是由于胃癌早期多无明显特征性临床表现。
内镜检查虽可发现早期胃癌,但由于其属侵入性检查且费用较高,难以用于大面积筛查,因此探索有效的且具有较高诊断价值的筛查方法尤为重要。
肿瘤标志物多是由癌细胞代谢产生,且多为血清学检查,简单易行适合大规模筛查,因此探索胃癌早期诊断相关肿瘤标志物对胃癌早期诊断价值尤为重要,本文就对其做一综述。
胃癌的血清学诊断中,其标志物常见的有CEA、CA199、CA724、MG7-Ag、E-钙黏蛋白、胃蛋白酶原等。
其单独用来作为筛查胃癌的标志物,多未能同时兼顾较好的敏感性及较高的特异性 ,故临床多采用多种标志物的联合检测,以提高诊断的敏感性、特异性,现分别介绍。
1 胚胎抗原性标志物:CEA等胚胎抗原性标志物原本只在胎盘期产生、分泌的相应蛋白质,但成熟机体相关细胞癌变后会使部分基因激活,重新产生、分泌胎盘期蛋白,比较常见的如:癌坯抗原(CEA)、甲胎蛋白(AFP)等。
CEA属大分子多糖蛋白复合物,正常情况下其由2~6个月的胚胎组织中 肝脏、胃肠道上皮细胞产生,而成熟个体消化道腺体癌变时也可产生、分泌CEA;正常人体血清CEA<2.5μg/L,而当其大于60μg/L时多见于胃癌、结直肠癌等 。
更有学者发现,在胃癌的不同时期、不同转移扩散范围其CEA的表达程度亦不相同,胃癌分期越晚、扩散范围越广,血清CEA升高越明显[3]。
有学者对187篇CEA与胃癌相关性的研究文献进行meta分析,发现在胃癌中CEA的检出阳性率约为21.1%[4],但其对胃癌的诊断特异性及阳性预测值均较高(均大于95%)[5],考虑到其对胃癌诊断的较低敏感性和较高特异性,其不适于单独作为早期胃癌的大规模筛查标志物,可作为胃癌诊断的辅助指标。
货号:QS1108-10 规格:10 管/9 样脂肪酸合成酶(fatty acid synthase,FAS)活性试剂盒说明书
紫外分光光度法
注意:正式测定之前选择2-3 个预期差异大的样本做预测定。
测定意义:
FAS是脂肪酸合成关键酶,催化乙酰辅酶A和丙二酰辅酶A而生成长链脂肪酸。
FAS普遍表达于各种组织细胞中,在哺乳动物肝、肾、脑、肺和乳腺以及脂肪组织中表达丰富。
测定原理:
FAS催化乙酰CoA、丙二酰CoA和NADPH生成长链脂肪酸和NADP+;NADPH在340nm有吸收峰,而NADP+没有;通过测定340nm 光吸收下降速率,计算FAS活性。
自备实验用品及仪器:
研钵、冰、台式离心机、紫外分光光度计、1mL石英比色皿、可调式移液枪和蒸馏水。
试剂组成和配制:
试剂一:液体10mL×1瓶,-20℃保存。
用前取出置于4℃充分解冻后混匀。
试剂二:粉剂×1瓶,4℃保存。
临用前加入275 μL试剂四,充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
试剂三:粉剂×1瓶,4℃保存。
临用前加入275 μL试剂四,充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
试剂四:液体10 mL×1瓶,4℃保存。
试剂五:粉剂×1瓶,4℃保存。
临用前加入525 μL试剂四,充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
粗酶液提取:
1.组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加
入1mL试剂一)进行冰浴匀浆。
12000g,4℃离心40min,取上清置冰上待测。
2.细菌、真菌:按照细胞数量(104个):试剂一体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500
万细胞加入1mL试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后12000g,4℃,离心40min,取上清置于冰上待测。
3.血清等液体:直接测定。
FAS测定操作:
1. 分光光度计预热30min,调节波长到340 nm,蒸馏水调零。
2. 试剂四置于40℃水浴中预热30 min。
3. 测定管:在1mL石英比色皿中依次加入100μL上清液、20μL试剂二、20μL试剂三、820μL 试剂四和40μL试剂五,迅速混匀后于340nm处测定吸光值,记录第30s和90s时吸光值,分别记录为A1和A2。
△A测=A1-A2。
FAS活性计算公式:
(1)按照蛋白浓度计算
活性单位定义:37℃中每毫克蛋白每分钟氧化1nmol NADPH 为1个酶活单位。
FAS(nmol/min/mg prot) =(△A÷ε÷d×V反总×109) ÷(Cpr×V样)÷T
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=1608×△A÷Cpr
(2)按照样本质量计算
活性单位定义:37℃中每克组织每分钟氧化1nmol NADPH 为1个酶活单位。
FAS(nmol/min/g 鲜重) = (△A÷ε÷d×V反总×109) ÷(W×V样÷V样总)÷T
=1608×△A ÷W
(3)按细胞数量计算
活性单位定义:37℃中每104个细胞每分钟氧化1nmol NADPH 为1个酶活单位。
FAS(nmol /min/104cell) = (△A÷ε÷d×V反总×109) ÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T
=1608×△A ÷细胞数量
(4)按液体体积计算
活性单位定义:37℃中每毫升样本每分钟氧化1nmol NADPH 为1个酶活单位。
FAS(nmol /min/mL) =(△A÷ε÷d×V反总×109) ÷V样÷T
=1608×△A
ε:NADPH摩尔消光系数,6.22×103/mol/cm;d:比色皿光径,1 cm;V反总:反应体系总体积,1000μL=0.001 L;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;V样:加入反应体系中上清液体积,100μL=0.1 mL;T:反应时间,1min。
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