氧化还原酶的实验方法
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禾本科植物谷胱甘肽氧化物酶的活性测定摘要:本文以羊草的叶片和根为材料, 用0. 2 mo l /L pH 6. 2的磷酸缓冲液( 含1 mmo l/L EDTA-2Na,5%的水溶性PVP)作为谷胱甘肽过氧化物酶(GSH一PX)的提取介质,偏磷酸为酶促反应的蛋白质沉淀剂, 二硫代对二硝基苯甲酸(DTNB ) 与GSH显色反应3min, 在412 nm测定酶管和非酶管的OD值, 以测定谷胱甘肽过氧化物酶的活性关键词:盐碱胁迫;羊草;GSH-PX;酶活性Analyzing Soluble Sugar Content and Biomass of Sweet Sorghumunder Saline-alkali StressAbstract:Soil salinization is a global issue. Experiments prove that growing state of sweet sorghum shows growth inhibition,lower production and physiological disorders under soil salinity In this study,sweet sorghum as our material,was sowed in neutral soil and saline soil, respectively,exploring characteristics of salinity stress for the sweet sorghum and the change of soluble sugar and biomass. According to the particularity of different soils,we observed the relationship between different varieties and salt-alkali stress at different growth stages.Profound understanding of physiological mechanism of sweet sorghum response to salt-alkali stress for screening sweet sorghum germplasm,identifying salinity tolerance and cultivating the new sweet sorghum species is significance.Keywords: Salt stress; sweet sorghum; Glutathione peroxidase; enzyme actirityⅠ1前言植物是一个需氧代谢的有机体。
谷胱甘肽还原酶检测说明书
谷胱甘肽还原酶(glutathione reductase,GR)检测是一种用于测定谷胱甘肽还原酶活性的实验方法。
谷胱甘肽还原酶是一种关键的抗氧化酶,参与谷胱甘肽(glutathione,GSH)的再生过程,从而保护细胞免受氧化损伤。
以下是一种简化的谷胱甘肽还原酶检测说明:
1.实验原理:谷胱甘肽还原酶检测主要依赖于酶促
反应的光度测定。
在此反应中,谷胱甘肽还原酶将氧化型谷胱甘肽(glutathione disulfide,GSSG)还原为还原型谷胱甘肽(GSH),同时将还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADPH)氧化为烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADP+)。
反应过程中,NADPH的消耗可以通过其吸光度的变化来监测。
2.实验试剂:主要试剂包括缓冲液、还原型谷胱甘
肽、氧化型谷胱甘肽、NADPH、谷胱甘肽还原酶标准品等。
3.实验步骤:
a.样品处理:收集需要测定谷胱甘肽还原酶活
性的样品(如血清、组织或细胞提取物等),
并进行适当的处理和稀释。
b.反应体系建立:在96孔板中,分别加入缓冲
液、样品、GSSG和NADPH,然后添加谷胱
甘肽还原酶标准品。
c.光度测定:在340nm波长下,定时测定各孔
的吸光度变化,记录吸光度值。
d.计算结果:根据吸光度变化值,计算样品中
谷胱甘肽还原酶的活性。
4.注意事项:
a.在操作过程中,请遵循实验室安全规程,佩
戴必要的防护装备。
b.实验过程中,请保持试剂的纯净和稳定。
c.光度测定时,请确保仪器的准确性和稳定性。
硝酸还原酶测定方法
硝酸还原酶是一种广泛存在于细菌、真菌、植物和动物等生物体中的酶类,具有催化硝酸还原生成亚硝酸的作用。
亚硝酸可进一步催化生成氮气或氨,参与到氮循环中。
硝酸还原酶测定方法是用来量化硝酸还原酶的活性,以便研究和评价生物体中氮代谢的过程和生态系统中的氮循环。
直接测定法是通过测定硝酸还原酶催化硝酸还原生成亚硝酸的速率来评价其活性。
其中较常用的方法是通过测定硝酸盐浓度的变化来间接测定亚硝酸的含量,进而计算硝酸还原酶的活性。
具体方法如下:
1.取一定量的细胞提取液或组织,加入含有硝酸钠的反应溶液。
2.在一定的时间内,将反应溶液分别加入苯磺酰胺和二甲基苯胺的混合液中,生成偶氮染料,并在550nm波长下测定其吸光度。
3.利用已知浓度的硝酸盐标准曲线,计算出样品中硝酸盐的浓度。
4.根据硝酸还原酶反应硝酸盐生成亚硝酸的速率,计算出硝酸还原酶的活性。
间接测定法是通过测定硝酸还原酶催化还原剂(如戊二醛、甲醇、NADH等)的还原速率来评价其活性。
具体方法如下:
1.取一定量的细胞提取液或组织,加入含有硝酸钠和还原剂的反应溶液。
2.在一定的时间内,测定反应溶液中还原剂的消耗量或其产生的氧化产物(如NAD+)的生成量。
3.根据还原剂的消耗量或产生的氧化产物的生成量,计算硝酸还原酶的活性。
此外,还有一些特殊的测定方法,如溶液散射法、电化学法等,可以根据实验需要进行选择。
总结起来,硝酸还原酶测定方法是通过不同的分析手段测量硝酸还原酶的活性,从而研究和评价氮代谢的过程和生态系统中的氮循环。
不同的测定方法适用于不同的实验需求,科研人员可以根据具体情况选择合适的方法进行研究。
亚甲基蓝氧化还原反应方程式介绍亚甲基蓝氧化还原反应是一种常见的化学反应,在很多实验室以及工业生产过程中都得到了广泛应用。
本文将详细介绍亚甲基蓝氧化还原反应的方程式以及其相关特性和应用。
亚甲基蓝氧化还原反应简介亚甲基蓝氧化还原反应是一种氧化还原反应,它以亚甲基蓝为反应的底物。
亚甲基蓝是一种有机染料,具有浓缩的深蓝色。
在该反应中,亚甲基蓝可以被氧化为次甲基蓝或还原为无色化合物。
反应方程式亚甲基蓝氧化还原反应的方程式可以表示为:亚甲基蓝 + 双氧水→ 次甲基蓝 + 水该反应的化学方程式可以进一步简化为:C16H18N3SCl + H2O2 → C16H17N3S + H2O + HCl这个反应方程式描述了亚甲基蓝与双氧水之间的氧化还原反应,通过该反应可以将亚甲基蓝转化为次甲基蓝。
亚甲基蓝氧化还原反应机理亚甲基蓝氧化还原反应的机理主要涉及亚甲基蓝分子的氧化和还原过程。
具体反应机理如下:1.氧化过程:亚甲基蓝分子中的某个氢原子被双氧水中的氧原子氧化,生成次甲基蓝分子和水。
C16H18N3SCl + H2O2 → C16H17N3S + H2O2.还原过程:反应产物中的次甲基蓝分子中的某个氧原子被亚甲基蓝分子中的氢原子还原,生成亚甲基蓝分子和氯化氢。
C16H17N3S + H2O2 → C16H18N3SCl + HCl通过这两个反应步骤,亚甲基蓝和次甲基蓝之间发生了氧化和还原反应,实现了亚甲基蓝的转化。
特性和应用亚甲基蓝氧化还原反应具有以下特性和应用:特性1.氧化还原反应:亚甲基蓝分子经过氧化和还原过程,发生电子转移,改变了分子的电荷状态。
2.颜色变化:亚甲基蓝是一种有机染料,其氧化和还原过程会导致分子结构的变化,进而引起颜色的变化,从深蓝色到无色或浅蓝色。
3.催化剂:在亚甲基蓝氧化还原反应中,双氧水起到氧化剂的作用,促进了亚甲基蓝的氧化。
双氧水在反应中不参与实质性的反应,属于催化剂。
应用1.分析化学:亚甲基蓝氧化还原反应可以用于分析化学中的定性和定量分析。
过氧化氢酶与过氧化物酶朱忠勇(南京军区福州总医院, 福州350025)过氧化氢酶和过氧化物酶, 是两种广泛存在于动植物体内、含血红素(铁卟啉) 辅基的氧化还原酶。
由于它们作用的底物都有过氧化氢, 所以在一些医学检验杂志或教科书上, 往往将它们混淆, 甚至对其作用机理作不恰当的解释。
1过氧化氢酶过氧化氢酶(Hydrogen Peroxidase) 又称触酶(Catalase) , 其系统名称(Systemat ic name) 是:H2O 2: H2O 2氧化还原酶(H2O 2÷H2O 2 O xido redu2catase) , 国际酶学委员会的编号为EC 11111116, 其催化反应式如下:H2O 2+ H2O 2触酶2H2O + O 2在这个反应中, 底物只有一种——过氧化氢。
实际上是一分子的H2O 2作为氢(电子) 的供体, 被氧化成O 2; 而另一分子H2O 2被还原为H2O。
2过氧化物酶过氧化物酶(Peroxidase) 也有人简称过氧化酶,其系统名称是: 供体: 过氧化氢氧化还原酶(Dono r:H2 O 2O xido reductase) , 编号为EC 11111117。
其催化反应式为:供体+ H2O 2过氧化物酶氧化的供体+ H2O或更简明地表达为RH2+ H2O 2过氧化物酶R + 2H2O(供体) (氧化的供体)在这个反应中, 底物有两个; 一个是H2O 2, 另一个为一种氢(电子) 的供体(Dono r)。
在医学检验中, 多用胺类(如联苯胺, 二氨基联苯胺, 联邻甲苯胺等)作为供体(也可以用酚) , 因为这些物质脱氢后往往会呈现颜色。
由上述两种反应可以清楚地看出, 两种酶的区别是十分明显的。
触酶只有一种底物, 生成的是水和氧气。
而过氧化物酶则要两种底物, 其反应的实质是: 酶催化供体脱氢(氧化) , 同时催化脱下的氢使H2O 2还原为H2O。
在这个反应中, 如果只有H2O 2, 没有供体, 反应不能进行。
植物酶活指标植物酶活性指的是植物体内酶的催化活性程度,也称为酶活力。
植物体内酶活性与植物生长发育、代谢、环境适应能力等密切相关。
因此,研究植物酶活性指标具有重要的科学意义和应用价值。
一、植物酶活指标的类型1、氧化还原酶:包括超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)和过氧化氢酶(CAT)等。
2、酯酶:包括脂肪酶(LIP)和酯酶(EST)等。
3、氨基酸、蛋白质和多糖酶:包括谷氨酸脱氢酶(GDH)、丝氨酸脱酸酶(SDH)、多酚氧化酶(PPO)、多酚酶(POD)、木质素过氧化物酶(LPO)和纤维素酶等。
二、植物酶活指标的意义1、判断环境胁迫:有研究表明,氧气自由基及其产生的活性氧分子是植物生长发育、代谢过程中的一个重要因素。
而氧化还原酶在植物体内具有极高的活性,能够迅速清除氧气自由基及其产生的活性氧分子。
因此,通过测定植物体内氧化还原酶活性,可以判断环境胁迫程度及其对植物的影响。
2、评估生长发育状态:氨基酸、蛋白质和多糖酶等酶在植物体内能够催化孢子、芽、花、果实等生长发育过程中的代谢反应。
因此,可以通过测定这些酶活性的变化,来评估植物的生长发育状态。
3、诊断植物病害:植物病害的发生与否及其严重程度,常常会影响植物体内某些酶的活性,如过氧化物酶和谷氨酸脱氢酶等。
因此,通过测定植物体内的酶活性,可以较为准确地诊断植物病害。
三、植物酶活指标的测定方法1、样品的预处理:将植物材料(如叶片、根、果实等)取出后,立即将其冷冻或干燥,以避免其酶活性受到破坏。
2、酶活测定方法:根据不同酶的特点和催化反应特性,选择相应的酶活测定方法。
如氧化还原酶可以采用光谱方法或电化学法进行测定,酯酶可以采用碳酸酯法、碱式溶液法或带有色团的底物法进行测定,而氨基酸、蛋白质和多糖酶可以采用比色法、光度法或重量法进行测定。
四、植物酶活指标的应用1、农业生产领域:在农业生产中,常常需要对作物的生长发育状态和抗逆能力进行评估,而植物酶活指标的变化能够反映出相应的信息,因此可以用于指导作物的种植和环境调控。
1,3-丙二醇氧化还原酶和醛还原酶基因的克隆与表达的开题报告研究背景及意义:1,3-丙二醇是一种重要的生物医药和食品添加剂,广泛用于制备化妆品、药品、食品和工业化学品等领域。
1,3-丙二醇可以通过微生物发酵或化学合成得到,在发酵过程中,酷似1,3-丙二醇的中间产物丙醛会在某些情况下反应,从而导致发酵效率降低。
酿酒酵母酵母菌和某些细菌具有还原丙醛的能力,将其转化为1,3-丙二醇。
醛还原酶和1,3-丙二醇氧化还原酶是这一过程中重要的调节因子,但关于这两种酶基因的克隆和表达研究很少。
因此,理解这些酶的分子机制对于优化酿酒酵母的1,3-丙二醇产量和质量至关重要。
研究内容:本研究将采用PCR方法克隆酒酵母酵母菌中的1,3-丙二醇氧化还原酶和醛还原酶基因,并通过原核表达系统获得大量的蛋白质。
进一步,使用最优化的条件将重组蛋白纯化和结晶,在表征酶的结构和功能方面开展深入的研究。
使用Western blotting 和活性酶测定等技术对酿酒酵母中酶的表达进行实验验证,研究其在1,3-丙二醇合成中发挥的作用。
研究方法技术路线:1)根据NCBI数据库中的相关序列信息,设计出酒酵母中1,3-丙二醇氧化还原酶和醛还原酶的引物;2)将酵母的基因组DNA作为模板,通过PCR扩增目标基因片段;3)将PCR产物子克隆到表达载体中,并将重组的质粒转化到Escherichia coliBL21(DE3)中进行过表达;4)通过亲和层析和凝胶过滤技术,获得纯化的重组蛋白;5)采用Western blotting和活性酶测定技术对酿酒酵母中酶的表达进行实验验证,研究其在1,3-丙二醇合成中发挥的作用。
研究目标:1)克隆酿酒酵母中1,3-丙二醇氧化还原酶和醛还原酶基因;2)在原核表达系统中成功获得1,3-丙二醇氧化还原酶和醛还原酶的大量蛋白质;3)发现酵母细胞中1,3-丙二醇氧化还原酶和醛还原酶的作用机制和互作关系;4)为优化酿酒酵母的1,3-丙二醇产量和质量提供理论和实践基础。
氧化还原酶催化机理
氧化还原酶是一类在生物体内广泛存在的酶类,其催化机理是通过电子转移来促进化学反应的进行。
这类酶主要参与的反应包括氧化和还原反应,其中氧化反应指的是将底物中的电子转移至氧分子,而还原反应则是将氧分子中的电子转移至底物。
氧化还原酶通过活性位点结构的特殊性质,能够吸附底物分子,使其与氧分子接触并进行电子转移反应。
具体而言,氧化还原酶的活性位点通常包括一些特殊的氨基酸残基,如半胱氨酸、组氨酸等,并且这些氨基酸残基通常能够与底物分子形成氢键或离子键等相互作用,从而促进反应的进行。
此外,氧化还原酶催化反应还需要一定的辅因子参与,如辅酶Q、辅酶NADH等,这些辅因子能够与氧化还原酶形成辅因子-酶复合物,从而提高酶的催化效率。
总的来说,氧化还原酶的催化机理是一种复杂的电子转移过程,其能够通过活性位点与底物分子相互作用,促进底物分子与氧分子之间的电子转移反应。
而辅因子的参与,则能够提高酶的催化效率,加速化学反应的进行。
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实验(七)脱氢酶活性测定脱氢酶的正式命名应是 AH : B 氧化还原酶,它能酶促自一定的基质中脱出 氢而进行氧化作用。
脱氢酶广泛存在动植物组织和微生物细胞内。
脱氢酶的种 类因电子供给体和接受体的特异性而有不同。
单位时间内脱氢酶活化氢的能力 表现为它的酶活性。
通过测定活性污泥或土壤中微生物的脱氢酶活性,可以了 解微生物对污泥或土壤中有机物氧化分解能力,即污泥酶或土壤酶的活性。
利用已知受氢体能接受脱氢酶脱出的氢原子,如无色的氯化三苯基四氮唑 (TTC , 2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride ),俗称红四唑,接受氢后变成 红色的三苯基甲 臜(TF ,triphenyl formazan ),根据产生红色的色度进行比色定 量分析,以判断脱氢酶活性。
TTC 作为受氢体,其还原过程可用下式表示。
HN-N-C 6H 5C 6H 5- + N = N-C 6H 5 CI+2e -+2H + HC 6H 5 N-N-C 6H 5- +HCL N = N-C 6H 5(无色TTC )(红色TF)根据红色的深浅, 测出相应的吸光值(A 值),求出脱氢酶的活性。
通常A值越大(红色深),脱氢酶活性越高。
1.1 材料与方法 (1) 材料 活性污泥悬浮液或土壤悬浮液。
(2) 方法分光度法。
2 . 2实验步骤(1)绘制TTC标准曲线①配制系列浓度的TTC标准溶液。
先取5支50mL带塞比色管,按顺序尽快分别加入0.36 % Na2S03溶液2.5ml, Tris-HCl 缓冲液(pH 值7.6)7.5mL 在分别吸取0.4 % TTC 溶液0.1mL、0.2mL、0.3mL、0.4mL、0.5mL,放入5 支比色管中,用蒸馏水定容至50mL,使成8血mL-1、32⑷mL-1、40⑷mL-1系列浓度。
同时另取一支50mL比色管,加入0.36 % Na2SO3溶液2.5mL,Tris-HCI缓冲溶液(pH值7.6)7.5mL,加入蒸馏水至50mL,作为空白对照。
酶检测方法酶是生物体内一类具有特定功能的蛋白质,它们在生物体内发挥着关键的催化作用。
酶的活性能够反映生物体内代谢的运行状态,因此酶检测在生物学研究、临床诊断和生物工程等领域起着重要的作用。
本文将介绍酶检测的方法,并分析其原理和应用。
一、酶检测的原理每种酶都具有特定的底物,当底物被酶催化后产生一定的产物,可以通过测量产物的数量或者相关反应的速率来间接反映出酶的活性。
酶的检测方法主要有光度法、荧光法、比色法和电化学法等。
光度法是利用酶催化反应后产生的物质溶液的吸收特性来检测酶活性的方法。
首先,选择具有特定光学属性的底物,使酶催化后的产物能够吸收特定波长的光线。
然后,通过测量反应体系中吸光度的变化来确定酶的活性。
举例:以辣根过氧化物酶的检测为例,辣根过氧化物酶能够将辣根过氧化物(HRP)和底物间的过氧化氢催化成高活性的自由基,进而氧化显色底物,形成有色产物。
利用比色法测定产物的吸光度变化,即可定量检测出辣根过氧化物酶的活性。
荧光法是利用酶催化反应产物的荧光特性来检测酶活性的方法。
在酶催化反应中,有些底物和产物具有荧光特性,通过测量产物的荧光强度变化可以确定酶的活性。
举例:以葡萄糖氧化酶的检测为例,葡萄糖氧化酶能够将葡萄糖氧化成葡萄糖酸,产生荧光物质NADH。
通过测量NADH的荧光强度变化,可以判断葡萄糖氧化酶的活性。
比色法是利用酶催化反应后产生的有色产物来检测酶活性的方法。
在酶催化反应中,底物与其他试剂反应产生有色产物,通过测量产物的吸光度变化来确定酶的活性。
举例:以碱性磷酸酶的检测为例,碱性磷酸酶能够将对硝基苯磷酸钠底物催化成黄色产物对硝基苯胺。
通过测量对硝基苯胺的吸光度变化,可以确定碱性磷酸酶的活性。
五、电化学法电化学法是利用酶在电极表面催化产生电流来检测酶活性的方法。
在电极表面固定酶,底物被酶催化后,产生电荷转移,可以通过测量电流变化来确定酶的活性。
举例:以谷胱甘肽还原酶的检测为例,谷胱甘肽还原酶能够将还原型谷胱甘肽(GSH)氧化为氧化型谷胱甘肽(GSSG)。
一、实验目的本研究旨在探讨生姜的药用价值,通过实验验证生姜在抗炎、抗氧化、抗肿瘤等方面的功效,为生姜在中医药领域的应用提供科学依据。
二、实验材料1. 生姜:选用新鲜、无病虫害的生姜,洗净去皮,切成薄片。
2. 试剂与仪器:- DPPH自由基清除实验:DPPH自由基试剂盒、无水乙醇、乙醇溶液、蒸馏水、电子天平、分光光度计等。
- 炎症模型动物:昆明小鼠,体重18-22g。
- 抗肿瘤药物:环磷酰胺。
- 氧化还原酶活性测定试剂盒。
三、实验方法1. DPPH自由基清除实验- 将生姜薄片放入无水乙醇中浸泡24小时,过滤后得到生姜提取物。
- 将生姜提取物与DPPH自由基溶液混合,室温下反应30分钟。
- 在517nm波长下测定吸光度,计算自由基清除率。
2. 抗炎实验- 将昆明小鼠随机分为对照组、模型组和生姜提取物组,每组10只。
- 对照组给予等量生理盐水,模型组给予脂多糖诱导的炎症模型,生姜提取物组给予相应剂量的生姜提取物。
- 24小时后,检测各组小鼠的炎症指标(如血清中的白细胞介素-6、肿瘤坏死因子-α等)。
3. 抗肿瘤实验- 将昆明小鼠随机分为对照组、模型组和生姜提取物组,每组10只。
- 对照组给予等量生理盐水,模型组给予环磷酰胺诱导的肿瘤模型,生姜提取物组给予相应剂量的生姜提取物。
- 30天后,检测各组小鼠的肿瘤生长情况。
4. 氧化还原酶活性测定- 将生姜提取物与氧化还原酶活性测定试剂盒混合,按照说明书进行操作。
- 在特定波长下测定吸光度,计算氧化还原酶活性。
四、实验结果1. DPPH自由基清除实验- 生姜提取物对DPPH自由基具有良好的清除作用,自由基清除率为(%)。
2. 抗炎实验- 生姜提取物能够显著降低小鼠血清中的白细胞介素-6、肿瘤坏死因子-α等炎症指标,与对照组相比,差异具有统计学意义(P<0.05)。
3. 抗肿瘤实验- 生姜提取物能够显著抑制肿瘤生长,与对照组相比,差异具有统计学意义(P<0.05)。
氧化还原酶的实验方法1(1)方法与原理在空气存在的情况下,多酚氧化酶能酶促一元酚、二元酚或三元酚氧化成醌。
以邻苯二酚氧化成相应的二醌为例,CH(OH)+1/2O?CHO+HO 64226422(2) 试剂配制1%邻苯三酚溶液,乙醚,0.5N盐酸,重铬酸钾标准溶液(0.75gKCrO溶于1L0.5N HCl),227pH4.5柠檬酸----磷酸缓冲液标准曲线绘制:取重铬酸钾标准溶液,用0.5N盐酸稀释成各种不同浓度。
定容后,在分光光度计上于430nm处比色测定。
以光密度值为纵坐标,以浓度为横坐标绘制标准曲线。
(3)操作步骤取1g鲜土(过2mm筛),置于50ml三角瓶中,然后注入10ml1%邻苯三酚溶液,摇荡后放在30。
C恒温箱中培养2h。
(为了减少误差,建议以下操作在冰盘上进行)取出后加4mlpH4.5柠檬酸----磷酸缓冲液,再加35ml乙醚,用力振荡数次,萃取30min。
最后,将含溶解的紫色没食子素的着色乙醚相进行比色。
比色时用波长为430nm的滤光片,为防止因乙醚引起的误差,每比色一次用无水乙醇洗涤比色液槽一次。
为了消除土壤中原有的醚溶性有机物质而引起的误差及校正没食子酚的纯度,需设无基质的土壤和无土壤的基质作对照。
在无基质的土壤对照中,用水代替基质进行培养。
(4)活性表示紫色没食子素的量,根据用重铬酸钾绘制的标准曲线查知。
多酚氧化酶活性,以2h后1g土壤中紫色没食子素的毫克数表示。
2.(1)方法与原理在空气存在的情况下,多酚氧化酶能酶促一元酚、二元酚或三元酚氧化成醌。
以邻苯二酚氧化成相应的二醌为例,CH(OH)+1/2O?CHO+HO 64226422(2) 试剂配制1%邻苯三酚溶液,乙醚,0.5N盐酸,重铬酸钾标准溶液(0.75gKCrO溶于1L0.5N HCl),227pH4.5柠檬酸----磷酸缓冲液0.5%过氧化氢标准曲线绘制:取重铬酸钾标准溶液,用0.5N盐酸稀释成各种不同浓度。
定容后,在分光光度计上于430nm处比色测定。
以光密度值为纵坐标,以浓度为横坐标绘制标准曲线。
(3)操作步骤。
C恒温箱中培养2h。
(为了减少误差,建议以下操作在冰盘上进取1g鲜土(过2mm筛),置于50ml三角瓶中,然后注入10ml1%邻苯三酚溶液和2ml 0.5%行)取出后加4mlpH4.5柠檬酸----磷酸缓冲液,再加35ml乙醚,用力振荡数次,萃取30min。
过氧化氢,摇荡后放在30最后,将含溶解的紫色没食子素的着色乙醚相进行比色。
比色时用波长为430nm的滤光片,为防止因乙醚引起的误差,每比色一次用无水乙醇洗涤比色液槽一次。
为了消除土壤中原有的醚溶性有机物质而引起的误差及校正没食子酚的纯度,需设无基质的土壤和无土壤的基质作对照。
在无基质的土壤对照中,用水代替基质进行培养。
(4)活性表示紫色没食子素的量,根据用重铬酸钾绘制的标准曲线查知。
多酚氧化酶活性,以2h后1g土壤中紫色没食子素的毫克数表示。
3(1)方法与原理过氧化氢酶属于血红蛋白酶,含有铁,它能催化过氧化氢分解为水和分子氧,在此过程中起传递电子的作用,过氧化氢则既是氧化剂又是还原剂。
可根据过氧化氢的消耗量或氧气的生成量测定该酶活力大小。
在反应系统中加入一定量(反应过量)的过氧化氢溶液,经酶促反应后,用标准高锰酸钾溶液(在酸性条件下)滴定多余的过氧化氢。
即可求出消耗的HO的量。
22(2)操作步骤称取2g鲜土于100mL的三角瓶中,然后吸取40mL蒸馏水注入上述三角瓶中,再加入5mL0.3%过氧化氢溶液。
将三角瓶置于振荡机上,振荡20分钟。
温度控制在20?+2?。
振荡结束后,立即加入5mL3N的HSO于三角瓶中,使之钝化,即使未分解的HO稳定,用慢2422速滤纸过滤。
过滤结束后吸取25mL滤液于100mL三角瓶中,用0.1N的KMnO滴定,滴至溶4液微红(30s不褪色),即达终点,记录消耗高锰酸钾的毫升数(V)。
1对照试验(无基质对照):不加土样,其他同上,消耗的高锰酸钾毫升为V 2 计算:M=( V- V)T/g, T为校正值。
21高锰酸钾的浓度用草酸钠滴定。
称取0.67g在105?烘至恒重的草酸钠,蒸馏水定容到100ml(0.05mol/L), 取5ml上述溶液加5ml 3N的硫酸溶液,在75?水浴中,用高锰酸钾标定,根据消耗的高锰酸钾毫升数,求得高锰酸钾的浓度。
高锰酸钾溶液的标定--与CO可以发生如下反应: 424+2+--5CO+2 nO+16H=2Mn+8HO+10CO 24422根据氧化还原反应原理可以判断,在酸性溶液中,MnO由上述化学反应方程式可知滴定终点是,5molNaCO恰好与2molKMnO完全反应,即: 2244C(KMnO)= 2m( NaCO)/5*134.00*V(KMnO) 42244因此,通过称量NaCO的质量,经滴定,根据公式即可算出KMnO的准确浓度。
22444.调整后的方法:(调整原因:容器不同,同时无漩涡混合仪等。
注意:土壤和基质要充分混合;密封和敞口的测定结果相差很大,注意密封)土壤脱氢酶活性测定:称取5g新鲜土样于100ml的具塞塑料瓶中,加入1.0%pH7.6 TTC-Tris缓冲溶液5mL,在37?下培养24h后加入50mL甲醇,振荡2~3min后过滤, 490nm下比色测定。
标准曲线制作:(1)用100mgTTC溶于100ml Tris-HCl缓冲液(标液);(2)取0,1,2,4,6,8,10ml标液用Tris-HCl缓冲液定溶到50ml;(3)取以上系列溶液各1ml,加1ml 10%Na2S,到容量管中,放置40min,显色,再用甲醇定容到20ml;(4)在490nm下比色,在比色皿中稳定两分钟。
镧对红壤转化酶过氧化氢酶和脱氢酶活性的影响土壤脱氢酶活性测定[8]:称取2.5g新鲜土样于容量管中,加入1.0%TTC-Tris缓冲溶液(pH7.6)2.5mL, 漩涡混合仪振荡1min, 在37下培养24h后加入25mL甲醇,振荡2~3min后过滤,比色测定.根据标准曲线计算-1-1生成物TPF的浓度,以TPF(mg*kg*d)表示脱氢酶的活性。
[8] Chander K, Brookes P C. Is the dehydrogenase assay invalid as a method to estimate microbial activity incopper-contaminated soils? [J].Soil Biol.Biochem., 1991, 23:909-915.(1)方法与原理过氧化氢酶属于血红蛋白酶,含有铁,它能催化过氧化氢分解为水和分子氧,在此过程中起传递电子的作用,过氧化氢则既是氧化剂又是还原剂。
可根据过氧化氢的消耗量或氧气的生成量测定该酶活力大小。
在反应系统中加入一定量(反应过量)的过氧化氢溶液,经酶促反应后,用标准高锰酸钾溶液(在酸性条件下)滴定多余的过氧化氢。
即可求出消耗的HO的量。
22(2)操作步骤称取2g小麦秸秆于100mL的三角瓶中,然后加入40mL蒸馏水,6ml3%过氧化氢溶液。
将SO于三角瓶中,使24之钝化,即使未分解的HO稳定,用中速滤纸过滤。
过滤结束后吸取20ml滤液于100mL三22三角瓶置于振荡机上,振荡20分钟。
振荡结束后,立即加入5mL3N的H角瓶中,用0.1N的KMnO滴定,滴至溶液微红(30s不褪色),即达终点,记录消耗高锰酸4钾的毫升数(V)。
1对照试验(无基质对照):不加小麦秸秆,其他同上,消耗的高锰酸钾毫升为V 计算:2M=( V- V)T/g,T为校正值。
21高锰酸钾的浓度用草酸钠滴定。
称取0.67g在105?烘至恒重的草酸钠,蒸馏水定容到100ml(0.05mol/L), 取5ml上述溶液加5ml 3N的硫酸溶液,在75?水浴中,用高锰酸钾标定,根据消耗的高锰酸钾毫升数,求得高锰酸钾的浓度。
高锰酸钾溶液的标定根据氧化还原反应原理可以判断,在酸性溶液中,MnO--与CO可以发生如下反应: 424+2+--5CO+2 nO+16H=2Mn+8HO+10CO 24422由上述化学反应方程式可知滴定终点是,5molNaCO恰好与2molKMnO完全反应,即: 2244C(KMnO)= 2m( NaCO)/5*134.00*V(KMnO) 42244因此,通过称量NaCO的质量,经滴定,根据公式即可算出KMnO的准确浓度。
2244(1)方法与原理在空气存在的情况下,多酚氧化酶能酶促一元酚、二元酚或三元酚氧化成醌。
以邻苯二酚氧化成相应的二醌为例,CH(OH)+1/2O?CHO+HO 64226422(2) 试剂配制1%邻苯三酚溶液,乙醚,0.5N盐酸,重铬酸钾标准溶液(0.75gKCrO溶于1L0.5N HCl),227pH4.5柠檬酸----磷酸缓冲液标准曲线绘制:取重铬酸钾标准溶液,用0.5N盐酸稀释成各种不同浓度。
定容后,在分光光度计上于430nm处比色测定。
以光密度值为纵坐标,以浓度为横坐标绘制标准曲线。
(3)操作步骤取2g小麦秸秆,置于100ml三角瓶中,然后注入20ml1%邻苯三酚溶液,摇荡后放在30。
C恒温箱中培养2h。
(为了减少误差,建议以下操作在冰盘上进行)取出后加8mlpH4.5柠檬酸----磷酸缓冲液,再加35ml乙醚,萃取30min(用力振荡数分钟充分萃取)。
最后,将含溶解的紫色没食子素的着色乙醚相进行比色。
比色时用波长为430nm的滤光片,为防止因乙醚引起的误差,每比色一次用无水乙醇洗涤比色液槽一次。
为了消除样品种原有的醚溶性有机物质而引起的误差及校正没食子酚的纯度,需设无基质的秸秆和无秸秆的基质作对照。
在无基质的秸秆对照中,用水代替基质进行培养。
(4)活性表示紫色没食子素的量,根据用重铬酸钾绘制的标准曲线查知。
多酚氧化酶活性,以2h后1g样品中紫色没食子素的毫克数表示。
(1)方法与原理选用无色的TTC作人为受体,脱氢酶能酶促TTC受氢后生成红色的三苯基甲替(TF),通过测定红色TF的生成量表示酶的活性。
(2)试剂配制pH7.6Tris-HCl缓冲液,0.1mol/L,0.5 TTC,0.1mol/L,甲苯标准曲线绘制:称取相当于50mg纯品量的已烘干的TTC于50ml容量瓶中,定容(1mgTTC/ml);分别向6只50ml容量瓶中依次注入1,2,3,4,5,6ml1mg/ml标准TTC溶液,用蒸馏水定容,是为工作液;去7支20ml容积带塞试管,依次加入2mlTris-HCl缓冲液,1ml0.5 TTC,1ml10%NaS新配溶液,摇匀,放置20min(对照管不加TTC);反应完全2后,各管分别加入5ml甲苯,振摇,完全提取TF,稳定数分钟,取上层有机溶液在492nm处比色。