淀粉的测定实验报告

淀粉酶活力测定实验报告一、实验目的1、学习和掌握淀粉酶活力测定的原理和方法。

2、了解淀粉酶的作用特点及其在生物体内的重要性。

3、培养实验操作技能和数据处理能力。

二、实验原理淀粉酶是能够水解淀粉分子中α-1,4 糖苷键的一类酶的总称，包括α淀粉酶和β淀粉酶。

α淀粉酶可以随机地作用于淀粉分子内部的α-1,4 糖苷键，生成麦芽糖、麦芽三糖、糊精等还原糖。

β淀粉酶则从淀粉分子的非还原性末端依次水解相隔的α-1,4 糖苷键，生成麦芽糖。

在本次实验中，利用淀粉酶水解淀粉生成还原糖，还原糖能与 3,5-二硝基水杨酸试剂反应，生成棕红色的 3-氨基-5-硝基水杨酸。

颜色的深浅与还原糖的量成正比，通过比色法测定吸光度，并与标准曲线对比，即可计算出淀粉酶的活力。

三、实验材料与仪器1、实验材料新鲜淀粉酶提取液1%淀粉溶液（称取 1g 可溶性淀粉，加入少量蒸馏水调匀，然后缓缓倾入沸水中并不断搅拌，最后定容至 100ml）pH 69 的磷酸缓冲液3,5-二硝基水杨酸试剂（DNS 试剂）麦芽糖标准溶液（1mg/ml）2、实验仪器分光光度计恒温水浴锅移液器离心机试管、刻度吸管、容量瓶等四、实验步骤1、标准曲线的绘制取 7 支干净的具塞刻度试管，编号，按下表加入试剂：｜管号｜麦芽糖标准液（ml）｜蒸馏水（ml）｜ DNS 试剂（ml）｜麦芽糖含量（mg）｜｜｜｜｜｜｜｜ 0 ｜ 0 ｜ 20 ｜ 20 ｜ 0 ｜｜ 1 ｜ 02 ｜ 18 ｜ 20 ｜ 02 ｜｜ 2 ｜ 04 ｜ 16 ｜ 20 ｜ 04 ｜｜ 3 ｜ 06 ｜ 14 ｜ 20 ｜ 06 ｜｜ 4 ｜ 08 ｜ 12 ｜ 20 ｜ 08 ｜｜ 5 ｜ 10 ｜ 10 ｜ 20 ｜ 10 ｜｜ 6 ｜ 12 ｜ 08 ｜ 20 ｜ 12 ｜摇匀后，在沸水浴中加热 5 分钟，取出后立即用冷水冷却至室温，再向每管中加入蒸馏水 20ml，摇匀。

以 0 号管为空白对照，在 540nm 波长下测定各管的吸光度值。

一、实验目的1. 掌握淀粉酶活性测定的原理和方法；2. 了解淀粉酶在生物体内的作用及其影响因素；3. 通过实验验证不同条件下淀粉酶活性的变化。

二、实验原理淀粉酶是一种能够水解淀粉的酶，主要分为α-淀粉酶和β-淀粉酶两种。

本实验采用α-淀粉酶作为研究对象，通过测定其在特定条件下催化淀粉水解的速率，来评价淀粉酶的活性。

实验原理如下：1. 淀粉酶能够将淀粉水解成葡萄糖，反应式如下：淀粉 + 水酶→ 葡萄糖2. 淀粉在碘存在下呈现蓝色，当淀粉被水解后，蓝色逐渐消失，通过测量蓝色消失的程度，可以判断淀粉酶的活性。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：淀粉酶、淀粉、碘液、蒸馏水、pH缓冲液、比色皿等；2. 实验仪器：恒温水浴锅、移液器、比色计、天平等。

四、实验步骤1. 准备淀粉酶溶液：将淀粉酶用pH缓冲液稀释至一定浓度；2. 准备淀粉溶液：将淀粉用蒸馏水配制成一定浓度的溶液；3. 配制碘液：将碘液用蒸馏水稀释至一定浓度；4. 设置实验组：将淀粉溶液和淀粉酶溶液按照一定比例混合，置于恒温水浴锅中，在一定温度下反应；5. 设置对照组：将淀粉溶液和蒸馏水按照一定比例混合，置于恒温水浴锅中，在一定温度下反应；6. 取样：在反应一定时间后，取出实验组和对照组的溶液，加入碘液；7. 比色：将实验组和对照组的溶液在比色计上测定吸光度；8. 计算淀粉酶活性：根据实验组和对照组的吸光度差值，计算淀粉酶活性。

五、实验结果与分析1. 实验结果：实验组吸光度：A1对照组吸光度：A22. 结果分析：根据实验结果，计算淀粉酶活性：淀粉酶活性 = (A1 - A2) / A2淀粉酶活性越高，表示淀粉酶的催化能力越强。

六、实验讨论与心得1. 实验过程中，需要注意温度、pH值等因素对淀粉酶活性的影响，以保证实验结果的准确性；2. 实验结果表明，淀粉酶活性受到多种因素的影响，如温度、pH值、底物浓度等；3. 通过本实验，加深了对淀粉酶活性的理解，为后续研究提供了实验基础。

淀粉酶活性的测定实验报告淀粉酶活性的测定实验报告引言淀粉酶是一种重要的酶类，能够催化淀粉的降解为葡萄糖。

淀粉酶活性的测定对于了解酶的特性以及其在生物化学过程中的作用具有重要意义。

本实验旨在通过测定淀粉酶的活性，探究其受到不同因素的影响，为进一步研究酶的功能提供基础数据。

材料与方法1. 实验材料：淀粉酶溶液、淀粉溶液、缓冲液、I2-KI试剂、洗涤液。

2. 实验仪器：比色皿、移液管、离心机、恒温水浴。

实验步骤：1. 预热水浴至37°C。

2. 准备不同浓度的淀粉溶液（0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%），并分别加入比色皿中。

3. 向每个比色皿中加入相同体积的淀粉酶溶液，混匀后立即放入预热的水浴中。

4. 在反应开始后的不同时间点（如0、5、10、15、20分钟），取出一个比色皿，立即加入I2-KI试剂，形成蓝色淀粉-碘复合物。

5. 使用比色计测定各比色皿中的吸光度，并记录下实验数据。

6. 重复实验步骤2-5，以获得可靠的结果。

结果与讨论通过实验测定得到各个时间点下不同淀粉浓度的吸光度值，进而计算出淀粉酶的活性。

实验结果显示，随着淀粉浓度的增加，淀粉酶的活性也随之增加。

这是因为淀粉浓度的增加会提供更多的底物供淀粉酶催化反应，从而增加反应速率。

然而，当淀粉浓度超过一定范围时，淀粉酶的活性开始饱和，即使再增加淀粉浓度，反应速率也不再显著增加。

此外，实验结果还显示，随着反应时间的增加，淀粉酶的活性逐渐增加，但增加速率逐渐减缓。

这是因为淀粉酶需要一定的时间来结合底物，并催化反应发生。

随着反应进行，底物逐渐减少，淀粉酶与底物的结合也变得更加困难，从而导致反应速率的下降。

此外，实验还可以探究其他因素对淀粉酶活性的影响，如温度、pH值等。

通过调节这些因素，可以进一步了解淀粉酶的特性以及其在生物体内的作用机制。

结论通过本实验的测定，我们得出了淀粉酶活性与淀粉浓度和反应时间的关系。

实验结果表明，淀粉酶活性随着淀粉浓度的增加而增加，并随着反应时间的增加而逐渐饱和。

马铃薯淀粉粒实验报告结论淀粉是马铃薯的主要成分之一，在食品及其他工业领域中有广泛的应用。

目前，对马铃薯淀粉颗粒结构的研究大多基于完整颗粒，对其性质的研究也基本以完整颗粒作为研究对象。

本课题主要从残存颗粒（去除淀粉颗粒外围糊化部分后获得的颗粒内部）入手，测定马铃薯淀粉的性质，分析酶水解作用对颗粒结构的影响;还研究了乙酰化后马铃薯淀粉性质的变化。

这不仅完善了马铃薯淀粉知识体系，而且为提高马铃薯淀粉的经济价值及新产品开发提供了理论基础。

室温下，用4molL的CaCl溶液，对30um~50um的窄分布马铃薯淀粉颗粒进行不同时间的外围糊化，机械搅拌去除外围糊化物，获得质量分别约为原颗粒70%和50%的残存颗粒。

原颗粒及所得70%和50%残存颗粒平均粒径分别为42um、33um 和21um;糊化时间越长，所获得残存颗粒的粒径越小。

扫描电镜观察到残存颗粒表面有明显的片层结构。

直链淀粉含量测定结果表明马铃薯淀粉原颗粒中间层直链淀粉含量高于外层和内层。

X-射线衍射分析显示残存颗粒与原颗粒均为B-型结晶结构，说明马铃薯淀粉颗粒外层、中间层和内层具有相同的结晶类型;同时测得颗粒中间层的相对结晶度最小，这与中间层直链淀粉含量最高的结果一致。

采用差示扫描量热(DSC）法以及快速黏度分析（RVA）法对马铃薯淀粉原颗粒及残存颗粒的糊化温度和黏度性质进行测定。

70%和50%残存颗粒的糊化温度均比原颗粒的高，而峰值黏度均比原颗粒的低。

对淀粉糊的透明度和凝沉性进行测定，结果显示残存颗粒淀粉糊的透明度比原颗粒的低，凝沉速率比原颗粒的大。

这些结果说明马铃薯淀粉颗粒的外层、中间层和内层的直链淀粉和支链淀粉分子结构存在差异。

在25℃下用淀粉酶对马铃薯淀粉原颗粒及残存颗粒进行水解,偏光显微镜和扫描电镜观察酶解后的颗粒显示，原颗粒表面出现了不同程度的侵蚀痕迹:部分颗粒表面被酶侵蚀程度较大，出现了很大的四陷和裂痕；还有部分颗粒内部被酶水解形成了空洞。

淀粉酶活性测定实验报告淀粉酶活性测定实验报告引言：淀粉酶是一种重要的酶类，它在生物体内起着关键的消化和代谢作用。

淀粉酶能够将淀粉降解为较小的分子，以供生物体吸收和利用。

因此，测定淀粉酶的活性对于了解生物体的消化系统以及酶的功能机制具有重要意义。

本实验旨在通过测定淀粉酶的活性，探究其在不同条件下的变化规律，从而加深对淀粉酶的认识。

材料与方法：1. 实验器材：试管、移液管、恒温水浴、分光光度计。

2. 实验试剂：淀粉溶液、淀粉酶溶液、碘液、磷酸盐缓冲液。

3. 实验步骤：a. 准备一系列稀释淀粉酶溶液，分别为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mg/mL。

b. 取一定量的淀粉溶液置于试管中，加入相应浓度的淀粉酶溶液，混匀。

c. 将试管置于恒温水浴中，保持温度在37°C，反应10分钟。

d. 在反应结束后，加入适量的磷酸盐缓冲液停止反应。

e. 加入适量的碘液，使溶液变为蓝黑色。

f. 使用分光光度计测定溶液的吸光度，记录下吸光度值。

g. 重复以上步骤，分别测定其他浓度的淀粉酶溶液。

结果与讨论：通过实验测定，我们得到了不同浓度淀粉酶溶液的吸光度值，并以吸光度值作为淀粉酶活性的指标。

根据实验结果，我们可以得出以下结论：1. 淀粉酶活性与浓度呈正相关关系：实验结果显示，随着淀粉酶溶液浓度的增加，吸光度值也随之增加。

这表明淀粉酶的活性与其浓度呈正相关关系。

当淀粉酶溶液浓度较低时，其活性较弱，无法有效降解淀粉；而当浓度增加时，淀粉酶活性也相应增强，能够更快速地将淀粉降解为较小的分子。

2. 淀粉酶活性受温度影响较大：实验中将反应温度保持在37°C，这是因为淀粉酶在人体内的最适温度为37°C。

然而，当温度偏离最适温度时，淀粉酶的活性会受到显著影响。

过高或过低的温度都会导致淀粉酶的构象变化，从而影响其催化效率。

因此，合适的温度对于淀粉酶的活性至关重要。

3. 淀粉酶活性受pH值影响：酶活性与pH值之间存在一定的关系。

实验一淀粉质原料水分测定一、实验目的会熟练并正确使用干燥箱、干燥器、分析天平；会进行样品干燥、冷却、恒重水分测定基本操作；会根据样品的特性选择测定方法；能准确报告检测结果。

二、实验原理食品中水分测定的方法有多种，可以总结为两大类：直接测定法和间接测定法。

利用水分本身的物理性质和化学性质去掉样品中的水分，再对其进行定量的方法称作直接测定法，如烘干法、化学干燥法、蒸馏法和卡尔-费休法；而利用食品的密度、折射率、电导率、介电常数等物理性质测定水分的方法称作间接测定法，间接测定法不需要除去样品中的水分。

淀粉质原料水分测定使用直接干燥法，直接干燥法测定水分原理利用食品中水分的物理性质，在101.3kPa（一个大气压），温度101～105℃下采用挥发方法测定样品中干燥减失的重量，包括吸湿水、部分结晶水和该条件下能挥发的物质，再通过干燥前后的称量数值计算出水分的含量。

直接干燥法适用范围适用于在101～105 ℃下，不含或含其他挥发性物质甚微的谷物及其制品、水产品、豆制品、乳制品、肉制品及卤菜制品等食品中水分的测定，不适用于水分含量小于0.5g/100g 的样品。

直接干燥法测定水分的样品应当符合的条件：1、水分是样品中唯一的挥发物质；2、水分可以较彻底地被去除；3、在加热过程中，样品中的其他组分由于发生化学反应而引起的质量变化可以忽略不计。

三、实验试剂和设备1．仪器和设备（1）扁形铝制或玻璃制称量瓶。

（2）电热恒温干燥箱。

（3）干燥器：内附有效干燥剂。

（4）天平：感量为0.1mg。

2．试剂（1）盐酸：优级纯。

（2）氢氧化钠：优级纯。

（3）盐酸溶液（6mol/L）：量取50mL 盐酸，加水稀释至100mL。

（4）氢氧化钠溶液（6mol/L）：称取24g 氢氧化钠，加水溶解并稀释至100mL。

（5）海砂：取用水洗去泥土的海砂或河砂，先用盐酸溶液（6mol/L）煮沸0.5h，用水洗至中性，再用氢氧化钠溶液（6mol/L）煮沸0.5h，用水洗至中性，经105℃干燥备用。

班级：植物092 姓名：徐炜佳学号：0901080223淀粉酶活性的测定一、研究背景及目的酶是高效催化有机体新陈代谢各步反应的活性蛋白，几乎所有的生化反应都离不开酶的催化，所以酶在生物体内扮演着极其重要的角色，因此对酶的研究有着非常重要的意义。

酶的活力是酶的重要参数，反映的是酶的催化能力，因此测定酶活力是研究酶的基础。

酶活力由酶活力单位表征，通过计算适宜条件下一定时间内一定量的酶催化生成产物的量得到淀粉酶是水解淀粉的糖苷键的一类酶的总称，按照其水解淀粉的作用方式，可分为α-淀粉酶和β-淀粉酶等。

α-淀粉酶和β-淀粉酶是其中最主要的两种，存在于禾谷类的种子中。

β-淀粉酶存在于休眠的种子中，而α-淀粉酶是在种子萌发过程中形成的。

α-淀粉酶活性是衡量小麦穗发芽的一个生理指标,α-淀粉酶活性低的品种抗穗发芽,反之则易穗发芽。

目前,关于α-淀粉酶活性的测定方法很多种,活力单位的定义也各不相同,国内外测定α-淀粉酶活性的方法常用的有凝胶扩散法、3,5-二硝基水杨酸比色法和降落值法。

这3种方法所用的材料分别是新鲜种子、萌动种子和面粉,获得的α-淀粉酶活性应该分别是延迟(内源)α-淀粉酶、萌动种子α-淀粉酶和后熟面粉的α-淀粉酶活性。

本实验的目的在于掌握α-淀粉酶和β-淀粉酶的提取和测定方法。

二、实验原理萌发的种子中存在两种淀粉酶，分别是α-淀粉酶和β-淀粉酶，β-淀粉酶不耐热，在高温下易钝化，而α-淀粉酶不耐酸，在pH3.6下则发生钝化。

本实验的设计利用β-淀粉酶不耐热的特性，在高温下（70℃）下处理使得β-淀粉酶钝化而测定α-淀粉酶的酶活性。

酶活性的测定是通过测定一定量的酶在一定时间内催化得到的麦芽糖的量来实现的，淀粉酶水解淀粉生成的麦芽糖，可用3,5-二硝基水杨酸试剂测定，由于麦芽糖能将后者还原生成硝基氨基水杨酸的显色基团，将其颜色的深浅与糖的含量成正比，故可求出麦芽糖的含量。

常用单位时间内生成麦芽糖的毫克数表示淀粉酶活性的大小。

一、实验目的1. 了解淀粉酶的生物学特性及其在生物体内的作用。

2. 掌握淀粉酶活性的测定方法。

3. 分析淀粉酶活性受温度、pH值等因素的影响。

二、实验原理淀粉酶是一种水解淀粉的酶，可以将淀粉分解为麦芽糖和葡萄糖。

淀粉酶活性是指单位时间内淀粉酶催化淀粉分解的速率。

本实验采用DNS法测定淀粉酶活性，DNS 法是一种灵敏、准确、精确度高的测定方法，适用于测定小样品淀粉酶活性。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：淀粉酶、淀粉、DNS试剂、标准葡萄糖溶液、pH缓冲液、蒸馏水、试管、恒温水浴锅、移液器、量筒、滴定管等。

2. 实验仪器：pH计、电子天平、电子显微镜、分光光度计等。

四、实验步骤1. 配制淀粉酶溶液：称取适量淀粉酶，用蒸馏水溶解，配制成一定浓度的淀粉酶溶液。

2. 配制淀粉溶液：称取适量淀粉，用蒸馏水溶解，配制成一定浓度的淀粉溶液。

3. 测定淀粉酶活性：取一定量的淀粉溶液于试管中，加入适量淀粉酶溶液，置于恒温水浴锅中，在一定温度下反应一定时间。

4. 测定DNS反应液：取一定量的反应液，加入DNS试剂，置于沸水浴中反应一定时间。

5. 比色：用分光光度计在特定波长下测定DNS反应液的吸光度。

6. 计算淀粉酶活性：根据标准葡萄糖溶液的吸光度值，绘制标准曲线，计算反应液中葡萄糖的浓度，进而计算淀粉酶活性。

五、结果与分析1. 淀粉酶活性随温度升高而增加，在一定温度范围内达到最大值，之后随温度升高而降低。

2. 淀粉酶活性随pH值升高而增加，在一定pH范围内达到最大值，之后随pH值升高而降低。

3. 淀粉酶活性受激活剂和抑制剂的影响，其中激活剂可以增强淀粉酶活性，抑制剂可以抑制淀粉酶活性。

六、实验结论1. 淀粉酶是一种水解淀粉的酶，在生物体内具有重要作用。

2. DNS法是一种灵敏、准确、精确度高的测定淀粉酶活性的方法。

3. 淀粉酶活性受温度、pH值、激活剂和抑制剂等因素的影响。

七、实验讨论1. 实验过程中，淀粉酶溶液和淀粉溶液的浓度对实验结果有较大影响，需要严格控制浓度。

第1篇一、实验目的1. 掌握山药淀粉的提取方法；2. 了解山药淀粉的纯化过程；3. 分析山药淀粉的物理化学性质。

二、实验原理山药淀粉是一种天然高分子碳水化合物，主要由直链淀粉和支链淀粉组成。

本实验采用酸碱法提取山药淀粉，通过酸碱处理破坏山药细胞壁，使淀粉颗粒释放出来，然后通过离心、洗涤、干燥等步骤纯化淀粉。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：山药、无水乙醇、氢氧化钠、盐酸、蒸馏水、硫酸铵、碘液、氯化钠等。

2. 实验仪器：电子天平、离心机、电热恒温水浴锅、烧杯、漏斗、布氏漏斗、烘箱、显微镜等。

四、实验步骤1. 山药淀粉提取（1）将新鲜山药洗净，去皮，切成小块。

（2）将山药块放入烧杯中，加入适量的蒸馏水，煮沸10分钟。

（3）加入适量的氢氧化钠溶液，使pH值达到10左右。

（4）煮沸10分钟后，加入适量的盐酸溶液，使pH值调整至4.5左右。

（5）煮沸10分钟，取出山药块，用蒸馏水冲洗干净。

（6）将山药块放入离心机中，以3000r/min离心10分钟，收集上清液。

2. 山药淀粉纯化（1）将上清液用漏斗过滤，去除杂质。

（2）将滤液用布氏漏斗过滤，去除固体杂质。

（3）将滤液加入适量的硫酸铵，使沉淀形成。

（4）用离心机以3000r/min离心10分钟，收集沉淀。

（5）将沉淀用蒸馏水洗涤3次，去除杂质。

（6）将洗涤后的沉淀放入烘箱中，以60℃烘干至恒重。

3. 山药淀粉性质分析（1）观察山药淀粉的形态，用显微镜拍摄。

（2）用碘液检测山药淀粉的溶解度。

（3）用氯化钠溶液检测山药淀粉的溶解度。

五、实验结果与分析1. 山药淀粉的形态通过显微镜观察，山药淀粉呈圆形或椭圆形，大小不一，表面光滑。

2. 山药淀粉的溶解度（1）碘液检测：山药淀粉在碘液中呈蓝色，表明其具有良好的溶解度。

（2）氯化钠溶液检测：山药淀粉在氯化钠溶液中溶解度较高，表明其具有良好的溶解性。

六、实验结论1. 通过酸碱法提取山药淀粉，能够有效提取山药中的淀粉。

2. 通过离心、洗涤、干燥等步骤，可以纯化山药淀粉，获得较高的纯度。

一、实验目的1. 了解淀粉酶的生物学特性及其在生物体内的重要作用；2. 掌握淀粉酶活性测定的原理和方法；3. 通过实验，探究温度、pH值等因素对淀粉酶活性的影响。

二、实验原理淀粉酶是一种能够水解淀粉的酶，其活性高低可以反映酶的催化能力。

本实验采用DNS 法测定淀粉酶活性，DNS 法是利用淀粉酶催化淀粉水解生成还原糖，还原糖与DNS 试剂发生反应，产生黄色化合物，通过比色法测定还原糖的浓度，从而间接反映淀粉酶的活性。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 淀粉酶（市售）- 淀粉溶液- DNS 试剂- 碘液- 酚酞指示剂- 蒸馏水- pH 试纸- 温度计2. 实验仪器：- 721分光光度计- 磁力搅拌器- 电子天平- 试管- 移液器四、实验步骤1. 配制淀粉酶溶液：将市售淀粉酶按照说明书配制一定浓度的淀粉酶溶液。

2. 设置实验组：- 温度实验组：分别设置30℃、40℃、50℃、60℃、70℃ 的温度梯度，每组加入相同量的淀粉酶溶液和淀粉溶液，搅拌反应 10 分钟。

- pH 值实验组：分别设置 pH 3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0 的 pH 值梯度，每组加入相同量的淀粉酶溶液和淀粉溶液，搅拌反应 10 分钟。

3. DNS 反应：- 取反应后的溶液，加入 DNS 试剂，沸水浴加热 5 分钟。

- 取出后，加入 1 滴酚酞指示剂，继续沸水浴加热 5 分钟。

4. 比色：- 使用 721 分光光度计在 540 nm 波长下测定溶液的吸光度值。

5. 数据处理：- 根据标准曲线，计算各组反应生成的还原糖浓度。

- 比较各组实验结果，分析温度、pH 值等因素对淀粉酶活性的影响。

五、实验结果与分析1. 温度对淀粉酶活性的影响：- 从实验结果可以看出，淀粉酶活性随着温度的升高而增加，在60℃ 时达到峰值，之后随着温度的继续升高，淀粉酶活性逐渐降低。

2. pH 值对淀粉酶活性的影响：- 从实验结果可以看出，淀粉酶活性在 pH 6.0 时达到峰值，之后随着 pH 值的继续升高或降低，淀粉酶活性逐渐降低。