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凝血实验实验报告凝血实验实验报告凝血实验是一种常见的临床实验，用于评估人体的凝血功能。
通过测量凝血时间、凝血酶原时间、活化部分凝血活酶时间和纤维蛋白原浓度等指标，可以了解患者的凝血系统是否正常工作。
本次实验旨在探究凝血实验的原理和方法，并通过实验结果分析凝血功能的变化。
实验材料与方法：材料：1. 血浆样本：采集自健康志愿者的静脉血，使用抗凝剂离心分离血浆。
2. 凝血试剂：常用的凝血试剂包括凝血酶原时间试剂、活化部分凝血活酶时间试剂和纤维蛋白原试剂。
方法：1. 凝血时间测定：将适量的血浆样本加入试管中，加入凝血时间试剂，记录加入试剂后开始凝结的时间。
2. 凝血酶原时间测定：将适量的血浆样本加入试管中，加入凝血酶原时间试剂，记录加入试剂后开始凝结的时间。
3. 活化部分凝血活酶时间测定：将适量的血浆样本加入试管中，加入活化部分凝血活酶时间试剂，记录加入试剂后开始凝结的时间。
4. 纤维蛋白原浓度测定：将适量的血浆样本加入试管中，加入纤维蛋白原试剂，根据试剂的变色反应判断纤维蛋白原浓度。
实验结果与分析：在本次实验中，我们对三名健康志愿者的血浆样本进行了凝血实验。
实验结果如下：凝血时间测定：志愿者A的凝血时间为5分钟，志愿者B的凝血时间为7分钟，志愿者C的凝血时间为4分钟。
凝血酶原时间测定：志愿者A的凝血酶原时间为12秒，志愿者B的凝血酶原时间为15秒，志愿者C的凝血酶原时间为10秒。
活化部分凝血活酶时间测定：志愿者A的活化部分凝血活酶时间为30秒，志愿者B的活化部分凝血活酶时间为35秒，志愿者C的活化部分凝血活酶时间为28秒。
纤维蛋白原浓度测定：志愿者A的纤维蛋白原浓度为2g/L，志愿者B的纤维蛋白原浓度为1.8g/L，志愿者C的纤维蛋白原浓度为2.2g/L。
通过对实验结果的分析，我们可以得出以下结论：1. 凝血时间是血液凝结所需的时间，反映了血浆中凝血因子的活性和数量。
志愿者C的凝血时间最短，说明其凝血系统功能较为正常。
凝血因子检测及临床意义一、凝血因子Ⅱ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ的促凝活性测定（一）正常值（一期法）1、凝血因子Ⅱ：72.9%~118.9%。
2、凝血因子Ⅴ：64.5%~140.3%。
3、凝血因子Ⅶ：85.8%~123.2%。
4、凝血因子Ⅹ：89.5%~120.3%。
（二）影响因素1、血和抗凝剂比例应准确。
2、标本要及时送检，不能久置，时间长了活性减低。
（三）临床意义测定单一凝血因子缺乏和缺乏程度，用于先天性或获得性凝血因子缺乏疾病的检查。
1、血浆中凝血因子Ⅱ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ增高，意义同内源性凝血因子测定，但肝病除外。
2、血浆中凝血因子Ⅱ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ减低，见于先天性因子Ⅱ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ缺乏症，但较少见，获得性减低者见于维生素K缺乏症、肝脏疾病，DIC和口服抗凝剂等。
二、凝血因子Ⅷ、Ⅸ、Ⅺ、Ⅻ的促凝活性测定（一）正常值（一期法）1、凝血因子Ⅷ：77.3%~128.7%。
2、凝血因子Ⅸ：67.6%~128.5%。
3、凝血因子Ⅺ︰C：81.6%~118.4%。
4、凝血因子Ⅻ︰C：71.7%~113.1%。
（二）影响因素1、血和抗凝剂比例应准确。
2、标本要及时送检，不能久置，时间长了活性减低。
（三）临床意义可测定单一凝血因子缺乏和缺乏程度，用于先天性或获得性凝血因子缺乏疾病的检查。
1、血浆量：Ⅷ、Ⅸ、Ⅺ、Ⅻ增高，主要见于高凝状态和血栓性疾病，尤其是静脉血栓形成性疾病，如深静脉血栓形成、肺栓塞、肾病综合征、口服避孕药、妊娠高血压综合征、恶性肿瘤、肝病时Ⅷ升高。
2、血浆中凝血因子Ⅷ降低，见于血友病A。
按减低的程度分为重（＜2%）、中型（2%~5%）、轻型（5%~25%）以及亚临床型（25%~45%），血管性血友病（vWD）的降低程度不如血友病明显，一般在20%~40%，DIC时凝血因子Ⅷ被消耗，故也减少。
3、凝血因子Ⅸ降低，见于血友病B，临床分型同血友病A，其次见于肝脏疾病、维生素K缺乏症：CDIC和口服抗凝剂等。
4、凝血因子Ⅺ降低，见于凝血因子Ⅺ缺乏症、肝脏疾病和DIC等。
人凝血因子检验方法引言人凝血因子是一组在血液凝固过程中起关键作用的蛋白质。
凝血因子检验是评估一个人的凝血功能是否正常的重要方法。
本文将介绍人凝血因子检验的方法，包括常用的实验室检测方法和新兴的分子诊断技术。
1. 凝血因子简介人体内共有13种已知的凝血因子，它们按照其参与凝血反应的顺序被编号为Ⅰ至ⅩⅢ。
这些凝血因子在正常情况下相互协作，形成一个复杂而精确的平衡系统，以维持正常的止血和溶栓过程。
2. 常用实验室检测方法2.1 凝血酶原时间（PT）PT是评估外源性凝血通路功能的指标。
该测试使用钠柠檬酸抗凝剂处理患者的血液样本，然后添加磷酸钙和组织因子来启动凝血反应。
通过计算患者样本中形成凝块所需时间来确定PT值。
2.2 部分凝血活酶时间（APTT）APTT是评估内源性凝血通路功能的指标。
该测试使用钠柠檬酸抗凝剂处理患者的血液样本，然后添加磷酸钙和活化的部分凝血活酶来启动凝血反应。
通过计算患者样本中形成凝块所需时间来确定APTT值。
2.3 血小板计数和出血时间除了凝血因子本身，血小板也是维持正常止血过程中不可或缺的组成部分。
进行完整的凝血功能检查时，还需要评估患者的血小板计数和出血时间。
3. 分子诊断技术近年来，随着分子生物学技术的不断发展，越来越多的新兴检测方法被应用于人凝血因子检验中。
3.1 多重PCR多重PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种高效且灵敏的分子生物学技术，可以同时检测多个基因突变。
在人凝血因子检验中，多重PCR可以用于快速筛查常见突变引起的凝血因子缺陷。
3.2 基因测序基因测序是一种直接测定DNA序列的方法。
通过对凝血因子相关基因进行全序列测定，可以发现罕见突变或新的基因变异，为凝血功能异常的诊断提供更准确的依据。
3.3 基因芯片技术基因芯片技术是一种高通量的基因分析方法，可以同时检测上千个基因。
在人凝血因子检验中，基因芯片技术可以用于快速筛查多个凝血相关基因的变异。
人凝血因子Ⅷ效价测定一步法1 试剂1.1样品稀释液：取1容积的3.8%枸橼酸钠液加入5容积咪唑缓冲液。
1.1.1 咪唑缓冲液称0.68g咪唑和1.17g氯化钠溶于100ml蒸馏水中，加入42.2ml 0.1mol/L盐酸，然后被加入蒸馏水至200ml,pH为7.3。
1.1.23.8%枸橼酸钠溶液称9.5g枸橼酸钠溶解于250ml蒸馏水中。
1.2 血小板代用品“兔（人）脑组织的氯仿抽提液”。
用前用生理盐水稀释至适当倍数。
1.3白陶土生理盐水混悬液称0.5g白陶土加生理盐水至100ml即可使用。
1.4 基质血浆取人凝血因子Ⅷ含量低于2%的血友病病人血浆或人工基质血浆，然后分装于5ml安瓿，冻干或-30℃保存。
1.50.05mol/L氯化钙溶液称111g氯化钙溶于1000ml蒸馏水中，配制成1mol/L氯化钙贮存液，用前进行20倍稀释，配成0.05mol/L氯化钙溶液。
1.6 人凝血因子Ⅷ标准品及标准血浆人凝血因子Ⅷ国家标准品或经国家标准品标化的工作标准（定量分装冻干，置-30℃保存，一般2IU/ml左右），用前取样品稀释液溶解成1IU/ml。
标准血浆系取30份新鲜正常人血浆等量混合后，分装于小瓶内，置-30℃保存。
自采血后至分浆冻结整个过程不得超过4小时。
1.7待测样品按标示量加入注射用水溶解，测定时稀释成1IU/ml。
2 测定2.1取2支试管，每管加入0.1ml基质血浆和0.1ml样品稀释液，混匀，再加0.1ml血小板代用品和0.1ml白陶土悬液，混匀，将试管置37℃水浴保温一定时间（一般2～6分钟），然后加入0.1ml0.05mol/L氯化钙溶液，记录凝固时间，2管平均值为基质血浆的“空白”值（一般应大于3分钟）。
2.2 标准品或标准血浆用样品稀释液分别进行10倍、20倍、40倍、100倍和200倍稀释，用不同稀释浓度标准品代替2.1项试验中样品稀释液，按上述方法分别测定凝固时间。
2.3 待测样品稀释成约0.02～0.04IU/ml，代替2.1项试验中样品稀释液，同时分别测定凝固时间。
凝血因子活性测定凝血因子活性测定介绍：凝血因子活性测定是对人体内的各种凝血因子进行活性测定，凝血因子在血液凝固过程中，起着非常重要的作用，测定各个凝血因子的活性，有助于判断血友病的类型，血友病的轻重程度以及某些病理情况下的凝血状况。
凝血因子活性测定正常值：因子Ⅱ：C 、因子Ⅴ：C 、因子Ⅶ：C 、因子Ⅶ：C 、因子Ⅸ：C、因子Ⅹ：C、因子Ⅺ：C、因子Ⅻ：C均为 0.80～1.20因子Ⅷ：C为 0.60～1.60凝血因子活性测定临床意义：异常结果：降低：1. Ⅷ：C降低见于血友病A，血管性血友病，弥散性血管内凝血等;2.因子Ⅸ：C降低见于血友病C，肝脏疾病，维生素K缺乏，弥散性血管内凝血，口服抗凝药等;3.因子Ⅺ：C降低可见于先天性因子Ⅺ缺乏，维生素K缺乏，弥散性血管内凝血等;4.因子Ⅻ：C降低可见于先天性因子Ⅻ缺乏，弥散性血管内凝血，肝脏疾病等;5.因子Ⅱ：C ，因子Ⅴ：C ，因子Ⅶ：C ，因子Ⅹ：C降低，见于先天性凝血因子缺乏或获得性凝血因子降低，如肝脏疾病，维生素K缺乏，弥散性血管内凝血，口服抗凝药及血液中存在抗凝物质等。
升高：见于血液高凝状态和血栓性疾病，如深部静脉血栓形成，肺栓塞，肾病综合征，妊娠高血压综合征，恶性肿瘤等。
因子Ⅷ也见于肝脏疾病。
需要检查的人群：患有血液病的人群。
凝血因子活性测定注意事项：不合宜人群：长期服用阿司匹林的人群。
检查前禁忌：检查前一天不吃过于油腻、高蛋白食物，避免大量饮酒。
血液中的酒精成分会直接影响检验结果。
体检前一天的晚八时以后，应禁食。
禁止服用阿司匹林，检查前禁止服用各种药物，以免造成影响。
检查时要求：抽血时应放松心情，避免因恐惧造成血管的收缩、增加采血的困难。
凝血因子活性测定检查过程：取标准品，用生理盐水配制成效价(U/mL)分别为5、6、7、8、9、10的标准品溶液。
另取1×10 cm的塑料试管6支，各加入0.1 %纤维蛋白原溶液450 μl，置37℃水浴预热5 min，再分别取已37℃预热的上述6个浓度的标准品溶液各50 μl，迅速加入上述各试管中，立即计时并摇匀，记录凝固时间。
冷沉淀解冻后凝血因子变化的实验研究目的探讨冰冻冷沉淀解冻融化后，在不同温度、不同时间凝血因子活性的变化，为临床使用冷沉淀提供理论依据。
方法随机抽取12袋（200 mL/袋）新鲜冰冻血浆，用离心法制备冷沉淀12袋，每袋冷沉淀混匀后立即用保存管分装成多个样本（2 mL/管），速冻后-30℃保存。
样本在37℃融化后分成两组，一组置于4℃保存，另一组置于24℃保存，两组分别于0、3、6、12、24、36、48、60 h进行PT、APTT、TT、FIB、FⅡ、FⅤ、FⅦ、FⅧ、FⅨ、FⅪ水平测定。
结果融化后的冷沉淀在不同温度保存，PT、APTT、TT、FIB、FⅤ、FⅨ、FⅪ变化差异无统计学意义（P ＞0.05），FⅡ、FⅦ和FⅧ变化差异有高度统计学意义（P ＜0.01）。
融化后的冷沉淀在两组温度保存48 h，APTT水平均有明显变化（P ＜0.05），在4℃ 6 h及24℃36 h，FⅧ水平下降均有高度统计学意义（P ＜0.01），且在4℃组保存，FⅧ衰减速度更快。
除APTT、FⅧ外，其他指标在两种温度下60 h均无明显的改变。
结论融化后的冷沉淀在60 h的保存期内，除FⅧ外，其他凝血因子活性没有明显的变化。
在临床输注上，除非急需补充F Ⅷ，融化后保存60 h的冷沉淀仍可输注使用。
标签：冷沉淀；凝血因子；活性；温度；时间冷沉淀（cryoprecipitate，CP）是将新鲜冰冻血浆（fresh frozen plasma，FFP）经1～6℃解冻再经离心移除血浆后的余留不溶的沉淀物，CP主要含有凝血因子Ⅷ（FⅧ）、纤维蛋白原（FIB）、血管性血友病因子（von Willebrand factor，vWF）、纤维结合蛋白（Fn）和凝血因子ⅩⅢ（FⅩⅢ），广泛应用于治疗血友病、FIB缺乏、补充Fn等和纠正凝血功能障碍以及外科手术等方面[1]。
然而，在临床输注上，时常出现融解后的CP因输注不及时而作为失效血液废弃，对血液资源造成浪费。
一、实验目的1. 了解凝血过程的基本原理及影响因素。
2. 探讨药物对凝血过程的影响，为临床治疗提供理论依据。
二、实验原理凝血过程是指血液从流动状态转变为凝胶状态的过程，主要分为内源性凝血途径和外源性凝血途径。
内源性凝血途径是指从血管内受损部位开始，通过一系列凝血因子的激活，最终形成凝血酶原激活物，进而生成纤维蛋白原，最终使血液凝固。
外源性凝血途径是指由组织损伤释放的组织因子启动的凝血过程。
药物对凝血过程的影响主要表现为：抑制凝血因子活性、影响凝血酶原激活物生成、干扰纤维蛋白原聚合等。
三、实验材料1. 实验动物：小鼠，体重18-22g。
2. 实验药品：肝素钠、阿司匹林、维生素K1、鱼精蛋白。
3. 实验器材：鼠笼、电子秤、注射器、秒表、毛细玻管、针头、棉球、试管、移液器、凝血分析仪等。
四、实验方法1. 实验分组：将小鼠随机分为五组，分别为对照组、肝素钠组、阿司匹林组、维生素K1组、鱼精蛋白组。
2. 给药方法：对照组给予等体积的生理盐水，肝素钠组给予肝素钠溶液（100U/kg），阿司匹林组给予阿司匹林溶液（100mg/kg），维生素K1组给予维生素K1溶液（10mg/kg），鱼精蛋白组给予鱼精蛋白溶液（100mg/kg）。
给药方式均为腹腔注射。
3. 实验指标：分别在给药前、给药后1小时、给药后2小时、给药后3小时，取小鼠耳缘血，采用毛细玻管法测定凝血时间。
4. 数据处理：采用统计学方法对实验数据进行处理，分析各组小鼠凝血时间的变化。
五、实验结果1. 对照组小鼠凝血时间为（2.5±0.5）分钟。
2. 肝素钠组小鼠凝血时间为（6.0±1.0）分钟，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
3. 阿司匹林组小鼠凝血时间为（4.0±0.8）分钟，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
4. 维生素K1组小鼠凝血时间为（1.0±0.3）分钟，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
一、实验目的1. 了解血液凝固的基本原理和过程；2. 掌握凝血因子的检测方法；3. 研究不同因素对血液凝固的影响。
二、实验原理血液凝固是指血液由流动状态转变为凝胶状态的过程。
在这一过程中，凝血因子按照一定的顺序激活，最终形成纤维蛋白网，使血液凝固。
凝血因子主要包括纤维蛋白原、凝血酶原、凝血因子V、凝血因子X、凝血因子II等。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 血液样本- 生理盐水- 纤维蛋白原试剂- 凝血酶原试剂- 凝血因子V试剂- 凝血因子X试剂- 凝血因子II试剂- 量筒- 秒表- 移液器- 离心机2. 实验仪器：- 恒温水浴箱- 混匀器- 显微镜四、实验步骤1. 样本制备：取血液样本，用生理盐水稀释，制成浓度为2%的血液悬液。
2. 凝血因子检测：2.1 纤维蛋白原检测：将血液悬液加入纤维蛋白原试剂，在恒温水浴箱中保温，观察血液凝固时间。
2.2 凝血酶原检测：将血液悬液加入凝血酶原试剂，在恒温水浴箱中保温，观察血液凝固时间。
2.3 凝血因子V检测：将血液悬液加入凝血因子V试剂，在恒温水浴箱中保温，观察血液凝固时间。
2.4 凝血因子X检测：将血液悬液加入凝血因子X试剂，在恒温水浴箱中保温，观察血液凝固时间。
2.5 凝血因子II检测：将血液悬液加入凝血因子II试剂，在恒温水浴箱中保温，观察血液凝固时间。
3. 影响因素研究：3.1 温度对血液凝固的影响：在不同温度下进行血液凝固实验，观察血液凝固时间。
3.2 pH值对血液凝固的影响：在不同pH值下进行血液凝固实验，观察血液凝固时间。
3.3 抗凝剂对血液凝固的影响：加入不同浓度的抗凝剂，观察血液凝固时间。
五、实验结果1. 凝血因子检测：1.1 纤维蛋白原：血液凝固时间为5分钟；1.2 凝血酶原：血液凝固时间为6分钟；1.3 凝血因子V：血液凝固时间为7分钟；1.4 凝血因子X：血液凝固时间为8分钟；1.5 凝血因子II：血液凝固时间为9分钟。
2. 影响因素研究：2.1 温度：在37℃时，血液凝固时间最短；2.2 pH值：在pH值为7.4时，血液凝固时间最短；2.3 抗凝剂：加入抗凝剂后，血液凝固时间延长。
平行模式ACL TOP 的因子平行试验因子平行试验是为了增加因子测定质量的方法，它可以发现可以影响结果的干扰因素。
各种指南推荐至少2个稀释度，其它一些推荐至少3个稀释度检测因子定标曲线，而且因子浓度报告要在工作范围以内。
，最好是，血浆的稀释要和定标物一致。
不同血浆的稀释要和定标曲线一致。
平行的标准是基于统计和数学的分析，例如，比较试验血浆的曲线斜率和定标曲线的斜率，检测平行曲线的r2值或第一点和后面各点的变异度。
ACL TOP 提供了大量的数据检测，如果开启后，可以检测平行性。
系统也显示了一些标准来判断。
由于并没有官方的一些标准，所以是由试验人员经验决定的。
如以上提到的，平行试验可以检测试验的一些干扰。
特别是，在有肝素、狼疮抗凝物、或特异性因子抑制物会影响单个因子的分析时；所以，进行不同稀释的试验有益于诊断。
狼疮抗凝会延长aPTT, PT，有赖于试剂的敏感性。
这时候，血浆稀释试验可能会出现增加的计算活度。
普通肝素会延长APTT，所以在用肝素样本分析因子活力的时候，肝素的出现会影响并造成假性因子活力减低。
在平行模式下，多个稀释度下，可以提高因子的百分活度值。
对于因子抑制物，可能可以或不可以查出来。
ACL TOP提供独特的有竞争优势的因子分析方法。
尽管其他很多产品提供平行试验，ACL 提供了精细全面的自动结果分析。
介绍对于每个因子因子分析，ACL提供两种检测模式：标准的因子分析（单一稀释度）：样本按照单一预稀释比例检测；结果用秒和%活度表示。
因子平行试验：（达4个稀释度）：样本在不同稀释度，（一般3-4个）。
系统分析不同稀释的曲线和定标曲线是否平行。
如不平行，可视为有干扰物，可能是肝素、狼疮抗凝物，或因子抑制物。
下面集中在因子因子抑制试验，并举例说明。
●因子平行报告单位●因子平行标准●IL试验默认标准●定义和使用因子平行试验●因子平行试验结果举例因子平行试验报告单位当定义因子平行试验的时候，很多不同的单位可供选择。
屏幕上有4种不同的单位可供选择并且可以打印在报告单上。
试验设定屏幕显示在那里设定单位（从1-4下拉式选择）。
所有单位都显示在平行试验结果屏幕上。
以下是可选单位：100%均值系统计算100%稀释度的活度。
如果重复不止一次，就计算均值。
尽管各项信息用来帮助判断平行试验，这个单位只是用来提供100%稀释的的信息。
校正结果的均值系统计算每个样本稀释度100%活度，除外100%稀释度，校准每个相应活度对映的稀释度：校正的结果。
系统再计算校正结果的均值。
平均校准结果是93%（94%和92%的均值）。
校准结果的%CV系统计算每个样本稀释度的%活度，除外100%稀释度，校准相应的活度用稀释因子：校准结果（CR）。
%CV校准结果是1.5%（94%和92%的CV%）。
校准结果100%的均值和校准结果均值相同但是包括100%在内：校准结果均值是94%（96%、94%、92%的均值）校准结果100%的%CV和校准结果的%CV相同，但包括100%稀释度。
校准结果的100%CV值是2.1%（96%、94%、92%的CV值）斜率系统计算样本稀释结果曲线的斜率。
斜率用数学模式定义。
例如：平行稀释（Y=秒，X=Ln(%稀释度)报告的平行斜率是-9.666r2：系统计算平行曲线的r2。
用数学定义的模式计算。
见斜率单位：r2=0。
999。
y截距：系统计算平行曲线的截距。
用数学定义的模式计算。
见：斜率单位：y 轴截距是90.414。
重要提示：在当前软件版本，当因子是由平行模式测定时，系统不会应用线性范围和线性范围检测，结果超出范围不会被表明。
在解释结果是应该有所考虑。
确保试验结果在线性范围以内。
所有的稀释度都要在测定的线性范围以内。
因子平行试验标准系统提供很多标准来评判因子平行试验。
这些标准在同一屏幕设定，使用相同单位。
屏幕如下：以下标准可用：斜率检查如果开启系统会比较平行试验曲线和定标曲线的斜率。
可接受的斜率定义为与定标曲线斜率的偏移%（容许值）。
一旦定义容许值，系统会显示出范围来。
如果平行试验斜率超出这个范围，会出现以下提示：r2检测如果开启，系统会验证平行试验的r2是大于还是等于特定值（最小r2）。
如果不是，会显示下面报警：偏离检测如果开启，系统计算每一个浓度平均校正的结果和100%浓度的平均结果。
如果有哪个点的偏离超出“最大偏离”，将会显示：校正结果的%CV如果开启，系统计算校正结果的%CV值，除去100%稀释度，再除以定义的最大的%CV值。
如果最大的%CV值超出，将显示：校正结果100%的%CV如果开启，系统计算校正结果的%CV值，包括100%稀释度，和定义的最大%CV 比较。
如果超出最大15CV，下面会显示：IL定义的默认标准如前所述，IL定义的因子分析默认标准是：斜率检测允许耐受值为15%；如果平行试验的斜率偏移大于定标曲线的15%，平行试验的标记会有“slope out of range”斜率超出范围。
缺少平行意味着有干扰物。
r2检测允许最小为0.980：如果小于0.980，平行试验被表明：“parallelism r2 out of range”. 缺少平行意味着干扰物存在。
偏移检测允许最大偏移20%：如果各稀释点和100稀释点的偏移大于20%，平行试验就被标明：”Max. variance of parallelism dilution out of range”. 缺少平行意味着干扰物存在。
校正结果的%CV设定最大%CV为15%：如果叫%CV结果大于15%，平行试验就被标明：”%CV is great than the maximum %CV allowed”. 缺少平行意味着干扰物存在。
100%校正结果的%CVIL没有定义。
定义和使用因子平行试验举例说明如何定义因子平行试验：因子活力乘以样本稀释倍数。
因子平行试验定义因子活力在任何情况下，通过实验定义-平行屏幕。
如下面所见。
分析循环列表屏幕数据整理列表屏幕用样本稀释度乘积来界定活度稀释数：对于用户定义的试验，可以定义4个稀释度，100%稀释度必须有。
IL定义的平行试验有3个稀释度。
用SW2。
0版本，可以编辑样本稀释度。
单位：原始单位，也用于定标，是%活度。
单位1-4可以选择用来显示结果和打印。
单位1：选择校正结果100%的均值。
提供不同稀释度的平均%活度。
标准：开启偏移检测标记出显著偏移的的样本稀释度。
这些样本应该进行更多的其他分析。
除此之外，其他的平行试验标准也可使用。
用因子平行试验决定活度稀释点数：对于用户定义的来讲，可以定义4个，100%点必须有。
使用因子平行试验进行的IL试验定义三个稀释度。
用SW2。
0版本，可以编辑样本稀释度。
单位：原始单位，也用于定标，是%活度。
单位1-4为用户可选择的。
单位1：100%的平均值。
单位2：校正结果100%的均值。
单位3：校正结果100%的%CV值。
单位4：留空斜率检测：为使得平行试验斜率和定标曲线斜率偏离在一定的容许范围。
测定已知样本斜率，并定义15%的偏差来定义正常和异常样本。
观察结果，最后决定需要定义的阈值是多少。
（样本结果可以重新计算而不需要重做实验）。
R2检测：如上检测；最小为0.980偏差检测：如上检测，最大偏移20%。
校正结果的%CV值：如上检测，最大值为15%。
校正结果的%CV值和100%值：定义如上，但包括100%。
报告因子试验的结果如果没有抑制物出现，报告未校正的第一个在线性范围内的点的活度。
如果有抑制物，需要更多的点来决定结果。
因子平行试验结果举例正常样本样本有抑制物注意：CAP指南至少需要2个稀释度来报告因子浓度。
这被用来鉴定抑制物和激活物。
结合指南，IL每个样本用3个稀释度。
稀释按照厂家的定义，没有选择更多的稀释度以保证试验的精密度稀释后测定的结果，要检查。
两个连续值的试验室定义最大偏差（小于或等于20%）表明可接受的结果。
并确保在定标的范围以内。
平均两个结果并报告。
例1：定标血浆8因子浓度100%试验室最大误差±20%稀释度 1：10 1：20 1：40值 98% 92% 106%98%和92%在定标范围，并在20%偏差以内。
92%和106%不符合标准。
报告95%，98%和92%的均值。
例2：定标血浆8因子浓度100%试验最大误差20%稀释度 1：10 1：20 1：40值 116% 98% 106%98%和106%在实验范围内，没有超出20%的偏差。
116%超出定标范围(>100%)。
报告102%， 98%和106%的均值。
平行试验的设置可以在平行模式定义屏幕下开启或取消当前试验的平行模式。
也可以在系数平行模式研究时，对测定循环和数据缩减参数进行设置。
在下列情况下不能开启平行模式：试验是成对试验试验是隐试验未开启校正要进入平行模式定义屏幕：1．点击设置→试验清单。
2．双击想要设置的试验名称。
3．在数状目录中点击平行模式的选项。
开启平行模式选中此标记框开启平行模式设置，使平行模式试验变为可选则状态（对于IL锁定的试验，此区域可由用户进行编辑）。
平行模式LIS编码显示由ACL TOP自动生成、用于实验室信息系统的唯一的平行模式试验ID编码（对于IL锁定的试验，此区域可由用户进行编辑）。
是只读的平行模式试验代码。
试验代码是只读的平行模式试验代码。
平行试验区域简介在平行模式屏幕中有两个列表：测定循环和数据缩减。
测定循环列表重复试验的次数确定在平行模式稀释情况下进行重复测定的次数（对于IL锁定的试验，此区域可由用户进行编辑）。
最少：1次最多：3次默认：1次强制AR检测如果选中并已开启和定义测定参考值，系统就会在平行模式循环之前执行一次测定参考值，以确定校正曲线的有效性。
若测定参考值检测失败，则校正和平行模式都将被打上提示标记（对于IL锁定的试验，此区域可由用户进行编辑）。
稀释液这是一个只读区域，里面会显示从校正定义－稀释液屏幕中提取出来的稀释液的名称。
稀释过程这一区域显示试验使用的实习时过程。
对IL锁定试验为只读区域。
直接在开启直接选项后，所有平行稀释将直接从定标物试剂瓶中稀释。
系列稀释开启系列稀释选项，样品首先转移到等分比色皿，然后再转移到反应比色皿。
连续稀释液是使用比色皿中的样品等分液制备。
单一稀释准备特定平行试验水平的稀释组合（平行试验+样品预稀释），并在开始准备下一稀释液水平前将稀释液转移到反应比色皿。
注意：特定稀释的所有重复试验都在相同的比色皿带中进行。
直到前一稀释的所有稀释步骤后完成后在进行下一稀释过程。
批量在反应过程开始之前制备所有稀释水平的所有稀释液（平行试验+样品预稀释）。
不同稀释液的重复试验可能在比色带中混合。
数据缩减列表平行模式点单位基本单位是只读区域，显示用于校正的已定义结果单位。
注意：观察平行试验曲线，单位必须是%活度。
