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实验报告课程名称： 生物化学实验（甲） 指导老师： 成绩：__________________实验名称： 蔗糖酶的提取及离子交换柱层析分离纯化蔗糖酶 实验类型： 生化实验 同组学生姓名： 一、实验目的和要求（必填） 二、实验内容和原理（必填） 三、实验材料与试剂（必填） 四、实验器材与仪器（必填） 五、操作方法和实验步骤（必填） 六、实验数据记录和处理 七、实验结果与分析（必填） 八、讨论、心得一、实验目的和要求1、学习掌握蔗糖酶的提取、分离纯化的基本原理和方法。
2、学习离子交换层析的基本原理；3、学习离子交换层析分离蛋白质的基本方法和技术；4、学习蔗糖酶活性检测的基本原理和方法。
二、实验内容和原理1、酵母细胞破碎本实验采用研磨的方法。
通过固体剪切法（研磨）将酵母细胞破碎，把蔗糖酶从酵母细胞中提取出来。
2、蔗糖酶的初步分离纯化蛋白酶常用的初步分离纯化方法有：盐析、选择性变性、有机溶剂沉淀等。
本实验采用选择性变性（加热）、有机溶剂（乙醇）沉淀等方法对蔗糖酶进行初步的提纯。
由于酶蛋白在分离纯化过程中易变性失活，为了能获得尽可能高的产率和纯度，在提纯操作中要始终保持酶的活性，如在低温下操作等，这样才能收到较好地分离提纯效果。
3、离子交换层析离子交换层析是常用的层析方法之一。
它是以离子交换剂为固定相，根据流动相中的组分离子与交换剂上的平衡离子进行可逆交换时的结合力大小的差别而进行分离的一种层析方法。
离子交换剂与流动相中离子或离子化合物的反应主要以离子交换方式进行，或者借助离子交换剂上电荷基团对溶液中离子或离子化合物的吸附作用进行。
在某一pH 值的专业： 生物科学 姓名： 学号： 日期： 地点：装订线溶液中，不同的蛋白质所带的电荷存在差异，因而与离子交换剂的亲和力就有区别。
当洗脱液的pH改变或者盐的离子强度逐渐提高时，使某一种蛋白质的电荷被中和，与离子交换剂的亲和力降低，不同的蛋白质按所带电荷的强弱逐一被洗脱下来，达到分离的目的。
实验一密度梯度离心法提取叶绿体探索新鲜菠菜叶片叶绿体的分离纯化及其叶绿体蛋白质提取方法，为深入研究甘蔗叶绿体蛋白质组学奠定基础。
以叶片为材料，通过差速离心法制备粗叶绿体制品，分别利用蔗糖密度梯度离心和Percoll梯度离心进一步分离纯化完整叶绿体；提取叶绿体蛋白质，并进行电泳分析。
两种密度梯度离心法均可获得纯度和完整率较高的叶绿体，但蔗糖密度梯度离心法具有分离时间较短、成本较低，分离的叶绿体完整率、纯度和含量高等特点，并且提取的叶绿体蛋白质电泳条带清晰,蛋白质数量多且较全。
与Pecoll梯度离心法相比，蔗糖密度梯度离心法更适宜于在亚细胞水平上进行甘蔗蛋白质组学研究。
1 实验目的掌握手工制作密度梯度技术，了解蔗糖密度梯度离心的原理及优缺点。
2 实验原理密度梯度离心就是通过扩散法用相同的缓冲液把梯度介质配成不同浓度的梯度液，采用上铺法（或下铺法）将密度最大的梯度液置于离心管的底部，而把密度最小的梯度液铺在梯度的最上层，然后经之一段时间（最好放在与离心管温度相同的温度下，一般为24小时），让密度梯度溶质扩散，最后形成一种较为平坦的梯级梯度。
然后在密度梯度介质液柱的顶部铺上一层样品溶液，在离心期间，样品中的各种亚细胞组分会按照它们各自的沉降速度，被分成一系列的样品区带离心。
这种离心方法的基本依据是利用样品颗粒或大分子的不同沉降速率从而达到分离的目的。
密度梯度的作用在于一方面支撑样品溶液，另一方面用来稳定区带以防离心期间梯度柱中产生的对流对它的破坏。
颗粒在梯度中移动的快慢。
取决于它们的大小、形状、密度和离心力以及梯度介质的密度和黏度。
在含有不同颗粒的混合样品中，各种颗粒的移动是相互独立的，因此在各种颗粒的S值相差很小的情况下也能达到分离目的。
用两种或若干种浓度的蔗糖制成的梯度，在离心条件下，叶绿体和比它沉降系数小的细胞组分聚集到梯度交界处，而沉降系数较大的细胞组分沉到离心管底部。
通过这种方法可粗略的分离叶绿体。
浙大生化实验报告氨基转换反应实验目的：1. 了解尿素循环和氨基酸代谢的概念。
2. 掌握氨基转换反应的基本原理和方法。
3. 熟悉氨基转换反应的实验步骤和操作技巧。
实验原理：氨基转换反应是将氨基酸中的氨基转化为尿素排除体外的过程。
氨基酸进入肝脏后，通过转氨酶作用，将其氨基转移至α-酮酸中，生成相应的α-氨基酸。
肝细胞内存在尿素循环，即氨酸通过一系列酶的作用，转化为尿素，最后排出体外。
这一过程中，合成尿素的酶有五种，其中肝素合成酶（OTC）是尿素循环的速率限制酶。
在氨基转换反应中，尿素循环起到了重要的作用，通过测定血中尿素和谷草转氨酶（AST）的活性，可以判断肝脏的状态和氨基酸代谢状况。
实验步骤：1. 取适量的血清置于试管中，记录试管编号。
2. 分别在不同的试管中加入不同的试剂：试管A：加入5μl生理盐水。
试管B：加入2μl L-谷氨酰胺。
3. 在每个试管中加入10μl 的反应液，混匀后放置于37℃水浴中反应1小时。
4. 在每个试管中加入40μl 的去离子水，混匀后加入2ml 三氯醋酸（TCA）沉淀蛋白质。
5. 试管中的混合液混匀后，离心5min，将上清液转移到新的试管中，加入40μl 的1.5%四氯化碳（TCB）、200μl 1%吲哚丙酮、200μl 2.5%氨水，混匀后放置于室温下反应10min。
6. 在每个试管中加入2ml 甲醇，混匀后离心5min。
7. 将上清液转移到新的试管中，加入1ml 1.5%四氯化碳（TCB）。
8. 在每个试管中加入等量的去离子水，混匀后放入比色皿中，使用比色计测定各试管中产生的7-羟-库欣胆酸的吸收值。
实验结果：试管编号反应液产生的7-羟-库欣胆酸吸收值A 生理盐水 X实验分析：通过测定各试管中产生的7-羟-库欣胆酸吸收值，可以判断氨基转换反应的情况，以及肝脏的状态和氨基酸代谢状况。
通过比较试管B和试管C的吸收值，可以得出氨基酸代谢是否正常。
如果试管B的吸收值比试管C高，则说明肝脏合成尿素的能力正常，代谢氨基酸的能力也正常。
一蛋白质提取、纯化及分析技术实验一多酚氧化酶（PPO）的分离提取一、材料与试剂（1）马铃薯（大约每小组200-300g）（2）试剂：0.03M磷酸缓冲液PH6.0(内含0.02m巯基乙醇，0.001m EDTA，5%甘油，1%的聚乙烯吡咯烷酮)配制时配×10倍的浓缩液1000ml；固体硫酸铵；0.03M磷酸缓冲液PH6.0（内含0.02m 巯基乙醇，0.001m EDTA，0.005m MgCL2）配置时配。
（3）实验器械与仪器设备：试管与试管架；烧杯、玻璃搅棒；移液管、滴管等；试剂瓶；透析袋；过滤纱布；植物组织匀浆器；PH计和PH试纸；GL-20C高速冷冻离心机；DL-7A大容量低速冷冻离心机二、操作步骤1：粗酶提取：马铃薯组织按1：1（W/V）比例与0.03m磷酸缓冲液PH6.0（内含0.02M巯基乙醇，0.001m EDTA，5%甘油，1%聚乙烯吡咯烷酮）混合，匀浆4层后纱布过滤，滤液以6000rpm离心10min，弃除沉淀获得酶提取液。
2：盐析分级沉淀：在酶提取液中加入固体硫酸铵使其达到40%饱和度（边加边搅拌达到充分溶解），然后6000rpm离心20min弃除沉淀；离心上清液在加入固体硫酸铵达到70%饱和度（边加边搅拌达到充分溶解），再以6000rpm离心20min，弃除上清夜，收集粗酶沉淀。
沉淀用0.03M磷酸缓冲液PH6.0（内含0.02巯基乙醇，0.001M EDTA，0.005M MgCL2）溶解，装入透析袋中用0.02N KCL溶液透析至无硫酸铵根离子，获得粗酶液供上柱使用。
三、实验结果获得PPO粗酶液供上柱使用。
实验二柱层析纯化PPO一、材料与试剂试剂：0.02M Tris-HCL缓冲液Ph7.4(内含0.001M EDTA)配制时配×10倍浓缩液1000ml;NaCL;聚已二醇；葡聚糖凝胶Sephadex G-200等；实验器械与仪器设备：试管与试管架、烧杯、玻璃搅棒、移液管、滴管等；试剂瓶、层析柱、pH计和pH试纸、恒流泵、梯度混合仪、核酸蛋白监测仪、GL-20C高速冷冻离心机、DL-7A大容量低速冷冻离心机二、操作步骤1．葡聚糖凝胶的处理、装柱及平衡（1）柱材处理称取一定量的Sephadex G-200干粉，加无离子水或蒸馏水浸泡溶胀48h,去掉悬浮的细微颗粒，为防止凝胶颗粒中的空气存在，影响层析效果，凝胶装柱前一定要将凝胶液中的气体除掉，其办法是将凝胶液放进抽滤瓶中，进行抽真空处理，直到凝胶液中没有气泡出现为止。
实验1 大肠杆菌的培养和分离1、进行大肠杆菌的，利用液体培养基进行细菌培养的操作；进行大肠杆菌的，用固体平面培养基进行细菌的划线培养。
2、大肠杆菌是、的肠道杆菌。
3、是消除污染杂菌的通用方法，也是用于的最简便方法之一。
4、培养基的配置是先调PH再灭菌还是先灭菌再调PH？5、将已有细菌的培养物转移到新的培养基中，一般用转移带菌的培养物。
6、涂布分离法，需要先将培养的菌液稀释，通常稀释倍。
取mL稀释度不同的菌液，加在培养皿的固体培养基上，用玻璃刮刀涂布在培养基平面上，然后进行培养。
7、划线分离法，；涂布分离法，，但操作复杂些。
8、高压蒸汽灭菌法,一般条件在℃（压力）下灭菌min。
值得注意的是，实验中所需的棉花不能用脱脂棉，原因是。
9、“细菌喜，霉菌喜”，通常细菌培养基要用来配制，还要加入一定量的氯化钠，目的是；霉菌培养基一般用即可。
10、培养基中有葡萄糖，为防止葡萄糖分解碳化，要用压力（℃以上）灭菌min。
11、玻璃砂漏斗用后需用浸泡，并抽滤去酸，再用洗至洗出液呈中性，干燥后保存。
12、将培养基转移到三角瓶和试管中时，必须用；液体培养基先分装还是先灭菌？13、将有培养基的三角瓶和培养皿放到上，打开超净台的，待固体培养基冷却到℃时，，，然后倒平板。
14、倒平板时，每倒入一个培养皿后立即将培养皿。
15、倒完平板后，可做无菌检查，目的是。
16、扩大培养时，三角瓶在℃，每分钟转的摇床上振荡培养12h17、划线分离时，接种环需在菌液中蘸次，经培养后可看到，表明菌己被分离。
18、在无菌操作下将单菌落用接种环取出，再用划线法接种在斜面上，先，后置于保存。
19、进行恒温培养时为什么要将培养皿倒置？20、实验完成后，接触过细菌的器皿应如何处理？。
浙大微生物大实验报告摘要：本实验以土壤中的微生物作为原材料，根据微生物各自的生长特点，配制不同成分的微生物培养基。
将微生物培养物或含有微生物的样品在无菌条件下移植到培养基上培养，在分离出相应微生物后，对其进行进一步的纯化，然后观察其形态特征，并通过微生物的生理生化反应对其种类进行鉴定，最后研究环境条件对微生物生长的影响。
关键字：培养基，分离，纯化，鉴定，环境条件一、实验材料1、分离细菌、真菌、放线菌的材料：牛肉膏、蛋白胨、氯化钠、琼脂、马铃薯、蔗糖；可溶性淀粉、K2HPO4、KNO3、MgSO4·7H2O、FeSO4·7H2O等。
新鲜土壤；培养基：灭菌的牛肉膏蛋白胨琼脂培养基、淀粉琼脂培养基、马铃薯蔗糖培养基（10mL装）；试剂：5000U/mL 链霉素液、0.5％重铅酸钾液。
2、细菌、真菌、放线菌纯化与鉴定的材料：菌种：大肠杆菌、枯草杆菌、荧光假单胞菌、金黄色葡萄球菌，前实验分离的未知菌；培养基：淀粉培养基、硫化氢实验培养基、石蕊牛乳培养基、油脂培养基；试剂：碘液。
菌种：枯草杆菌斜面；灵杆菌菌液；黑曲霉斜面。
培养基采用：牛肉膏蛋白胨斜面培养基牛肉膏蛋白胨琼脂培养基（10mL）、马铃薯蔗糖培养基（10mL）、淀粉琼脂培养基（10mL）；供试药剂：2.5％碘酒，75％酒精，0.1％HgCl，5％石炭酸。
2二、实验步骤1、分离细菌、真菌、放线菌的步骤（一）、培养基配制l. 培养基配制的一般方法和步骤（1）称量：按照培养基配方，正确称取各种原料放于搪瓷杯中。
（2）溶化：在搪瓷杯中加入所需水量（根据实验需要加入蒸馏水或自来水），用玻棒搅匀，加热溶解。
（3）调pH值（调pH也可以在加琼脂后再调），用1N NaOH或1N HCl调pH，用pH试纸对照。
（4）加琼脂溶化，在琼脂溶化过程中，需不断搅拌，并控制火力不要使培养基溢出或烧焦，待完全溶化后，补足所失水分，一般数量少，时间短不必补水。
.. 实验报告课程名称： 生物化学实验（甲） 指导老师： 成绩：__________________实验名称： 蔗糖酶的提取及离子交换柱层析分离纯化蔗糖酶 实验类型： 生化实验 同组学生：一、实验目的和要求（必填） 二、实验容和原理（必填）三、实验材料与试剂（必填） 四、实验器材与仪器（必填）五、操作方法和实验步骤（必填） 六、实验数据记录和处理七、实验结果与分析（必填） 八、讨论、心得 一、实验目的和要求1、学习掌握蔗糖酶的提取、分离纯化的基本原理和方法。
2、学习离子交换层析的基本原理；3、学习离子交换层析分离蛋白质的基本方法和技术；4、学习蔗糖酶活性检测的基本原理和方法。
二、实验容和原理1、酵母细胞破碎本实验采用研磨的方法。
通过固体剪切法（研磨）将酵母细胞破碎，把蔗糖酶从酵母细胞中提取出来。
2、蔗糖酶的初步分离纯化蛋白酶常用的初步分离纯化方法有：盐析、选择性变性、有机溶剂沉淀等。
本实验采用选择性变性（加热）、有机溶剂（乙醇）沉淀等方法对蔗糖酶进行初步的提纯。
由于酶蛋白在分离纯化过程中易变性失活，为了能获得尽可能高的产率和纯度，在提纯操作中要始终保持酶的活性，如在低温下操作等，这样才能收到较好地分离提纯效果。
3、离子交换层析离子交换层析是常用的层析方法之一。
它是以离子交换剂为固定相，根据流动相中的组分离子与交换剂上的平衡离子进行可逆交换时的结合力大小的差别而进行分离的一种层析方法。
离子交换剂与流动相中离子或离子化合物的反应主要以离子交换方式进行，或者借助离子交换剂上电荷基团对溶液中离子或离子化合物的吸附作用进行。
在某一pH 值的溶专业： 生物科学姓名：学号：日期：地点： 装订线液中，不同的蛋白质所带的电荷存在差异，因而与离子交换剂的亲和力就有区别。
当洗脱液的pH改变或者盐的离子强度逐渐提高时，使某一种蛋白质的电荷被中和，与离子交换剂的亲和力降低，不同的蛋白质按所带电荷的强弱逐一被洗脱下来，达到分离的目的。
4、酶活力检测(定性检测）蔗糖酶是一种水解酶。
它能催化非还原性双糖（蔗糖）的1,2－糖苷键裂解，将蔗糖水解为等量的葡萄糖和果糖（还原糖）。
因此，每水解1mol蔗糖，就能生成2mol还原糖。
还原糖的测定有多种方法，如采用3.5－二硝基水酸法，其原理是3.5－二硝基水酸与还原糖共热被还原成棕红色的氨基化合物，在一定围还原糖的量和反应液的颜色深度成正比。
本实验在离子交换层析分离纯化的过程中，对分离纯化样品采用 3.5－二硝基水酸法来初步判定样品中还原糖含量的多少，由此来确定并收集蔗糖酶纯化样品。
三、实验材料与试剂1、实验材料市售干酵母粉 10g/组，蔗糖酶粗分离纯化样品Ⅲ2、实验试剂1、石英砂；2、95% 乙醇(-20℃）；3、DEAE-Sepharose Fast Flow (弱碱性阴离子交换剂)；4、20mmol/L Tris-HCl pH7.3 缓冲液；5、20mmol/L Tris-HCl，（1mol/L NaCl） pH7.3缓冲液；6、0.2mol/L乙酸缓冲液，pH4.5 ；7、5%蔗糖溶液；8、3，5-二硝基水酸试剂四、实验器材与仪器1、电子天平（称量样品）；2、研砵（每组一套）；3、50ml高速离心管（4支/组、4孔50ml离心管架一个/组）；4、托盘天平（离心管平衡用）；5、高速冷冻离心机；6、恒温水浴箱；7、制冰机；8、1.5ml离心管；9、－20℃冰箱；10、层析柱（φ1.0×20㎝）(1支/组）；11、恒流泵（流速0.8～1ml/min）(10rpm)（1台/组）；12、梯度混合器(100ml梯度杯)（1套/组）；13、核酸蛋白检测仪（灵敏度0.5A）（1台/组）；14、记录仪（纸速：0.5mm/min；灵敏度：50mV）（1台/组）；15、部分收集器及收集试管（1台/组）；16、铁架台、夹子（固定层析柱用）（1套/组）；17、－20℃冰箱；18、试管、试管架等。
五、操作方法和实验步骤1、酵母细胞破碎称取市售干酵母粉10g，约3-5 g石英砂放入研钵中直接干燥充分研磨至尽可能成细粉末状（约15分钟），量取总体积30-40 ml的20mmol/L Tris-HCl pH7.3 缓冲液，分2次加在研砵研磨10分钟，使呈糊状液体（研磨越彻底，释放出的蔗糖酶越多）；将糊状液体转移到2支50ml离心管中，两支离心管平衡后，4℃、12000r/min离心15分钟（这次离心分离掉酵母碎片和酵母），收集上清液并量出体积V1（样品I）,另留1ml上清液（样品I ）放置－20℃冰箱保存，用于蔗糖酶蛋白含量测定、蔗糖酶活力测定和SDS-PAGE分析。
2、热处理：将上一步抽提液（样品I），迅速放入50℃恒温水浴中，保温30分钟，并用玻璃棒温和搅拌抽提液（由于蔗糖酶相对耐热，热处理能除去很多不耐热的杂蛋白），保温后迅速用冰浴冷却5分钟，转移至两支50ml离心管中，平衡后， 4℃，15000r/min离心15分钟（由于离心过程会产生热量，故保持4℃一方面保证样品不被破坏，另一方面保护离心机不因过热而损坏），收集上清液并量出上清液体积V2（样品Ⅱ），另留1ml上清液（样品Ⅱ）放置－20℃冰箱保存，用于蔗糖酶蛋白含量测定、测定蔗糖酶活力和SDS-PAGE分析。
3、有机溶剂（乙醇）沉淀：将热处理后的上清液逐滴加入相同体积的－20℃的95%乙醇（酒精除去水膜令蛋白沉淀，但由于乙醇会使蛋白局部变形且在4℃以上时可使大部分蛋白完全变性，故保持4℃以下减少变性造成的损失），冰浴中温和搅动混匀，至少放置20分钟，然后转移至两支50ml 离心管中，两支离心管平衡后，4℃，12000r/min离心10分钟，弃去上清液，沉淀放置－20℃冰箱保存。
4、离子交换剂准备：(实验室已准备好）5、样品处理：将乙醇沉淀的蔗糖酶蛋白样品充分溶解于15ml 20mmol/L Tris-HCl pH7.3 缓冲液；4℃15000r/min, 离心10分钟，收集样品上清液（样品Ⅲ）测量总体积(ml数），取4ml进行分离，其余置于5ml离心管中并放入－20℃冰箱。
6、纯化检测仪器连接：将梯度混合器(100ml梯度杯)，层析柱（φ1.0×20㎝），恒流泵 (10rpm) （流速0.8～1ml/min），核酸蛋白检测仪（灵敏度0.5A），记录仪（纸速：0.5mm/min，50mV）、部分收集器（4～5 ml/管/5min）等连接并设置好。
7、装柱(层析柱规格1×20cm)、平衡：装柱前先调好流速5ml/10min ，然后将柱下端的出水口关闭，加进5ml（约1/3柱床体积） 20 mmol/L Tris-HCl、pH7.3的缓冲液，然后将处理好的DEAE—Sepharose Fast Flow，轻轻搅匀（注意不能太稀，也不能太稠，刚好呈流质状态）沿玻棒靠近柱管壁慢慢连续加进柱至层析柱上端。
注意不能带进气泡，待凝胶自然沉积离柱管上端约1-2cm后松开层析柱出口，控制流速 5ml/10min；待柱DEAE —Sepharose Fast Flow 凝胶沉降至稳定高度并分出水层后，吸去水层，用玻棒将沉降界面搅匀，再补加处理好的DEAE—Sepharose Fast Flow凝胶，直到凝胶沉降至稳定高度距层析柱上端约3cm处为止（这时须保持DEAE—Sepharose Fast Flow凝胶柱面平整）。
用20 mmol/L Tris-HCl、pH7.3的缓冲液连通层析柱，进行柱平衡，直到流出液与缓冲液的pH一致。
8、加样：停止加入20mmol/L Tris-HCl pH7.3 缓冲液。
待缓冲液液面与胶体表面相切时，恒流泵停止工作。
用胶头滴管缓慢将蔗糖酶蛋白样品溶液（样品Ⅲ）加入层析柱中，注意顺着柱壁滴加，尽可能保持胶面平整。
打开恒流泵，使样品溶液进入胶体，待样品溶液完全进入胶体后，用少量洗脱缓冲液将残余在层析柱壁上端的样品洗下，并完全进入胶体后，再加洗脱缓冲液至一定高度。
9、洗脱：梯度洗脱法：加样后，用20mmol/L Tris-HCl pH7.3 缓冲液进行平衡，洗脱流速为5ml/10min ，洗去未被DEAE —Sepharose Fast Flow凝胶吸附的杂蛋白，待层析柱流出液在核酸蛋白检测仪上绘出的基线稳定，用20mmol/L Tris-HCl pH7.3 缓冲液NaCl梯度洗脱（浓度为0-1mol/L NaCl ），层析柱联上梯度混合器，混合器中分别为50ml 0.05mol/L Tris-HCl pH7.3缓冲液和50ml含1mol/L NaCl的0.05ml/L Tris-HCl pH7.3缓冲液。
洗脱流速为5ml/10min ，每5ml接一管，洗脱至缓冲溶液流完为止。
将蔗糖酶活力高的若干管酶液集中，测量总体积（ml数）（样品Ⅳ），样品－20℃低温保存备用。
10、蔗糖酶活力检测：收集活力高的蔗糖酶液，测总体积(ml数) （样品Ⅳ），-20℃保存六、实验数据记录和处理1.、V1=22.5ml，V2=18.5ml，V3=6.5ml，2、核酸蛋白检测仪波形图其中，从左至右第一个峰并未检测出蔗糖酶，第二个大峰所在处收集的溶液检测出蔗糖酶，故收集第二个大峰对应的试管里面的液体。
七、实验结果与分析由图1、图2曲线的不同分布可以看出：当蛋白质含量最高时，蔗糖酶的含量并非最高。
这说明在样品Ⅱ中存在其他蛋白质类的杂质。
试管号为7、8、9（即F4-7、F4-8、 F4-9）对应的样品中蔗糖酶的含量相对较高，可知需保存这三管试样进行之后的实验。
八、讨论、心得1、实验操作过程中应小心注意，切勿打翻样品液；2、装柱时应小心不带入气泡，否则需重新装柱；3、层析时应控制液体流速，以免过快导致所得样品液杂蛋白含量过高。
