FGF与Wnt通路
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Wnt信号通路对毛囊胚胎发育和生长周期的影响作为皮肤的附属器官,毛发具有很重要的生理作用,例如参与正常皮肤维持、皮肤创伤愈合的修复等。
近年来随着工程皮肤的发展和人工皮的应用,毛囊的发育再生问题引起广泛的关注。
已有文献表明Wnt、Hedgehog、Transforming growth factor (TGF)、Epidermal growth factor receptor(EGFR)等重要分子涉及到毛囊发育再生这一过程,其中Wnt通路是最为重要的一条途径。
一、Wnt信号通路Wnt信号通路是一条非常保守的信号转导途径这条途径的具体过程为:胞外配体Wnts与细胞膜上的属于卷曲蛋白(Frizzled)家族的七次跨膜受体及单跨膜受体LRP5/6结合后,Wnt信号通路被激活。
激活的受体将信号进一步传递给细胞质中的一系列蛋白,包括Dishevelled(Dsh)、Glycogen synthase kinase 3 beta(GSK3β)、Axin和adenomatous polyposis coli(APC)等,导致Axin-APC-GSK3β复合体被破坏,从而阻止胞质内游离的β-catenin降解:结合的β-catenin在细胞连接处与钙粘蛋白(E-cadherin)结合形成粘合带,游离的β-catenin在胞质内积聚到一定量后进入细胞核,与LEF/TCF形成复合物激活下游基因的转录- 。
最近的研究结果显示,在创面修复过程中,Wnt作为上游信号对毛发再生及毛囊干细胞的增殖、分化进行调控的同时,还对毛囊干细胞的细胞周期进行相应调控。
二、Wnt信号通路的重要成员及其对毛囊胚胎发育和生长周期的影响1.Wnt 蛋白人和小鼠的Wnt 家族成员有19种之多,究竟是哪一种或者几种Wnt蛋白在毛囊形成中发挥作用仍未明了。
纪影畅等对小鼠身上表达的所有Wnt成员进行全面检测分析,包括小鼠胚胎皮肤和出生后的皮肤在内,发现只有Wnt10b、Wnt10a、Wnt5a在毛囊的发育早期特异表达,其中,Wnt10b在胚胎皮肤毛囊发育和成年毛囊再生启动时表达尤其明显。
闰盘的名词解释组胚一、引言在生物学中,胚胎是指由受精卵一分为二,然后继续分裂和发育而成的早期生物结构。
而组胚则是胚胎发育的一个阶段,它是胚胎由一细胞的受精卵进化为一个多细胞结构的过程。
本文的主要内容将围绕着”闰盘的名词解释组胚”这个任务展开。
首先,我们将对组胚的定义进行详细解释,并介绍组胚的形成过程和相关的分子调控机制。
接着,我们将探讨组胚在生物学研究中的重要意义,并引用一些实际应用的例子。
最后,我们将总结本文的内容。
二、组胚的定义组胚(blastula)是胚胎发育过程中的一个阶段,它是由受精卵经过一系列细胞分裂和细胞移动后形成的多细胞结构。
在组胚阶段,胚胎呈球状或盘状,由内外两层细胞组织构成。
外层细胞组成外胚层,内层细胞则构成内胚层。
组胚阶段通常发生在受精卵分裂为16至64个细胞之后,具体时间根据物种的不同而有所不同。
三、组胚的形成过程组胚的形成是一个复杂而精确的过程,在多细胞生物的发育过程中起着重要的作用。
以下是一个典型的组胚形成的过程:1.受精卵分裂:受精卵在受精后,细胞开始进行连续而快速的分裂,形成一系列的细胞。
2.细胞移动:在分裂的过程中,细胞开始进行移动,沿着一定的方向进行排列。
这个过程被称为胚胎的腹背轴形成。
3.细胞分化:细胞在组胚阶段逐渐分化为不同的类型。
一般来说,外层细胞分化为外胚层细胞,内层细胞则分化为内胚层细胞。
4.产生体轴:组胚的形成还伴随着体轴的产生。
在体轴形成过程中,一些特定的细胞会发育成为神经板,最终形成中枢神经系统。
四、组胚的分子调控机制组胚的形成过程受到多个信号通路和基因网络的调控。
以下是一些重要的分子调控机制:1.Wnt信号通路:Wnt信号通路是组胚形成过程中的关键调节因子之一。
它在组织和器官的形成中起着重要的作用,并参与细胞命运的决定。
2.FGF信号通路:FGF信号通路通过调节细胞增殖和分化来影响组胚的形成。
它可以促进细胞的迁移和多样化,并在早期胚胎发育中发挥重要的作用。
概述三胚层分化引言三胚层分化是胚胎发育过程中的一个重要阶段,指的是受精卵经过一系列细胞分裂和特定细胞移动后,形成三个不同的胚层:外胚层、中胚层和内胚层。
这三个胚层将进一步发展成为不同组织和器官,构成成熟的多细胞生物体。
胚胎发育过程1.受精卵:受精卵是由卵子和精子结合而成的单细胞体。
在受精卵形成后,它会经历一系列细胞分裂。
2.2细胞期:在受精卵内部,原核质被分割成两个相等大小的细胞。
3.4细胞期:原核质再次分割,形成四个相等大小的细胞。
4.8细胞期:原核质进一步分裂,生成八个相等大小的细胞。
5.胚泡期:在这一阶段,八个细胞开始紧密地排列在一起,并形成一个囊状结构,称为囊泡。
6.悬浮期:囊泡内细胞进一步分裂,增加细胞数目,但细胞大小并未改变。
7.囊胚期:在这一阶段,囊泡内的细胞开始分化成不同的层次,形成外胚层、中胚层和内胚层。
三胚层的形成1.外胚层:也称为表皮原肠。
它是由囊胚期的表面细胞发育而来。
外胚层会形成皮肤、毛发、指甲等表皮组织。
2.中胚层:也称为中间原肠。
它是由囊胚期的中间细胞发育而来。
中胚层会形成骨骼、肌肉、心脏等内部组织。
3.内胚层:也称为内部原肠。
它是由囊胚期的内部细胞发育而来。
内胚层会形成消化系统、呼吸系统、神经系统等内脏组织。
三个胚层的命运1.外胚层:外胚层最早分化出来,它将发展成为表皮和相关附件,如毛发和指甲。
外胚层还会分化成神经外胚层,形成神经系统的一部分。
外胚层还可以分化成生殖细胞,最终形成生殖器官。
2.中胚层:中胚层将发展成为骨骼、肌肉、心脏等内脏组织。
它还会分化成血液和血管系统的一部分。
3.内胚层:内胚层将发展成为消化系统、呼吸系统、泌尿系统和生殖系统等内脏组织。
它还会分化成神经系统的一部分。
调控三胚层分化的因素1.信号分子:在三胚层分化过程中,许多信号分子起着关键作用。
Wnt信号通路参与调控中胚层和内胚层的形成,而Fgf信号通路参与调控外胚层的形成。
2.转录因子:转录因子是调控基因表达的关键蛋白质。
发育生物学中的关键基因与信号通路发育生物学是生物学的一个重要分支,主要研究生物体形态、结构及其功能的形成与发展过程。
在发育生物学中,基因和信号通路是研究的重要内容。
基因是指在某个生物体内所携带的一段DNA序列,其决定了生物体的遗传特征和生命活动的正常运转。
信号通路则是细胞内部传递信息的一种机制,通过分子信使的传递完成各种生物过程的调节。
本文将重点介绍发育生物学中的关键基因和信号通路。
一、关键基因1. Hox基因Hox基因是指调控后胚胎发育的一组调控基因,它们的表达顺序呈现出“时空编码”特性,即在靠近前端的基因比在靠近后端的基因先被激活。
Hox基因的突变或表达异常可以导致发育缺陷。
例如,当鼠标上Hox基因失活时,它们的四肢就不再发育,导致胚胎停滞和死亡。
2. Nodal基因Nodal基因在胚胎早期的胚层分化阶段起着关键作用。
它们被激活会促使一些细胞转化成为胚胎早期的外胚层和混合层细胞。
Nodal基因对于心脏、肠道和肺部的形成、器官定位和侧偏分化都起着关键作用。
3. Sonic hedgehog基因Sonic hedgehog基因是发育生物学中最为重要的基因之一,它调控了体腔、神经系统、骨骼和肌肉等多个器官系统的形成。
Sonic hedgehog基因的命名灵感来自一部名为《Sonic the Hedgehog》的游戏,因为其缩略语SHH与游戏名称相同。
4. PAX6基因PAX6基因主要控制眼球的形态和眼睛神经系统的发育。
该基因被认为是所有双眼动物中眼睛的关键组成部分,在人和其他哺乳动物中缺陷会导致各种眼睛发育异常。
二、信号通路1. Wnt信号通路Wnt信号通路是一种广泛参与胚胎发育和细胞分化的信号通路。
它通过一系列的反应调节细胞的基础过程,如细胞分裂、增殖、移动和生长等。
Wnt信号通路在成人细胞中也具有重要作用,参与肿瘤发生的调节,因此也被称为“癌症引子”。
2. BMP信号通路BMP信号通路是调控骨骼系统和神经系统形成的重要信号通路。
Wnt信号通路在软骨发育中的功能研究的开题报告一、研究背景和意义软骨是一种特殊的结缔组织,构成了人体骨骼和关节软骨、鼻腔、耳朵等器官,具有保护和支持身体的作用。
软骨发育和维持需要多种细胞、分子和信号通路的协调调控,其中Wnt信号通路是重要的调节机制之一。
Wnt信号通路是一种高度保守的信号通路,在动物和植物体内都广泛存在,并且涉及到细胞增殖、分化、凋亡等生物学过程。
在软骨发育中,Wnt信号通路参与了软骨细胞的分化和成熟、软骨基质的形成和维持,以及软骨的修复等重要过程。
因此,研究Wnt信号通路在软骨发育中的功能,有助于深入了解软骨发育的分子机制、寻找治疗软骨相关疾病的新靶点和药物,具有重要的理论和实际意义。
二、研究现状和存在问题近年来,越来越多的研究表明,在软骨发育和疾病中,Wnt信号通路发挥着重要的调节作用。
一些研究发现,Wnt信号通路的激活可以促进软骨芯细胞的增殖和分化,从而促进软骨的生长和形成。
另外,Wnt信号通路的抑制也可以有效促进软骨的修复和再生。
然而,现有的研究仍存在许多问题。
首先,Wnt信号通路在软骨发育中的具体调节机制和参与分子尚不完全明确,需要进一步深入探究。
其次,Wnt信号通路在不同类型的软骨细胞(如软骨芯细胞、软骨细胞、软骨外周细胞等)中的功能及分子机制也需要进行更深入的比较和研究。
最后,Wnt信号通路在软骨发育中与其他信号通路(如TGF-β信号通路、FGF信号通路等)的交互作用和调节效应也是一个需要探究的问题。
三、研究内容和方法本研究拟就Wnt信号通路在软骨发育中的功能和调节机制开展深入研究,主要包括以下内容:1.研究Wnt信号通路在软骨芯细胞分化和成熟中的作用和调节机制;2.比较不同类型软骨细胞中Wnt信号通路的功能差异及分子机制;3.探究Wnt信号通路与其他信号通路的交互作用和调节效应。
本研究将采用多种实验方法和技术,包括体外细胞培养、定量PCR、蛋白质免疫印迹、免疫荧光染色、组织学分析等,以探究Wnt信号通路在软骨发育中的具体作用和分子机制。
鱼类胚胎发育的分子机制自然界中,鱼类是优质的食品资源和重要的水生生物,而鱼类的胚胎发育是其种群生态学和种类保护学研究的重点。
近年来,随着分子生物学和遗传学等生命科学技术的不断发展,我们对于鱼类胚胎发育方面的了解也越来越深入。
本文将介绍鱼类胚胎发育的分子机制,包括受精,胚胎早期发育,胚胎器官形成等过程。
1. 受精鱼类的受精过程比较简单,通常为外受精。
在水中,雄鱼向卵泡释放精子,与卵子结合形成受精卵。
受精卵的形成,需要一系列细胞分裂和细胞增殖的过程,而这些过程是由分子水平上的基因转录和翻译调控的。
在受精卵形成的过程中,演化保守的画蛋白H2A.Z和H2A.X等转录因子,在受精前期分别被发现。
这说明在受精前期,胚胎细胞已经在为其后续的细胞增殖和分化,做好了基因转录调控方面的准备工作。
2. 胚胎早期发育受精后,受精卵经过数个细胞分裂后形成胚胎。
在胚胎早期发育阶段,基因调控起到了至关重要的作用。
比如,在斑马鱼早期胚胎发育中,有许多特异性基因转录因子参与到了细胞总数的调控中,从而做好了胚胎中胚层与外胚层的正常发育。
此外,一些小的非编码RNA(ncRNA),如microRNA和siRNA等在细胞增殖和分化方面也起到了重要的作用。
3. 胚胎器官形成在胚胎器官形成阶段,胚层的发育协同工作是十分必要的。
在这一章节里,我们重点讲述了斑马鱼神经管和鳍骨的发育,同时也涉及了一些蛋白质和ncRNA在胚层发育中的调控机制。
例如,Fgf和Wnt信号通路是在斑马鱼中促进神经元和鳍骨发育的重要信号路径。
在斑马鱼的发育中,肌肉的形成则是由一个叫做myf5的转录因子控制。
与此同时,一些microRNA如miR-133还控制了鱼类的胚胎鳍肌发育,说明ncRNA在胚胎器官形成中也拥有十分重要的作用。
结论总体上来说,上述研究结果进一步论证了基因调控在鱼类胚胎发育中的重要性,包括受精、胚胎早期发育和器官形成等多个阶段。
此外,特异性的基因转录因子和小分子ncRNA等也都发挥了在胚层细胞增殖与分化中的重要性。
在软骨FGFR信号传递试验模型中,成纤维生长因子及经典Wnt/β联蛋白信号传递协同抑制软骨细胞分化ABSTRACT在骨骼发育不良中,异常的成纤维生长因子(FGF)信号传递干扰了软骨细胞分化,但其背后的机制仍不清楚。
最近,人们发现软骨细胞中FGF通过Erk MAP激酶介导WNT共受体Lrp6磷酸化,从而激活了经典WNT/β联蛋白途径。
本文中,我们探索了这种信号传递相互作用对细胞产生的作用。
在小鼠肢芽微团块及肢体器官培养中,WNT增强了FGF介导的对软骨细胞分化的抑制,使得微团块培养中软骨结节的形成受到抑制,并且被培养的肢体生长受到抑制。
FGF和WNT/β联蛋白途径同时激活引起软骨细胞外基质丢失,矿化组织特异性基因表达,细胞形状改变。
WNT通过抑制基质合成并诱导生成涉及基质降解的那些蛋白激酶,从而增强了FGF对软骨细胞蛋白多糖和胶原性细胞外基质的下调。
FGF与WNT协同诱导了调控RhoA GTPase通路的那些基因表达,而RhoA信号传递的抑制缓解了由FGF/WNT介导的软骨细胞形状的变化。
我们的结果提示异常的FGF信号传递与WNT/β联蛋白协同抑制了软骨细胞的分化。
INTRODUCTION软骨内骨化,即先前的软骨被骨质替换掉,是骨纵向生长的主要机制。
骨在骺生长板处变得更长,而生长板处的软骨细胞经历了一系列分化阶段。
软骨细胞离开其静息状态,呈柱状排列增殖,推出细胞周期并变得肥大,在这个过程中它们使其基质矿化,并开始凋亡。
然后软骨就被骨质替换掉了(1)。
FGF信号传递是这一过程的主要调控者之一。
在小鼠中移除FGFR3会造成骨骼过度生长(2),而人类中FGFR3的活化突变与一些骨骼发育不良疾病有关,比如最常见的短肢侏儒症软骨发育不全(ACH),以及致死性发育不良(TD),它是最常见的致死性骨骼发育不良病。
FGFR3相关性骨骼发育不良的标志性特征之一就是生长板结构的严重破坏,在TD中,这种破坏造成肥大软骨细胞柱变小,或根本就不存在(4)。
在软骨FGFR信号传递试验模型中,成纤维生长因子及经典Wnt/β联蛋白信号传递协同抑制软骨细胞分化ABSTRACT在骨骼发育不良中,异常的成纤维生长因子(FGF)信号传递干扰了软骨细胞分化,但其背后的机制仍不清楚。
最近,人们发现软骨细胞中FGF通过Erk MAP激酶介导WNT共受体Lrp6磷酸化,从而激活了经典WNT/β联蛋白途径。
本文中,我们探索了这种信号传递相互作用对细胞产生的作用。
在小鼠肢芽微团块及肢体器官培养中,WNT增强了FGF介导的对软骨细胞分化的抑制,使得微团块培养中软骨结节的形成受到抑制,并且被培养的肢体生长受到抑制。
FGF和WNT/β联蛋白途径同时激活引起软骨细胞外基质丢失,矿化组织特异性基因表达,细胞形状改变。
WNT通过抑制基质合成并诱导生成涉及基质降解的那些蛋白激酶,从而增强了FGF对软骨细胞蛋白多糖和胶原性细胞外基质的下调。
FGF与WNT协同诱导了调控RhoA GTPase通路的那些基因表达,而RhoA信号传递的抑制缓解了由FGF/WNT介导的软骨细胞形状的变化。
我们的结果提示异常的FGF信号传递与WNT/β联蛋白协同抑制了软骨细胞的分化。
INTRODUCTION软骨内骨化,即先前的软骨被骨质替换掉,是骨纵向生长的主要机制。
骨在骺生长板处变得更长,而生长板处的软骨细胞经历了一系列分化阶段。
软骨细胞离开其静息状态,呈柱状排列增殖,推出细胞周期并变得肥大,在这个过程中它们使其基质矿化,并开始凋亡。
然后软骨就被骨质替换掉了(1)。
FGF信号传递是这一过程的主要调控者之一。
在小鼠中移除FGFR3会造成骨骼过度生长(2),而人类中FGFR3的活化突变与一些骨骼发育不良疾病有关,比如最常见的短肢侏儒症软骨发育不全(ACH),以及致死性发育不良(TD),它是最常见的致死性骨骼发育不良病。
FGFR3相关性骨骼发育不良的标志性特征之一就是生长板结构的严重破坏,在TD中,这种破坏造成肥大软骨细胞柱变小,或根本就不存在(4)。
这揭示了异常的FGF信号传递在软骨分化过程中的负性作用,但这种表型背后的机制仍不清楚。
其中一个解释是FGFR3可能干扰了Indian Hedgehog(Ihh)/甲状旁腺激素相关蛋白(PTHrP)信号传递,该信号传递对软骨细胞正确地从增殖状态转向肥大状态是必须的(5)。
ACH和TD的小鼠模型的生长板中,都显示出Ihh和PTHrP信号传递成分表达受到抑制,而向培养的软骨细胞中加入PTHrP 可以部分对抗由FGFR3调控的细胞表型(6~9)。
我们认为,对于在TD中观察到的所有类型的软骨细胞分化缺陷,Ihh/PTHrP信号传递受损不是其唯一原因。
其它可能介导FGFR3对软骨细胞分化作用的机制仍然有待描述,这妨碍了我们对FGFR3在骨骼生长中功能的完整理解。
最近,我们描述了软骨细胞中经典(即依赖于β联蛋白的)WNT途径受FGF信号传递而激活,证据是FGF介导β联蛋白稳定化,其在细胞核中聚集程度增加,以及β联蛋白依赖性转录过程的活化。
这一表型依赖于4个胞内PPPS/TP模体上Erk MAP激酶介导的WNT共受体Lrp6磷酸化,这4个模体是WNT/β联蛋白信号转导所必须的(10,11)。
此外,FGFR3突变还与骨骼发育不良有关,表现出通过Erk/Lrp6途径的信号传递增加(12)。
有趣的是,经典WNT配体出现在生长板软骨中,而其中WNT/β联蛋白途径的生理活化,通过抑制PTHrP信号传递并诱导终末分化软骨细胞特异性标志基因,促进了软骨细胞分化(12,14)。
目前这项研究旨在探索FGF与WNT/β联蛋白信号传递之间的相互作用,对软骨细胞分化调控所产生的影响。
RESULTS AND DISCUSSION软骨细胞中FGF激活了WNT/β联蛋白信号传递小鼠软骨瘤软骨细胞(RCS)是一种永生化的,表型稳定的细胞系,表达FGFR2和FGFR3,但不表达FGFR1和FGFR4,并产生大量的软骨样胞外基质(ECM),这种基质由硫酸蛋白多糖和Ⅱ型胶原组成(15~17)。
通过添加外源性FGF2,活化RCS细胞中的FGFR信号传递,引起Lrp6在Ser1490和Thr1572处磷酸化(Fig.1A)(10),伴有β联蛋白累积,持续时间长达5天(Fig.1B)。
我们在另外两个软骨发育模型中检测了FGF2介导的Lrp6磷酸化,这两个模型一个是E12小鼠肢芽间质细胞原代培养,通过微团块培养诱导向软骨细胞分化(18,19),另一个是从E17.5胚胎中游离的小鼠股骨肢体器官培养。
这两个模型都对FGF2处理有反应,Lrp6磷酸化(Fig.1A)。
Ser1490和Thr1572属于Lrp6上的PPPS/TP模体,该模体充当接纳位点,从β联蛋白破坏复合物中隔绝掉Axin1和GSK3,使β联蛋白稳定化并使转录活化(20)。
移除PPPS/TP模体损伤WNT信号传递,而通过独立于WNT/β联蛋白途径的激酶,比如说Erk MAPK,在PPPS/TP模体中磷酸化,会促进WNT信号传递(21,22)。
在RCS软骨细胞中,FGF2介导的Lrp6磷酸化,使细胞在分子上对WNT3a(经典WNT配体)的反应增加了100多倍(10)。
为了识别FGF2与WNT3a相互作用背后的潜在感受因子,我们利用多种荧光酶指示基因(reporter)来确定FGF2和WNT3a对已知调控软骨细胞行为的关键信号传递途径的转录活性所产生的影响,比如NF-kB,Snail,Elk1(Erk MAPK活性的指示剂),Sox9,Tgfβ以及Ihh(11,23~27)。
FGF2和WNT3a调控了所有受测指示基因的活性(Fig.1C)。
但是,这些变化与FGF2和WNT3a共同刺激所诱导的大规模β联蛋白转录活性(Topflash reporter)相比很小,提示在FGF和WNT信号传递相互作用中β联蛋白是主要的感受因子。
在小鼠肢芽微团块培养和肢体器官培养中,FGF2和WNT3a协同作用抑制了软骨细胞分化确定了RCS软骨细胞中FGF和WNT/β联蛋白信号途径的相互作用后,我们探索了FGF2和WNT3a处理对取自E12小鼠肢芽的间质微团块培养物产生的作用。
这一模型概括了离体条件下软骨细胞的分化,其在培养的第7天可以观察到软骨结节形成,在14天可以观察到ECM矿化(28)(Fig.2A,B)。
生长了14天的微团块中观察到的基质矿化可能起源自间质细胞向成骨细胞分化,或源自肥大软骨细胞分化。
由于替代的是软骨结节的外面而不是里面,所以很可能矿化基质是由新分化的成骨细胞产生的,而不是由肥大软骨细胞产生的(Fig.2B,右侧部分)。
通过对增殖软骨细胞特异性标志基因(Ⅱ型胶原),肥大软骨细胞特异性标志基因(Ⅹ型胶原),以及成骨细胞特异性标志基因(runx2,骨钙素)进行定量RT-PCR分析,显示出在第14天时软骨细胞标志物部分下降,伴runx2和骨钙素mRNA大量上调,从而证实了上述观点(Fig.S1)。
单独使用时,在微团块培养中FGF2和WNT3a都可以抑制软骨细胞分化,其证据是培养7天后软骨细胞结节的数量和大小都减少。
在受到FGF2和WNT3a同时处理的细胞中这种表型最显著(Fig.2A)。
与之相比,培养14天时,FGF2和WNT3a增加了基质矿化,联用这两种生长因子时在培养物中观察到矿化效应最强(Fig.2B)。
因此,FGF似乎与WNT/β联蛋白信号传递协同作用抑制微团块培养中的软骨细胞分化,同时增强成骨细胞分化(Fig.2C)。
与RCS软骨细胞中或肢芽微团块培养中的情况一样,在E17.5小鼠股骨中新鲜识别出了(freshly isolated)由FGF2启动的Lrp6磷酸化(Fig.1A)。
我们使用肢体器官培养来测试FGF 和WNT/β联蛋白信号传递之间的相互作用是否会影响生长板软骨中软骨细胞的行为。
从E18小鼠胚胎中游离出的胫骨表现出正常的生长板结构,增殖状态和分化状态的软骨细胞有不同的区域,包括位于软骨-骨连接处的终末分化软骨细胞(数据未显示)。
这种胫骨用FGF2处理8天,与对照组相比其生长板显著缩短,结构上显著无组织,其证据是肥大区减少伴柱状软骨细胞缺如(Fig.3A,B)。
经FGF2处理的胫骨中Ⅹ型胶原减少,证实了这一点(Fig.3C)。
单独用WNT3a处理的胫骨,与用FGF2/WNT3a处理的胫骨相比,生长正常,后者表现出最为显著的生长抑制,同时表达Ⅹ型胶原的软骨细胞几乎完全消失。
用非经典(即独立于β联蛋白的)WNT配体WNT5a处理的胫骨中未发现与FGF2介导的生长抑制相类似的效应(Fig.S2)。
与已发表的文献一样(29),这个现象揭示出FGF信号传递干扰了生长板中的肥大软骨细胞分化。
用WNT3a处理造成WNT/β联蛋白途径活化增强了这一效应。
FGF2和WNT3a协同调控软骨细胞形状及ECM更替在RCS软骨细胞中,FGFR的活化通过抑制基质合成并激活蛋白水解,引起软骨细胞硫酸蛋白多糖ECM迅速丧失(30,31)。
如阿尔新蓝染色所示,这种表型在经FGF2/WNT3a处理的细胞中最明显;WNT3a单用不会改变ECM的产生(Fig.4A)。
通过使用[35S]硫酸盐的代谢蛋白多糖标记,更好地量化测定了硫酸蛋白多糖ECM(30),其结果证实了这一点(Fig.4B)。
除了蛋白多糖ECM,胶原ECM的产生也受到FGF信号传递的调控,其证据是经FGF2处理后Ⅱ型胶原表达下降;这一效应受WNT3a增强,细胞经FGF2/WNT3a处理72小时后几乎见不到Ⅱ型胶原的表达(Fig.4C)。
在FGFR3相关性骨骼发育不良中,软骨细胞形状改变是一个关键的组织学特征(4)。
在RCS软骨细胞中也表现有相似的表型,经FGF2处理的细胞增大,变平,通过鬼笔环肽(phalloidin)对肌动蛋白应力纤维进行染色,示细胞骨架也出现了重构(Fig.5A,D)。
通过对黏着斑的黏着蛋白染色,还主观观察到经FGF2处理的软骨细胞中底物黏附增加(Fig.5C)。
尽管单用WNT3a对RCS细胞形状没有影响,但它增强了FGF2介导的细胞形状变化,即与单用FGF2处理的细胞相比,细胞仅在一条轴上延长,而后者细胞向各个方向均质性增长(Fig.5A)(supplemental movie 1)。
通过测定细胞周长,我们量化了这类变化,细胞的大小增加,细胞边界的复杂程度增加。
Fig.5B的数据揭示出经FGF2处理和经FGF2/WNT3a处理的细胞,与未处理细胞相比,周长增加约1倍。
细胞形状上的区别,通过测定细胞“偏心距”的大小来量化,该参数反映了沿一条轴的延长程度。
FGF2增加了细胞的偏心距,并且这种表型受WNT3a显著增强,不过单用WNT3a时未发现细胞形状有变化。
单用WNT5a或与FGF2联用时均未发现细胞形状有变化(数据未显示)。