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月季新品种培育的方法和途径
答案：
月季新品种的培育主要通过杂交育种、芽变育种和组织培养三种途径实现。
杂交育种是通过选择具有特定性状的亲本进行杂交，以期获得具有优良性状的新品种。
在杂交初期，对亲本的选择具有一定的针对性，例如，若要培育超级微型月季，则选择小型月季作为亲本。
杂交后产生的种子经过播种、生长、筛选等过程，最终筛选出具有优良性状的新品种。
这一过程需要层层筛选，从初选到进一步测试抗性，再到试种，能够保留进入市场的品种非常稀少，可以说是“万里挑一”。
芽变育种则是利用物理或化学手段导致月季产生芽变，从而获得新品种。
芽变的方向是不确定的，可能会产生花型、花色等方面的变异，甚至叶子出现斑点等。
虽然芽变后很快就能发现开花的特性，但大部分芽变并没有意义或不稳定，因此需要大量的苗圃和筛选工作来发现和保留有价值的芽变。
组织培养是一种通过无菌操作，利用植物组织或细胞进行培养，以快速繁殖植物或产生新品种的技术。
在组织培养过程中，选择生长健壮的当年生枝条作为外植体，通过特定的培养基和条件，促使芽萌发和生长，最终形成新的植株。
这种方法在月季新品种的培育中起到了重要作用，能够加速新老品种的更新换代。
综上所述，月季新品种的培育是一个复杂而精细的过程，涉及多种技术和方法的应用，以确保最终培育出的新品种具有优良的性状和观赏价值。
月季的植物组织培养一．实验目的1．掌握蔷薇科月季的组织培养技术2．熟悉、巩固无菌操作技术二．实验器皿及试剂1.仪器及用品：超净工作台、高压蒸汽灭菌锅、电子天平、电热炉酒精灯、镊子、解剖刀、解剖剪、烧杯、三角瓶、培养皿、滤纸、封口膜2.试剂：MS+6BA1+NAA1（诱导）培养基、MS+6BA2+NAA2（继代）培养基、70%酒精、3%次氯酸钠、无菌水3.材料：月季茎段、幼嫩叶片、花萼片、花瓣及花药。
三．实验步骤配制诱导培养基：MS+6BA1+NAA1，1升，灭菌后分装到35个培养1.皿中。
2.取材：将采集的月季茎段、幼嫩叶片、花萼片、花瓣及花药冲洗干净，按不同部位分装到3个500烧杯中，放入超净工作台；先用70%酒精浸没并轻摇10秒进行预消毒；倒出酒精，加入3%次氯酸钠浸没，轻摇11分钟；倒净次氯酸钠，用无菌水冲洗5遍以上，倒出无菌水。
3.将消毒后的外植体放入带有滤纸的无菌平皿中，用解剖剪和解剖刀将嫩叶剪成5mm2大小、茎段长2—3cm每段至少有1 个侧芽、将花苞打开取花药，分别接种到带有培养基的平皿中并封口（每皿3—5个）。
4.标记好后，放入培养室中培养（2周左右）。
5.配制分化培养基：MS+6BA2+NAA2培养基，配制1升，灭菌后分装到35个100ml的三角瓶中。
6.挑选长有愈伤组织的外植体，将其转移到分化培养基中。
在超净工作台中，将培养皿封口膜在酒精灯旁打开，将长有愈伤组织的外植体用灭菌的镊子从平皿中取出，转移到带有分化培养基三角瓶中（每瓶最多）并封口。
7.标记好后，放入培养室培养。
继续观察愈伤组织的生长情况。
四．实验结果茎段出愈率=25根出愈/总接种40根*100%=63%叶片出愈率=5片出愈／总接种30片*100%=17%花药及萼片出愈率=1片出愈/总接种20片*100%=5%通过实验得出月季茎段的出愈率最高，其次是叶片及花药。
接种过程中有三个平皿出现污染现象。
五．问题分析及解决1.三个污染的外植体，两个是叶片内延至周围。
月季的组培一、工作目标通过此项工作掌握植物组织培养的基本知识，并掌握月季的组培技术二、材料用具超净工作台、高压灭菌锅、电磁炉、无菌培养皿、酒精灯、接种工具、无菌瓶、烧杯三、工作过程1.培养基的配置初代培养基：MS+6-BA0.5~3.0mg/L+NAA0.01~1.0mg/L继代培养基：MS+BA0.5~2.0mg/L+NAA0.01~0.05mg/L生根培养基：1/2MS+IBA 0.2mg/L+活性炭2.培养过程（1）外植体的选择一般选取生长健壮的带腋芽的枝条是较适宜的外植体，选芽以茎段中芽为最好，采样成活率较高，枝条须保留一部分包裹住腋芽的叶柄，避免在消毒时芽受到太大损伤（2）外植体的消菌灭毒接种材料为当年抽生侧芽饱满的幼嫩茎段，自来水冲洗10-20min；75%或70%乙醇浸泡30s,0.1%升汞表面消毒3min,无菌水冲洗4-5次，将侧芽切下接种到MS培养基上，获得无菌苗备用。
取回枝条用自来水冲洗干净，无菌条件下用70%酒精表面消毒30-40s，再用0.1%Hgcl2溶液灭菌5-10min，最后用无菌水冲洗3-5次（3）初代培养将消毒后的外植体放入带有滤纸的无菌平皿中，用解剖剪和解剖刀将嫩叶剪成5mm大小、茎段长2~3cm，每段至少有一个侧芽、将花苞打开取花药，分别接种到带有培养基的培养皿中并封口（每皿3~5个），标记好后，放入培养室中培养2周左右（4）继代培养挑选长有愈伤组织的外植体，将其转移到分化培养基中。
在超净工作台中，将培养皿封口膜在酒精灯旁打开，将长有愈伤组织的外植体用灭菌的镊子从平皿中取出，转移到带有分化培养基三角瓶中（每瓶最多）并封口。
（5）生根培养苗高2~3cm,茎粗0.1cm左右，苗开始木质化，此时进行生根培养，把苗转移到生根培养基上。
观察它生长情况。
（6）驯化小苗接到生根培养基上后，14d可见基部分化出根点，20d则长出许多白根。
此时组培阶段结束，进入试管苗移栽成活阶段。
第1篇一、实验简介实验名称：月季组培实验实验目的：通过组培技术，了解月季组织培养的原理和方法，掌握无菌操作技术，提高植物繁殖效率，为月季的快速繁殖和遗传改良提供技术支持。
实验时间：2023年X月X日至X月X日实验地点：XX大学园艺实验室实验材料：月季植株（品种：XX）实验设备：超净工作台、无菌操作箱、高温高压灭菌器、移液枪、解剖刀、培养皿、试管、滤纸、镊子、剪刀、酒精灯、高压蒸汽灭菌锅等。
二、实验方法1. 外植体选取与消毒：- 选择生长健壮的月季植株，取其茎尖作为外植体。
- 使用无菌水清洗外植体，然后用75%酒精浸泡30秒，再用无菌水冲洗3次。
- 将外植体置于0.1%的氯化汞溶液中消毒5分钟，再用无菌水冲洗5次。
2. 诱导生根：- 将消毒后的外植体切成1-2厘米的小段，接种到含有不同激素比例的MS培养基中。
- 将接种后的培养皿放入培养箱中，培养温度为25℃，光照时间为12小时/天。
3. 生根培养：- 当外植体开始生根时，将培养基更换为含有较低激素浓度的MS培养基。
- 继续培养至生根率达到80%以上。
4. 炼苗与移栽：- 将生根的植株从培养皿中取出，置于温室中炼苗。
- 炼苗成功后，将植株移栽到花盆中，进行正常的养护管理。
三、实验结果与分析1. 外植体消毒效果：- 通过显微镜观察，发现消毒后的外植体表面无细菌污染，说明消毒效果良好。
2. 诱导生根效果：- 在不同激素比例的培养基中，生根效果最好的培养基为1/2MS+0.5mg/LNAA+0.5mg/L IBA。
- 在此培养基中，生根率达到90%，平均根长为3.5厘米。
3. 炼苗与移栽效果：- 炼苗过程中，植株生长良好，无病虫害发生。
- 移栽后的植株成活率达到了95%。
四、实验讨论1. 外植体选取：- 本实验选择茎尖作为外植体，主要是因为茎尖细胞分裂旺盛，易于诱导生根。
2. 消毒方法：- 消毒是组培实验的关键步骤，本实验采用氯化汞溶液消毒，效果良好。
3. 激素配比：- 激素配比对生根效果有显著影响，本实验通过优化激素配比，提高了生根率。
目录摘要 (4)前言 (4)综述 (5)1．外植体 (5)1.1取材部位1.2取材时间1.3取材大小2. 消毒 (8)3. 接种方式 (8)4.培养基 (9)4.1基本培养基4.2激素4.2.1不同激素对诱导愈伤组织的影响4.2.2不同激素对继代培养的影响4.2.3不同激素对生根培养的影响4.3糖浓度的影响4.4无机盐4.5琼脂5.培养基的配置 (13)6.培养条件 (14)7．防褐化 (14)技术路线与实验设计 (15)参考文献 (17)摘要：为了进行月季组织培养实验，我们查阅了相关文献，从多个方面了解影响月季组织培养的因素，如外植体的取材部位、时间、大小、消毒、接种方式、不同阶段激素的配比、培养基成分、培养条件等，以期在实验中调控月季组培的环境，确保实验顺利进行。
基于我们想探究激素对组织培养中细胞的脱分化和再分化的作用这一想法，我们的设计了以ＮＡＡ浓度、６ＢＡ浓度、外植体部位为影响因素的正交实验（L9（3４）），并考察NAA与6BA的交互作用。
同时，我们还以接种方式作为单因素考察其对愈伤组织诱导的影响。
关键词：组织培养、影响因素、正交前言在阅读了植物组织培养的相关文献资料后，我们设计了此次组织培养实验方案，考察细胞分裂素浓度、生长素浓度、接种方式、取材部位因素对愈伤组织的形成有何影响，期望寻找出诱导月季愈伤组织的最佳条件；同时探究由愈伤组织诱导出芽及生根所需的最佳浓度配比。
并在月季组织培养过程中，掌握外植体消毒方面要注意的事项，整个培养过程中培养条件的选取与控制，实验过程中出现的现象的观察记录以及分析，在这个过程中不断加强理论与实践的联系，深化对理论知识的理解。
对于外植体选择，我们采用了以往研究者的做法，即选用带腋芽的枝条。
但是，我们的不同之处在于，我们还保留了一部分刚好能包裹住腋芽的叶柄。
这样做的目的是为了在消毒时避免芽受到太大损伤。
参考论文中防褐化多用抗氧化剂和其他抑制剂，减轻外植体在组培中的酶促褐变，我们根据生理生化原理，考虑到酶活性与温度有关、以及外植体内的酚类物质含量有关，因此需对外植体做如下处理：接种前先将外植体用低温水流冲洗24小时；选择晴朗天气采摘外植体。
月季组织培养分组：12级生技2班3组指导老师：韩文军成员：成晨，江应龙，牟思斯，盛威摘要了解月季组织培养的研究概况，以及组织培养中遇到的相关问题的研究。
外植体的选择为月季枝条，灭菌用75%酒精和10%次氯酸钠，初代培养基为MS+BA 1mg/L，继代培养基为MS+BA1.5mg/L 十N A A 0.05m g/ L。
引言月季是中国十大名花之一，被誉为“花中皇后”，具有极高的观赏价值和商业价值①它是蔷薇科蔷薇属多年生落叶或常绿灌木②，被广泛运用于园林绿化，具有很高的观赏价值和经济价值。
目前月季的繁殖手段除了传统的扦插、嫁接、压条之外，还有月季的组织培养技术，相对前面几种方法来说，月季的组织培养技术能大幅地提高获得月季植株的速度和质量，正越来越被广泛地运用到实际生产中。
一方面，组织培养可有效地保持母株的优良性状；另一方面，它对植物品种改良和选育新品种也有重要意义③。
0实验流程外植体处理→初代培养→继代培养→生根培养→壮苗炼苗→移栽1外植体的选择和灭菌1.1外植体的选择月季组培外植体通常采用带芽茎段。
同一枝条上不同部位的腋芽诱导效果不同。
取枝条中部的腋芽效果最好，这可能与月季枝条不同部位的腋芽成熟程度及休眠状态不同等因素有关。
很多研究都证明枝条中部的腋芽萌发较顶部和基部时间早，且中部的腋芽长势好，增殖系数高，其次是基部，再次是顶部④-⑥。
另外，取材时也注意天气的选择，根据几次初代培养的结果来看，天气晴好时取材初代培养的成功率要比阴雨天要高，具体原因可能是阴雨天植物的外植体带菌比较多，杀菌不彻底从而使培养失败。
此外，外植体的休眠状态对芽的萌发也有影响，李青等⑦采用1 年生枝条的冬芽和当年生枝条的腋芽为外植体进行比较，发现越冬芽较嫩枝条的芽成活率高，且萌动所需时间较短，主要原因是芽内积累了丰富的营养物质，在适宜的条件下很快萌发生长；而春季嫩枝上的芽，由于刚刚形成且未经休眠，所以本身较弱，但越冬芽污染率高于嫩枝芽。
月季植物组织培养实验报告姓名：张恒玉（天津师范大学10生乙10517085）摘要：月季（Floribunda roses）为蔷薇科蔷薇属木本植物,其花姿优美，花型丰富，花色齐备, 树型易修剪，栽培难度小;其花型大，美丽，幽雅，高贵。
在鲜花应用中，月季花的地位和比重与日俱增,是世界上著名的四大切花之一。
植物组织培养主要以绿色植物细胞或组织块为研究主要对象，把植物体上的生活器官、组织块活细胞从整体上离体下来进行人工培养。
以细胞全能性为理论基础对最适月季培养的培养基、激素、培养基质进行筛选，使离体组织经过脱分化和再分化而发育成新的植物个体。
为月季的快繁和新品种的选育提供了新的途径，在月季的改良上显示了很大的应用潜力。
关键词：月季组织培养Rose Plant Tissue Culture Lab ReportName: ZhangHengyu（Tianjin Normal University college of Life Science, Biological Sciences 300387）Abstract:Rose (Floribunda roses) for the woody Rosaceae Rosa, the beautiful flower position, abundant flowers, colors available, easy to trim the tree, planting small difficulty; its flowers large, beautiful, elegant, noble. Applications in the flowers, the status and the proportion rose growing is the world's leading one of the four cut flowers. Plant Tissue Culture main object of the green plant cells or tissue blocks for research, Of life on the plant organ, tissue block living cells isolated from the whole down the artificial culture, Cell totipotency theory based on the optimum rose culture medium, hormones, culture media filter, Isolated tissue and develop into new individual plants after dedifferentiation and redifferentiation. breeding of new varieties offer a new way, in the rose show a significant improvement potential applications.Keywords: Rose tissue culture1 月季介绍月季为常绿有刺灌木，或呈蔓状与攀援状。
月季组织培养培养基配方1. 介绍月季是一种常见的花卉植物，广泛应用于观赏园艺领域。
在月季繁殖和培养过程中，培养基配方起着至关重要的作用。
本文将深入探讨月季组织培养培养基配方的要点和方法。
2. 月季组织培养的意义月季组织培养是繁殖月季的一种重要方法。
通过无菌培养、组织再生和快速繁殖，可以大量繁殖优良品种，并用于育种和病毒检测等研究。
因此，合理的培养基配方对月季组织培养的成功至关重要。
3. 月季组织培养培养基的成分月季组织培养培养基的成分包括植物激素、糖类、无机盐和其他添加剂。
3.1 植物激素植物激素在月季组织培养中起到调节生长和分化的作用。
常用的激素包括生长素、细胞分裂素和愈伤组织激素。
它们的浓度和比例对培养基的效果有着重要影响。
3.2 糖类糖类是提供能量和碳源的重要成分。
常用的糖类包括蔗糖、葡萄糖和半乳糖。
不同的月季品种和培养阶段对糖类的需求不同，需要根据具体情况进行调整。
3.3 无机盐无机盐是提供植物所需微量元素的重要来源。
常用的无机盐包括氮、磷、钾等。
它们的浓度和比例需要根据培养阶段的需求进行合理调整。
3.4 其他添加剂除了植物激素、糖类和无机盐外，还可以添加一些其他的添加剂来增强培养基的效果，例如维生素、抗生素、染料等。
这些添加剂的使用需要根据具体实验目的和需求来决定。
4. 月季组织培养培养基配方的优化方法优化月季组织培养培养基配方可以提高培养成功率和培养体系的稳定性。
4.1 脱菌方法月季组织培养需要在无菌条件下进行，因此脱菌方法是非常重要的。
常用的脱菌方法包括酒精消毒、高压蒸汽灭菌和紫外线照射等。
不同的方法有各自的特点和适用范围，需要根据实际情况选择合适的脱菌方法。
4.2 成分优化成分优化是指根据具体需求对培养基的成分进行调整和优化。
通过改变植物激素、糖类和无机盐的浓度和比例，可以提高培养基的适用性和培养效果。
4.3 pH值调节月季对培养基的pH值敏感，过高或过低的pH值都会影响生长和分化。
月季快速繁殖实验报告月季介绍月季花(学名: Rosa chinensis Jacq.)被称为花中皇后，又称“月月红”,是常绿、半常绿低矮灌木，四季开花. -般为红色.或粉色、偶有白色和黄色.可作为观赏植物，也可作为药用植物，亦称月季。
有三个自然变种,当代月季花型多样,有单瓣和重瓣，尚有高心卷边等优美花型;其色彩艳丽、丰富,不仅有红、粉黄、白等单色，尚有混色、银边等品种;多数品种有芳香。
月季的品种繁多，世界上已有近万种，中国也有千种以上。
一、实验目的1.掌握月季快繁体系: ①母株的选择②外植体消毒与接种③诱导培养④生根培养⑤.驯化移栽的操作流程2.掌握无菌操作的植物组织培养办法;3.通过配备ms 培养基母液，掌握母液的配备和保存办法;4.理解植物细胞通过分裂、增殖、分化、发育,最后长成完整再生植株的过程,加深对植物细胞的全能性的理解。
二、实验原理(一)植物组织培养植物组织培养是把植物的器官，组织以至，单个细胞，应用无菌操作使其在人工条件下，能够继续生长，甚至分化发育成- -完整植株的过程。
植物的组织在培养条件下，原来已经分化停止生长的细胞，又能重新分裂，形成没有组织构造的细胞团,即愈伤组织。
这-过程称为"脱分化作用”,已经“脱分化”的愈伤组织，在一定条件下,又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官，这一过程称“再分化作用”。
(二)植物细胞的全能性植物细胞的全能性即是每个植物的本细胞或性细胞都含有该植物的全套遗传基因,在一定培养条件下每个细胞都可发育成一种与母体一-样的植株。
(三)组织的分化外植体诱导出愈伤组织后，通过继代培养，能够在愈伤组织内部形成一类分生组织即含有分生能力的小细胞团，然后，再分化成不同的器官原基。
有些状况下，外植体不经愈伤组织而直接诱导出芽、根。
(四)培养基的构成培养基中各成分的比例及浓度与细胞或组织的生长或分化所需要的最佳条件相近,似成功地使用该培养基进行组织培养的重要条件。
月季组织培养培养基配方月季组织培养是一种无性繁殖技术，可以通过组织培养的方式获得大量的相同基因型的植株。
而培养基则是月季组织培养中不可或缺的一部分，它提供了植物生长所需的营养和生长因子。
本文将介绍月季组织培养中常用的培养基配方。
一、基础培养基1. MS 培养基MS 培养基是由 Murashige 和 Skoog 在 1962 年开发出来的一种广泛使用的无机盐类和生长因子混合物。
这种培养基含有氮、磷、钾等元素以及多种微量元素和生长因子，可以促进植物体外生长。
对于月季来说，MS 培养基是最常用的一种。
2. B5 培养基B5 培养基是 Gamborg 等人在 1968 年开发出来的另一种无机盐类和生长因子混合物。
与 MS 培养基相比，B5 培养基中含有更高浓度的硝酸盐和钙离子，适合于某些需要高硝酸盐和钙离子的植物生长。
二、添加剂1. 植物生长素植物生长素是一种植物内源性激素，可以促进细胞分裂和伸展。
在月季组织培养中，常用的植物生长素包括吲哚乙酸（IAA）、萘乙酸（NAA）和半胱氨酸（2,4-D）等。
它们可以促进月季愈伤组织的形成和分化。
2. 细胞分裂素细胞分裂素是一种植物内源性激素，可以促进细胞分裂。
在月季组织培养中，常用的细胞分裂素包括腺苷酸（BA）、基因催化剂（KT）等。
它们可以促进月季愈伤组织的增殖。
3. 抗生素抗生素是一种可以抑制或杀死微生物的化合物。
在月季组织培养中，常用的抗生素包括青霉素、链霉素、卡那霉素等。
它们可以防止由于污染而引起的愈伤组织感染。
三、常用的月季组织培养基配方1. MS 培养基配方成分每升MS 盐类 4.43 g蔗糖 30 g吲哚乙酸（IAA） 0.1 mg腺苷酸（BA） 0.5 mg琼脂 7 gpH 值 5.82. B5 培养基配方成分每升B5 盐类 4.3 g蔗糖 30 g吲哚乙酸（IAA） 0.1 mg腺苷酸（BA） 0.5 mg琼脂 7 gpH 值 5.8以上两种培养基配方仅供参考，不同的月季品种和不同的实验目的需要不同的培养基配方。
月季如何组织培养月季属蔷薇科蔷薇属多年生草本植物，每年多次开花，而且香味怡人，在观赏植物中地位很高，分布极广，适应性强，栽培容易，使得月季无愧于“花中皇后”之美誉，随着组织培养技术的应用，成功培育了大量优质月季组培苗，那月季如何组织培养呢?以下是小编为你整理的月季组织培养技术，希望能帮到你。
无菌培养的建立(1)选条从中国一级科研机构引进6个月季优良品种，分别是“红双喜”、“白雪山”、“彩云”、“和平”、“皇冠”、“金丝鸟”。
选取生长健壮的当年生枝条，用饱满而未萌发的侧芽作为外植体。
以枝条中段芽最好，因为接种后，中段芽第5天左右就能萌发，而基部和梢部的芽往往迟至15天才萌发。
(2)培养基的配制整个培养过程都可用MS培养基，诱导芽萌发所加的植物激素只需要BA一种即可，每升用0.3～1.Omg，6个品种均适用，只是萌发迟早有些差别。
(3)清洗外植体采回的枝条切去叶，再剥去附在茎上的叶柄及皮刺，先整段用洗手刷沾浓洗衣粉水仔细刷洗，再用自来水冲洗，毛巾擦干，放置在小木板上，用利刀切成2～3厘米一段，每段至少一个侧芽，装入消毒过的培养皿，放在超净工作台上，打开紫外灯，做表面灭菌30分钟。
(4)消毒与接种在超净工作台上，用饱和漂白粉上清液作表面灭菌25～30分钟，灭菌时间快到时，即倾去灭菌溶液，用无菌水涮洗数次，无菌纱布吸干茎段外表水分，按无菌操作要求，接种到小试管里，从芽萌发到芽长到1厘米左右需要2～3周。
(5)培养培养温度21℃最好，最高不超过25℃，有昼夜温差，光照10～12小时/天，光强800～1200LX。
继代增殖(1)将上述无菌芽从原茎段上切下，转接到MS+BA1-2+1AA0.1-0.3或MS+BA1-2+NAA0.01-0.1的培养基上，促使嫩茎长出更多的侧芽，原茎段弃去。
继代增殖培养基每升用蔗糖30克。
(2)5周后，“红双喜”增殖了3.5倍，“白雪山”4.1倍，“和平”、“彩云”5～6倍，“皇冠”、“金丝鸟”达15倍。
月季组织培养技术摘要：月季为蔷薇科蔷薇属木本植物, 其花姿优美，花型丰富，花色齐备, 树型易修剪，栽培难度小;其花型大，美丽，幽雅，高贵。
月季通常采用扦插、嫁接和压条繁殖，但是一些名贵品种扦插不易生根，主要靠芽接繁殖，而芽接速度慢，因而造成优良品种的月季苗供不应求。
关键词：月季组培随着生物技术的迅猛发展，植物组织培养和细胞培养等现代生物技术得到普遍重视和应用，为月季的快繁和新品种的选育提供了新的途径，在月季的改良上显示了很大的应用潜力。
以月季为试材进行组培试验,综述了月季组织培养、快繁的研究技术及进展，并对月季组培的最优条件进行了总结。
本研究探索出的月季组培快速繁殖技术，在试管苗单芽诱导丛生苗、利用代用品培养降低组培成本、试管苗管外扦插生根、试管苗微型化长途运输等方面，较前人有所改进。
一.月季组织培养的研究进展月季是世界栽培种类较多的多年生木本花卉之一。
别名长春花、月月红、斗雪红、瘦客等，蔷薇科蔷薇属植物，其花姿优美，花型丰富，花色齐备, 树型易修剪，栽培难度小。
其花型大，美丽，幽雅，高贵。
在鲜花应用中，月季花的地位和比重与日俱增,是世界上著名的四大切花之一。
月季的花色可编制成完美的连续色谱。
月季是重要的花卉，世界的销售额多年来稳居各类花)卉的第一或第二。
月季的一大优点是分布极广，适应性良好，栽培容易。
月季是四季常青花卉，花期长，花色多，芳香馥郁，由于其特殊的情感内涵和商品价值，被广泛应用于园林、庭院装饰，并可制成月季盆景，作切花、花篮、花束等。
此外，月季花可提取香料，根、叶、花均可人药，具有活血消肿、消炎解毒等功效。
当前，月季育种是花卉育种中最活跃的领域之一。
月季通常采用扦插、嫁接和压条繁殖，但是一些名贵品种扦插不易生根，主要靠芽接繁殖，而芽接速度慢，因而造成优良品种的月季苗供不应求。
随着生物技术的迅猛发展，植物组织培养和细胞培养等现代生物技术得到普遍重视和应用，为月季的快繁和新品种的选育提供了新的途径，在月季的改良上显示了很大的应用潜力。
目录摘要 (4)前言 (4)综述 (5)1．外植体 (5)1.1取材部位1.2取材时间1.3取材大小2. 消毒 (8)3. 接种方式 (8)4.培养基 (9)4.1基本培养基4.2激素4.2.1不同激素对诱导愈伤组织的影响4.2.2不同激素对继代培养的影响4.2.3不同激素对生根培养的影响4.3糖浓度的影响4.4无机盐4.5琼脂5.培养基的配置 (13)6.培养条件 (14)7．防褐化 (14)技术路线与实验设计 (15)参考文献 (17)摘要：为了进行月季组织培养实验，我们查阅了相关文献，从多个方面了解影响月季组织培养的因素，如外植体的取材部位、时间、大小、消毒、接种方式、不同阶段激素的配比、培养基成分、培养条件等，以期在实验中调控月季组培的环境，确保实验顺利进行。
基于我们想探究激素对组织培养中细胞的脱分化和再分化的作用这一想法，我们的设计了以ＮＡＡ浓度、６ＢＡ浓度、外植体部位为影响因素的正交实验（L9（3４）），并考察NAA与6BA的交互作用。
同时，我们还以接种方式作为单因素考察其对愈伤组织诱导的影响。
关键词：组织培养、影响因素、正交前言在阅读了植物组织培养的相关文献资料后，我们设计了此次组织培养实验方案，考察细胞分裂素浓度、生长素浓度、接种方式、取材部位因素对愈伤组织的形成有何影响，期望寻找出诱导月季愈伤组织的最佳条件；同时探究由愈伤组织诱导出芽及生根所需的最佳浓度配比。
并在月季组织培养过程中，掌握外植体消毒方面要注意的事项，整个培养过程中培养条件的选取与控制，实验过程中出现的现象的观察记录以及分析，在这个过程中不断加强理论与实践的联系，深化对理论知识的理解。
对于外植体选择，我们采用了以往研究者的做法，即选用带腋芽的枝条。
但是，我们的不同之处在于，我们还保留了一部分刚好能包裹住腋芽的叶柄。
这样做的目的是为了在消毒时避免芽受到太大损伤。
参考论文中防褐化多用抗氧化剂和其他抑制剂，减轻外植体在组培中的酶促褐变，我们根据生理生化原理，考虑到酶活性与温度有关、以及外植体内的酚类物质含量有关，因此需对外植体做如下处理：接种前先将外植体用低温水流冲洗24小时；选择晴朗天气采摘外植体。
激素浓度的选择：由于不同种的月季对浓度的需求有差异，我们是以前人得到的最适浓度为中间值，设置了不同浓度，试图探究我们所培养的月季品种所需的最适宜浓度。
培养条件：我们决定采用一般植物组织培养的条件，如温度控制在24℃左右，光照时间为12h/天。
考虑到光对褐化的影响，我们计划接种后暗培养一周后，再光照下培养。
培养基的配制方面，我们着重考虑pH对培养基的影响。
通过查阅文献，激素加入MS培养基后将pH调为6，配置铁盐过程中同样注意pH的调节。
组织培养的每个步骤均有可考察因素，很多细节需要把握，在实验过程中不断吸取经验和教训，学以致用。
因此我们希望通过实验深入学习植物组织培养的基本过程和基本方法，了解组培的经济意义和实用价值，能够广泛应用于生产，进一步实现理论与实际应用的相互转化。
综述1.外植体1.1取材部位外植体一般选取生长健壮的当年枝条的饱满而外萌发的侧芽[1]。
李青等分别选取一年生枝条的冬牙当年生枝条腋芽作为外植体，相同条件下培养发现越冬牙的成活率较高，且从接种到萌芽时间短，生长快，在后代繁殖中植株健壮[1]。
本实验材料取自盆栽的丰花月季，剪取腋芽尚未萌发的枝条，去除茎段两端各2毫米选芽以茎段中芽为最好，因为接种后，中段芽第5 天左右就能萌发，而基部和稍部的芽往往迟至15 天才萌发[2]。
用“和平”品种月季的枝条，均等分为6 段，取每段的一个侧芽培养在无激素的MS 基本培养基上，2-3 天即可见接近枝条最顶端和紧挨着枝条基部的芽发育最慢，而枝条中的芽发育比较快[2]。
不同外植体的脱分化能力不同，诱导出愈伤组织的频率和愈伤组织的状态也存在较大差异。
以叶片和茎段为外植体诱导得到的形态上差异不明显，愈伤组织多数呈乳黄色部分呈绿色，白色，松散，程度不一，叶片诱导率稍高于茎段能达到90%以上，选取好的经2-3代的继代培养可获得较疏松的，适宜于细胞悬浮培养的愈伤组织；叶柄为外植体主要是在基部及切口处形成愈伤组织，接种后生长极其缓慢，接10D时可见边缘切口处发生褐化，得到愈伤组织少；因此认为叶片和茎段是诱导愈伤组织和进行细胞悬浮培养的理想材料[3]。
1.2取材时间外植体的取材部位对芽的萌发也有影响。
外植体的取材时间及培养所需时间对月季嫩茎的发育和增殖也有影响。
对于“Bulgarian rose”而言，选取外植体的最佳时间是冬季[4]。
外植体的取材时间及培养所需时间对月季嫩茎的发育和增殖也有影响。
对于“Bulgarianrose”而言．选取外植体的最佳时间是冬季(1-3月)(321；而“Improvedfire”月季的培养时问以28d继代一次较好，超过28天，茎的数目就不再增加了[5]。
1.3取材大小取无菌苗叶片切成0.5cm×0.5cm的小块，叶柄，茎段切成小段[3]。
外植体很小时，有利于培养脱毒的植株．对月季的杉树坏疽环斑病毒(Prtmus necrotic ringspot virus，PNRSV)可通过茎尖培养的方式达到脱毒的目的，如果单纯为了快速繁殖，可用大的茎尖或茎段进行离体培养，这时外植体的大小决定了茎尖的成活比例。
一般说外植体愈大，成活率愈高，成苗时间愈短。
茎尖在1-10mm长短时，对形成多芽苗最有效，不但多芽苗所占百分率高，而且每个茎段的侧枝数也比较多。
外植体的大小同时影响外植体自身的发育和月季组培苗茎的增殖，外植体的长度在9.0-10.0mm，直径在3.0-3.5mm范围时．茎的增殖和发育是最好的。
但Horn对某几种月季进行微繁实验时发现外植体的大小对茎的增殖、叶片数目没有影响，其他一些研究者对只有—个茎节的“Sweet Promise”进行组织培养中得到了类似的结论[5]。
接种材料为当年抽生侧芽饱满的幼嫩茎段，自来水冲洗10-20min；75%或70%乙醇浸泡30s,0.1%升汞表面消毒3min,无菌水冲洗4-5次，将侧芽切下接种到MS培养基上，获得无菌苗备用[3]。
取回枝条用自来水冲洗干净，无菌条件下用70%酒精表面消毒30-40s，再用0.1%Hgcl2溶液灭菌5-10min，最后用无菌水冲洗3-5次[1]。
组织培养中的污染源大致可分为三类：外界环境污染，植株内生菌和外植体处理不当。
因此，可在试验过程中每隔一段时间用巴斯德消毒液喷洒培养室；对培养基，工具的高压灭菌要彻底；试验员要在进入超净太之前用1.0%巴斯德消毒液擦手；接种时工具和手不要在培养基上方搅动，以防止细菌落入其中；探索适宜的消毒处理时间。
此外，防止细菌特别是内生菌污染，很重要的措施是在培养基中加入抗生素[6]3.接种方式在外植体的接种中采用了垂直接种，斜向上45度接种，水平接种和反转接种4种方式，发现垂直接种和斜向上45接种，水平接种和反转接种4种方式，发现垂直接种和斜向上45度接种是最佳的接种方式，腋芽再生芽数多，且生长健壮，这可能与植物的生长极性有关[1]。
4.1基本培养基众多培养基中以MS 培养基的效果为最好，广泛用于月季的离体快速繁殖中。
对MS 培养基的成分及物理性能进行合理的选择会提高月季组织培养的成功率[4]茎段培养阶段，将带有腋芽的嫩茎接种到不添加任何激素类物质的MS 和1/2MS 培养基上，两周后，MS 培养基上的腋芽生长，而在1/2MS 培养基上的腋芽几乎不萌发或发育不良[4]。
MS培养基上愈伤个数最多达到32个，诱导率为35.5%；培养基上愈伤个数达到27个，诱导率为30%，培养4d后外植体叶的一端开始膨大，叶片切口处可见少数绿色愈伤组织；大小如沙粒，柔软，结构密实。
而WPM，White在培养第二天外植体即有部分开始脱色变白，第三天有部分变黄，大部分褐变，最后枯死。
可见MS，B5两种培养基对愈伤组织的诱导效果明显，结果表明，不同培养基对叶片诱导程度可排列为MS>B5>WPM>White.[9]4.2激素4.2.1不同激素对诱导愈伤组织的影响诱导培养基以ＭＳ为基本培养基，附加适量的细胞分裂素6-BA 和NAA。
NAA增加至0.1mg/L时，6-BA浓度的高与低已对增殖系数不产生明显影响。
最适的侧芽诱导培养基为MS+6-BA0.5-3.0mg/L 和NAA0.01-1.00mg/L，且培养基中添加蔗糖有增加丛生芽数量的作用[1]。
激素及激素浓度直接影响着愈伤组织的状态，质地和分散性。
单独使用细胞分裂素没有愈伤组织形成，对正交研究进行极差分析，各因素对愈伤组织诱导率的影响作用：2,4-D浓度＞KT浓度＞BA浓度＞NAA浓度。
最佳愈伤组织诱导组合是：KT2mg/L NAA2mg /L+2,4-D 1 mg /L[3]。
BA用量及侧芽在茎段上的位置对侧芽发育的影响。
在不同浓度BA的MS培养基上，BA含量为0.03-0.3毫克/升的培养基促进侧芽的发育，若超过0.3mg/L则延迟芽的发育，但对于茎段中部的芽影响较小[7]。
不同生长素种类和浓度对月季生根和移栽成活率的影响。
以“彩云”为材料，用NAA 诱导生根和提高移栽成活率效果最好，浓度为100ppm 为宜，现在IAA 诱导生根和提高移栽成活率效果并不理想，其浓度只能在1mg/L 以下,超过时对生根的促进作用已不显著,反而大幅度降低移栽成活率。
NAA和IBA对月季的诱导生根都有较好的效果,在1/2MS培养基附加NAA或IBA0.1-1.5mg/kg均可诱导不定根的产生,生根63.3%-93.3%[8]。
4.2.2不同激素对继代培养的影响低浓度的6-BA有利于不定芽的增殖，浓度过高则抑制不定芽的增值，适量NAA有利于芽和叶生长。
在NAA浓度相同而BA浓度不同的培养基中，随BA浓度的升高，芽苗的增殖系数也相应提高。
此外，增殖系数还与品种有关。
从增值倍数、叶片数。
再生芽长势等综合因子来看，MS+BA0.5-02.0mg/L+NAA0.01-0.05mg/L是最适的不定芽增殖培养基[1]。
NAA浓度为0.5mg/kg时对生根是较为适宜的浓度,而不必向在诱导植物芽分化时必须按一定比例配比细胞分裂素与生长素混合使用[8]。
将上述无菌芽从原茎段上切下转接到MS+BA1-2+IAA0.1-0.3或MS+BA1-2+NAA0.01-0,1的培养基上促使嫩茎长出更多的侧芽，原茎段弃去。
继代增殖培养基每升用蔗糖30克[7]。
4.2.3不同激素对生根培养的影响多数实验采用的培养基为1/2MS(大量元素减半）。
Skivrin等在用“Forever yours ”月季做生根试验时发现，采用1/4MS培养基，不加生长素可以促进生根。
利用1/2MS+IBA0.2mg/L+活性炭诱导生根，生根率最高90%，且随着随着活性炭百分比的加大，生根率逐渐下降。
