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红细胞比容测定实验报告

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医学临床实验—血细胞比容测定

医学临床实验—血细胞比容测定

血细胞比容测定
【目的】
掌握血细胞比容的温氏测定法。

【原理】
将定量的抗凝血液灌注于温氏管中，经过一定的速度和时间离心沉淀后，观察压紧红细胞层占全血体积的比值。

【实验器材或试剂】
1 器材：温氏比积管、毛细吸管、离心机。

2 试剂：按EDTA-K223.5mg/每试管（或肝素钠0.2mg/每试管）标准，将抗凝剂分装于小试管中干燥。

【操作步骤】
1、抽取静脉血2.0ml，立即注入装有抗凝剂的抗凝管中并混匀。

2、用细长毛细滴管吸取混匀的抗凝血，插入温氏比积管底部，然后将血液缓慢注入至10cm 刻度处，避免产生气泡。

3、将加好血液的比积管置于水平离心机，以3000r/min的速度离心30min，读取压实红细胞层柱高的毫米数，然后再以同样速度离心10min至红细胞层高度不再下降为止。

【结果计算】
血细胞比容＝红细胞层柱高的毫米数×0.01
【注意事项】
1、所用器材必须清洁干燥，以防溶血，如遇溶血现象应加以注明。

2、不能使用影响红细胞体积的抗凝剂。

3、离心速度和时间要规范化，否则血细胞比容的误差很大。

【临床意义】
1、参考范围：男性：0.40~0.50
女性：0.37~0.48
2、增高或降低
A、血细胞比容增高：见于各种原因所致的血液浓缩或红细胞绝对性增多。

临床上测定脱水病人的血细胞比容，作为计算补液量的参考。

B、血细胞比容减低：见于各类贫血。

3.1 红细胞比容的测定

3.1 红细胞比容的测定

[实验目的]
学习和掌握用温氏分血管测定红细胞比容的方法。

[实验原理]
将定量的抗凝血灌注于特制的、具有刻度的比容管内，定时、定速离心后,有形成分和血浆分离，上层淡黄色液体是血浆，中间一薄层白膜是白细胞和血小板（或栓细胞），下层不透明的暗红色部分为红细胞，彼此压紧而不改变细胞的正常形态。

根据红细胞柱及全血高度，可计算出红细胞在全血中的容积比值，即为红细胞比容（压积）。

[主要仪器与器械]
温氏分血管，普通离心机，长针头，干棉球等。

[实验方法与步骤]
1.取血
2.离心
3000r·min-1，30min。

3.读数
注意事项
☐选择抗凝剂必须考虑到不能使红细胞变形、溶解。

本实验采用柠檬酸钠抗凝。

☐血液与抗凝剂混合、注血时应避免动作剧烈引起红细胞破裂。

☐温氏分血管内壁必须清洁干燥。

血液进入分血管内的刻度读数要精确，血柱中不得有气泡。

思考题
☐在哪些情况下，红细胞的比容明显增加？
☐测定红细胞比容时，常出现的误差来源是什么？☐测定红细胞比容的实际意义是什么？。

实验九 红细胞比容的测定

实验九 红细胞比容的测定

1）液体透明红色，不分层： 完全溶血（最大渗透抵抗力或最小渗透脆性）
2）上层透明红色，下层浑浊红色： 部分溶血（最小渗透抵抗力或最大渗透脆性）
3）上层无色，下层浑浊红色： 无红细胞溶解
结果：
0.42～0.46 ％ NaCl 溶液：部分溶血 0.32％～0.34％ 细胞沉降率测定 （示教）
记录血凝时间
观察项目
（1）正常 （2）少许棉花放入试管底部 （3）用石蜡油润滑整个试管内表面 （4）放在水浴槽中 （5）竹签搅拌血液（烧杯） （6）加肝素8单位 （7）放草酸钾 1～2ml
(8) 放组织液 0.1ml
实验报告： 目的，结果，讨论，结论
放血入肝素抗凝烧杯内 3）吸取10ml抗凝血入离心管，以3000rmp离心
30min 4）读数，计算红细胞比容（％）
结果：
男：40～50％ 女：37～48％
实验十 红细胞渗透脆性（示教）
目的：学习测定红细胞渗透脆性 步骤：
1）配置各种低渗盐溶液（0.7％～0.25％ NaCl） 2）每试管内加抗凝血1滴，与盐溶液充分混合 3）室温下放置1h，观察试管内液体分层
目的： 用惠氏法测定红细胞沉降率 步骤：
1）取抗凝血至惠氏沉降管0刻度，擦拭外面血迹 2） 将沉降管固定在固定架上 3） 1h 末读取红细胞下沉的毫米数
结果：男性 0~15 mm/h; 女性 0～20 mm/h
实验十五 血液凝固
目的：了解血液凝固的基本过程及
加速或延缓血凝的因素
步骤：
1） 家兔以乌拉坦（1g/kg，i.v.）麻醉、背位固定 2） 颈总动脉插管（近心端用动脉夹夹住） 3） 试管或烧杯内放血 2 ml 左右, 每30秒观察一次，
实验9 红细胞比容测定 （示教） 实验10 红细胞渗透脆性 （示教） 实验11 红细胞沉降率测定（示教） 实验15 血液凝固

红细胞比容血红蛋白测定

红细胞比容血红蛋白测定
溶解。本实验采用肝素钠抗凝。
• 血液与抗ห้องสมุดไป่ตู้剂混合、注血时应避免动作剧 烈引起红细胞破裂。
• 温氏分血管内壁要充分干燥。血液进入毛 细管内的刻度读数要精确，血柱中不得有 气泡。
二、血红蛋白的测定
• 目的 掌握用比色法测定动物的血红蛋白的含量。
• 原理 血红蛋白的颜色常与氧的结合量多少有关。 但当用一定的氧化剂将其氧化时，可使其转变为 稳定、棕色的高铁血红蛋白，而且颜色与血红蛋 白（或高铁血红蛋白）的浓度成正比。可与标准 色进行对比，求出血红蛋白的浓度，即每升血液 中含血红蛋白克数（g·L-1）。
离心后血液分层
layer after blood centrifugated
方法与步骤
改进的温氏分血管比容法 • 采血（加入抗凝剂肝素钠，抗凝血） • 用移液器取1 ml抗凝血，放入EP管中。 • 离心：将分血管以3000 r/min离心30 min，
取出分血管，读取红细胞柱的高度。
[注意事项] • 选择抗凝剂必须考虑到不能使红细胞变形、
具体测定方法如下：
①用滴管加5～6滴，0.1 mol·L-1 HCl到刻度 管内,(约加到管下方刻度”2”或多或10%处)。
②用微量采血管吸血至20μl，仔细揩去吸管外 的血液。
③将吸血管中的血液轻轻吹到比色管的底部， 再吸上清液洗吸管3次。操作时勿产生气泡,以 免影响比色。用细玻棒轻轻搅动，使血液与盐 酸充分混合，静置10 min，使管内的盐酸和血 红蛋白完全作用，形成棕色的高铁血红蛋白。
方法与步骤
沙里氏血红蛋白计测定 • 沙里氏比色法是用HCl使血红蛋白酸化形成棕色的高铁
血红蛋白，然后和标准比色板进行比色。 • 沙里血红蛋白计 主要具有标准褐色玻璃比色箱和1只方

血液生理实验实验一血液的组成和红细胞比容的测定

血液生理实验实验一血液的组成和红细胞比容的测定

血液生理实验实验一血液的组成和红细胞比容的测定实验一：血液的组成和红细胞比容的测定一、实验目的：1.了解血液的组成和各组成部分的功能。

2.掌握红细胞比容的测定方法及其临床意义。

二、实验原理：血液是由血浆和血细胞组成的混合物，其中血细胞包括红细胞、白细胞和血小板。

红细胞在血液中占有较大比例，其主要功能是运输氧气和二氧化碳。

红细胞比容是指红细胞在血液中所占的容积百分比，是反映血液中红细胞数量及血液浓度的指标之一。

三、实验步骤：1.准备实验材料：5ml移液管、10ml离心管、离心机、电子天平、称量纸、记号笔、标签纸、移液器、生理盐水、抗凝剂。

2.取5ml全血样本，用移液管准确加入10ml生理盐水中，摇匀制成混合液。

3.用电子天平称量混合液的总重量，并记录。

4.将混合液转移至离心管中，加入抗凝剂，标记好标签，放入离心机中，以3000r/min的速度离心5分钟。

5.离心结束后，将离心管取出，用移液器将上层血浆移出，称量剩余的血细胞及血浆重量，并记录。

6.根据公式计算红细胞比容：红细胞比容=血细胞重量/（血细胞重量+血浆重量）×100%。

四、实验结果：1.混合液的总重量为（）g。

2.离心后的血细胞及血浆重量为（）g。

3.根据公式计算得到红细胞比容为（）%。

五、实验总结：通过本实验，我们了解了血液的组成和各组成部分的功能，掌握了红细胞比容的测定方法及其临床意义。

通过观察和测量全血样本中的红细胞比容，可以反映血液中红细胞的相对数量及血液的浓度，对于了解患者的血液循环状态、指导临床治疗具有一定的参考价值。

此外，实验过程中需要注意操作的规范性和准确性，以保证实验结果的可靠性。

例如，在称量血细胞及血浆重量时，需确保样品已经完全转移至称量纸上，避免误差的产生。

同时，在计算红细胞比容时，还需注意单位的换算和公式的正确使用。

六、注意事项：1.实验前需对实验材料进行充分的准备和检查，确保实验所需的试剂、仪器等均符合要求。

血液的组成和红细胞比容的测定

血液的组成和红细胞比容的测定

血液的组成和红细胞比容的测定[实验目的]：1、了解血液的组成，区别血浆、血清、血细胞及纤维蛋白。

2、测定红细胞比容。

[实验对象]：家兔[实验用品]：兔手术器械、动脉插管、试管、小烧杯、离心机、抗凝剂（肝素钠等）。

[方法与步骤]：1.兔颈动脉采血，徐徐注入试管A、B、C、D （肝素处理），F（未经肝素处理），封口膜封闭试管口,3000r/min离心30min。

取出，读取前4支试管血细胞柱刻度及全血刻度；再次离心5min,若血细胞柱刻度不变，取前4支试管血细胞压积的平均值，即为此家兔的血细胞压积值。

血细胞压积=血细胞柱刻度/全血刻度2.观察A、B、C、D、F试管中血液，分析其不同。

[实验结果]：1． A、B、C、D试管上层为血浆，下层为红细胞，中间一白色薄层为白细胞和血小板；而试管F中，上层为血清。

2．家兔血细胞比容测定：编号血细胞柱长度(cm) 全血柱长度(cm) 红细胞比容(%)ABCD此家兔红细胞比容为[分析讨论]:血液、血浆、血细胞比容血清、血浆[结论]：1、2[思考题]：1.测定红细胞比容的实际意义是什么？血液凝固及其影响因素[实验目的]：1、了解血液凝固的基本过程及加速或延缓血液凝固的因素。

2、学会兔颈部手术的基本操作。

[实验对象]：家兔[实验器材]：哺乳动物手术器械、兔手术台、动脉插管、动脉夹、气管插管、注射器、小试管8支、小烧杯2个、竹签、恒温水浴槽、冰块、棉花。

[药品]：25%乌拉坦溶液、石蜡油、肝素、草酸钾、肺组织浸液。

[实验步骤]：1．麻醉与固定仰卧位固定在兔台上，用１%普鲁卡因溶液局部麻醉。

2．手术颈动脉插管3. 观察项目(1) 观察加速或延缓血液凝固的因素，比较内源性凝血和外源性凝血将8支试管准备好（1，对照管；2，放棉花少许；3，蜡油润滑内表面；4，置于37℃水浴槽中；5，置于冰水浴槽中；6，加肝素8单位；7，加草酸钾1~2mg；8，加肺浸液1ml），打开动脉夹，每管加入血液2ml，即刻开始计时（6,7,8号试管加入血液后轻轻摇匀，使血液与试剂充分混合），每隔15s，将试管倾斜一次，至血液不再流动为止。

开放性实验血细胞比容测定（温氏法）（多媒体）

开放性实验血细胞比容测定（温氏法）（多媒体）

开放性实验血细胞比容测定（温氏法）（多媒体）【要求】了解血细胞比容测定的原理及方法，掌握血细胞比容参考值及其临床意义。

【原理】抗凝全血经离心沉淀后，可测出下沉的血细胞在全血中所占体积的百分比，即血细胞比容。

【试剂】EDTA-K2或双草酸盐抗凝剂。

1.5ml注射器、试管。

2.毛细滴管长约12cm，口径不大于2mm。

3.温氏（Wintrobe）管上以1mm为间隔，刻有0～100mm的刻度（图1-5）。

【操作】1.试管内加入抗凝剂，每管内加EDTA-K2或双草酸盐溶液0.5ml，烤干备用。

2.静脉采血2ml，立即注入抗凝管中，混匀。

3.用细长的毛细滴管取摇匀的抗凝血，从温氏管底部徐徐注入血液，随血液平面上升而渐渐向上抽提毛细滴管，直到血液至“100”刻度处，切勿产生气泡。

4.将注入血液的温氏管置水平离心机中，以相对离心力2264g（即有效半径22.5cm），即300rpm速度离心30min，读取红细胞层高度，然后再离心10min至红细胞不再下降为止，离心后血液分为5层，从上至下依次是：血浆层；白色乳糜层（主要为血小板）；灰红色层（主要为白细胞和有核细胞）；暗红色层（主要为被血细胞代谢还原的还原血红蛋白）；鲜红色层（为含习红细胞）。

5.读取以暗红色红细胞层为准的红细胞柱高的毫米数，乘以0.01报告（或以百分比报告）。

【注意事项】1.所有器材必须清洁干燥，以防溶血。

2.抗凝剂与血液要充分混合，防止部分血液发生凝固，出现小凝块。

3.离心力大小直接影响结果，本试验一定要在达2264g的条件下进行离心。

4.采血后应尽快试验，最好不超过3h。

【参考值】男性 0.42～0.49(42%～49%)女性 0.37～0.48(37%～48%)【临床意义】1.血细胞比容减少见于各种贫血。

2.血细胞比容增多见于，①呼种原因所致的血液浓缩，如大量呕吐、腹泻、失水、大面积烧伤等；②真性红细胞增多症有时血细胞比容可高达0.80左右；③继发性红细胞增多症，如新生儿、高原居民及慢性心肺疾患。

诊断学实验报告

诊断学实验报告

实验诊断学实验报告红细胞计数试验实验目的：通过红细胞计数实验1、掌握红细胞计数方原理、方法及注意事项。

2、掌握血细胞计数板的结构试验器材：血细胞计数板、显微镜、盖玻片、试管、血红蛋白吸管、生理盐水实验原理：一定量的血液经一定量等渗性稀释液稀释后，充入血细胞计数池中显微镜下计数一定容积内的细胞，再换算成每升标本的细胞数报告。

操作步骤： 1、取红细胞稀释液2.0ml毫升，放入一小试管内。

2、用血红蛋白吸管吸血至l0ul处。

3、擦去管尖外部余血将血液迅速轻轻吹入盛有红细胞稀释液的试管内，上清液嗽洗吸管2-3次，立即摇匀。

4、将计数池与盖玻片用软布料擦净，将盖玻片覆盖于计数池上。

5、用吸管吸取混匀的红细胞悬液，充入计数池中。

6、待2—3分钟，让红细胞完全下沉后，将计数板平放在显微镜台上，用低倍镜观察，如红细胞分布均匀即可换高倍镜进行计数。

红细胞计数的区域：中心大方格中的5个中方格(正中一个和四角各一个)。

计数原则：数上不数下，数左不数右的计数原则即凡压在中方格边线(双线)上的红细胞，只计上侧与左侧线上的细胞，而压在下侧与右侧线上者不计入。

计算：红细胞数/l=5个中方格内红细胞数×5×10×201×106 或红细胞数/l=5个中方格内红细胞数÷100×1012 式中×5 5个中方格换算成1个大方格×10 1个大方格容积为0.1ul，换算成1.0 ul。

×201 血液的稀释倍数×106 由u1换算成l数据处理： rbc: ×l0/l12参考值男:(4～5.5)×10/l 12 女：（3.5～5）×10/l12 新生儿：（6～7）×10/l 12 答案不唯一，言之有理即可注意事项： 1、吸管、试管要注意清洁、干燥以防溶血，操作迅速避免血液凝固，如有血凝块应重新采血。

2充液前，红细胞复液要充分摇匀，红细胞悬液注入计数池内要求分布均匀，不可有气泡，亦不可有多余液体外溢。

实验3 红细胞比容、血沉、血红蛋白测定

实验3 红细胞比容、血沉、血红蛋白测定
4份血液：1 份柠檬酸钠 溶液 15分钟 30分钟 1小时 4份脱纤血： 1份生理盐水
讨论：影响血沉的因素?
血红蛋白
l l
l
血红蛋白是脊椎动物红细胞主要组成部分，它 的主要功能是运输氧和二氧化碳。 血红蛋白中，血红素Fe原子的第六配价键可以 与不同的分子结合：无氧存在时，与水结合， 生成去氧血红蛋白(Hb)；有氧存在时，能够与 氧结合形成氧合血红蛋白(HbO2)。 血红蛋白与氧的结合不牢固，容易离解。HbO2 的形成和离解受氧的分压和pH等因素的影响， 氧的分压和pH较高时，有利于血红蛋白与氧的 结合，反之，则有利于离解。
注意事项：
1.血液与盐酸作用时间： 2.蒸馏水逐滴滴加: 3.多做几次，取平均值: 4.及时清洗吸血管：先吸取蒸馏水冲洗几 次，后吸取酒精冲洗几次。
l 实验要求：
记录血红蛋白含量并讨论该含量的 实际意义。
3.离心：用长颈滴管吸取试管内的抗凝血， 将滴管插入温氏分管的底部，沿管壁将抗 凝血准确加到分血管刻度10厘米处。注意 不要有气泡。将温氏分血管配平后放入离 心机中，3000转/分钟离心30分钟。 4.读数：
实验安排：
每两组：
草酸盐附 柠檬酸钠 1：4体积 脱纤血 着比容管 附着比容 柠檬酸钠 内壁烘干 管内壁烘 干 比容： 比容： 比容： 比容：
血红素
血 红 素 在 蛋 白 中 的 位 置
血红蛋白的功能
l 血红蛋白除了运输氧
和CO2外，还能够对血 液的pH起缓冲作用。 因为HbO2在释放出一 分子氧的同时，结合 一个氢质子。这样就 可以消除由于呼吸作 用产生的CO2引起pH的 降低。
三.血红蛋白含量的测定
目的：了解和掌握比色法
原理：在一定量的血液中加入少许盐酸，

实验二 红细胞比容、血红蛋白及渗透脆性测定

实验二 红细胞比容、血红蛋白及渗透脆性测定
实验二 红细胞比容测定 红细胞脆性的测定 血红蛋白测定
一、红细胞比容测定 掌握红细胞比容的测定方法。 目的 掌握红细胞比容的测定方法。 原理 将定量的抗凝血灌注于带刻度玻璃管中，定时、定速 将定量的抗凝血灌注于带刻度玻璃管中，定时、 离心后,有形成分和血浆分离 有形成分和血浆分离， 离心后 有形成分和血浆分离，上层呈淡黄色的液体是血 中间很薄一层为灰白色，即白细胞和血小板（ 浆，中间很薄一层为灰白色，即白细胞和血小板（或栓细 ），下层为暗红色的红细胞 下层为暗红色的红细胞， 胞），下层为暗红色的红细胞，彼此压紧而不改变细胞的 正常形态。根据红细胞柱及全血高度， 正常形态。根据红细胞柱及全血高度，可计算出红细胞在 全血中的容积比值，即为红细胞比容（压积） 全血中的容积比值，即为红细胞比容（压积） 。
二、红细胞脆性的测定 • 目的 学习测定红细胞渗透脆性的方法，理解细胞 学习测定红细胞渗透脆性的方法， 外液渗透张力对维持细胞正常形态与功能的重要 性。 • 原理 正常红细悬浮于等渗的血浆中，若置于高 正常红细悬浮于等渗的血浆中， 渗溶液内，则红细胞会因失水而皱缩；反之， 渗溶液内，则红细胞会因失水而皱缩；反之，置 于低渗溶液内，则水进入红细胞，使红细胞膨胀。 于低渗溶液内，则水进入红细胞，使红细胞膨胀。 如环境渗透压继续下降，红细胞会因继续膨胀而 如环境渗透压继续下降， 破裂，释放血红蛋白，称之为溶血。 破裂，释放血红蛋白，称之为溶血。红细胞膜对 低渗溶液具有一定的抵抗力， 低渗溶液具有一定的抵抗力，这一特征称为红细 胞的渗透脆性。 胞的渗透脆性。
NaCl浓度 浓度(%) 0.90 0.70 0.65 0.60 0.55 0.50 0.45 0.40 0.35 0.30 浓度
④把比色管插入标准比色箱两色柱中央的空格中。 把比色管插入标准比色箱两色柱中央的空格中。 ⑤使无刻度的两面位于空格的前后方向，便于透光 使无刻度的两面位于空格的前后方向， 和比色。用滴管向比色管内逐滴加入蒸馏水， 和比色。用滴管向比色管内逐滴加入蒸馏水， 并不断搅匀，边滴，边观察、 并不断搅匀，边滴，边观察、边对着自然光进 行比色， 行比色，直到溶液的颜色与标准比色板的颜色 一致为止。 一致为止。 ⑥读出管内液体面所在的克数，即是每100 ml血中 读出管内液体面所在的克数，即是每 血中 所含的血红蛋白的克数。比色前， 所含的血红蛋白的克数。比色前，应将玻棒抽 出来，其上面的液体应沥干净， 出来，其上面的液体应沥干净，读数应以溶液 凹面最低处相一致的刻度为准。 凹面最低处相一致的刻度为准。换算成每升血 液中含血红蛋白克数（ 液中含血红蛋白克数（g·L-1）。 ）。

血细胞比容测定

血细胞比容测定
2、2、 加标本 用细长的毛细滴管吸取混匀的抗凝血，插入血细胞比容管（温氏管）底部，然后将血液缓慢注入至刻度“20”处，避免产生气泡，然后用小橡皮塞塞紧管口。
1．3、离心 将加好血液的温氏管置于水平离心机，以2264g离心30分钟，读取压实红细胞层柱高的毫米数，然后再以同样速度离心20分钟，至红细胞层高度不再下降为止。
血细胞比容测定
7、血细胞比容测定
操作规程
操作流程
一、实验目的：
掌握血细胞比容的温氏测定法。
二、前期准备
1、配制EDTA-Na2，将抗凝剂分装小试管中并干燥。
2、实验题目内容，操作步骤在黑板上写明
三、实验步骤：教师示教，具体步骤如下：
1、1、采血Na2抗凝管中，混匀。
4、观察结果 离心后血液分为5层，自上而下分别为血浆层、血小板层、白细胞层和有核红细胞层、还原红细胞层（紫黑红色）、带氧红细胞层（鲜红色）。读取红细胞层柱高（以紫黑红色层红细胞表面为准）的毫米数，乘以0.01即为每升血液中红细胞体积的升数。
四、后期分析处理。
1、学生填写实验报告。
2、清点器械，派值日生打扫卫生，关闭门窗水电。
3、批改作业。个别问题在报告本上作批示。
4、实验员作好有关实验记录
前期准备
↓
采血
↓
加标本
↓
离心
↓
观察结果
↓
后期分析处理
操作规程
操作流程

实验四静脉采血血细胞比容测定

实验四静脉采血血细胞比容测定

实验目的
通过实验初步掌握静脉采血技术，掌握血细胞比容测定的原理，方法和临床意义。
一、静脉采血
（一）适用范围 需血量大于0.2ml的试验。 （二）采血部位 体表浅静脉，最常见肘静脉，婴儿可用颈外静脉。 （三）器材 根据用血量选择2ml、5ml或10ml一次性注射器， 另外有真空定量采血装置。
4、抽血时，只能向外抽不能向静脉内推，以免注入空气形成气栓造成严重后果。 5、采血后，用干棉球压迫伤口，不要揉，防止产生血肿。 6、个别病人发生晕针，应嘱其休息片刻，排除不必要的心理顾虑。
二、红细胞比积
（一）原理 将定量的抗凝血用一定的速度和时间离心沉淀，即得沉淀后红细胞和血浆的比例，从而计算得出每升红细胞所占的体积比值。 （二）试剂与器材 抗凝管（EDTA、肝素） 红细胞比积管
温氏法 1、静脉采血2ml，注入干燥抗凝管内，立即混匀。 2、用细长毛细滴管吸取抗凝血，插入到红细胞比积管底部，边注入血液边向上提管，注意不要产生气泡，使血液的液平面与“10”刻度线平行。 3、将上述比积管放3000rpm/min离心30min，读取红细胞柱高。
（三）方法
（四）结果报告 参考值 男性：0.40~0.50 女性：0.37~0.48 （五）注意事项 1、所用器材必须清洁干净，防止溶血。所有溶血或有微小血凝块的标本都不能使用。 2、抗凝剂与血液应充分混匀，防止血液凝固。 3、不能使用改变红细胞比积的抗凝剂。 4、标本及时测定，采血后不超过3h。 5、如离心后，红细胞柱倾斜，应读取其高低极限值后求平均值后计算结果。 6、若HCT＞0.5，同样速度再离心5min ，红细胞层不下降可报告结果。
5、操作者以左手固定静脉穿刺部位下端，右手持一次性注射器，使针头斜面和针筒刻度向上，先以30度角度迅速穿刺破皮肤，然后适当降低角度，针头放平再穿过静脉壁进入静脉腔中央。见回血后，将针头顺势深入少许，以免采血时针头滑出。此时，解开压脉带。 6、用右手食指将针头固定，左手缓缓抽动注射器，至需要血量时，放松拳头，用无菌干棉球压迫伤口，拔出针头。 7、取下针头，将血液沿着管壁缓慢注入容器中，防止产生气泡。

【生理学实验】血液学实验

【生理学实验】血液学实验

实验报告实验名称血液学实验实验目的1、掌握实验用兔颈动脉采血的方法2、了解红细胞比容及其测定方法3、血液凝固的基本过程及影响血凝的一些因素实验原理1、红细胞比容测定原理将抗凝血放在特制有刻度的玻璃管(温氏分血管)中，经过离心沉淀，使血细胞与血浆分离。

红细胞下沉，彼此压紧而又不改变每个血细胞的正常形态。

根据玻璃管刻度的读数，可以计算出红细胞在全血中所占的容积百分比——即红细胞比容。

2、血液凝固原理血液凝固可分为三个主要步骤。

第Ⅰ阶段是凝血因子FX 激活成FXa 并形成凝血酶原复合物（凝血酶原激活物）第Ⅱ阶段是凝血酶原（Prothrombin ，F Ⅱ）激活成为凝血酶（thrombin ，F Ⅱa ）第Ⅲ阶段是纤维蛋白原（FI ）转变成纤维蛋白（filbrin ，FIa ）。

在这三个主要步骤中都需要Ca 离子的参与。

实验材料及设备材料：大兔一只，兔手术保定台， 设备：烧杯（500ml ，50ml ），常用手术器械（手术刀、毛剪、手术剪、止血钳），线动脉套管，动脉夹 温氏分血管，长颈滴管，5毫升试管，离心机，天平，5ml 注射器试管，试管架，吸管，2％戊巴比妥钠，3.8％柠檬酸钠，肝素，1％氯化钙，5％草酸钾，液体石蜡，带有开叉橡皮管的玻棒等。

试验方法及步骤(一)手术操作1、2％戊巴比妥钠按1ml/kg 的剂量从耳缘静脉注入实验用兔2、麻醉后仰卧固定于手术台上（同时准备实验用试管等）3、剪去颈部术野的被毛，切开皮肤，找出两侧颈动脉4、将颈动脉剥离2厘米左右，然后在颈动脉下面穿两条线。

将一侧颈动脉在远心端用线结扎，再于近心端用动脉夹夹住。

结扎处与动脉夹之间最好不少于1.5厘米5、用眼科剪刀在这段动脉上靠近结扎处1／4的地方，斜向近心方向剪一小口，将动脉套管插入，用线扎好，以免滑脱，待用（需采集血样时打开动脉夹即可）专业： 动物科学 姓名： 张思佳学号： 3090100252 日期： 2011/ 5/5 地点： 生物实验楼装订线（二）比容的测定1、用配有长注射针的注射器吸取含肝素的抗凝血，然后将注射针插入温氏分血管的底部，缓缓地将滴管内的血液注入分血管内(不得有气泡)，使血液正确地装到刻度10处。

红细胞比容和三种平均值网织红细胞计数

红细胞比容和三种平均值网织红细胞计数
1．染料选择
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【质量保证】
2．正确辨认网织红细胞
外周血中网织红细胞主要为Ⅳ型，凡含有2个以上 网织颗粒的红细胞均应计为网织红细胞。
3．网织红细胞计数方法
(1)Miller窥盘： (2)显微成像系统：计算机和细胞形态分析软件，
①HFR：粗颗粒堆积成网状。 ②MFR：粗颗粒在10个以上，或细小颗粒超过15个。 ③LFR：细胞内含15个以下细小颗粒
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[检测原理]
1.普通光学显微镜法 活体染色（新亚甲蓝或煌焦油蓝)的碱性着色基团 网织红细胞RNA的磷酸基(带负电荷) RNA胶体间的负电荷减少而发生凝缩， 蓝色的点状、线状或网状结构 ， 显微镜下计数1000个红细胞中所占的网织红细胞数，以百
分比或分数数表示。
➢HCT减低是诊断贫血的指标， HCT的高低与红细胞 数量及平均体积、血浆量有关 ➢主要用于贫血、真性红细胞增多症和红细胞增多的 诊断、血液稀释和血液浓缩变化的测定、计算红细胞 平均体积和红细胞平均血红蛋白浓度等。
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临床意义
1．临床补液量的参考
各种原因导致脱水时，HCT都会增高，补液时可 监测HCT，HCT恢复正常表示血容量得到纠正。
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[检测原理]
2．仪器法
流式细胞仪法 网织红细胞计数仪 血液分析仪法。
荧光染料与网织红细胞中RNA结合，
发出特定颜色的荧光进行RNA定量 •精确计数网织红细胞占成熟红细胞的百分数(Ret％)。 •将网织红细胞分成高、中、低荧光强度网织红细胞
比率(HFR 、MFR、 LFR) •并计算网织红细胞其他参数。
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参考值

大纲不要求的实验

大纲不要求的实验

实验6.1红细胞比容的测定[实验目的]学习和掌握测定红细胞比容的方法。

[实验原理]将定量的抗凝血灌注于特制的毛细玻璃管中，定时、定速离心后,有形成分和血浆分离，上层呈淡黄色的液体是血浆，中间很薄一层为灰白色，即白细胞和血小板（或栓细胞），下层为暗红色的红细胞，彼此压紧而不改变细胞的正常形态。

根据红细胞柱及全血高度，可计算出红细胞在全血中的容积比值，即为红细胞比容（压积）（图6.1-1）。

[实验对象] 动物种类不限[实验药品]草酸盐抗凝剂(0.8 g草酸钾·H2O + 1.2 g草酸銨·H2O + 甲醛1 ml + 蒸馏水至100 ml)或10 g·L-1肝素，橡皮泥或半融化状态石蜡，75%酒精。

[仪器与器械]毛细玻璃管（内径1.8 mm，长75 mm）或温氏分血管,酒精灯，水平式高速毛细管离心机(或普通离心机)，天平，注射器，长针头，干棉球，刻度尺（精确到mm）。

[实验方法与步骤] 1.微量毛细管比容法（1）以抗凝剂湿润毛细管内壁后吹出，让壁内自然风干或于60 ℃～80℃干燥箱内干燥后待用。

（2）取血：常规消毒，穿刺指（或尾）尖，让血自动流出，用棉球擦去第一滴血，待第二滴血流出后，将毛细管的一端水平接触血滴，利用虹吸现象使血液进入毛细管的2/3（约50 mm）处。

（3）离心：用酒精灯溶封或橡皮泥、石蜡封堵其未吸血端，然后封端向外放入专用的水平式毛细管离心机，以12000 r·min-1的速度离心5 min。

届时用刻度尺分别量出红细胞柱和全血柱高度（单位 mm）。

计算其比值，即得出红细胞比容。

2.温氏分血管比容法（1）取大试管和温氏分血管各一支，用抗凝剂处理后烘干备用。

（2）取血：可采取静脉取血或心脏取血，将血液沿大试管壁缓慢放入管内，用涂有凡仕林的大拇指堵住试管口，缓慢颠倒试管2～3次，让血液与抗凝剂充分混匀，并不能使血细胞破碎，制成抗凝血。

用带有长注针头的注射器，取抗凝血2 ml 将其插入分血管的底部，缓慢放入，边放边抽出注射针头，使血液精确到10 cm刻度处。

血液生理试验

血液生理试验

行比色，直至溶液的颜色与标准比色板的颜色相同为止。
⑤读出管内液体凹面所在的刻度，可以是相对值，也可以是绝对值，可参照血红蛋 白计的使用说明书。国产沙里氏血红蛋白计通常100%相当于14.5 g，如液体表面 在刻度70%处，要计算其绝对克数，可用下列比例求得：x:14.5=70:100, x=10.15。
的高度，再以同样的转速离心 5 min，第二次读取红细胞柱的高度，如果
读数与前次相同，表明红细胞已被压紧。该读数即为红细胞比容值。例如 ，读数为4.2 cm，即表示100 mL血液中红细胞容积占42 mL，或者以4.2乖
以10即得到红细胞比容的数值。
[注意事项]
1．选择抗凝剂必须考虑到不使红细胞变形、溶解。草酸钾使红细胞皱
血液生理实验
实验一 血液的组成和红细胞比容的测定
[实验目的]了解血液的组成，学习和掌握测定红细胞比容 方法。
[实验原理] 血液抗凝后，经离心，将出现分层。上面无色（或淡黄色）
透明的部分为血浆，下面红色部分为红细胞，在红细胞之上有一薄层灰
白 色部分为白细胞和血小板。下部压紧 的血细胞占全血的体积比称为红 细胞压积，又叫红细胞比容。若不加抗凝 剂任血液自然凝固或去纤维蛋 白，就 可区别血清、血块及纤维蛋白。 [实验对象] 哺乳动物（种类不限） [实验材料] 草酸盐抗凝剂、或10 g/L肝素，75%酒精，温氏分血管，酒 精灯，离心机，天平，注射器，长针头，干棉球，带有开叉橡皮管的玻 棒，烧杯等。
[实验对象] 动物种类不限。
[实验材料] 抗凝血，1%氯化钠溶液，蒸馏水，10 mL小试管，试管架，
滴管，1 mL移液管。 [实验方法及步骤]
1.先将试管分别排列在试管架上，按下表把1%NaCl，稀释成不同浓度的

生理实验报告红细胞(3篇)

生理实验报告红细胞(3篇)

第1篇实验目的：1. 了解红细胞的基本结构及其生理功能。

2. 探究红细胞在氧气运输中的作用。

3. 学习显微镜的使用方法。

实验时间：2023年10月25日实验地点：生物实验室实验器材：1. 显微镜2. 红细胞样本3. 载玻片4. 滴管5. 玻片盖6. 红细胞计数板7. 计时器8. 记录本实验步骤：1. 准备工作：- 将显微镜调整至合适的亮度。

- 将红细胞样本滴在载玻片上。

- 使用滴管轻轻覆盖玻片盖，避免气泡产生。

2. 观察红细胞形态：- 使用低倍镜观察红细胞的整体形态。

- 转换至高倍镜，观察红细胞的详细结构，包括细胞膜、细胞核、血红蛋白等。

3. 红细胞计数：- 将红细胞计数板放置在显微镜下。

- 使用低倍镜找到红细胞计数区域。

- 转换至高倍镜，数出一定区域内的红细胞数量。

- 计算红细胞总数。

4. 氧气运输实验：- 将一定量的氧气溶解在水中。

- 将红细胞样本放入氧气溶解的水中。

- 观察红细胞内血红蛋白的颜色变化。

- 记录实验结果。

5. 实验结束：- 清理实验器材。

- 将实验数据整理成报告。

实验结果：1. 红细胞形态：- 红细胞呈双凹圆盘状，细胞膜清晰可见。

- 细胞核较小，位于细胞中央。

- 血红蛋白呈红色，充满整个红细胞。

2. 红细胞计数：- 在计数区域内，共观察到100个红细胞。

- 红细胞总数为：100个/区域× 25区域 = 2500个。

3. 氧气运输实验：- 将红细胞放入氧气溶解的水中后，血红蛋白颜色逐渐变为鲜红色。

- 实验结果表明，红细胞在氧气运输过程中起到重要作用。

实验结论：1. 红细胞呈双凹圆盘状，细胞膜、细胞核、血红蛋白等结构清晰可见。

2. 红细胞在氧气运输过程中起到重要作用，血红蛋白能够结合氧气，运输至全身各个部位。

实验讨论：1. 红细胞为何呈双凹圆盘状？这种形态有何优势？2. 红细胞计数有何意义？3. 红细胞在氧气运输过程中有何生理作用？实验反思：1. 本实验操作过程中，应注意避免气泡产生，以免影响观察结果。

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红细胞比容测定实验报告
实验目的：
1.了解红细胞比容的概念和意义；
2.掌握红细胞比容测定的方法和技巧；
3.分析不同因素对红细胞比容的影响。

实验原理：
1.取一定量的血液样本，加入抗凝剂进行抗凝处理；
2.用离心机进行离心，使血液离心沉积，红细胞沉积到底部形成红细胞柱；
3.读取红细胞柱的体积，即为红细胞比容。

实验仪器和试剂：
1.离心机；
2.采血器；
3.抗凝剂（例如EDTA）；
4.离心管；
5.读数尺。

实验步骤：
1.用采血器采集一定量的患者血液样本；
2.加入适量的抗凝剂进行抗凝处理；
3.将抗凝后的血液样本转移到离心管中；
4.将离心管放入离心机中，进行高速离心；
5.离心结束后，取出离心管，观察离心后血液的形态变化；
6.用读数尺读取红细胞柱的高度，即为红细胞比容。

实验结果和数据处理：
通过实验测得的红细胞比容数值可以用来判断机体的贫血程度。

正常
人的红细胞比容数值一般在37%~54%之间，如果低于37%，则表明机体存
在贫血。

实验探究：
在实验中，还可以通过改变不同因素来观察对红细胞比容的影响。

例如，可以观察不同抗凝剂对红细胞比容的影响，不同离心速度对红细胞比
容的影响等。

通过这些观察和比较，可以得出一些关于红细胞比容的规律。

实验总结：
红细胞比容测定是一种简单而常用的实验方法，可以用来评估机体的
贫血程度。

通过实验，我们不仅了解了红细胞比容的概念和意义，还掌握
了测定红细胞比容的方法和技巧。

同时，通过观察和比较不同因素对红细
胞比容的影响，我们也对红细胞比容这一指标有了更深入的了解。