3显微镜直接计数法

显微镜直接计数法实验报告实验报告：显微镜直接计数法一、实验目的本实验旨在通过显微镜直接计数法，测定微生物样品中细胞的数量，以了解其生长和繁殖情况，为生物工程、生物医学、环境科学等领域的研究提供依据。

二、实验原理显微镜直接计数法是一种通过显微镜直接观察并计数样品中微生物数量的方法。

该方法具有操作简便、快速等优点，适用于测定样品中微生物的数量和生长情况。

通过显微镜直接计数法，可以观察到微生物的形态、大小、分布等情况，从而对其生长环境、生长状况等进行评估。

三、实验步骤1.样品制备：将待测样品进行适当稀释，使微生物细胞分散均匀。

2.显微镜观察：将样品滴加到显微镜载玻片上，用盖玻片固定，调整显微镜焦距，观察并计数微生物的数量。

3.计数方法：采用直接计数法，即直接观察并计数样品中的微生物数量。

对于压在盖玻片下的细胞，可以通过轻轻移动盖玻片进行观察和计数。

4.数据记录：记录每个样品中微生物的数量，并计算平均值。

同时记录观察到的细胞形态、大小、分布等情况。

5.结果分析：根据实验数据，分析微生物的生长情况、繁殖速度等。

四、实验结果及数据分析1.实验数据（见附表1）附表1：显微镜直接计数法实验数据2.数据分析通过附表1的数据，我们可以得出以下结论：（1）样品A中微生物的数量较少，而样品B、C、D中微生物的数量较多。

这表明不同样品中微生物的数量存在差异。

（2）在相同稀释倍数下，观察到的细胞数越多，计数结果越准确。

因此，选择合适的稀释倍数对于准确测定微生物数量至关重要。

在本实验中，选择100倍和1000倍作为稀释倍数，可以较为准确地测定微生物数量。

（3）通过对比不同样品在同一稀释倍数下的计数结果，可以得出不同样品中微生物的生长情况。

例如，样品B和D在1000倍稀释下的计数结果较高，说明这两个样品中微生物的生长情况较好。

而样品A和C在100倍稀释下的计数结果较低，说明这两个样品中微生物的生长情况较差。

（4）根据实验数据，可以进一步分析微生物的生长规律和繁殖速度。

显微镜直接计数法原理
显微镜直接计数法是一种用于测定溶液中微粒数量的方法，其原理是通过显微镜观察溶液中的微粒并进行直接计数。

这种方法适用于微粒浓度较低的溶液。

在进行显微镜直接计数之前，需要将待测溶液适当稀释，以保证在显微镜下观察到的微粒较为分散，不会产生严重的重叠。

然后，取少量稀释好的溶液放置在显微镜下的玻片上，利用显微镜进行观察和计数。

在显微镜观察过程中，可以使用目视计数法或者计数仪来进行微粒数量的计数。

目视计数法是通过直接观察显微镜视野中的微粒数量来进行计数，但这种方法需要操作人员具备一定的经验和技巧，否则容易产生误差。

计数仪则是通过将显微镜和计数器结合在一起，使用计数仪的软件进行自动计数，可以提高计数的准确性和效率。

在进行显微镜直接计数时，需要注意减小观察误差。

例如，应该避免在显微镜下对颗粒悬浮物的快速移动进行计数，应尽量保持视野稳定。

此外，还要随机选择计数视野，以确保样本的代表性。

显微镜直接计数法不仅可以用于测定溶液中的微粒数量，还可以用于观察微粒的形状、大小和分布情况。

但是，由于此方法需要借助显微镜进行观察，操作相对繁琐，且对于微粒浓度较高的溶液不适用。

因此，在实际应用中，常常需要结合其他测量方法来进行微粒数量的确定，以提高准确性和可靠性。

人教(2019)生物选择性必修三(学案+练习)微生物的选择培养和计数1．微生物的选择培养(1)选择培养基：将允许特定种类的微生物生长，同时抑制或阻止其他种类微生物生长的培养基。

(2)稀释涂布平板法：将菌液进行一系列的梯度稀释后，将不同稀释度的菌液分别涂布到琼脂固体培养基表面，进行培养。

①系列稀释操作系列稀释：移液管需要经过灭菌。

操作时，试管口和移液管应离火焰1～2 cm 。

操作过程如下：②涂布平板操作 序号图示 操作 1取0.1 mL 菌液，滴加到培养基表面2将涂布器浸在盛有酒精的烧杯中 3将沾有少量酒精的涂布器在火焰上灼烧，待酒精燃尽后，冷却8～10 s 4用涂布器将菌液均匀地涂布在培养基表面。

涂布时可转动培养皿，使菌液涂布均匀 ③培养：待涂布的菌液被培养基吸收后，将平板倒置，放入℃的恒温培养箱中培养1～2 d 。

2．微生物的数量测定(1)稀释涂布平板法①计数原理：当样品的稀释度足够高时，培养基表面生长的一个单菌落，来源于样品稀释液中的一个活菌。

通过统计平板上的菌落数，就能推测出样品中大约含有多少活菌。

②计数标准：为了保证结果准确，一般选择菌落数为30～300的平板进行计数。

③计数方法：通常选用一定稀释范围的样品液进行培养，以保证获得菌落数为30～300、适于计数的平板。

在同一稀释度下，至少应对3个平板进行重复计数，然后求出平均值。

④统计的菌落数往往比活菌的实际数目少，这是因为当两个或多个细胞连在一起时，平板上观察到的只是一个菌落，因此统计结果一般用菌落数表示。

(2)显微镜直接计数法①计数原理：利用特定的细菌计数板或血细胞计数板，在显微镜下观察、计数，然后再计算一定体积的样品中微生物的数量。

②优点：是一种常用的、快速直观的测定微生物数量的方法。

③缺点：统计的结果一般是死菌数和活菌数的总和。

3．土壤中分解尿素的细菌的分离与计数1．利用稀释涂布平板法和平板划线法均可实现细菌的分离和计数。

(×) 2．培养分解尿素的细菌，培养基的pH会增大。

显微镜直接计数法实验报告一、实验目的1、了解显微镜直接计数法的原理和应用。

2、掌握血细胞计数板的使用方法。

3、学会对细胞进行计数，并计算细胞浓度。

二、实验原理显微镜直接计数法是利用血细胞计数板在显微镜下直接计数细胞的一种方法。

血细胞计数板是一块特制的厚玻璃片，板上有四个槽构成三个平台。

中间的平台又被一短横槽隔成两半，每半边上面刻有一个方格网。

方格网上刻有 9 个大方格，其中只有中间的一个大方格为计数室。

计数室的刻度一般有两种规格，一种是一个大方格分成 16 个中方格，而每个中方格又分成 25 个小方格；另一种是一个大方格分成 25 个中方格，而每个中方格又分成 16 个小方格。

但无论哪种规格，每个大方格的边长均为 1 毫米，盖上盖玻片后，计数室的容积是固定的。

因此，在计数时，只要测定一定体积的样品在计数室中所占的方格数，就能计算出样品中的细胞数量。

三、实验材料与设备1、材料酵母菌悬液2、设备显微镜血细胞计数板盖玻片吸管擦镜纸四、实验步骤1、准备血细胞计数板用酒精棉球擦拭计数板和盖玻片，然后用擦镜纸擦干。

将盖玻片盖在计数板上。

2、制备酵母菌悬液用无菌吸管吸取适量的酵母菌培养液，加入一定量的无菌生理盐水，充分混匀，制成适宜浓度的酵母菌悬液。

3、加样用吸管吸取酵母菌悬液，从盖玻片边缘滴一小滴（不宜过多），使菌液自行渗入计数室，注意不可有气泡产生。

4、计数静置片刻，待酵母菌细胞全部沉降到计数室底部后，将血细胞计数板置于显微镜载物台上。

先用低倍镜找到计数室，再换高倍镜进行计数。

计数时，对于压在方格线上的细胞，只计上线和左线的细胞。

5、计算统计五个中方格中的细胞总数，然后按下式计算：每毫升菌液中的细胞数＝五个中方格中的细胞总数 × 5 × 10000 ×稀释倍数五、实验结果与分析1、实验结果经过计数，五个中方格中的细胞总数为_____个。

本次实验所使用的酵母菌悬液稀释倍数为_____倍。

验——微生物细胞大小的测定和显微镜直接计数录入时间:2011-4-13 9:35:15 来源：天津农学院精品课程目的1.1 学习接目测微计的校正方法，了解血球计数板的构造和计数原理1.2 学习使用显微镜测微尺测定微生物细胞大小，掌握用血球计数板测定微生物细胞总数的方法。

2 原理微生物细胞的大小是微生物分类鉴定的重要依据之一。

微生物个体微小，必须借助于显微镜才能观察，要测量微生物细胞大小，也必须借助于特殊的测微计在显微镜下进行测量。

显微测微计由镜台测微计和目镜测微计两部分组成。

后者可直接用于测量细胞大小。

它是一块圆形玻片(图7—1)，其中央有精确等分到度，测量时将其放在接目镜中的隔板上。

由于目镜测微计所测量的是微生物细胞经过显微镜放大之后所成像的大小，刻度实际代表的长度随使用的目镜和物镜放大倍数及镜筒的长度而改变，所以，使用前须先用镜台测微计进行标定，求出某一放大率下，目镜测微计每一小格所代表的长度，然后用目镜测微计直接测被测对象的大小。

镜台测微计是一块中央有精确刻玻片(图7—1)，刻度的总长为lmm，等分为100小格，每小格长10um，专用于对目镜测微计进行标定的。

3 材料3.1 器械显微镜、目镜测微尺、镜台测微尺，载玻片、盖玻片、血球计算板、擦镜纸、吸水纸、玻片架、肾形盘、洗瓶、接种环、酒精灯、火柴、滴管。

3.2 菌种培养48h的啤酒酵母斜面菌体和菌悬液。

3.3 革兰氏染液4流程4.1 置目测微计→置台测微计→标定目测微计→测菌体大小→记录结果→用毕擦拭干净4.2 检查计数板→稀释样品→加样→计数→计算→清洗5 步骤5.1 微生物菌体大小的测定5.1.1 目镜测微尺的校正5.1.1.1 更换目镜镜头更换目镜测微尺镜头（标记为PF）；或者取下目镜上部或下部的透镜，在光圈的位置上安上目镜测微尺，刻度朝下，再装上透镜，制成一个目镜测微尺的镜头。

5.1.1.2 某一倍率下标定目镜刻度将镜台测微尺置于载物台上，使刻度面朝上，先用低倍镜对准焦距、看清镜台测微尺的刻度后，转动目镜，使目镜测微尺与镜台测微尺的刻度平行，移动推动器使两尺重叠，并使二尺的左边的某一刻度相重合，向右寻找另外二尺相重合的刻度。

显微镜直接计数法名词解释
显微镜直接计数法是一种常用的微生物计数方法，它通过显微镜直接观察和计数样品中的细胞或微生物数量。

这种方法的具体步骤是，首先将少量待测样品的悬浮液置于一种特别的具有确定面积和容积的载玻片上（血球计数板），然后在显微镜下直接计数每个格子内的细胞或微生物数量，最后根据格子面积和体积推算出单位体积内的细胞或微生物数量。

显微镜直接计数法的优点包括操作简单、结果直观、可以测定所有形态的细胞或微生物、结果准确、误差小等。

然而，这种方法也存在一些缺点，例如不能区分细胞或粒子的死亡或活性、容易产生误差、需要经验丰富的操作者进行操作、需要时间和劳动力成本高等。

在应用显微镜直接计数法时，需要注意以下几点：首先，样品的稀释比例要适当，以避免细胞或微生物聚集在一起而影响计数结果；其次，要选择合适的血球计数板，根据需要选择不同的规格；最后，在计数过程中要遵守规定的计数规则，以确保结果的准确性和可靠性。

总之，显微镜直接计数法是一种简单、快速、直观的微生物计数方法，适用于各种实验室和科研机构的使用。

在使用该方法时，需要注意操作步骤和注意事项，以保证结果的准确性和可靠性。

显微镜直接计数法实验报告篇一：显微镜直接计数法实验报告显微镜直接计数法一、实验目的1、明确血细胞计数板计数原理；2、掌握使用血细胞计数板进行微生物计数的方法。

二、实验原理利用血细胞计数板在显微镜下直接计数，是一种常用的微生物计数方法。

此法的优点是直观、快速。

该计数板（构造如图1所示），是一块特制的载玻片，其上由四条槽构成三个平台。

中间的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上各刻有一个方格网，每个方格网共分九个大方格，中间的大方格即为计数室，微生物的计数就在计数室中进行。

计数室的刻度一般有两种规格，一种是一个大方格分成16个中方格，而每个中方格又分成25个小方格；另一种是一个大方格分成25个中方格，而每个中方格又分成16个小方格。

所以无论是哪种规格的计数板，每一个大方格中的小方格数都是相同的即共有400个小格。

2每一个大方格边长为1㎜，则每一大方格的面积为1㎜，盖上盖玻片后，载玻片与盖3玻片之间的高度为㎜，所以计数室的容积为㎜。

其计算方法如下：设5个中方格中的总菌数为A，菌液稀释倍数为B 1．16×25的计数板计算公式细胞数/ml=×16×10000×B=32000AB 个2．25×16的计数板计算公式细胞数/ml=×25×10000×B=50000AB 个三、实验器材（1）菌悬液：酵母菌悬液（2）其他物品：血球计数板，显微镜，盖玻片，无菌毛细管等。

四、实验步骤1．稀释：将酵母菌悬液进行适当稀释，菌液如不浓，可不必稀释。

（一般样品稀释度要求每小格内约有5—10个菌体为宜）2．镜检计数室：在加样前，先对计数板的计数室进行镜检。

若有污物，则需清洗后才能进行计数。

3．加样品：将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片，再用无菌的细口滴管将稀释的酵母菌液由盖玻片边缘滴一小滴（不宜过多），使菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自行进入计数室，静置5—10分钟即可计数。

实验四 微生物显微镜直接计数法和死活细胞的鉴定 以及四大类微生物菌落形态的比较和识别微生物显微镜直接计数法一、实验目的1、学习使用血球记数板测定微生物数量的方法。

2、学习并掌握形态观察及死活细胞的鉴别方法。

二、实验原理酵母菌显微直接计数—血球计数板三、实验材料显微镜、血球记数板、酵母菌悬液、盖玻片、无菌滴管、吸水纸、擦镜纸.四、实验步骤1、取清洁无油的血球计数板，在计数室上面加盖血盖片。

2、取酵母菌液，摇匀，用滴管由盖玻片边缘滴一小滴，使菌液自行渗入，计数室内不得有气泡。

3、用10×(40x)镜观察并将计数室移至视野中央。

4、在10×(40x)镜下计数：计数5个中格的平均值，最后再换算到每mL 菌液中的含菌数。

注意事项：计上不计下，计左不计右。

出芽计一半。

五、实验结果将显微计数结果记录于下表中。

T 表示五个中方格中的总菌数。

各中格中菌数T二室平均值个/ml12345第一室第二室六、问题与讨论在显微镜下直接测定微生物数量有什么优缺点？有何改进方法？②酵母菌死活细胞的鉴定一、实验原理美蓝是一种无毒的染料，它的氧化型呈蓝色，还原型无色。

用美蓝对酵母的活细胞进行染色时，由于细胞的新陈代谢作用，细胞内具有较强的还原能力，使美蓝由蓝色的氧化型变为无色的还原型。

因此，具有还原能力的酵母活细胞是无色的，而死细胞或代谢作用微弱的衰老细胞则呈蓝色，借此即可对酵母菌的死活细胞进行鉴别。

二、实验材料酵母菌悬液、0.1 ％吕氏碱性美蓝染色液显微镜、载玻片、盖玻片。

三、实验步骤美蓝镜片的观察1）在载玻片中央加一滴0.1%吕氏碱性美蓝染色掖，然后按无菌操作用吸取计数时酵母菌样品液放在染液中，混合均匀。

2）用镊子取一块盖玻片，先将一边与菌液接触，然后慢慢将盖玻片放下使其盖在菌液上。

3）将制片放置约1min后镜检，低倍镜到高倍镜观察，根据颜色来区别死活细胞。

注意事项1、加染液不宜过多或过少，否则，在盖上盖玻片时，菌液会溢出或出现大量气泡而影响观察。