动物大小鼠、实验猴饲养的操作规程

1.目的：规范实验动物的饲喂程序。

既保证每一只动物每天能获得足够的营养需求，又避免饲料浪费；2.适用范围：全体饲养人员；3.操作规程：3.1喂饲前准备：3.1.1饲养员要于每天上午和下午分别到饲料库领取颗粒饲料和青饲料，数量由饲料发放员根据每栋饲养数量计算后按量发放。

饲养员在领取饲料和运输途中严禁拆开或损坏颗粒饲料外包装，以免造成污染；领取青饲料后要用清洁塑料布进行遮盖，运输途中防止被污染。

3.1.2将饲料运到饲养室内后，饲喂人员要更换一双新的一次性手套，然后开包取料饲喂；3.2饲喂次数：3.2.1颗粒饲料：每天饲喂2次，饲喂时间为上午8：30—9：30，下午16：30—17：30，饲喂量为200g/只（上午100g/只、下午100g/只）；3.2.2青饲料：每天饲喂1次；饲喂时间为下午13：30—14：30，饲喂量为100g/只；3.3喂饲：3.1.1喂饲时要逐间饲喂，防止遗漏。

饲喂量要根据每间动物数量饲喂，体重超过3KG的动物多喂一点，体重小于3KG的动物少喂一点，尽量做到均匀分配，防止饥饱不均。

3.1.2每顿饲喂要采用两次分给，第一遍喂饲应给每顿饲喂量的80%（即80g）左右，第二遍喂饲根据动物进食有无剩余等情况再进行第二次给食；即防止浪费，又能做到尽量多时间观察动物采食情况。

有利于照顾体弱动物采食，还能通过采食情况及时发现患病动物；3.4记录：每次喂饲后均要做好认真记录。

每周将记录表上交生产部长存档。

4.注意事项：4.1由于体型差异，采食量也存在差异，一般体重在3kg以下的动物，每日给饲量为150g左右；体重在3-5kg的动物，每日给饲量为200g左右；体重超过5kg的动物，每日给饲量为250g左右。

4.2盛颗粒饲料的器具需加盖，每周消毒一次，经消毒、清洗、晾干后方可使用；4.3盛青饲料的器具需加盖，每天消毒一次，经消毒、清洗、晾干后方可使用。

4.4比格犬由于体型较大，每日给饲量为250g左右。

大小鼠的基本操作基本操作技术与方法大、小鼠是实验室中常见的动物模型，广泛应用于生物学、药理学、神经学等领域的研究。

正确的基本操作技术与方法对于实验结果的准确性和科学性起着至关重要的作用。

本文将介绍大、小鼠的基本操作技术与方法。

1.动物购置：大、小鼠可以通过专业的动物供应商购买，也可以通过动物实验中心、大学的动物实验室等途径获得。

购置动物时需要了解其品系、年龄、性别等相关信息，并且对动物的健康状况进行检查。

2.动物饲养：（1）饲养环境：提供干燥、清洁、通风良好的饲养环境，避免霉菌污染和异味的滋生。

（2）饲养箱选择：饲养大鼠的常见设备为饲养笼，饲养小鼠则可以选择鼠笼。

饲养笼/鼠笼需要具备充足的空间，提供足够的床屑作为窝材和托盘收集粪便。

（3）饲料供应：提供符合大、小鼠营养需求的标准饲料，含有适量的蛋白质、脂肪、碳水化合物和维生素等营养元素。

3.动物标记：为了个体识别和管理，可以通过耳标、尾标、毛色、体重等方式对大、小鼠进行标记。

标记需要使用专门的标记工具，同时标记前要对动物进行麻醉或镇定处理。

4.动物体重测量：体重是监测大、小鼠健康和生长状态的重要指标。

使用专业的动物体重计进行测量，操作时将动物放置在称盘上使其保持平衡，确保准确测量体重。

5.镇定与麻醉操作：在一些实验过程中，需要对大、小鼠进行麻醉或镇定以保证实验的顺利进行。

常用的麻醉方法包括使用麻醉剂如异氟醚或七氟醚吸入，也可以通过腹腔注射给予麻醉药物。

6.注射操作：经常用到的注射方法有皮下注射、肌肉注射、静脉注射等。

注射前需要消毒注射部位，使用专业的注射器和针头进行操作，确保注射准确且避免感染。

7.剖杀与组织采集：在一些实验结束后，需要对动物进行剖杀和组织采集。

剖杀操作需要使用手术刀和剪刀，按照解剖学知识进行。

组织采集需要使用无菌的工具，避免污染。

8.颈静脉穿刺：颈静脉穿刺是获取血液样本的常用方法。

操作时需要将大、小鼠固定，消毒穿刺部位，使用专业的针管进行穿刺抽血。

实验动物使用操作规程1.目的和原则(1)最小化对动物的痛苦和不适；(2)使用合适数量的动物样本来得到可靠的实验结果；(3)保护实验动物的福利和健康；(4)尊重实验动物的权益，并进行相关伦理审查。

2.实验动物的选取与养殖(1)选择适合的动物种类和品系，以满足实验的需要，并减少对动物的痛苦和伤害；(2)根据动物实验项目的要求，选择符合条件的动物个体，如性别、年龄、体重等；(3)实验动物的养殖应符合动物福利要求，提供适宜的环境，保证其健康和舒适。

3.实验动物的处置(1)实验结束后，对于有生存力的实验动物，可以重新投入科学研究或用于教学等目的；(2)对于实验结束后不再需要的动物，应采取安全和安乐的方式处置，如人道处死、人道安乐死或安全地回收利用。

4.实验动物的饲养和管理(1)提供适合的饲料，满足动物的营养需求，并确保饮用水的供应；(2)提供适宜的饲养环境，控制温度、湿度和通风等参数，保持良好的空气质量；(3)定期对实验动物进行健康监测和疾病预防，注重动物的生理和心理福利。

5.实验动物使用的伦理审查(1)在进行实验动物使用前，应进行相关伦理审查，确保实验设计合理，符合科学和伦理的要求；(2)伦理审查应考虑到实验动物的福利和权益，并确保任何可能对动物造成痛苦或不适的实验项目得到充分评估和批准。

6.实验操作和技术(1)实验操作人员应经过充分的培训，熟悉实验操作的流程和技术，以减少实验中的风险和误差；(2)实验操作应具有可靠性和重复性，在操作过程中应注意动物的福利和安全。

7.实验动物的疼痛和不适的评估和减轻(1)在实验中，应对动物可能产生的疼痛和不适进行评估，采取措施减轻其痛苦；(2)如有必要，在实验中使用镇痛、麻醉药物或正当的处置方法来减轻动物的痛苦。

8.结果的记录和分析(1)对实验结果进行详细记录，包括实验设计、操作过程和结果等；(2)分析实验结果并进行数据处理，确保结果的准确性和可靠性。

9.实验动物的替代方法(1)开发和推广替代方法，减少对实验动物的使用；(2)鼓励使用无动物实验方法，如体外实验、计算机模拟等。

大小鼠饲养标准操作规程目的：为规范大小鼠的日常饲养操作，制订本规程。

适用范围：适用于饲养工作人员的所有工作活动。

职责1.第一负责人负责监督、管理；2.工作人员严格遵守操作规程。

规程：1. 准备工作1.1 进入洁净走廊后,在洁净储物间按有关SOP配制当天使用的各种消毒剂,备用;1.2 在洁净储物间把当天使用的笼具、饮水瓶、饲料等物品，运输到洁净走廊，备用。

2. 饲养操作2.1 工作人员进入饲养间关门，然后巡视房间的所有设施和动物，并做好温湿度、工作日记等记录，如出现问题及时汇报并进行处理。

2.2 给饲料2.2.1饲料用食铲给食,严禁用手拿；2.2.2给料量以下次添料时，略有剩余为宜。

落在饲养架或地上的饲料一律扔弃。

2.2.3给料频率：2—3天一次。

2.3 给水2.3.1每周更换二次水,一般选在周一、五更换饮水。

2.3.2给水时,要确认不漏水。

2.4笼盒更换2.4.1更换周期视动物的数量而定；一般每周更换笼盒一次,每星期二、四更换笼盒，每次更换量为总笼盒的一半。

2.4.2更换笼盒时在操作车上进行，顺序是：由上而下，从左到右依次进行。

2.4.3操作步骤：把事先灭菌好的笼盒放在操作车上，然后把要换的笼盒也放在车上，工作人员使用消毒液浸泡过的镊子(两把镊子轮换使用)夹住动物尾部放入新笼盒里，用原来的笼盖盖上。

2.4.4 在第一次放入换好的笼盒之前，用消毒剂将笼架内的四壁擦干净，然后才能放入鼠盒。

2.4.5 动物笼盖每半个月更换清洗消毒一次。

2.4.6 所有的工作完成后,将换下的笼盒从污物走廊→缓冲间→经外走廊搬至洗消间。

2.5 清洁消毒，按“屏障设施卫生与消毒标准操作规程”。

实验动物饲养管理规范实验动物饲养管理室内应设有通风换气设备，维持室内空气流通，保持空气新鲜。

下面是店铺精心为你整理的实验动物饲养管理规范，一起来看看。

实验动物饲养管理规范动物的饲养环境饲养场所应建在环境空气质量及自然环境条件较好的区域，远离居民区和交通要道，远离有严重空气污染、震动或噪声干扰的区域。

动物的房舍应通风、透光、清洁、干燥。

房舍内墻壁应光滑、平整，阴阳角应为圆弧型，以利冲洗消毒。

墙面应采用耐腐蚀、无反光、耐冲击不易脱落的材料建筑。

地面应防滑、防磨、无渗透。

天花板应耐水、耐腐蚀。

屋顶应设通风透光、换气设备。

屋内还应设保温设备，以利冬季保温。

灵长类实验动物饲养房内的温度需控制在18℃～29℃，相对湿度应控制在40%～70%。

猕猴在人工饲养管理条件下.最适宜的温度是20℃～25℃。

最适湿度为40%～60%。

室内应设有通风换气设备，维持室内空气流通，保持空气新鲜。

动物饲养区应实行封闭式管理。

四周要有围墻(栏)。

场区要划分为繁殖区、育成区和隔离检疫区。

另外应设有相应的配套设备。

如：饲料房、饲料仓库、兽医室、治疗室等。

动物笼舍灵长类实验动物的笼舍和设施的设计必须充分考虑动物的福利，为动物提供舒适的环境和足够的空间。

使得动物能够自由活动。

有条件的单位应设置管道、秋千或其它玩具。

另外要设有防止动物逃跑的护栏。

总之，灵长类实验动物的笼舍应保证动物正常的生活、生长、繁殖，有益于动物的安全与健康。

灵长类实验动物的笼舍按其饲养方式分为笼养型房舍和舍养型房舍。

笼养型房舍笼养型房舍要宽敞明亮，房顶建有可随时开启的玻璃通气窗，以接受阳光照射。

房舍两边窗户通风透气，窗外罩上铁丝网防止动物逃跑。

饲养房内由于经常使用水和消毒液清洗.地面必须要用耐水、耐磨、耐腐蚀的材料，地面材料接墙处要有15㎝高的踢脚，拐角处呈园弧型，整个地面做成有适当斜度的完全防水地面，并设置带回水弯的排水口。

单个笼具尺寸不小于60cm×60cm×80cm，为不锈钢材料或表面光滑、耐酸、耐碱、耐腐蚀、易清洗消毒的钢筋焊接而成，表面光滑、无毛刺、不断裂、不脱焊。

实验动物学实验报告小鼠的基本实验操作大鼠的基本实验操作一、实验目的：本实验的目的是学习和掌握大鼠和小鼠的基本实验操作，并通过实际操作加深对实验动物学的理解。

二、实验材料和仪器：1.实验动物：本实验采用大鼠和小鼠作为实验动物。

2.实验材料：a.饲料：适用于大鼠和小鼠的饲料。

b.饮水：大鼠和小鼠所需的饮水。

c.防护用品：手套、口罩、工作服等。

3.实验仪器：称量器、注射器、实验笼等。

三、实验步骤：小鼠的基本实验操作：1.饲养：a.准备实验笼：清洗实验笼并确保洁净无菌。

b.注入饮用水：将饮用水注入到实验笼的水槽中。

c.放入饲料：将适量的饲料放入实验笼的饲料盆中。

d.放入小鼠：将小鼠轻轻放入实验笼中，并确保每只小鼠有足够的空间。

e.定期清洁：根据需要定期清洁实验笼，更换床上材料和饮用水。

2.体重测量：a.准备秤量器：准备一台准确的秤量器。

b.小鼠暂时移动：将小鼠轻轻移动到秤量器上，记录小鼠的体重。

c.小鼠放回实验笼：将小鼠安全放回原来的实验笼中。

3.注射：a.准备注射器和药物：准备一支注射器，并配制好需要注射的药物。

b.固定小鼠：采用适当的方式固定小鼠，如手持小鼠的颈部或者使用专用固定架。

c.注射药物：将药物缓慢注射到小鼠的体内，确保注射过程不会引起小鼠的不适。

d.观察并记录：观察小鼠注射区域的反应，并记录相关数据。

大鼠的基本实验操作：1.饲养：a.饲料和饮水的准备与放置方法与小鼠相同。

b.放养环境的准备：根据大鼠的特点，提供较大的实验笼和足够的空间。

c.定期清洁：根据需要定期清洁实验笼，更换床上材料和饮用水。

2.体重测量：a.方法与小鼠相同。

3.注射：a.方法与小鼠相同。

四、实验结果和讨论：通过本次实验操作，我们学习和掌握了小鼠和大鼠的基本实验操作。

在饲养方面，我们了解到提供干净的实验笼、适当的饲料和饮水对实验动物的健康至关重要。

在体重测量方面，我们掌握了如何用秤量器准确测量实验动物的体重。

在注射方面，我们学会了如何固定实验动物并将药物缓慢注射到体内。

非人灵长类实验动物操作规程目录1.人员培训及健康管理 (3)2.工作人员守则 (3)3.动物房人员工作职责 (4)所有人员均要持有实验动物从业人员上岗证 (4)3.1技术人员工作 (4)3.2兽医工作 (5)（兽医要求为取得国家执业兽医资格证） (5)3.3主管工作 (6)4.饲养区管理规定 (6)5.参观人员进出规程 (7)6.常规饲养管理规程 (8)6.1 日常工作程序 (8)6.2 饲养人员工作时间表 (8)7.猕猴饲养管理 (9)7.1 温湿度的保持 (9)7.2 饲养设备及设施 (10)7.3 饲喂制度 (10)7.4 观察记录制度 (10)7.5 清洁卫生制度 (11)7.6饲养单笼清洗规程 (11)7.7 消毒防疫制度 (12)7.8 特殊猴群的饲养管理 (12)8.检疫 (13)8.1 引进猴检疫 (13)8.2 基本猴群的检疫 (14)8.3 出所猴的检疫（动物出所，将按照我所实验动物出所规程进行操作，私自运出动物者将全所通报批评，由动管会严肃处理） (14)9.检出阳性猴应急处理预案 (15)9.1常规饲养猴检出TB阳性猴的处理 (15)9.2 常规饲养猴检出B病毒阳性猴的处理 (15)10.实验猴外逃应急处理 (16)11.咬伤应急处理 (16)12.实验猴质量标准 (18)13.术前准备 (18)13.1高压蒸汽灭菌 (18)13.2环氧乙烷灭菌 (23)14.手术操作（手术室内所有仪器均遵照使用说明进行操作，出现因操作不当而造成仪器损坏，均照价赔偿，并取消该课题组使用手术室资格，对于手术结束后未打扫手术室、关闭仪器将通报课题组负责人及动管会，多次违反者将取消该组使用手术室资格。

） (25)14.1常规操作 (25)14.1.1全麻操作 (25)14.1.2麻醉诱导 (25)14.1.3麻醉维持 (26)14.1.4气管插管 (26)14.1.5呼吸机的使用 (27)14.1.6监护仪的使用 (27)14.1.7实验猴皮肤准备 (27)14.1.8固定 (27)14.1.9建立静脉通道 (28)15.动物尸体、垫料、实验废弃物处理 (28)16．世界动物福利宣言 (29)目的随着生命科学的发展和生命医学研究的不断深入，对实验动物质量的要求越来越高。

大、小鼠饲养与管理操作指南1、大、小鼠的日常饲养管理1.1、人员进入屏障前必须经过一更、淋浴间、进入第二更穿防护服，佩戴帽、口罩和乳胶手套等，防护服和手套的外包装等放入指定的地方。

1.2、人员进入后，首先巡视整个动物房，观察动物有无逃逸，死亡；有无足量饲料和饮水；有无漏水；垫料更换与否；并做好记录。

2、小鼠2.1、小鼠胃容量小，随时采食，是多餐习性的动物。

成年鼠每天采食量一般为3~7g，幼鼠一般为1~3g。

在鼠笼内的食盒应经常有足够量的新鲜干燥饲料，在小鼠大群饲养中，每周应固定2天添加饲料，其他时间可根据情况随时注意添加。

2.2、根据小鼠不同阶段的生长发育特点，应有不同的给饲标准。

由于鼠群和生产鼠交配繁殖频繁，尤其生产种母鼠的负担重，能量消耗大，因此除供给足够的块料外，还要定时饲喂少量葵花籽、鸡蛋。

葵花籽供应量为每只成年鼠每天0.5~1g。

而鸡蛋供应量每周窝0.5个。

2.3、应注意观察记录动物采食的量，饲料太硬或霉变时，动物采食减少。

避免鼠因饲料太松磨牙啃咬成为碎料从而导致的浪费。

3、大鼠3.1、大鼠的胃容量约为4～7mL，50g大鼠的食料量约为10～19g/d，饮水量为20～45mL/d，如用于鼠的繁殖实验，应在饮水中添加维生素或添加其它含维生素的食物。

3.2、刚离乳的幼鼠需加喂软料，哺乳期加喂葵花籽。

大鼠具有随时采食的习惯，应保证其充足的饲料和饮水。

3.3、饲料按照少量多次的原则添加，软料则应每日更换。

一般情况下饲料添加量掌握在每次添加时上次添加的饲料已基本吃完为宜。

4、饮水瓶的更换4.1、每次更换饮水瓶时，不采用向瓶中加水的方式，应使用新的高压好的备用饮水瓶，已使用过的饮水瓶应撤出实验饲育室。

4.2、更换前将洁净贮物间内的饮水瓶装箱推入动物房，从鼠盒的盒盖上取下用过的水瓶，丢入存放箱中，同时取一新装满水的水瓶插在盒盖上。

4.3、每插上一个水瓶，观察一会儿，确信饮水瓶不会漏水，漏水的饮水瓶不得使用。

实验动物设施（设备)运行管理制度一、设施安全运行管理管理制度1、认真贯彻“谁主管，谁负责”的原则，设施负责人对中心内的安全生产、劳动保护工作负全面领导责任。

2、设兼职安全员，对设施的安全工作负检查、监督责任。

3、各人对所在岗位的所有仪器设备及所使用的工具、器材负直接的安全管理责任。

4、动物饲养员必须对所饲养的动物负全部的安全管理责任.5、所有工作人员均应严格遵守设施所规定的各项制度.6、所有工作人员在工作过程中均应牢固树立“安全第一”的思想,贯彻“预防为主”的方针，认真作好个人防护,严防各类事故的发生。

7、各种电器、动力设备在移动、检修之前必须切断电源。

饲养室和实验室内电、煤气设备及线路设施必须严格按照安全用电规程和设备的要求实施，不许乱接、乱拉电线，墙上电源未经允许，不得拆装、改线.8、各饲养室和实验室的钥匙应由专人管理,不得私自配备或转借他人。

9、发现安全隐患，均应及时处理，并记录、汇报。

10、发生火警等险情,在采取扑救措施的同时，应及时报警,并报告上级主管部门。

11、每日下班时，工作人员都必须查看水电、煤气和门窗等,切断电源，清扫易燃的纸屑等杂物,消灭隐患。

12、为保证人身安全，防止人畜共患传染病的发生，凡是常年从事实验动物工作的人员每年必须进行1次体检.凡有人畜共患传染病者不得从事实验动物工作。

13、为了保证动物种群的健康和屏障设施安全，工作人员必须遵守实验动物管理制度和操作规程。

14、工作中使用的酸、碱要放在指定的位置,须有专人保管,操作时必须按规定着装.15、高压灭菌工作必须按有关规定操作。

16、对违反规章制度造成损失的追究当事人的责任。

17、普通环境的门窗及通向外面的管道附近要定期清理,做到无杂草、无异物，并且具有防止野生动物、蝇、蚊及其它昆虫混入的措施。

18、凡进入设施饲养管理人员必须更换工作服、鞋、帽，出工作区域时,必须将工作、鞋、帽存放指定的衣柜中,严禁将工作服、鞋、帽穿出工作区域。

实验大鼠、小鼠及豚鼠饲养的标准操作规程
一、目的
规范实验大鼠、小鼠及豚鼠饲养操作，确保动物实验质量。

二、适用范围
本规程适用于实验大鼠、小鼠及豚鼠的饲养。

三、操作规程
1、安全防护
（1）穿戴好衣帽鞋手套口罩、用肥皂或消毒液洗手入岗。

（2）离岗后再用肥皂或消毒液洗手，注意水电门窗安全。

2、饲养管理
（1）给水：水瓶不空，每周清洗一次，保持PH2.0～2.5水。

（2）给料：每日及时清除污染、霉变饲料；适量添加颗粒饲料，保持始终有颗粒料。

（3）换窝：每周两次更换笼具内垫料，并及时清洗更换下的笼具。

（4）环境调节：温度：18～29℃，湿度：45～55%，换气：6～15次/小时。

（5）清洁卫生：每天保持房间地面、门、窗、墙及笼架清洁卫生，无积尘和蜘蛛网。

（6）记录观察：做好动物采购与使用登记以及室内温湿度记录；观察动物健康状况，及时清除病鼠并报告技术员。

3、动物供应
（1）验收入室外购动物数量。

（2）凭领用单发放动物，有领用记录。

4、卫生消毒
（1）饮水瓶、饲养盒：每月消毒一次。

（2）房间及笼架：每季度消毒一次。

实验小鼠饲养的管理技巧实验小鼠的饲养方法是非常繁琐的，那么你们知道实验小鼠如何饲养与管理吗？下面是店铺精心为你整理的实验小鼠饲养的管理技巧，一起来看看。

实验小鼠饲养的管理技巧一、饲养环境小鼠对环境的适应性的自体调节能力和疾病抗御能力较其他实验动物差，而小鼠的品种和品系繁多，各个品种和品系都有自己的特殊要求，因此必须根据实际情况给予一个清洁舒适的生活环境。

不同等级的小鼠应生活在相应的设施中。

小鼠临界温度为低温10℃，高温37℃，温度中性范围30～33℃。

饲养环境控制应达到如下要求：温度18～29℃;相对湿度40～70%;最好控制在18～22℃,湿度50～60%。

一般小鼠饲养盒内温度比环境高1～2℃，湿度高5～10%。

要保持温度、湿度相对稳定，日温差不超过3℃,否则会直接影响小鼠的生长发育、生产繁殖、甚至导致小鼠发生疾病，从而影响实验结果。

温湿度的相对稳定对于建筑条件较差的地方可用空气调节器、加湿器、在北方用暖气进行调节。

为了保持室内空气新鲜，氨浓度不超过20ppm，换气次数应达到10～20次/小时。

现在我国普遍采用无毒塑料鼠盒，不锈钢丝笼盖，金属笼架。

笼架一般可移动，并可经受多种方法消毒灭菌。

用清洁层流架小环境控制饲养二、三级小鼠不失为一种较好的方法。

笼盒既要保证小鼠有活动的空间，又要阻止其啃咬磨牙咬破鼠盒逃逸，便于清洗消毒。

带滤帽的笼具可减少微生物生物污染，但笼内氨气和其它有害气体浓度较高，有时影响实验结果的准确性。

饮水器可使用玻璃瓶、塑料瓶，瓶塞上装有金属或玻璃饮水管，容量一般为250ml或500ml。

垫料是小鼠生活环境中直接接触的铺垫物，起吸湿(尿)、保暖、做窝的作用。

因此垫料应有强吸湿性、无毒、无刺激气味、无粉尘、不可食，并使动物感到舒适。

垫料必需经消毒灭菌处理，除去潜在的病原体和有害物质。

一般垫料以阔叶林木的刨花或锯末为宜，也可用玉米芯加工粉碎除尘后使用。

在实验中切忌用针叶木(松、桧、杉)刨花做垫料，这类刨花发出具有芳香味的挥发性物质，可对肝细胞产生损害，使药理和毒理方面的实验受到极大干扰。

动物实验基本操作一、实验动物的抓取与固定。

（一）小鼠。

1. 抓取。

- 用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙表面上。

当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指迅速捏住小鼠两耳后颈背部皮肤，无名指和小指夹住小鼠尾巴根部，将小鼠固定成头部略向上的姿势。

- 原因：捏住尾巴提起小鼠可以避免小鼠咬伤操作人员，将其放在粗糙表面上是利用小鼠的本能反应（向前挣扎），便于后续准确抓取其颈背部皮肤。

而固定成头部略向上的姿势有利于进行诸如灌胃、注射等操作，并且能防止小鼠咬伤操作人员脸部等部位。

2. 固定。

- 如需进一步固定，可将小鼠放在特制的小鼠固定器内，将其身体和四肢固定好。

也可以将小鼠固定在泡沫板上，用大头针固定其四肢（这种方法常用于解剖实验）。

- 原因：使用固定器可以确保小鼠在实验过程中保持稳定，减少因挣扎而影响实验操作的准确性，同时也能保障操作人员的安全。

对于解剖实验，在泡沫板上用大头针固定四肢可以充分暴露小鼠的身体结构，便于进行精细的解剖操作。

（二）大鼠。

1. 抓取。

- 先用右手抓住大鼠尾巴中部，将大鼠提起，放在粗糙平面上。

然后用左手戴防护手套（大鼠体型较大且可能会激烈挣扎，容易咬伤操作人员），从大鼠背部绕到其胸前，拇指和食指捏住大鼠两耳后颈背部皮肤，其余手指握住大鼠身体，将其提起固定。

- 原因：与小鼠抓取类似，先抓住尾巴提起是为了初步控制大鼠，放在粗糙平面上利用其向前挣扎的本能便于后续抓取。

戴防护手套是因为大鼠的咬合力较强，为了防止操作人员受伤。

2. 固定。

- 可将大鼠放入大鼠固定器中固定。

对于需要进行手术等操作的大鼠，也可将其麻醉后固定在手术台上，用绑带固定其四肢。

- 原因：固定器和手术台固定都能保证大鼠在实验过程中保持稳定，使实验操作能够顺利进行，尤其是在进行需要精细操作的手术时，稳定的固定是确保手术成功的关键因素之一。

二、实验动物的给药操作。

（一）口服给药。

1. 灌胃法（以小鼠为例）- 准备好灌胃针（一般为特制的金属针具）和相应的药物溶液。

实验猴饲养管理操作规程实验猴是常用的实验动物之一，其饲养管理对于实验研究的结果具有重要影响。

为了能够保证实验猴的健康和实验结果的准确性，实验猴饲养管理应根据相关的规定进行操作，以下是一份实验猴饲养管理操作规程。

一、实验猴环境条件的要求1. 室温：实验猴的饲养环境应保持在20-26摄氏度之间。

2. 相对湿度：相对湿度应保持在40%-70%之间。

3. 光照条件：在实验饲养室内，应提供适宜的光照，每天供应10-14小时的光照。

4. 通风条件：实验饲养室应具备良好的通风条件，保证空气的流通。

5. 声音条件：在实验饲养室内应控制噪音，避免噪音对实验猴的影响。

二、实验猴的饲养管理要求1. 饲养设施：（1）饲养区域应干净整洁，设施要求合理布局，以便进行监测和观察。

（2）饲养箱、笼具等设施应具备清洁、结实、耐用、防溢等特点。

（3）饮水设施应为实验猴提供充足的清洁饮水，定期更换饮水器。

（4）饲料设施应设置合理，以便实验猴获取饲料，并避免饲料污染。

2. 饲料管理：（1）饲料应富含营养，满足实验猴的生长和发育需求，同时避免过多的重金属和污染物质。

（2）饲料的供应应根据实验需要和实验猴的饲养要求进行合理安排，保证实验猴的饥饱感。

（3）饲料应保持干燥，避免发霉和变质。

定期检查饲料质量，如果发现问题应及时更换。

3. 卫生管理：（1）饲养区域应保持清洁，定期进行清洁消毒，预防和遏制传染病的发生。

（2）实验猴笼具要定期清洗和消毒，保持干燥和无臭味，避免细菌和病毒的繁殖。

（3）实验猴应定期洗澡并进行身体检查，发现异常情况及时处理和治疗。

（4）处理实验猴粪便和废料应按规定进行，防止污染和传染。

4. 健康管理：（1）实验猴应定期进行健康检查，包括体温、体重、食欲等指标的观察和记录。

（2）实验猴应定期进行免疫接种，预防常见的感染病和传染病的发生。

（3）实验猴饲养员应接受相关的培训，掌握识别和处理实验猴常见疾病的能力。

（4）实验猴饲养员应及时报告实验猴的异常情况，采取相应的措施进行处置。

大小鼠实验动物的一般操作技术实验动物是科学研究中常用的一种工具，其中大小鼠是最常用的实验动物之一、这些实验动物的使用需要遵循一定的操作技术。

下面将介绍关于大小鼠一般操作技术的一些要点。

一、动物选择与检查1.动物选择：选择健康、品种纯正、年龄适宜但无疾病的大小鼠进行实验，确保实验结果的可靠性。

2.动物检查：在实验开始前，对实验动物进行全面检查，包括观察其活动能力、呼吸、食欲、毛色等，确保动物在实验中的正常状态。

二、鼠舍准备1.鼠舍清洁：清洁鼠舍是保证实验动物健康的重要环节。

鼠舍每日清理，彻底清除鼠粪、鼠尿和残留的饲料等。

2.鼠舍温度和湿度：保持鼠舍的适宜温度和湿度，避免温度过高或过低，影响实验结果。

三、动物饲养1.饲料提供：根据实验需要，提供适宜的饲料，保证实验动物获得足够的营养。

2.饮水供应：提供清洁的饮用水，确保实验动物的水源充足。

3.养殖密度：根据动物种类和实验要求，合理控制养殖密度，避免拥挤引发的争斗和伤害。

四、动物标识和记录1.动物标识：为每只实验动物标记唯一的标识符，以便鉴别和跟踪。

2.动物记录：详细记录每只实验动物的基本信息，包括性别、年龄、体重、出生日期等，以及实验中的相关数据，确保数据的可靠性和准确性。

五、实验操作1.动物处理：根据实验需求，对实验动物进行相应的处理，包括剂量给药、手术操作等。

2.实验观察：对实验动物进行观察，记录与实验目的相关的表现、行为等数据。

3.安全措施：在进行实验操作时，确保实验人员和实验动物的安全，遵守相关的安全操作规程。

六、动物福利1.人道处理：在实验过程中，必须对待实验动物给予必要的照顾，确保其生理和心理福利。

2.道德原则：根据相关伦理和法律规定，遵循实验动物使用和保护的道德准则，最大限度地减少实验动物的痛苦和压力。

总结：大小鼠的操作技术是实验过程中至关重要的一部分。

合理的操作技术可以确保实验动物的健康与福利，同时保证实验结果的准确性和可靠性。

在进行大小鼠实验前，研究人员需要了解并严格遵守相关的操作规程和伦理法规，以确保实验的成功进行。

老鼠在实验室中的养殖和饲养方法是什么？一、合理的饲养环境在实验室中，为了保证实验结果的准确性和可重复性，必须提供合理的饲养环境给老鼠。

这包括合适的饲养箱子、温度、湿度、通风等方面的条件。

首先，饲养箱子应选择适当大小，以满足老鼠的自由活动和正常生理需要。

其次，保持适宜的温度和湿度对老鼠的健康非常重要，一般来说，温度应保持在20-26摄氏度，湿度在40-70%之间。

此外，良好的通风系统可以保持空气的流通和新鲜，避免污染导致老鼠生病。

二、科学的饲料配方饲养老鼠所需的饲料应有特定的科学配方，以保证其正常生理发育和健康状态。

一般而言，老鼠主要以谷物类为主要食物，如小麦、玉米等，同时还需要加入一定比例的鱼粉、豆粉等蛋白质来源，以及维生素、矿物质等营养成分。

此外，为了增加老鼠的食欲和促进其消化吸收，可以适量地添加一些食物添加剂，如酵素和益生菌等。

三、定期的健康检查为了确保实验数据的准确性和老鼠的健康，实验室管理者需要定期对饲养中的老鼠进行健康检查。

这包括体重测量、体温测量、毛发状况观察等。

同时，还需要定期对老鼠进行疾病筛查，如传染病、内寄生虫等，必要时进行治疗和预防。

此外，定期换饲和清洁饲养箱子也是必不可少的，以维持老鼠的生活质量和健康状态。

四、合理的社交环境基于老鼠的社交性，为了满足其社会需求和心理健康，实验室饲养过程中应提供合理的社交环境。

老鼠属于群居动物，因此饲养时最好是多只老鼠一起饲养，以保持它们之间的社交互动。

此外，提供适当的玩具、活动设施和隐私空间等也是必要的，以提供丰富的环境刺激和满足老鼠的探索欲望。

总之，老鼠在实验室中的养殖和饲养方法是需要科学和细致管理的。

通过提供合理的饲养环境、科学的饲料配方、定期的健康检查和合理的社交环境，可以保障老鼠的健康和生理发育，为实验结果的准确性提供充分保证。

饲养管理者应深入了解老鼠的生活习性和健康需求，不断总结经验，改善饲养条件和方法，以提高实验品质和效果。

XXXX药业有限公司标准操作规程(S O P)1.目的规范小白鼠的饲养操作，确保小白鼠按国家科委条例饲养使用2.范围动物室洁净级小白鼠的饲养3.责任质量保证科、化验室、实验动物室负责人及相关人员4.制定依据：国家科委《实验动物条例》、《实验动物环境及设施》、《河南省实验动物管理办法》等相关文件要求。

5.规程5.1工作人员更换衣、帽、鞋，戴上口罩后，进入工作状态。

5.2小白鼠的接受5.2.1实验小白鼠应从经认可符合规定的动物机构购买。

5.2.2接受标准外观检测（1）个体匀称、健壮、丰满、活泼有力。

（2）眼睛鲜红、光泽。

（3）背毛浓密、贴身、有光泽、不易脱落。

（4）四肢短、动作敏捷。

（5）尾巴发育良好，血管呈粉红色。

（6）体表无伤痕，粪便正常。

（7）鼻孔文件编号：SP-DW-SOP-09-002-01页号2－2清洁、无分泌物、呼吸正常。

5.2.3观察检疫5.3.传送新购进的小鼠按每盒5只饲养，进行检疫观察2-3天，合格者才能用于实验，不符合健康标准者，按规定淘汰处理。

经检疫检测无异常的小白鼠按《超净工作台使用操作规程》和《IVC使用操作规程》规定的程序，经超净工作台转入IVC小鼠笼中饲养。

5.4饲养5.4.1饲养环境小白鼠饲养环境应为屏障环境，环境温度应保持在20-26℃，相对湿度为40%-70%。

5.4.2 笼具和垫料鼠笼为IVC鼠盒，鼠盒每次使用前应灭菌消毒。

垫料须高压灭菌后方可使用，每个鼠盒一般情况下每周更换垫料2次。

5.4.3饲料及饮水5.4.3.1 饲料应为经灭菌处理后的全价营养饲料，并保持饲料相对稳定。

5.4.3.2 饮水为经灭菌处理后的饮用水。

5.4.3.3 饲料和饮水每周添加、更换3-4次；工作人员每天应检查水瓶是否漏水，饲料是否还有，如短缺，应及时添加。

5.4.3.4小鼠喜欢黑暗安静的环境，操作时应保持动作要轻,防止噪声。

饲养室内应提供适当的昼夜明暗交替时间，一般是12/12或10/14小时，非工作时间使用动物照度。

常见实验动物的饲养管理操作技术【目的与要求】通过本实习掌握常见实验动物的饲养管理操作方法和程序。

【仪器和材料】小鼠、大鼠、兔、鼠盒、垫料、水瓶及辅助器材。

一、大、小鼠的日常饲养管理1．进入屏障动物房的准备：人员进入屏障前必须沐浴、穿无菌隔离服，佩戴帽、口罩和乳胶手套等。

2．进入后的观察：人员进入后，首先巡视整个动物房，观察有无异常情况，并做好记录。

3．大小鼠的喂料：（1）屏障动物房宜采用每天加料的做法。

这能减少因动物磨牙、咬碎饲料而造成的浪费；在潮湿的霉雨季节，也能防止饲料的霉变。

（2）每天给鼠盒加料一次，加料时打开饲料袋，用加料勺向盒盖上加料。

（3）加料的量取决于动物的大小和数量，以到第二天上午检查时每盒剩下1－2根饲料为宜。

（4）应注意观察记录动物采食的量，饲料太硬或霉变时，动物采食减少，饲料太松，鼠因磨牙啃咬，撒漏的成为碎料太多，浪费大。

4．大小鼠的喂水：（1）每周2－3次更换饮水瓶，换水瓶时将经洗涤灭菌的饮水瓶装满洁净水，塞紧瓶塞。

（2）将饮水瓶装箱推入动物房，从鼠盒的盒盖上取下用过的水瓶，丢入存放箱中，同时取一新装满水的水瓶插在盒盖上。

（3）每插上一个水瓶，观察一会儿，确信饮水瓶不会漏水，漏水的饮水瓶不得使用。

（4）一般不采用向瓶中加水的方式，更换下的水瓶付出屏障，清洗灭菌后再进入。

5．大、小鼠换盒：（1）在清洁消毒间，将灭菌垫料装入消毒后的鼠盒中，一盒盒叠起，送入动物房。

（2）从鼠架上取下鼠盒放置于工作车上，颠倒饮水瓶，取下鼠盒盖放于鼠盒旁。

（3）用镊子或戴有灭菌手套的手轻轻抓住鼠尾近根部，将鼠提起放入干净的笼盒中，盖上原鼠盖，插上饮水瓶，放回鼠架。

注意盒盖上的标签不要失落或搞错。

（4）将换下的笼盒叠放后，打开通向次清洁走廊的门，将笼盒推次清洁走廊，待所有饲养室工作结束后，进入次清洁走廊，收集鼠盒，经缓冲间进入洗涤室。

（5）更换垫料的同时，做好断奶、分群工作。

6．卫生消毒：（1）每日工作结束后及时打扫房间，保持动物房的地面、墙壁、顶棚室内一切设施洁净卫生，无饲料、垫料的碎屑、无垃圾、无污迹。

附件1实验动物饲养管理的SOP1、目的为规范SPF级动物房内大小鼠、仔猴的饲养规范，保证试验质量，特制定本制度。

2、范围适用于本公司SPF级动物房内的工作人员。

3、内容3.1准备工作3.1.1操作人员按SPF区人员进出标准操作规程要求进入动物饲养区。

3.1.2推门时应感觉到正压存在，如有异常及时通知相关人员。

3.1.3观察看温、湿度计，并记录读数。

温度湿度变化范围超过规定范围时，要及时向实验人员和实验室负责人汇报，以便尽快采取措施。

3.1.4观察水瓶有无漏水，有无动物逃逸，动物健康情况，若有异常情况，应及时向实验人员和实验室负责人汇报并记录情况。

3.1.5检查每盒动物的饮水及摄食状况，若饮水及摄食不正常的动物笼，先检查是否饮水瓶阻塞，再观察动物是否有疾病征兆。

若有，立即上报。

3.1.6发现动物死亡，要调查死亡原因，判断事故死亡还是异常死亡，并报告，不能确定原因的要将整盒动物送出屏障待查。

3.2SPF大、小鼠的饲养管理SOP3.2.1鼠喜阴暗、安静的环境，对环境温度、湿度很敏感，经不起温度的骤变和过高的温度。

最大温差小于等于4°C,温度在20〜26°C，相对湿度40〜70%,—般鼠饲养盒内温度比环境高1〜2°C,湿度高5〜10%。

噪音60分贝以下，氨浓度14/（mg/m3）以下.通风换气大于等于15次/小时。

光照循环条件是是12小时明/12小时暗,如果光照条件与上述不符,且没有实验方案支持,必须通知实验动物管理部的管理人员。

3.2.2鼠饲养在聚碳酸酯的实底的笼盒里,笼子底部放高压灭菌的玉米芯做垫料。

除非实验方案有特殊的要求,和/或有动物管理委员会的批准,方可以进行改动。

鼠是群居性动物,可能时尽量成群饲养,但每笼不得超过5只。

3.2.3饲料和饮水：鼠通过实验室等级颗粒料或等同的其它饲料自由采食,或者由实验动物管理部管理层或专题负责人提出建议。

加饲料时,观察动物采食量,若尚有剩余饲料,则与新鲜饲料混合后喂。