动物骨髓细胞染色体的制备与观察
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动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
实验目的:
本实验的目的是利用正常小鼠的骨髓细胞制备染色体标本,并通过显微镜观察染色体的形态和数量,并了解染色体的组成和结构。
实验原理:
染色体是细胞核中最大的有组织结构,由DNA和蛋白质组成。
染色体的数量和形态是每个物种独特的标志之一。
在有丝分裂过程中,染色体的形态和数量的变化可以反映出细胞的分裂状态。
为了制备染色体标本,需要通过细胞的裂解,释放和固定染色体,然后在显微镜下观察染色体的形态和数量。
实验步骤:
1. 取出小鼠的股骨,并在无菌条件下对其进行消毒。
2. 使用消毒的剪刀剪下股骨两端,将骨髓剪下,加入RPMI-1640培养液中,使髓液悬浮,然后用细胞培养器将其孵育2-3天,使骨髓细胞增殖。
3. 用离心机将骨髓细胞离心,去除培养液,用磷酸盐缓冲液进行细胞裂解。
4. 将制备好的染色体悬液滴在预先涂上盐酸聚赖氨酸溶液的载玻片上,让其固定,然后通过染色体芝士和琼脂糖溶液对细胞进行染色。
5. 用显微镜观察染色体标本,记录染色体的数量和形态,并观察细胞的分裂状态。
实验结果:
制备的染色体标本在显微镜下观察。
通过对标本的观察,我们可以看到染色体形态和数量的变化,以及细胞分裂状态的变化。
同时,我们可以从染色体上观察到细胞的遗传信息,包括基因序列和调控因子等。
结论:
本实验成功制备了小鼠骨髓细胞染色体标本。
观察染色体形态和数量的变化,可以从中了解细胞的遗传信息和分裂状态变化。
同时,该实验也展示了染色体的重要性和组成结构,加深了对细胞生物学的理解。
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
通过制备动物骨髓细胞染色体标本,进一步了解细胞染色体的形态和结构,以及染色体在遗传学研究中的应用。
实验原理
动物骨髓细胞是一种快速分裂细胞,其中染色体数目和结构较为清晰,因此通常用于染色体分析和遗传学研究。
为了制备动物骨髓细胞染色体标本,需要经过细胞取样、细胞处理与固定、染色和镜检等几个步骤。
实验步骤
1. 取样:在实验动物体内取出一小段骨髓组织,置于离心管中,加入10ml生理盐水,轻轻摇晃,使细胞均匀分散。
2. 细胞处理和固定:取出适量的细胞液,加入等体积的去离子水后进行处理。
将细胞液滴于预先贴有载玻片上的正常细胞培养液中,使其渐渐均匀分散。
将玻片放置在室温下,使细胞贴附在玻片上并进行细胞固定。
细胞固定可用10%甲醛或70%乙醇,也可用50%醋酸处理。
3. 染色:将固定的细胞标本先置于1%琼脂糖中5~10分钟,用注射器吸取琼
脂糖,并把细胞标本冲洗干净,然后用生理盐水洗净。
若要染色,则滴上适量的霉素酚-吡啶溶液或可以染细胞核者,如吉姆萨红溶液或乙酰苯胺-三甲胺水溶液等,等颜色形成后即可洗净。
4. 镜检:放入顶匣,用显微镜观察染色后细胞形态和染色体。
如果需要拍照,则可利用显微摄影技术,对样本进行记录。
实验结果
通过实验可以观察到动物骨髓细胞染色体的形态、数量和结构,进一步了解染色体在遗传学研究中的应用。
同时,该实验对熟悉细胞培养和染色技术也有一定帮助。
实验结论
通过本次实验,我们可以获得动物骨髓细胞染色体标本,并学习了细胞处理、固定、染色和镜检等关键步骤。
实验结果可以为生物学研究提供相关实验基础。
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告实验目的:本次实验的目的是通过制备动物骨髓细胞染色体标本,加深对细胞遗传学和染色体结构的理解,同时掌握常规细胞检测技术。
实验原理:细胞核持有着生物体的遗传信息,而染色质可以分为染色体和非染色体两种,其中染色体是由DNA及其辅助蛋白组成的。
通过细胞分裂过程中,染色体会缩短、厚度增加、染色带可清晰分辨等特点来进行分类和编号。
利用这些特点可以制备出动物骨髓细胞染色体标本。
实验步骤:1. 首先准备动物骨髓细胞样品,可通过小鼠骨髓涂片或静脉血(受试者需要同意),将样品转移到已经预处理好的无菌平板上。
2. 在离心管中加入10ug/ml的柱前荧光素-ethidium bromide(PI),再将细胞样品加入离心管中,轻轻摇晃片刻,稍微放置几分钟。
3. 用宽口的滴管取少许制片液,滴在已经处理好的载玻片上,尽量保证滴管斜着滴落制片液,避免气泡出现,将载玻片浸泡于制片液中。
4. 轻轻捞取离心管中的细胞样品,均匀地滴在制片液的中心处,然后放置在湿度大于80%,温度为37°C的恒温箱内1-2h。
5. 制片完成后,对载玻片进行显微镜检查,选择细胞密度适当、染色较清晰的染色体标本进行下一步操作。
6. 将载玻片放置在冷却的媒体溶液(0.075mol/L KCl及0.9%NaCl)中,冷冻10-20min。
7. 取出载玻片,使用正差相干显微镜观察着染色体的分布和形态,并进行拍照记录。
8. 得到的染色体标本可用于常规染色体学诊断。
实验结果:通过本次实验制备得到的动物骨髓细胞染色体标本,可以进行常规染色体学分析,观察细胞核中的染色体数目、形态和结构等特征,并可以用于细胞遗传学研究和临床诊断。
实验结论:本次实验通过制备动物骨髓细胞染色体标本,加深了对细胞遗传学和染色体结构的理解,同时掌握了常规细胞检测技术。
通过观察和分析染色体标本的形态和结构,可以进行细胞遗传学的研究与临床诊断。
小鼠骨髓细胞染色体标本制作与观察试验目的把握动物骨髓染色体标本制备基本过程,了解操作步骤的原理试验原理小鼠骨髓细胞中的造血干细胞是生成各种血细胞和原始细胞,具有高度的分裂力量,本试验采纳这一材料,通过前处理,低渗,固定,制片,染色等步骤制得染色体标本,可观看到很多处于分裂中期的染色体,可以进行染色体组型分析。
试验原理制备方法包括以下几个要点:1. 用肯定剂量的秋水仙素破坏纺锤丝的形成,使细胞分裂停滞在中期, 使中期染色体停留在赤道面处2. 用低渗法使将细胞膨胀, 以至于在滴片时细胞被胀破, 使细胞的染色体铺展到载玻片上3. 空气干燥法可使使细胞的染色体在载片上展平, 经Giemsa染色后便可观看到染色体的显微图象试验用品1.材料:小白鼠2.器具:注射器(1ml,5ml)剪刀镊子玻璃吸管10ml刻度的离心管离心机载玻片盖玻片显微镜滤纸擦镜纸纱布恒温水浴锅3.药品:0.01%秋水仙素0.075MKCl 固定液(甲醇:冰醋酸=3:1)2%柠檬酸钠改良石炭酸品红试验步骤预处理取股骨冲洗骨髓离心低渗离心固定离心滴片染色观看1.预处理:试验前2.5-3小时,按每克体重注射0.02ml,给小白鼠腹腔注射秋水仙素。
2.取股骨:断颈处死小鼠后,剔去肌肉组织,洗净3.冲洗骨髓:剪去两端的股骨头,吸取10ml 2%柠檬酸钠,注射器针头插入股骨一端,反复冲洗两根股骨,洗液收集到10ml的离心管中4 .离心:1000r/min 离心10 min ,弃上清5 .低渗:加入8ml 0.075mol/LKCl溶液,滴管吹散,37℃水浴低渗30 min ,中间(约15 min )再吹散一次,使细胞分散,悬浮于溶液中6.离心:1000r/min离心10 min,弃上清7.固定:沉淀加8ml固定液,并用吸管轻轻吹匀,进行固定,中间(约15 min )再吹散一次试验步骤8. 离心:1000r/min 离心10 min ,留1 ml 左右上清,轻轻吹打成细胞悬液9. 滴片:用吸管吸取细胞悬液,高度30-40 cm,滴在预冷的载玻片上,在酒精灯火焰上微微加热,室温晾干10. 染色:改良石炭酸品红染色10-20 min11. 观看:低倍高倍。
动物骨髓细胞染色体的制备与观察
实验目的
1. 通过青蛙或小白鼠骨髓细胞染色体的制备,初步掌握低渗法制备动物骨髓细胞染色体的方法。
2. 熟悉染色体的形态、种类及青蛙、小白鼠等动物染色体的数目或类别。
实验原理
骨髓细胞是具有旺盛分裂能力的细胞,从这些分裂细胞中,可观察到处于分裂中期的染色体,能对一种动物染色体的形态特征、数目进行准确的观察和分析。
由于骨髓直接涂片观察到的分裂相少,效果差,因此要对骨髓细胞进行必要的处理。
这个处理方法称为低渗法,其基本要求首先是要获得较多的中期分裂相。
秋水仙素对分裂期纺锤丝的形成具有破坏作用,当动物被注射适量的秋水仙素后,处于分裂增殖中的骨髓细胞由于纺锤丝不能形成,中期染色体不能正常趋向两极,到达后期、末期,因而大量的细胞处于观察染色体形态最佳的分裂中期。
其次是要能够清楚的观察染色体的形态。
为了达到此目的,取出的骨髓细胞要经过低渗(kcl溶液)使细胞膨胀、染色体适当的分散。
固定(甲醇、冰醋酸)使染色体保持完好的形态。
染色(giemsa液)使染色体易分辨、观察。
利用动物骨髓制作染色体观察标本取材容易,不需培养,不需无菌操作,比较简便,是生物学实验教学中常用的方法。
一般选用的动物有青蛙、蟾蜍、小白鼠、大白鼠等。
实验材料及用品
1、材料:青蛙或小白鼠、大白鼠、蟾蜍,雌雄均可。
2. 试剂:0.02﹪秋水仙素、0.075mol/l氯化钾 (kcl)、3:1甲醇、冰醋酸固定液、吉姆萨(giemsa)染液。
3. 器材:解剖盘、小镊子、剪刀、注射器(5ml一支)、刻度离心管、玻璃吸管、预冷载玻片、染色缸、玻片盒、量筒、恒温水浴箱,显微镜、酒精灯、火柴。
实验方法及步骤
各种动物骨髓细胞染色体的制备方法基本都采用低渗法,现以青蛙为例,说明其制备的过程。
1. 取健康青蛙一只,按每10g体重由腹腔注入含量为0.02% 的秋水仙素0.3ml (此步在实验前12~24小时完成,哺乳动物在实验前2~4小时完成)。
2. 将青蛙处死,迅速取出后腿长骨,包括股骨和胫骨,为了获得较多的骨髓细胞,前肢亦可使用。
3. 用剪刀、镊子剥离肌肉及结缔组织,剪去两头的骨结,迅速用5ml注射器抽取0.075mol/l的kcl溶液,从一头插入骨髓腔冲洗,冲洗液接入刻度离心管内,反复多次,直至骨髓腔变白。
此时不要让组织块掉进离心管,如掉入,一定要用镊子或吸管取出。
加低渗液至5ml或8ml刻度,放入37℃恒温水浴箱内低渗处理25分钟。
4. 低渗完毕,取出离心管,向离心管中加入1ml左右3﹕1甲醇、冰醋酸固定液进行预固定。
1~2分钟后,每两支离心管成对放在天平上配平,使两支管的重量相等,然后将这两支管对应的放入离心机内的孔中,以1 500r/min 离心6~8
分钟。
5. 取出离心管,弃去上清液,再加固定液至6~8ml,用玻璃吸管沿离心管壁吹打,使沉淀的细胞团块在固定液中充分均匀,然后放入37℃水浴箱中固定15分钟。
6. 再取出离心管,配平后离心6~8分钟,转速同样为1 500r/min。
离心完毕,去掉上清液,再加入1ml左右的固定液,用吸管吹打,制成细胞悬液。
7. 取预冷湿玻片一张,用吸管吸取细胞悬液,从40~50cm左右的高度滴到载玻片上,再用口吹散滴液,置于酒精灯上微微火烤,最后放置晾干。
8. 将晾干的玻片放入吉姆萨应用液染色缸中,或将玻片平放于桌上,将染液滴在片上染色。
染色15分钟后,用自来水小心冲去染液,置于酒精灯上微微火烤,最后放置晾干后镜检。
作业
1、绘制一个图像清晰、形态典型的青蛙染色体组型图。
2、绘制本实验流程图,明确实验过程。
3、说明为什么滴片时要用冰冻的冷载玻片?
4、说明0.075mol/KCL的作用?
5、秋水仙素水溶液的作用?
6、总结影响制片效果的因素。