植物细胞培养及原生质体培养
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器官培养:即离体器官的培养。
植株培养:对完整植株材料的培养。
组织或愈伤组织培养:是对植物体的各部分组织进行培养或对由植物器官培养产生的愈伤组织进行培养,二者均通过再分化诱导形成植株.细胞培养:是对由愈伤组织等进行液体振荡培养所得到的能保持较好分散性的离体单细胞或花粉单细胞或很小的细胞团的培养.原生质体培养:是用酶及物理方法除去细胞壁的原生质体的培养。
初代培养:芽、茎段、叶片、花器等外植体在离体培养条件下诱导愈伤组织、侧芽或不定芽、胚状体过程植物组织培养:是指通过无菌操作分离植物体的一部分(外植体),接种到培养基上,在人工控制的条件下(包括营养、激素、温度、光照、湿度)进行培养,使其产生完整植株的过程。
愈伤组织:原指植物在受伤之后于伤口表面形成的一团薄壁细胞,在组培中则指在离体培养过程中形成的具有分生能力的一团不规则细胞,多在植物体切面上产生。
外植体:从植物体上分离下来的用于离体培养的材料。
植物细胞全能型:任何具有完成细胞核的植物细胞,能拥有形成一个完整植株所必须的全部遗传信息和发育成完整植株的能力。
脱分化:已分化好的细胞在人工诱导条件下,恢复分生能力,回复到分生组织状态的过程。
再分化:脱分化后具有分生能力的细胞再经过与原来相同的分化过程,重新形成各类组织和器官的过程。
胚状体:在离体过程中产生一种形似胚(具有明显的根端和芽端),功能与胚相同的结构。
褐变现象:指在接种后,其表面开始褐变,有事甚至会使整个培养基褐变的现象。
继代培养材料的玻璃化:当植物材料不断的进行离体繁殖时,有些培养物的嫩芽,叶片往往会呈半透明水迹状,这种现象通常成为玻璃化。
人工种子:通过植物组织培养的方法获得的具有正常发育能力的材料,外被有特定的物质,在适宜的条件下可以发芽成苗的植株幼体。
植板密度:形成的细胞团数/植板的细胞总数×100%对称融合:双方原生质体均带有核基因组和细胞质基因组的全部遗传信息。
非对称融合:指一方亲本的全部原生质与另一方亲本的部分核物质及细胞质物质重组产生不对称杂种。
原生质体培养名词解释原生质体培养是一种常用的植物组织培养技术,用于繁殖植物和研究植物基因转化等问题。
本文将介绍原生质体培养的定义、原理和应用等方面的名词解释。
下面是本店铺为大家精心编写的4篇《原生质体培养名词解释》,供大家借鉴与参考,希望对大家有所帮助。
《原生质体培养名词解释》篇11. 原生质体(Protoplast)原生质体是指从植物细胞中除去细胞壁后剩余的细胞质部分,包括细胞膜、质体、线粒体、质体小体、微管和微丝等细胞器。
原生质体是一个高度液态的细胞质体系,其形态和功能类似于一个微小的细胞。
原生质体可以通过融合实现远缘杂交,从而扩大植物遗传资源的利用范围。
2. 原生质体培养(Protoplast Culture)原生质体培养是指将离体的植物原生质体在适当的培养基上进行培养,以获得再生的植物组织或细胞。
原生质体培养的主要目的是通过原生质体的融合,克服远缘杂交障碍,实现植物遗传资源的利用和改良。
3. 原生质体融合(Protoplast Fusion)原生质体融合是指两个或多个原生质体合并成一个细胞的过程。
原生质体融合可以通过电激、化学处理或生物方法等手段诱导。
融合后的细胞称为杂种细胞,可以用于植物遗传资源的利用和改良。
4. 再生(Regeneration)再生是指通过培养技术,使离体的植物组织或细胞重新分化、再生为新的植株或组织。
再生是原生质体培养的重要应用之一,也是植物组织培养技术的基础。
5. 遗传转化(Genetic Transformation)遗传转化是指将外源基因或基因组导入植物细胞内,并使其表达的过程。
遗传转化是植物基因工程的重要组成部分,也是原生质体培养的应用之一。
通过原生质体培养技术,可以将目的基因导入植物细胞内,并实现植物的遗传转化。
6. 植物组织培养(Plant Tissue Culture)植物组织培养是指将离体的植物组织或细胞在适当的培养基上进行培养,以获得再生的植物组织或细胞。
园艺生物技术一、名词解释1、组织培养:指在无菌条件下,将植物的离体器官、组织、细胞、胚胎、以及原生质,接种在到人工配制的培养基上,在人工控制的条件下进行培养,使其生长、分化,并长成完整植株的过程。
2、植物细胞的全能型:指植物的每一个细胞都携带有一套完整的基因组,并具有发育成为完整的植株的潜在能力。
3、植物细胞分化:指在个体发育过程中,细胞在邢台、结构和功能上的特化过程。
4、无病毒苗:是指不含有该种植物的主要危害病毒,即经检测主要病毒在植物内的存在表现为阴性反应的苗木。
5、立体快速繁殖:指通过无菌操作,将外植体接种于培养基上,在人工控制的营养和环境条件控制下进行培养,,使其在较短的时间内快速的再生出大量完整植株的方法。
6、脱分化:指植物离体的器官、组织、细胞在培养条件下,经过多次细胞分裂,而失去原来的分化状态,形成无结构的愈伤组织或细胞团,并使其恢复到胚性细胞状态的过程。
7、再分化:指离体培养的植物组织或细胞可以由脱分化状态再度分化成另一种或几种类型的细胞、组织、器官、甚至是最终再生成完整植株的过程。
8、体细胞无性系变异:在培养阶段发生变异,进而导致再生植株亦发生遗传改变的现象。
9、种质资源的离体保存:是指对离体培养的小植株、器官、组织、细胞或原生质等材料,采用限制、延缓或停止其生长的处理使之保存,在需要时重新恢复其生长,并再生植株的方法。
10、园艺植物的细胞工程:指应用细胞生物学和分子生物学方法,借助工程学的试验方法和技术,在细胞水平上研究改造园艺植物遗传特性和生物学特性,以获得特定的细胞、细胞产品或园艺植物新品种的科学。
11、基因工程:将外源基因通过体外的重组后导入受体细胞内使这个基因能在受体细胞内复制、转录、翻译、表达的系列操作技术总称。
12、限制性内切酶:从细菌中分离提纯的内切酶,可以识别并切开核酸序列特定位点----分子手术刀。
13、基因文库:指将基因组DNA通过限制性内切酶部分酶解后所产生的基因组DNA 片段随机地同相应的载体重组、克隆,所产生的克隆群体代表了基因组DNA的所有序列。
植物原生质体培养名词解释嘿,朋友们!今天咱来唠唠植物原生质体培养这档子事儿。
你说这植物原生质体培养啊,就好比是给植物来一场特别的“变身之旅”。
植物细胞大家都知道吧,就像一个小小的城堡,外面有厚厚的城墙,那就是细胞壁啦。
而原生质体呢,就是去掉了这层城墙之后的精华部分。
想象一下,植物就像是一个有好多宝贝的大箱子,细胞壁就是那箱子的外壳。
咱们把外壳去掉,不就能更直接地接触到里面的宝贝啦?原生质体培养就是这么个道理呀。
这原生质体培养有啥用呢?用处可大啦!它能让我们更好地了解植物的秘密呀。
比如说,我们可以通过培养原生质体,看看植物是怎么生长发育的,就像看着一个小娃娃一点点长大一样。
而且啊,这还能帮我们培育出更好的品种呢!就好像是给植物来个大改造,让它们变得更厉害、更优秀。
培养原生质体可不是一件容易的事儿啊,就跟照顾小婴儿似的,得小心翼翼的。
首先得把细胞壁去掉吧,这可得有专门的技术和方法,可不是随随便便就能做到的。
然后呢,还得给它们提供合适的环境,就像给小婴儿准备温暖的小床和充足的食物一样。
培养的过程中还可能会遇到各种各样的问题呢。
哎呀,有时候就像小孩子会生病一样,原生质体也可能会出点小状况。
这时候就得靠我们这些“植物医生”啦,得赶紧想办法解决问题,让它们能健康成长。
你说这植物原生质体培养难不难?当然难啦!但这也是它有趣的地方呀。
就好像爬山,虽然过程很辛苦,但当你爬到山顶,看到那美丽的风景时,一切都值啦!咱们研究植物原生质体培养,不就是为了让植物世界变得更美好嘛。
让那些花儿开得更艳,那些树长得更高更壮。
这多有意思呀!所以啊,朋友们,可别小瞧了这植物原生质体培养。
它就像是一把神奇的钥匙,能打开植物世界的大门,让我们看到更多的奇妙和美好。
让我们一起加油,去探索这个充满神秘和惊喜的植物原生质体培养的世界吧!怎么样,是不是很有意思呢?。
植物原生质体培养方法原生质体培养办法主要有固体培养法、液体培养法和固一液结合培养法。
另外对于低细胞密度的原生质体培养,还可以采纳饲养层培养法、共培养法和微滴培养法等。
而在原生质体应用于生物转化中时,常常采纳固定化原生质体培养技术举行固定培养。
一、固体平板培养法原生质体的培养办法和对培养条件的要求常与单细胞培养相像。
故原生质体的培养也可根据单细胞的平板办法举行。
首先把原生质体悬浮在液体培养基中(密度为104个/mL左右),与高压灭菌后冷却至42~45℃的培养基(2倍固化剂浓度)用大口刻度吸管快速等量混匀,并快速转移到培养皿中,旋转培养皿,眨眼便凝固,用石蜡膜带密封,暗培养。
培养基层不宜过厚,普通2~3mm。
培养5~7d原生质体开头分裂,3周左右观看细胞植板率。
待形成大细胞团后,转移到去除渗透压调整剂的新奇固体培养基中继代培养。
近年来发觉,用琼脂糖代替琼脂粉可以提高植板率。
特殊是对于那些在琼脂培养基上不易发生分裂的原生质体,用法琼脂糖可能会取得比较好的效果。
低熔点琼脂糖可在30℃左右溶化,与原生质体混合不影响原生质体的活力。
该办法的优点:原生质体分布匀称,有利于分裂;简单获得单细胞株系;可定位观看单个原生质体的生长发育状况。
缺点:原生质体易受热损害;易破裂;原生质体始终处在高渗透压胁迫下,生长发育缓慢,植板率低。
二、液体浅层培养法尽管固体培养有上述优点,但无数讨论者还是喜爱用法液体培养基,这是由于,当用法液体培养基的时候,经过几天培养之后,可用有效的办法把培养基中的渗透压降低;另外,假如原生质体群体中的蜕变组分产生了某些能杀死健康细胞的有毒物质,可以随时更换培养基;再有,经过几天高密度培养之后,可把细胞密度降低,或把目标细胞分别出来。
本办法是用液体培养基举行原生质体培养。
把纯化后的原生质体用液体培养基调节好密度,用吸管转移到培养皿中,石蜡膜带密封,在培养室暗培养。
培养基层厚2~3mm。
培养5~10d细胞开头分裂,此时开头降低培养基中的渗透压。