蛋白酶酶活的测定方法(福林法)
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一、福林—酚试剂发测定蛋白酶活力一)、试剂:1、福林试剂的配制:在2000ML磨口回流装置中加入钨酸钠(Na2WO4·2H2O)100克、钼酸钠(Na2MO4·2H2O)25克,水700ML、85%的磷酸50ML、浓盐酸100ML,温火沸腾回流10h。
再取下回流冷凝器,在通风橱中加入硫酸锂(Li2SO4)50克、水50ML和数滴浓溴水(99.0%),继续沸腾15min,以除去多余的溴,如冷却后仍有绿色,需要再加溴水,再煮沸除去过量的溴。
冷却,加水定容到1000ML。
制得的试剂应呈金黄色,存储在棕色瓶内。
使用时加2倍的蒸馏水稀释。
2、0.55mol 碳酸钠溶液:称取无水碳酸钠(Na2CO3)58.3克,以蒸馏水溶解并定容至1000ml 3、10%三氯乙酸4、0.02M pH7.5 磷酸盐缓冲液:称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)6.02克和磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O)0.5克,以蒸馏水溶解并定容至1000ml。
5、0.5%酪蛋白溶液:准确称取干酪素0.5克,加入0.5N氢氧化钠1ml湿润,再加入少量0.02MpH7.5磷酸盐缓冲液稀释,在水浴中煮沸溶解,定溶至100ml,配制后应即使使用或放入冰箱内保存,否则极易繁殖细菌,引起变质。
(0.5N氢氧化钠100ml:2g氢氧化钠溶于蒸馏水100毫升)。
6、500μg/ml酪氨酸溶液:准确称取在105℃烘箱中烘至恒重的酪氨酸50mg,加入少量0.2N盐酸使溶解,用0.2N盐酸定容至100ml,其浓度为500μg/ml,此溶液配成后也应及时使用或放入冰箱内保存,以免繁殖细菌而变质。
二)、测定方法1、标准曲线的制作按下表配制各种不同浓度的酪氨酸溶液:试管号: 1 2 3 4 5 6蒸馏水(ml): 10 9 8 7 6 5500μg/ml酪氨酸(ml): 0 1 2 3 5 6酪氨酸最终浓度(μg/ml): 0 50 100 150 200 2502、测定步骤:取6支试管按上表编号,分别加入不同浓度酪氨酸1ml,加0.5%酪蛋白溶液2ml,于37℃水浴中反应15分钟,然后加入10%三氯乙酸3ml,离心除去沉淀,取上清夜1ml,加入0.55mol 碳酸钠溶液5ml,再加入福林试剂1ml,于37℃水浴中显色15分钟,以等量蒸馏水代替酪氨酸作空白,在680nm波长比色;重复三次测定,取平均值。
水产动物酶活性测定方法一、分析样品的采取与处理每箱随机各取 3 尾异育银鲫,称重,于冰盘上解剖,取出肠道和肝胰脏,测定肠道长度,剔除脂肪组织,用4C冷却的去离子水冲洗;然后用滤纸轻轻吸去水分,放入一26C冰箱中迅速冷却保存,供测酶活性用。
二、酶液的制备将肝胰脏及肠组织缓慢解冻后,肠道匀分三等份,从前、中、后肠分别取有代表性食靡0.5g,放入离心塑料管中,加4ml, 4C冷却去离子水稀释,4C下离心20min(13, OOOg), 上清液标号分装,并与4C冰箱中冷却保存,24Hr待测。
将肝胰脏及肠道组织用4C去离子水清除肠道内容物后,用滤纸吸去表面水,取样各1.0g。
按样品重量加10倍的4C冷却去离子水在冰浴下匀浆(稀释匀浆液匀浆4min,800rpm 匀浆玻璃管外设冰浴)。
匀浆液在4C下离心20分钟(13, OOOg),上清液标号分装,并于4C 冰箱冷却保存,24Hr 内测定完毕。
酶粉及饲料:取2 . 0克酶粉,先用10倍PH7.0缓冲液溶解,并放在40C水浴中恒温30分钟,过滤留置滤液待测。
测定前再稀释10倍,20倍,100倍即可。
取2.0克饲料,加PH7.0缓冲液20ml溶解,并放在40C水浴中恒温30分钟,过滤留置滤液待测。
三、酶活性测定1. 蛋白酶测定:前、中、后肠,肝胰脏。
方法:福林—酚试剂法1.1 原理:蛋白酶从变性的酪蛋白中分解出可溶于三氯乙酸(TCA )的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸、苯丙氨酸等) ,这些氨基酸可用福林试剂使之发色(蓝色反应),用分光光度计测定。
1.2 蛋白酶活性单位:1克食靡或组织在30C, PH在7.0的条件下,每分钟水解酪蛋白产生1微克酪氨酸的酶量为 1 个酶活力单位。
1.3 试剂1. 福林试剂(已配)2. 0.4M 碳酸钠溶液:取无水碳酸钠(Na2CO3 )42.4g 用水溶解和定容至1,000ml,存放与具胶塞的试剂瓶中。
3. 0.1M三氯醋酸(TCA ):用小烧杯称取65.4g三氯醋酸,加水溶解后定容为1 , 000ml 。
实验四、蛋白酶酶活力的测定一、原理以酪蛋白为反应底物,令蛋白酶在其最适宜条件下反应一定时间,用三氯乙酸终止反应后过滤或离心得上清液,用Folin比色法测上清液中蛋白酶解物的浓度,计算蛋白酶活力。
蛋白酶活力定义:在一定的条件下,每分钟水解酪蛋白生成与1μg酪氨酸相当的三氯醋酸可溶物所需的木瓜蛋白酶的量,为1个酶活力单位(u)。
二、材料、仪器与试剂(一)材料:木瓜蛋白酶(二)仪器:可见-紫外分光光度计、水浴锅、天平、具塞刻度试管(10、15ml)、漏斗、滤纸、试管架,容量瓶、移液管(1、10ml)、烧杯(25ml)、玻璃棒。
(三)试剂:1福林试剂(Folin试剂)市场购买的Folin试剂。
此溶液使用时加2倍蒸馏水稀释,即成已稀释3倍的福林试剂。
2、中性稀释液-pH7.2磷酸盐缓冲液称取磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O)31.2g,定容至1000mL,即成0.2mol/L溶液(A液)。
称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)71.63g,定容至1000mL,即成0.2mol/L 溶液(B液)。
取A 液28mL 和B 液72mL,再用蒸馏水稀释1倍,即成0.1mol pH7.2的磷酸盐缓冲液。
3、酪蛋白溶液2g恒重的酪蛋白,用0.5mol/LNaOH溶液润湿后加入80ml pH7.2磷酸盐缓冲液,沸水浴溶解,冷却后,用1 mol/L盐酸调至pH 7.0,再用磷酸盐缓冲液定容至100ml,得浓度为2%的酪蛋白溶液。
临用现配。
4、三氯醋酸溶液称取三氯乙酸(CCL3COOH)65.4g,定容至1000mL,得0.4mol/L三氯乙酸(TCA)溶液5、酪氨酸标准溶液精确称取精确称取在105℃烘箱中烘至恒重的酪氨酸0.1000g,逐步加入6mL 1N盐酸使溶解,用0.2N盐酸定容至100mL,其浓度为1000μg/mL,再用水稀释5倍,得到200μg/mL的酪氨酸标准溶液。
取200μg/mL的标准酪氨酸溶液,配成不同浓度的溶液(0、20、40、60、80、100μg/mL)6、样品溶液称取木瓜蛋白酶0.100g, 置于研钵中,加入相应的缓冲液定容至50mL,得到稀释500倍的酶液(当天配制、稀释)。
实验四、蛋白酶活力的测定1.实验目的掌握用Folin-酚法测定蛋白酶活力的方法,与Azocasein(偶氮酪蛋白)法作为比较。
2.实验原理蛋白酶在一定的温度和pH下,水解酪素底物产生含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸),在碱性条件下,将福林试剂还原,生成钼蓝和钨蓝,其颜色的深浅与酚基氨基酸含量成正比,通过在660nm测定其吸光度,可得到酶解产生的酚基氨基酸的量,计算出蛋白酶活力,以此代表蛋白酶的总酶活力。
酶活单位定义:在37℃、相应的pH条件下,在1min内水解酪蛋白底物,产生相当于1µg酚类化合物(由酪氨酸等同物表示)的酶量,为1个酶活单位。
3.主要仪器和试剂试剂:0.1mg/mL L-酪氨酸标准贮备溶液、0.55mol/LNa2CO3、福林试剂、Casein溶液、TCA 溶液仪器设备:恒温水浴锅、分光光度计、pH计,分析天平、秒表。
4.实验步骤(1)标准曲线绘制取三支试管(一支空白,两支样品管),分别向三支试管中准确加入5mLcasein基质液,将三支管放入37℃水浴中预热10min分别向两支样品管中加入1mL稀释酶液,准确计时,反应30min,取出迅速加入5mLTCA;空白管先加TCA预热30min再加稀释酶液,摇匀。
将三支试管继续置于37℃水浴中放置30min,取出,迅速冷却至室温。
三支试管中反应液用滤纸过滤。
另取三支试管(一支空白。
两支样品管),分别吸取上述相应的滤除液2mL,加入碳酸钠溶液5mL,稀Folin试剂1mL,摇匀,在37℃水浴中放置30min,取出,迅速冷却至室温。
以空白管为对照调仪器零点,在分光光度计波长660nm下,用比色皿分别测二支样品管中酶液的吸光度,取平均值,通过标准曲线求出生成的酪氨酸的含量。
5.数据处理。
蛋白酶酶活的测定方法(福林法)1. 酶单位定义: 1g固体酶粉(或1mL液体酶),在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1ug酪氨酸为一个酶活力单位,以u /g(u/mL)表示。
2.原理蛋白酶在一定温度和pH值条件下,水解酪素底物,产生含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生成钼蓝和钨蓝,用分光光度法测定,计算其酶活力。
3.试剂和溶液3.1福林试剂的准备于2000mL磨口回流装置中加入钨酸钠(Na2WO4.2H2O)100g,钼酸钠(Na2MoO4.2H2O)25g,水700mL、85%磷酸50mL、浓盐酸100mL,小火沸腾回流10h,取下回流冷却器,在通风橱中加入硫酸锂(LiSO4)50g,水50mL和数滴浓溴水(99%),再微沸15min,以除去多余的溴(冷却后仍有绿色需要再加入溴水,再煮沸除去过量的溴),冷却,加水定容至1000mL,混匀,过滤。
制得得试剂应呈金黄色,贮存于棕色瓶内。
使用溶液:一份福林试剂与二份水混合,摇匀。
3.2碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4mol/L称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.3三氯乙酸c(CCl3.COOH)=0.4mol/L称取三氯乙酸65.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L按GB601配制。
3.5 盐酸溶液c(HCl)=1mol/L及0.1 mol/L按GB601配制。
3.6 缓冲溶液a.磷酸缓冲液(pH=7.5),适用于中性蛋白酶。
称取磷酸氢二钠(Na2HPO4.12H2O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH2PO4. 2H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。
b.乳酸缓冲液(pH=3.0),适用于酸性蛋白酶甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000mL。
乙液称取乳酸钠(70%)16g,加水溶解并定容至1000mL。
蛋⽩酶酶活的测定⽅法(福林法)蛋⽩酶酶活的测定⽅法(福林法)1. 酶单位定义: 1g固体酶粉(或1mL液体酶),在⼀定温度和pH值条件下,1min⽔解酪素产⽣1ug酪氨酸为⼀个酶活⼒单位,以u /g(u/mL)表⽰。
2.原理蛋⽩酶在⼀定温度和pH值条件下,⽔解酪素底物,产⽣含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、⾊氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,⽣成钼蓝和钨蓝,⽤分光光度法测定,计算其酶活⼒。
3.试剂和溶液3.1福林试剂的准备于2000mL磨⼝回流装置中加⼊钨酸钠(Na2WO4.2H2O)100g,钼酸钠(Na2MoO4.2H2O)25g,⽔700mL、85%磷酸50mL、浓盐酸100mL,⼩⽕沸腾回流10h,取下回流冷却器,在通风橱中加⼊硫酸锂(LiSO4)50g,⽔50mL和数滴浓溴⽔(99%),再微沸15min,以除去多余的溴(冷却后仍有绿⾊需要再加⼊溴⽔,再煮沸除去过量的溴),冷却,加⽔定容⾄1000mL,混匀,过滤。
制得得试剂应呈⾦黄⾊,贮存于棕⾊瓶内。
使⽤溶液:⼀份福林试剂与⼆份⽔混合,摇匀。
3.2碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4mol/L称取⽆⽔碳酸钠(Na2CO3)42.4g,加⽔溶解并定容⾄1000mL。
3.3三氯⼄酸c(CCl3.COOH)=0.4mol/L称取三氯⼄酸65.4g,加⽔溶解并定容⾄1000mL。
3.4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L按GB601配制。
3.5 盐酸溶液c(HCl)=1mol/L及0.1 mol/L按GB601配制。
3.6 缓冲溶液a.磷酸缓冲液(pH=7.5),适⽤于中性蛋⽩酶。
称取磷酸氢⼆钠(Na2HPO4.12H2O)6.02g和磷酸⼆氢钠(NaH2PO4. 2H2O)0.5g,加⽔溶解并定容⾄1000mL。
b.乳酸缓冲液(pH=3.0),适⽤于酸性蛋⽩酶甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加⽔溶解并定容⾄1000mL。
酸性蛋白酶酶活测定日期:2006-04-16 23:12:50________________________________________1. 定义1g固体酶粉在40℃和pH值3.0条件下,1min水解酪素产生1微克酪氨酸的酶量为1个酶活力单位,以u/g表示。
2 原理蛋白酶在一定的温度和pH条件下,水解底物酪素产生含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生成钼蓝与钨蓝,用分光光度计测定,计算其酶活力。
3.试剂和溶液3.1 1 mol/L及0.1mol/L盐酸(HCl)溶液取浓盐酸85ml,加水稀释并定容至1000ml,即为1 mol/L盐酸溶液;取100ml 1 mol/L盐酸溶液,定容1000ml,即为0.1mol/L盐酸溶液。
3.2 100mg/ml L-酪氨酸标准液精确称取预先于105℃干燥至恒重的L-酪氨酸0.1000g,精确至0.0001g。
用1 mol/L盐酸60ml溶解后定容至100ml,即为1mg/ml酪氨酸标准溶液。
吸取1mg/ml酪氨酸标准溶液10.0ml,用0.1mol/L盐酸定容至100ml,即得到100mg/ml L-酪氨酸标准液。
3.3 0.4mol/L碳酸钠(Na2CO3)溶液称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,用蒸馏水溶解并定容至1000ml。
3.4 福林(Folin) 试剂于2000ml磨口回流装置中加入钨酸钠(Na2WO4•2H2O)100g、钼酸钠(Na2MoO4•2H2O)25g、蒸馏水700ml、85%磷酸50ml、浓盐酸100ml。
小火沸腾回流10小时,取下回流冷却器,在通风厨中加入硫酸锂(Li2SO4)50g,加蒸馏水50ml和数滴浓(99%)溴水,再微沸15min,以除去多余的溴(冷后仍有绿色需再加溴水,再煮沸除去过量的溴),冷却后加蒸馏水定容至1000ml。
混匀、过滤。
试剂应呈金黄色,贮存于棕色瓶内。
蛋白酶酶活的测定方法(福林法)
1. 酶单位定义: 1g固体酶粉(或1mL液体酶),在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1ug酪氨酸为一个酶活力单位,以u /g(u/mL)表示。
2.原理
蛋白酶在一定温度和pH值条件下,水解酪素底物,产生含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生成钼蓝和钨蓝,用分光光度法测定,计算其酶活力。
3.试剂和溶液
3.1福林试剂的准备
于2000mL磨口回流装置中加入钨酸钠(Na2WO4.2H2O)100g,钼酸钠(Na2MoO4.2H2O)25g,水700mL、85%磷酸50mL、浓盐酸100mL,小火沸腾回流10h,取下回流冷却器,在通风橱中加入硫酸锂(LiSO4)50g,水50mL和数滴浓溴水(99%),再微沸15min,以除去多余的溴(冷却后仍有绿色需要再加入溴水,再煮沸除去过量的溴),冷却,加水定容至1000mL,混匀,过滤。
制得得试剂应呈金黄色,贮存于棕色瓶内。
使用溶液:一份福林试剂与二份水混合,摇匀。
3.2碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4mol/L
称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.3三氯乙酸c(CCl3.COOH)=0.4mol/L
称取三氯乙酸65.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L
按GB601配制。
3.5 盐酸溶液c(HCl)=1mol/L及0.1 mol/L
按GB601配制。
3.6 缓冲溶液
a.磷酸缓冲液(pH=7.5),适用于中性蛋白酶。
称取磷酸氢二钠(Na2HPO4.12H2O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH2PO4. 2H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。
b.乳酸缓冲液(pH=3.0),适用于酸性蛋白酶
甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000mL。
乙液称取乳酸钠(70%)16g,加水溶解并定容至1000mL。
使用溶液取甲液8mL,乙液1mL,混匀,稀释一倍,即成0.05mol/l乳酸缓冲溶液。
c.硼酸缓冲溶液(pH=10.5),适用于碱性蛋白酶。
甲液称取硼酸钠(硼砂)19.08g,加水溶解并定容至1000mL。
乙液称取氢氧化钠4.0g,加水溶解并定容至1000mL。
使用溶液取甲液500mL,乙液400mL,混匀,用水稀释至1000mL。
3.7 10g/l酪素溶液
称取酪素10.000g,精确至0.001g,用少量0.5mol/l氢氧化钠溶液(若酸性蛋白酶则用
浓乳酸2~3滴)湿润后,加入适量得各种适宜pH值的缓冲溶液约80mL,在沸水浴中边加热边搅拌,直至完全溶解,冷却后,转入1000mL容量瓶,用适宜的pH值的缓冲溶液稀释至刻度。
此溶液在冰箱内贮存,有效期为三天。
3.8 100μg/mL L-酪氨酸标准溶液
a.称取预先于105℃干燥至恒重的L-酪氨酸0.1000g,准确至0.0002g,用1 mol/L盐酸60mL 溶解后定容至100mL,即为1mg/mL酪氨酸标准溶液。
b.吸取1mg/mL酪氨酸标准溶液10.00mL,用0.1mol/l盐酸定容至100mL,即得100μg/mL L-酪氨酸标准溶液。
4仪器和设备
4.1 恒温水浴40℃±0.2℃。
4.2分光光度计应符合GB9721的规定。
5 分析步骤
5.1 标准曲线的绘制
a.L-酪氨酸标准溶液:按表A3配制。
表A3
管号酪氨酸标准溶液的浓度
μg/mL
取100μg/mL酪氨酸标准溶
液的体积mL
取水的体积
mL
0 0 0 10
1 10 1 9
2 20 2 8
3 30 3 7
4 40 4 6
5 50 5 5
b.分别取上述溶液各1.00mL(须做平行试验),各加0.4mol/l碳酸钠溶液5.0mL,福林试剂使用液1.00mL,置于40℃±0.2℃水浴中显色20min,用分光光度计于波长680nm,10mm 比色皿,以不含酪氨酸的0管为空白,分别测定其吸光度,以吸光度A为纵坐标,酪氨酸的浓度C为横坐标,绘制标准曲线(曲线应通过零点)。
根据作图或用回归方程,计算出当吸光度为1时的酪氨酸的量(μg),既为吸光度常数K 值。
其K值应在95~100范围内。
5.2 测定
(1)待测酶液的制备
a.称取酶粉1~2g,精确至0.0002g(或取液体酶1.00mL),用少量该酶的缓冲液溶解,并用玻璃棒搅拌捣研,将上清液小心倾入容量瓶中,沉渣部分再加入少量缓冲液,如此捣研3~4次,最后全部移入容量瓶中,用缓冲溶液定容至刻度,摇匀。
通过四层纱布过滤,滤液根据酶活力再用一次缓冲液稀释至适当浓度,供测试用(稀释至被测试液吸光值在0.25~0.40范围内)。
b.酶粉测定时,稀释倍数参考表4(液体酶液可参照表4稀释)。
表4
酶活单位总倍
数
第一次稀释第二次稀释
2万2000 2g—200mL(100倍)5mL—100mL(20倍)3万2500 2g—500mL(250倍)5mL—50mL(10倍)4万4000 2g—200mL(100倍)5mL—200mL(40倍)
5万
8、10万5000
10000
2g—500mL(250倍)
2g—500mL(250倍)
5mL—100mL(20倍)
5mL—200mL(40倍)
(2)测定
a 先将酪素溶液放入40℃±0.2℃恒温水浴中,预热5min。
b 按下列程序操作
于660nm波长,用10mm比色皿测其吸光度
c. 1.398和166蛋白酶,除反应与显色温度为30±0.2℃外,其他操作同5.2,标准曲线也作同样处理。
5.3 计算X=A×K×4/10×n=2/5×A×K×n
式中,X—样品的酶活力,u /g(u/mL);
A—样品平行试验的平均吸光度;
K—吸光常数(K=97.09实验室测定值)
4—反应试剂的总体积,mL;
10—反应时间10min,以1min计;
n—稀释倍数
5.4 结果的允许差
平行试验相对误差不得超过3%。
需要准备的:麸皮,面粉,水,纱布,福林试剂,250ml三角瓶,每组10-15支试管,分光光度计,三氯乙酸,磷酸缓冲液或水,碳酸钠溶液,酪素,已传代好的试管斜面。
最好能镜检一下真菌菌丝的形态。