激光共聚焦显微镜的原理与应用范围讲解.doc
- 格式:doc
- 大小:24.00 KB
- 文档页数:9
简述激光共聚焦显微镜的工作原理激光共聚焦显微镜(Laser Scanning Confocal Microscope,简称LSCM)是一种高分辨率的显微镜,它具有优异的成像能力和深度探测能力。
它的工作原理基于激光光源和共聚焦技术,可以对样品进行非破坏性的三维成像和表面拓扑分析。
本文将简要介绍激光共聚焦显微镜的工作原理。
1. 激光光源激光共聚焦显微镜使用一束强度稳定、单色、相干性好的激光光源。
常用的激光光源包括氩离子激光器、氦氖激光器和二极管激光器等。
激光光源通过准直器和聚焦镜系统聚焦成一束准直的、直径极小的激光光斑。
2. 共聚焦技术激光共聚焦显微镜采用共聚焦技术,即通过聚焦光斑和探测光斑的重叠来实现高分辨率成像。
聚焦光斑从样品的一个点与探测光斑重叠之后,仅有从这个点散射回来的光能够通过探测光斑,其他来自样品其他区域的光则被阻隔掉。
这样可以消除样品其他区域的散射光对图像质量的影响。
3. 共焦平面激光共聚焦显微镜通过调节聚焦镜的位置,可以获得不同深度的共焦平面。
共焦平面是指光路中聚焦光斑和探测光斑达到最小的位置。
在共焦平面之上和之下,成像出的图像将会出现模糊和散焦现象。
调节聚焦镜的位置,可以实现在样品不同深度层面进行三维成像。
4. 探测和成像聚焦光斑扫描样品上的一个区域,样品上的荧光探针或反射光信号通过物镜收集到探测器上。
激光共聚焦显微镜常用荧光探针来标记样品的特定结构或分子,使其发出荧光信号,进而获得一幅高对比度的荧光图像。
探测器接收到的信号经过放大、滤波和转换等处理后,最终形成图像。
5. 高分辨率成像激光共聚焦显微镜具有高分辨率的成像能力。
其分辨率可以达到光学显微镜的两倍,约为200纳米级别。
激光光源的单色性和相干性,以及共聚焦技术的应用,使得激光共聚焦显微镜能够获得更清晰、更准确的显微图像。
总结起来,激光共聚焦显微镜利用激光光源以及共聚焦技术,能够实现高分辨率的三维显微成像。
通过调节聚焦镜的位置,可以获得不同深度层面的图像,更好地观察样品的内部结构。
激光扫描共聚焦显微镜的原理和应用一、激光扫描共聚焦显微镜的原理传统的光学显微镜使用的是场光源,标本上每一点的图像都会受到邻近点的衍射或散射光的干扰;激光扫描共焦显微镜(Laser Scanning Confocal Microscope,LSCM)采用点光源照射样本,在焦平面上形成一个轮廓分明的小的光点,该点被照射后发出的荧光被物镜搜集,并沿原照射光路回送到由双色镜构成的分光器。
分光器将荧光直接送到探测器。
光源和探测器前方都各有一个针孔,分别称为照明针孔和探测针孔。
照明针孔与探测针孔相对于物镜焦平面是共轭的,焦平面上的点同时聚焦于照明针孔和发射针孔,焦平面以外的点被挡在探测针孔之外不能成像,这样得到的共聚焦图像是标本的光学切面,避免了非焦平面上杂散光线的干扰,克服了普通显微镜图像模糊的缺点,因此能得到整个焦平面上清晰的共聚焦图像。
原理图二、激光扫描共聚焦显微镜组成特点LSCM由显微镜光学系统,激光光源,扫描装置和检测系统构成,整套仪器由计算机控制,各部件之间的操作切换都可在计算机操作平台界面中方便灵活地进行。
显微镜是LSCM的主要组件,它关系到系统的成像质量。
通常有倒置和正置两种形式,前者在切片、活细胞检测等生物医学应用中使用更广泛。
三、激光扫描共聚焦显微镜的应用(一)细胞的三维重建普通荧光显微镜分辨率低,显示的图像结构为多层面的图像叠加,结构不够清晰。
LSCM能以0.1μm的步距沿轴向对细胞进行分层扫描,得到一组光学切片,经A/D转换后作为二维数组贮存。
这些数组通过计算机进行不同的三维重建算法,可作单色或双色图像处理,组合成细胞真实的三维结构。
旋转不同角度可观察各侧面的表面形态,也可从不同的断面观察细胞内部结构,测量细胞的长宽高、体积和断层面积等形态学参数。
通过模拟荧光处理算法,可以产生在不同照明角度形成的阴影效果,突出立体感。
通过角度旋转和细胞位置变化可产生三维动画效果。
LSCM的三维重建广泛用于各类细胞骨架和形态学分析、染色体分析、细胞程序化死亡的观察、细胞内细胞质和细胞器的结构变化的分析和探测等方面。
激光扫描共聚焦显微镜原理及应用激光扫描共聚焦显微镜(Laser Scanning Confocal Microscope)是一种高分辨率的显微镜技术。
它结合了光学和计算机技术,通过使用激光扫描技术将样品的逐点扫描成像,可以获取到非常清晰的三维图像。
激光扫描共聚焦显微镜的原理是基于共焦聚焦技术。
它使用一束激光光束照射在样品表面上,并收集激光光束的反射或荧光信号。
激光光束通过一个探测镜来聚焦在样品表面上的一个非常小的点上,该点称为焦点。
通过扫描样品,系统可以获取到完整的样品图像。
1.高分辨率:激光扫描共聚焦显微镜可以获得非常高的分辨率。
由于只有焦点附近的信息被收集,所以可以消除反射和散射带来的干扰,提高图像的清晰度和分辨率。
2.三维成像:激光扫描共聚焦显微镜可以进行多个焦面的扫描,从而获取到三维样品图像。
这使得可以观察样品的内部结构和深层次的信息。
3.高灵敏度:激光扫描共聚焦显微镜可以检测到样品的荧光信号。
这在生物医学领域中非常有用,可以用于观察细胞和组织中的荧光标记物。
4.实时观察:由于激光扫描共聚焦显微镜具有快速扫描和成像的能力,因此可以进行实时观察。
这对于研究动态过程和实时观察样品的变化非常有用。
在生物医学研究中,激光扫描共聚焦显微镜被广泛应用于观察和研究活细胞及组织的结构和功能。
它可以用于观察和研究细胞器的位置和运动、细胞的分裂过程、病理细胞的形态学变化等。
在材料科学研究中,激光扫描共聚焦显微镜可以用于观察和研究材料的结构和性质。
它可以帮助研究人员观察各种材料的微观结构、表面形貌以及材料中的缺陷和分子分布等。
在纳米技术研究中,激光扫描共聚焦显微镜可以用于观察和研究纳米材料的形态和结构。
它可以帮助研究人员观察纳米粒子的形状、大小和分布,研究纳米材料的组装过程和性质等。
总之,激光扫描共聚焦显微镜是一种非常强大并且在科学研究中得到广泛应用的显微镜技术。
它通过激光聚焦和扫描技术,可以获得高分辨率、三维成像和实时观察的样品图像,并且在生物医学研究、材料科学和纳米技术等领域有着重要的应用价值。
激光共聚焦显微镜要点解析(一)激光共聚焦显微镜是80年代发展起来的一项划时代意义的高科技新产品,它是在荧光显微镜成像基础上加装了激光扫描装置,利用计算机进行图象处理,使用紫外或可见光激发荧光探针,从而得到细胞或组织内部微细结构的荧光图象,在亚细胞水平上观察例如Ca2+,pH值,膜电位等生理信号及细胞形态的变化,成为形态学,分子细胞生物学,神经科学,药理学,遗传学等领域中新一代强有力的研究工具。
一、基本原理和功能1.1 基本原理传统的光学显微镜使用的是场光源,标本上每一点的图象都会受到邻近点的衍射光或散射光的干扰;激光共聚焦显微镜利用激光束经照明针孔形成点光源对标本内焦平面上的每一点扫描,标本上的被照射点,在探测针孔处成像,由探测针孔后的光电倍增管(PMT)或冷电耦器件(cCCD)逐点或逐线接收,迅速在计算机监视器屏幕上形成荧光图象。
照明针孔与探测针孔相对于物镜焦平面是共轭的,焦平面上的点同时聚焦于照明针孔和发射针孔,焦平面以外的点不会在探测针孔处成像,这样得到的共聚焦图象是标本的光学横断面,克服了普通显微镜图象模糊的缺点。
1.2 激光共聚焦显微成像仪的图像处理功能1)“细胞CT”功能通过狭缝扫描技术将我们对细胞的研究由多层迭加影像推进到真正的平面影像水平,使图像更加清晰,从而为分子细胞生物学的深入研究拓宽了视野。
2)三维成像与细胞内部结构图像相结合的功能激光共聚焦显微成像仪可以将断层图像与三维重建图像有机的结合起来,不但能揭示细胞内部的结构和提供细胞的长、宽、厚、断层面积、细胞体积等参数,而且可以给人以三维立体的概念。
例如:可以使细胞旋转起来从而能随意观察细胞各个侧面的表面结构。
3)将形态学、生理学与分子细胞生物学的研究相互结合利用激光共聚集显微成像仪不但可以观察细胞形态的动态变化,而且用适当的荧光探针可以观察细胞内部的生物化学变化。
如细胞内游离Ca2+、pH值及其它细胞内离子的实时测定。
荧光原位杂交的杂交点观测和定量分析。
激光共聚焦显微镜系统的原理和应用激光扫描共聚焦显微镜是二十世纪80年代发展起来的一项具有划时代的高科技产品,它是在荧光显微镜成像基础上加装了激光扫描装置,利用计算机进行图像处理,把光学成像的分辨率提高了30%--40%,使用紫外或可见光激发荧光探针,从而得到细胞或组织内部微细结构的荧光图像,在亚细胞水平上观察诸如Ca2+ 、PH值,膜电位等生理信号及细胞形态的变化,成为形态学,分子生物学,神经科学,药理学,遗传学等领域中新一代强有力的研究工具。
激光共聚焦成像系统能够用于观察各种染色、非染色和荧光标记的组织和细胞等,观察研究组织切片,细胞活体的生长发育特征,研究测定细胞内物质运输和能量转换。
能够进行活体细胞中离子和PH值变化研究(RATIO),神经递质研究,微分干涉及荧光的断层扫描,多重荧光的断层扫描及重叠,荧光光谱分析荧光各项指标定量分析荧光样品的时间延迟扫描及动态构件组织与细胞的三维动态结构构件,荧光共振能量的转移的分析,荧光原位杂交研究(FISH),细胞骨架研究,基因定位研究,原位实时PCR产物分析,荧光漂白恢复研究(FRAP),胞间通讯研究,蛋白质间研究,膜电位与膜流动性等研究,完成图像分析和三维重建等分析。
一.激光共聚焦显微镜系统应用领域:涉及医学、动植物科研、生物化学、细菌学、细胞生物学、组织胚胎、食品科学、遗传、药理、生理、光学、病理、植物学、神经科学、海洋生物学、材料学、电子科学、力学、石油地质学、矿产学。
二.基本原理传统的光学显微镜使用的是场光源,标本上每一点的图像都会受到邻近点的衍射或散射光的干扰;激光扫描共聚焦显微镜利用激光束经照明针孔形成点光源对标本内焦平面的每一点扫描,标本上的被照射点,在探测针孔处成像,由探测针孔后的光点倍增管(PMT)或冷电耦器件(cCCD)逐点或逐线接收,迅速在计算机监视器屏幕上形成荧光图像。
照明针孔与探测针孔相对于物镜焦平面是共轭的,焦平面上的点同时聚焦于照明针孔和发射针孔,焦平面以外的点不会在探测针孔处成像,这样得到的共聚焦图像是标本的光学横断面,克服了普通显微镜图像模糊的缺点。
激光共聚焦显微镜的原理和应用1. 引言激光共聚焦显微镜(Laser Scanning Confocal Microscope,简称LSCM)是一种高分辨率的显微镜技术,已经广泛应用于生物学、医学和材料科学等领域。
本文将介绍激光共聚焦显微镜的原理和应用。
2. 原理激光共聚焦显微镜通过激光束的共聚焦和通过物体的反射或荧光发射来实现图像的采集。
2.1 激光共聚焦•通过透镜来聚焦激光束•聚焦点在样本表面上产生光斑•样本反射或发射出来的光再次通过透镜,聚焦到探测器上•透镜的位置可以移动,可以扫描整个样本2.2 反射和荧光信号的采集•激光束照射到样本上,经过反射或荧光发射•光学系统收集并聚焦这些发射的光•通过探测器记录下发射光的强度和位置•通过移动透镜和探测器,可以获得样本的三维图像3. 应用激光共聚焦显微镜在许多领域都得到了广泛的应用,以下是其中的几个典型应用。
3.1 细胞生物学•可以观察细胞的形态和结构•可以追踪细胞内的生物分子运动•可以观察细胞的生物化学过程3.2 分子生物学•可以观察和定量细胞器的分布和聚集情况•可以观察和测量分子的扩散速率•可以研究蛋白质的合成和代谢过程3.3 医学研究•可以观察和诊断组织和器官的病理变化•可以研究疾病的发生和发展机制•可以评估治疗方法的有效性和副作用3.4 材料科学•可以观察材料的微观结构和表面形貌•可以研究材料的热力学和力学性质•可以评估材料的耐久性和可靠性4. 总结激光共聚焦显微镜是一种高分辨率的显微镜技术,通过激光束的共聚焦和物体的反射或荧光发射来实现图像的采集。
它在细胞生物学、分子生物学、医学研究和材料科学等领域都有着广泛的应用。
利用激光共聚焦显微镜,科研人员可以观察和研究生物和材料的微观结构、功能和相互作用,为科学研究和应用提供了强大的工具。
激光共聚焦显微镜的原理与应用范围激光扫描共聚焦显微镜是采用激光作为光源,在传统光学显微镜基础上采用共轭聚焦原理和装置,并利用计算机对所观察的对象进行数字图象处理的一套观察、分析和输出系统。
把光学成像的分辨率提高了30%~40%,使用紫外或可见光激发荧光探针,从而得到细胞或组织内部微细结构的荧光图像,在亚细胞水平上观察生理信号及细胞形态的变化,成为形态学,分子生物学,神经科学,药理学,遗传学等领域中新一代的研究工具。
1激光扫描共聚焦显微镜(LSCM)的原理从基本原理上讲,共聚焦显微镜是一种现代化的光学显微镜,它对普通光镜从技术上作了以下几点改进:1.1用激光做光源因为激光的单色性非常好,光源波束的波长相同,从根本上消除了色差。
1.2采用共聚焦技术在物镜的焦平面上放置了一个当中带有小孔的挡板,将焦平面以外的杂散光挡住,消除了球差;并进一步消除了色差1.3采用点扫描技术将样品分解成二维或三维空间上的无数点,用十分细小的激光束(点光源)逐点逐行扫描成像,再通过微机组合成一个整体平面的或立体的像。
而传统的光镜是在场光源下一次成像的,标本上每一点的图像都会受到相邻点的衍射光和散射光的干扰。
这两种图像的清晰度和精密度是无法相比的。
1.4用计算机采集和处理光信号,并利用光电倍增管放大信号图在共聚焦显微镜中,计算机代替了人眼或照相机进行观察、摄像,得到的图像是数字化的,可以在电脑中进行处理,再一次提高图像的清晰度。
而且利用了光电倍增管,可以将很微弱的信号放大,灵敏度大大提高。
由于综合利用了以上技术。
可以说LSCM是显微镜制作技术、光电技术、计算机技术的完美结合,是现代技术发展的必然产物。
2LSCM在生物医学研究中的应用目前,一台配置完备的LSCM在功能上已经完全能够取代以往的任何一种光学显微镜,它相当于多种制作精良的常用光学显微镜的有机组合,如倒置光学显微镜、紫外线显微镜、荧光显微镜、暗视野显微镜、相差显微镜(PH)、微分干涉差显微镜(DIC)等,因此被称为万能显微镜,通过它所得到的精细图像可使其他的显微镜图像无比逊色。
激光共聚焦扫描显微镜成像的基本原理激光共聚焦显微镜(LCM)是近年来发展起来的一种高分辨率荧光显微成像技术。
它通过将样品置于激光束的焦点处,利用高灵敏度的探测器记录样品发出荧光信号,从而实现对样品内部结构的高分辨率成像。
本文将详细介绍LCM的基本原理、成像途径、成像原理及优缺点等方面的内容。
一、激光共聚焦显微镜的基本原理激光共聚焦显微镜基于利用激光束在三维空间内聚焦成极小的点状光斑,对样品进行扫描成像的技术原理。
在聚焦点位置,通过聚焦光斑的极高光密度,激活样品中的荧光染料,荧光染料则针对特定的结构在荧光信号波长处发出荧光信号,被高灵敏度荧光探测器探测并记录下来,然后通过计算机处理、分析和重建,生成高质量的高分辨率图像。
与普通显微镜最大的区别在于,普通显微镜由于透过整个样品并以相位差效应成像,而激光共聚焦显微镜由于仅仅聚焦于样品表面的非常窄的一点,信号只能从聚焦点的附近探测到,而且该点在扫描过程中会不断变换位置。
换言之,成像并不是透过整个样品实现,而是在样品上面扫描得到,并聚焦于单个点上。
对于毫米量级的样品,其层面精度可以达到25nm。
二、激光共聚焦显微镜成像途径激光共聚焦显微镜的成像途径目前有两种,分别为单光子激发型和双光子激发型。
1、单光子激发型单光子成像模式是利用激光束在荧光染料上发生的单光子激发效应进行成像的一种方式。
在单光子激发光下,荧光染料的各自精细结构会发生辐射跃迁产生能量并发射荧光,同时发射时间对荧光能量的传递产生影响,可以通过荧光转移速率反映。
荧光束在被激活后,将以光子流的形式反射回来,被共聚焦显微镜探测并捕捉。
2、双光子激发型双光子成像模式使用了两次光子激发效应,产生高到对比度的图像,并最小化了样品在激发时所受的损伤输出功率。
双光子成像所需条件包括至少两个光子激发、空间和时间上的集中在样品特定区域。
在这种情况下,激光光束相互作用,将样品中转运载分子激发成放射的谐振态发生荧光发射。
激光共聚焦显微镜的原理与应用范围讲解激光共聚焦显微镜(Confocal laser scanning microscope, CLSM)是一种高分辨率的显微镜技术,它利用激光束进行点扫描,将样品的不同深度处的信息获取并合成,从而实现三维图像的获取。
本文将对激光共聚焦显微镜的原理和应用范围进行详细介绍。
首先是激光扫描。
激光束通过空气透镜和扫描镜反射,聚焦在样品上。
扫描镜以一个固定的频率和幅度来快速振动,使得激光束扫描在样品表面,形成二维扫描像。
其次是共焦原理。
共焦显微镜利用一个空孔径光阑(pinhole)来调整激光束的直径,只允许经过焦平面的光通过,其他散射光被阻挡。
这样可以消除在光路上不同深度处的散射光干扰,提高图像的纵向分辨率。
同时,由于只有通过焦平面的光才能进入探测器,所以可以采集不同深度处的信息,合成三维图像。
最后是探测技术。
通常激光共聚焦显微镜会配备一个光电探测器,并通过探测器来收集散射和荧光光信号。
散射光可以用来形成反射式图像,而荧光光信号则可以用来观察标记了特定分子或细胞的样品。
通过调整激光的波长和探测器的设置,可以实现不同特定分子和结构的成像。
1.细胞和组织成像:激光共聚焦显微镜可以提供高分辨率的细胞和组织成像。
通过荧光标记特定蛋白质或细胞结构,可以观察和研究细胞内部的生物过程和结构。
2.神经科学:激光共聚焦显微镜在神经科学中的应用得到了广泛关注。
可以观察和追踪神经元的形态和功能,研究神经网络的连接和活动,揭示神经系统的工作机制。
3.生物医学研究:激光共聚焦显微镜在生物医学研究中也扮演着重要的角色。
可以用于癌症细胞的培养和观察,研究癌症的发生和发展机制。
还可以用于研究哺乳动物早期发育过程中的细胞分化和组织形态的变化。
4.材料科学:激光共聚焦显微镜可用于对材料的表面和内部结构进行观察和分析。
可以研究纳米材料的形貌和组成,观察材料的晶体结构和缺陷。
总之,激光共聚焦显微镜是一种重要的显微镜技术,具有高分辨率、三维成像和可观察特定分子和结构的能力。
激光共聚焦显微镜的原理与应用范围激光共聚焦显微镜(Laser Scanning Confocal Microscopy,简称LSCM),是一种先进的光学显微镜技术。
它利用激光光源,通过聚焦光束经过物镜透镜并聚焦到样品表面,然后通过探测光学系统和探测器来收集样品的荧光或反射信号。
该系统能够获得高对比、高分辨率的三维空间图像。
以下将从原理和应用范围两个方面详细介绍。
原理:其工作原理包含以下几个步骤:1.使用激光器产生激光光源。
2.激光光源通过透镜系统,以点状聚焦到样品表面。
3.将该激光光斑与物镜的孔径大小匹配,通过荧光或反射信号的收集,获得图像。
4.图像信号通过探测器转化为电信号,进而被放大、采集以及分析。
5.使用扫描式镜片的控制系统进行扫描,以获取多个平面上的图像,从而构建三维样品结构。
应用范围:1.生命科学研究:激光共聚焦显微镜广泛应用于生命科学领域,例如生物医学、细胞学和神经科学研究。
它可以观察和分析细胞结构、细胞器、蛋白质分布、细胞信号通路等生物过程。
2.材料科学研究:激光共聚焦显微镜可以用于材料表面和内部结构的分析。
例如,可以观察材料的纳米结构、微孔等特征,也可以用于观察材料的表面反应、拓扑结构等。
3.环境科学研究:激光共聚焦显微镜可以用于环境污染物的检测与分析。
例如,可以观察和分析水体、土壤等环境样品中微小颗粒、微生物的分布和数量。
4.医学诊断和临床应用:激光共聚焦显微镜可用于医学诊断和临床应用。
例如,用于检测肿瘤标志物、血液细胞计数、皮肤病变的分析等。
5.药物研发:激光共聚焦显微镜可以用于药物研发过程中的药效评估、药物代谢机制研究等。
6.光学器件和半导体工艺:激光共聚焦显微镜可以用于光学器件的检测和调试,例如芯片封装、薄膜材料的测试等。
总之,激光共聚焦显微镜在生命科学、材料科学、环境科学、医学、药物研发等领域具有广泛的应用价值。
随着科学技术的不断进步,激光共聚焦显微镜将会在更多的领域中发挥重要作用,推动科学研究和技术发展。
附:激光共聚焦扫描显微镜在生物领域的应用范围激光共聚焦扫描显微镜在生物领域的应用激光共聚焦显微镜的特点以及在生物领域的应用传统光学显微镜相比,激光共聚焦显微镜具有更高的分辨率,实现多重荧光的同时观察并可形成清晰的三维图象等优点。
所以它问世以来在生物学的研究领域中得到了广泛应用。
激光共聚焦显微镜的应用领域多重荧光影像 ( Multi-Color Fluorescence Imaging )3D 立体影像重建 ( 3D Reconstruction )3D 动态影像获取与分析 ( Dynamic 3D imaging )神经立体分布影像 ( 3D Neuron imaging )形态与动态分析 ( Morphology )次微米单晶荧光影像技术 ( Nano-crystal )多重荧光蛋白影像技术 ( Multi-Color GFP Imaging )荧光共振能量转移 ( FRET or FLIM, FRAP ) )细胞离子流定量分析 ( Cellular Ion Concentration and Ratio Imaging )长时间影像记录 ( Time-Lapse Recording )Z轴扫描与测量 ( Z-section and measurement )基因影像分析 ( Genetic FISH imaging and quantification )染色体多重荧光原色表現 ( Chromosome spectral analysis )活体胚胎研究 ( Embryo, Zebrafish / Drosophila embryo )穿透光影像 / 反射光影像材料表面分析 ( Surface and roughness analysis )材料显微硬度分析 ( Micro-Hardness analysis )晶园分析 ( Wafer analysis )薄膜分析 ( Thin layer analysis )在对生物样品的观察中,激光共聚焦显微镜有如下优越性:1.对活细胞和组织或细胞切片进行连续扫描,可获得精细的细胞骨架、染色体、细胞器和细胞膜系统的三维图像。
激光共聚焦显微镜原理和应用
激光共聚焦显微镜,又称双代理镜,是一种精密的衍射成像仪器,在
显微镜中用于研究各种微小样品的形态、结构和化学特性。
激光共聚焦显
微镜是一种高灵敏的、具有很高的分辨率的光学显微成像系统,在生物、
材料和分析科学等领域有着广泛的应用。
激光共聚焦显微镜的基本原理是利用一种双代理镜,其中一个代理镜
将外入的量子光束分成两部分,一部分照射到样品上,另一部分反射到另
一个代理镜上,两支平行光线通过要研究的样品,做出聚焦的衍射图像,
然后将衍射图像反射到接收端,接收端再将衍射图像转换成电子信号,然
后显示在屏幕上,这样就能将样品的形态、结构和化学组成辨认出来。
由于激光共聚焦显微镜的衍射成像效果比传统的光学显微镜要好,所
以在研究微小样品的形态、结构和化学组成时非常有用。
它可以用来观察
微小样品的形状和细节,如细胞、细菌和细胞器结构等,还可以观察抗原、抗体和药物在细胞和组织内的分布情况,在药物研发、生物医学、食品卫
生质量检测等多个领域得到了广泛的应用。
激光共聚焦显微镜的原理与应用范围激光扫描共聚焦显微镜是采用激光作为光源,在传统光学显微镜基础上采用共轭聚焦原理和装置,并利用计算机对所观察的对象进行数字图象处理的一套观察、分析和输出系统。
把光学成像的分辨率提高了30%~40%,使用紫外或可见光激发荧光探针,从而得到细胞或组织内部微细结构的荧光图像,在亚细胞水平上观察生理信号及细胞形态的变化,成为形态学,分子生物学,神经科学,药理学,遗传学等领域中新一代的研究工具。
1 激光扫描共聚焦显微镜(LSCM )的原理从基本原理上讲, 共聚焦显微镜是一种现代化的光学显微镜, 它对普通光镜从技术上作了以下几点改进:1.1用激光做光源因为激光的单色性非常好, 光源波束的波长相同, 从根本上消除了色差。
1. 2采用共聚焦技术在物镜的焦平面上放置了一个当中带有小孔的挡板, 将焦平面以外的杂散光挡住, 消除了球差; 并进一步消除了色差1. 3采用点扫描技术将样品分解成二维或三维空间上的无数点, 用十分细小的激光束(点光源逐点逐行扫描成像, 再通过微机组合成一个整体平面的或立体的像。
而传统的光镜是在场光源下一次成像的, 标本上每一点的图像都会受到相邻点的衍射光和散射光的干扰。
这两种图像的清晰度和精密度是无法相比的。
1.4用计算机采集和处理光信号, 并利用光电倍增管放大信号图在共聚焦显微镜中, 计算机代替了人眼或照相机进行观察、摄像, 得到的图像是数字化的, 可以在电脑中进行处理, 再一次提高图像的清晰度。
而且利用了光电倍增管, 可以将很微弱的信号放大, 灵敏度大大提高。
由于综合利用了以上技术。
可以说LSCM是显微镜制作技术、光电技术、计算机技术的完美结合, 是现代技术发展的必然产物。
2 LSCM在生物医学研究中的应用目前, 一台配置完备的LSCM在功能上已经完全能够取代以往的任何一种光学显微镜, 它相当于多种制作精良的常用光学显微镜的有机组合, 如倒置光学显微镜、紫外线显微镜、荧光显微镜、暗视野显微镜、相差显微镜(PH、微分干涉差显微镜(DIC等, 因此被称为万能显微镜, 通过它所得到的精细图像可使其他的显微镜图像无比逊色。
激光共聚焦显微镜的工作原理1. 介绍激光共聚焦显微镜(Laser Scanning Confocal Microscope, LSCM)是利用扫描光束来获取样本高分辨率图像的一种显微镜技术。
相比传统的常规荧光显微镜,激光共聚焦显微镜具有更高的分辨率、激发光功率更高、能透射更深层的样本,并且能够获取三维图像等优点。
在生物医学研究领域广泛应用于细胞和组织的观察。
激光共聚焦显微镜的工作原理基于荧光显微镜和共聚焦成像原理,通过聚焦光在样本内进行光学切片来获取样本的高分辨率图像。
2. 共聚焦成像原理共聚焦成像是激光共聚焦显微镜的核心原理。
在传统的荧光显微镜中,样本上所有的荧光都被同时激发并捕获,导致成像时无法区分特定深度的信号。
而激光共聚焦显微镜通过点对点扫描样本,只捕获焦点所在深度的信号,从而消除了深度模糊,实现了高分辨率成像。
共聚焦成像的原理基于薄光学切片和探测系统的成像区域选取。
2.1 薄光学切片在激光共聚焦显微镜中,激光通过聚焦镜头(Objective)被聚焦到样本表面或内部的一个点上,样本导致了光的散射、吸收和荧光发射等过程。
这些光经过探测系统(例如物镜、光学滤波器和光电二极管等)的收集和探测后形成图像。
为了实现共聚焦成像,光学系统需要将激光点在样本体内移动,并逐点收集图像。
在样本体内,聚焦的激光通过中心区域(称为焦点)继续向外传播,光线逐渐变得散开。
因此,在一个特定的深度上,只有处于焦点附近的光线才能被聚焦在一个点上。
而离焦点较远的光线则在探测系统中被模糊接收,形成深度模糊的图像。
为了克服深度模糊的问题,激光共聚焦显微镜将样本切成一系列薄的光学切片。
这样,每个切片内的光线都可以在探测系统中被聚焦并形成清晰的图像。
通过逐层扫描样本并获取各个切片的图像,最终可以将这些图像叠加起来,形成具有高分辨率和三维信息的样本成像。
2.2 成像区域选取在共聚焦成像过程中,为了准确地获取样本的某个深度的图像,需要通过镜头和探测系统来选取成像区域。
激光共聚焦显微镜的使用和应用激光共聚焦显微镜(Laser Scanning Confocal Microscope,简称LSCM)是一种在生物医学领域应用十分广泛的高分辨率显微镜技术。
相比传统的荧光显微镜,LSCM独特的成像原理和功能使其在细胞生物学、生物医学研究以及材料科学等方面具有非常重要的应用。
LSCM使用的原理是激光扫描和共聚焦。
首先,通过激光光源发出的单色激光束照射样品,并经过镜片的调焦使得激光聚焦于单个样品点上。
样品中的物质吸收或发射荧光,在共焦点由反射镜反射回来,进入到光学检测系统中,并通过光学系统传达给光电倍增管,再由电信号转换为图像信息。
通过光学透镜逐点扫描整个样品,构建出样品的二维或三维图像。
LSCM相比传统显微镜具有以下几个优点:1.高分辨率:借助共焦技术,可以消除背景杂乱的荧光,只能检测到焦点附近的物质,因此在图像质量上表现出非常高的分辨率。
2.光学切片:可以通过调整镜片的焦距,只聚焦在感兴趣的层面上,可以在三维空间内获得细胞、组织的立体结构信息。
3.高亮度和低光毒性:由于采用单光子激发方式,LSCM提供了高亮度、低光毒性和低伤害的成像模式,可以更好地保护生物样品。
LSCM在生物医学领域的应用非常广泛:1.细胞观察与研究:LSCM可以观察到细胞的三维结构、蛋白质、DNA、RNA等生物分子标记,并通过共焦显微镜的三维成像技术,对细胞内的致病因子和细胞的活动过程进行实时观察和分析,从而揭示细胞的功能和机制。
2.分子定位和交互:通过标记荧光分子,LSCM可以实现对分子在细胞内的定位和相互作用的观察,如蛋白质的定位、互作关系等。
通过这些观测,可以更好地了解分子间的相互作用以及其在细胞功能和疾病发展中的作用。
3.组织学研究:LSCM在组织学研究中可以提供更高分辨率的图像,可以观察到组织的细胞构成、细胞外基质和多种细胞标志物等。
这对于了解组织结构与功能的关系,以及细胞增殖、细胞死亡等生理过程具有重要意义。
共聚焦激光显微镜原理及应用共聚焦激光显微镜(Confocal Laser Scanning Microscope,简称CLSM)是一种高分辨率的显微镜,通过激光扫描和共聚焦原理,可以获得具有优良对比度和空间分辨率的三维显微图像。
本文将介绍共聚焦激光显微镜的原理、构造和应用。
一、原理共聚焦显微镜的原理基于激光扫描和共聚焦现象。
它使用激光作为光源,通过物镜透镜聚焦激光束在样品上方的一个点上。
样品中的荧光物质会在激光照射下发出荧光信号。
探测器能够收集到这些荧光信号,并通过共聚焦技术将来自样品的不同深度的信号聚焦到同一平面上,从而获得高分辨率的三维显微图像。
二、构造共聚焦显微镜的主要构造包括激光源、扫描系统、探测器和图像处理系统。
激光源通常采用激光二极管或氩离子激光器,用于产生高强度的激光束。
扫描系统由扫描镜和扫描控制器组成,可以控制激光束在样品上的扫描轨迹。
探测器用于收集样品发出的荧光信号,并将其转换为电信号。
图像处理系统用于对收集到的信号进行处理和显示,以生成高质量的显微图像。
三、应用共聚焦激光显微镜在生命科学、材料科学和医学等领域具有广泛的应用价值。
1. 生命科学领域:共聚焦激光显微镜在细胞生物学、分子生物学和神经科学等领域中起着重要作用。
它可以观察活体细胞内的亚细胞结构及其动态变化,如细胞器、细胞骨架和细胞核等。
通过标记荧光染料或融合蛋白,可以实现对特定蛋白或分子的定位和跟踪,从而研究生物过程的机制和调控。
2. 材料科学领域:共聚焦激光显微镜在材料科学中用于表面形貌分析、纳米结构观察和薄膜检测等。
它可以实现对材料表面和界面的高分辨率成像,帮助研究材料的结构、形貌和成分。
同时,通过激光扫描的方式,还可以进行局部区域的观察和分析,为材料设计和制备提供重要的参考。
3. 医学领域:共聚焦激光显微镜在医学诊断和病理学研究中有着广泛的应用。
它可以实现对组织和细胞的高分辨率成像,帮助医生观察和诊断疾病。
例如,可以对癌细胞进行标记和定位,研究其生长和扩散机制,为肿瘤的早期诊断和治疗提供依据。
激光共聚焦显微镜的原理与应用范围激光扫描共聚焦显微镜是采用激光作为光源,在传统光学显微镜基础上采用共轭聚焦原理和装置,并利用计算机对所观察的对象进行数字图象处理的一套观察、分析和输出系统。
把光学成像的分辨率提高了30%~40%,使用紫外或可见光激发荧光探针,从而得到细胞或组织内部微细结构的荧光图像,在亚细胞水平上观察生理信号及细胞形态的变化,成为形态学,分子生物学,神经科学,药理学,遗传学等领域中新一代的研究工具。
1 激光扫描共聚焦显微镜(LSCM )的原理从基本原理上讲, 共聚焦显微镜是一种现代化的光学显微镜, 它对普通光镜从技术上作了以下几点改进:1.1用激光做光源因为激光的单色性非常好, 光源波束的波长相同, 从根本上消除了色差。
1. 2采用共聚焦技术在物镜的焦平面上放置了一个当中带有小孔的挡板, 将焦平面以外的杂散光挡住, 消除了球差; 并进一步消除了色差1. 3采用点扫描技术将样品分解成二维或三维空间上的无数点, 用十分细小的激光束(点光源逐点逐行扫描成像, 再通过微机组合成一个整体平面的或立体的像。
而传统的光镜是在场光源下一次成像的, 标本上每一点的图像都会受到相邻点的衍射光和散射光的干扰。
这两种图像的清晰度和精密度是无法相比的。
1.4用计算机采集和处理光信号, 并利用光电倍增管放大信号图在共聚焦显微镜中, 计算机代替了人眼或照相机进行观察、摄像, 得到的图像是数字化的, 可以在电脑中进行处理, 再一次提高图像的清晰度。
而且利用了光电倍增管, 可以将很微弱的信号放大, 灵敏度大大提高。
由于综合利用了以上技术。
可以说LSCM是显微镜制作技术、光电技术、计算机技术的完美结合, 是现代技术发展的必然产物。
2 LSCM在生物医学研究中的应用目前, 一台配置完备的LSCM在功能上已经完全能够取代以往的任何一种光学显微镜, 它相当于多种制作精良的常用光学显微镜的有机组合, 如倒置光学显微镜、紫外线显微镜、荧光显微镜、暗视野显微镜、相差显微镜(PH、微分干涉差显微镜(DIC等, 因此被称为万能显微镜, 通过它所得到的精细图像可使其他的显微镜图像无比逊色。
2.1观察活细胞、活组织LSCM在不损伤细胞的前提下, 对活组织、活细胞进行观察和测量,这不仅省去了繁琐的样品前期处理过程(如脱水、脱蜡、染色等; 而且观察过的样品还可以继续用于其他的研究。
这种功能对于细胞培养、转基因研究尤为重要。
这可以说是LSCM最大的优势。
2.2 生化成分精确定位观察配合专用的分子探针, 对于要检测的成分不仅可以定位到细胞水平, 还可以定位到亚细胞水平和分子水平2.3 动态观察在同一样品平面上随时间进行连续扫描, 就可分析细胞结构、内含、和标记等动力学变化。
目前在这方面做得最多的是使用LSCM观察心肌或平滑肌细胞内游离钙、钠、钾离子浓度或pH的动态变化。
2.4 数据、图像的数字化用计算机代替了普通的照相机, 得到的图像是数字化的, 可及时输出或长期储存, 而且还可进一步加工处理。
2.5 定量测量首先应用专一的荧光探针对样品进行染色, 样品的荧光强度和所测成分的含量呈正比, 如果其余条件固定, 通过对比各组样品之间的荧光强度值, 可得出特定成分的含量比。
3 华中地区有激光共聚焦显微镜机构的品牌和技术参数3.1中国科学院武汉病毒研究所,3.2湖南中南大学湘雅二医院代谢内分泌研究所LSCM(BIO-ROD1024,HOMEL HEMPSTEAD,UK发表过应用激光扫描共聚焦显微镜观察骨组织为损伤的实验研究3.3华中科技大学同济医学院附属同济医院神经内科激光扫描共聚焦显微镜(MRC 1024型, 美国BioRad公司生产发表过激光扫描共聚焦显微镜检测核因子κB4 激光扫描共聚焦显微镜的使用(cAMP 在体测量为例)4.1样品制备4.1.1切片实验标本要求单层,并能很好地贴附在样品池中。
所以,组织标本无论是石蜡切片还是冰冻切片,均为越薄越好。
常用的贴附剂有:多聚赖氨酸,伴刀豆球蛋白,蛋清,琼脂明胶cell-Tak, vectabond等。
4.1.2培养细胞培养细胞可以满足要求,如果用购置仪器时所带的薄底培养瓶进行培养则更佳4.1.3激光共聚焦观察样品处理注意事项首先要尽量保持生物材料的天然状态,避免赝像、变形和失真,因此须将生物材料做固定处理;制片必须薄而透明,才能在显微镜下成像,除将材料切成薄片或通过轻压或其他手段使之分散外,还需采用其他方法使它透明和染色,以便更好地观察到结构的细节。
需长期保存的制片,还应进行脱水和封固。
显微制片法一般包括切片法、整体封片法、涂片法和压片法4类。
4.2荧光探针的选择荧光探针的发展非常迅速,目前仅美国Molecular Probes公司就可提供1800多种荧光探针[3,每年该公司还不断推出新的荧光探针。
通常每项检测内容或被测物质都有几种或几十种有关的或特异的荧光探针。
选择合适的荧光探针是有效地进行实验并获取理想实验结果的保障。
荧光探针的选择主要从以下几个方面考虑:(1现有仪器所采用的激光器。
如我校购进的激光扫描共聚焦显微镜(ACASULTMA312,美国Meridian 公司产品采用氩离子激光器,激发波长为351~364nm ,488nm ,514nm ,可激发多种荧光探针;(2荧光探针的光稳定性和光漂白性。
在进行荧光定量和动态荧光监测时,要求荧光探针有较好的光稳定性越高越好,也可通过减少激光扫描次数或降低激光强度的方法,来减轻光漂白的程度。
但在进行膜流动性或细胞间通讯检测时则需要荧光探针既有一定的光稳定性又要有一定的光漂白性;(3荧光的定性或定量。
仅做荧光定性或仅是观察荧光动态变化时,选择单波长激发探针,无需制作工作曲线。
做定量测量时最好选用双波长激发比率探针,利于制定工作曲线;(4荧光探针的特异性和毒性。
尽量选用毒性小、特异性高的探针;(5荧光探针适用的pH 。
大多数情况下细胞的pH 在生理条件下,但当pH 不在此范围时,考虑适用该环境pH 的荧光探针是有必要的。
同时应注意染液自身的pH 值会影响带电荷的荧光探针与胞内组份之间的结合,因此在染液的配备时需加以考虑。
不同的荧光探针在不同标本的效果常有差异,除综合考虑以上因素以外,有条件者应进行染料的筛选,以找出最适的荧光探针。
此外,许多荧光探针是疏水性的,很难或不能进入细胞,需使用其乙酰羟甲基酯(acetoxymethyl,AM形式,也就是荧光探针与AM 结合后变成不带电荷的亲脂性化合物方易于通过质膜进入细胞,在细胞内荧光探针上的AM 被非特异性酯酶水解,去掉AM 后的荧光探针不仅可与细胞内的靶结构或靶分子结合且不易透出质膜,从而能有效的发挥作用。
4.2.1细胞内游离钙美国分子公司提供的钙荧光探针有20多种,激光扫描共聚焦显微镜常用的有Fluo-3、Rhod-1、Indo-1、Fura-2等,前两者为单波长激光探针,利用其单波长激发特点可直接测量细胞内Ca2+动态变化,为钙定性探针;后两者为双波长激发探针,利用其双波长激发特点和比率技术,能定量细胞内[Ca2+]i ,为钙定量探针4.2.2 DNA和RNA核酸的荧光探针有50多种[2],用于激光扫描共聚焦显微镜的主要有Acridine Orange(吖啶橙,AO 、Propidium Iodide(碘化丙啶,PI 。
4.2.3 膜电位DiBAC4(3为最常用的膜电位荧光探针[5],DiBAC4(3为带负电荷的阴离子慢反应染料。
该探针本身无荧光,当进入细胞与胞浆内的蛋白质结合后才发出荧光,测量时要求细胞浸在荧光染料中。
当细胞内荧光强度增加即膜电位增加示细胞去极化;反之,细胞内荧光强度降低即膜电位降低示细胞超极化。
Rhodamine 123主要用于线粒体膜电位测量[6]。
Rhodamine123是一种亲脂性阳离子荧光探针,当线粒体膜内侧负电荷增多时,荧光强度增加,与DiBAC4(3的表示形式相反。
4.2.4 pH值常用于偏中性pH 即细胞胞浆pH 检测的荧光探针有SNARF 类(SNARF-1SNARF-calcein、SNAFL 类(SNAFL-1、SNAFL-calcein 、BCECF 等,这些探针均为疏水性探针,需使用其AM 形式。
FITC-dextran 则适用于pH 范围4~6之间[7],如溶酶体pH 的检测,该探针也不能透过质膜,但可通过细胞胞饮作用进入溶酶体,因此应选择分子量稍小的Dextran(葡聚糖。
4.2.5 细胞内活性氧基活性氧(active oxygen species可影响细胞代谢,与蛋白质、核酸、脂类等发生反应,有些反应是有害的,因此测量活性氧在毒理学研究中有一定的意义。
根据检测活性氧的不同可选择不同的荧光探针。
常用荧光探针有Dichlorodihydrof-luorescein diacetate(2,7-二氯二氢荧光素乙酰乙酸、H2DCFDA [2],其原理是不发荧光的H2DCFDA 进入细胞后能被存在的过氧化物、氢过氧化物等氧化分解为dichlorofluorescein(DCF而产生荧光,其反应灵敏到10-12mole 水平,荧光强度与活性氧的浓度呈线性关系。
4.2.6 细胞间通讯激光扫描共聚焦显微镜可采用荧光光漂白恢复FRAP 技术检测细胞缝隙连接通讯,该方法的原理是一个细胞内的荧光分子被激光漂白或淬灭,失去发光能力。
而临近未被漂白细胞中的荧光分子可通过缝隙连接扩散到已被漂白的细胞中,荧光可以逐渐恢复。
由于光漂白过程是不可逆的,因此可通过观察已发生荧光漂白细胞其荧光恢复过程的变化量来判断细胞缝隙连接的通讯功能。
采用FRAP 技术检测细胞间通讯常用荧光探针是6-carboxyfluoresceindiacetate(6-羧基荧光乙酰乙酸、CFDA 。
需用其酯化形式CFDA-AM 。
该技术可用于研究胚胎发生、生殖发育、神经生物学、肿瘤发生等过程中缝隙连接通讯的基本机制和作用。
由于某些毒性物质尤是促癌物可影响缝隙连接介导的物质运输,因此该方法也可用于鉴别对缝隙连接作用有潜在毒性的化学物质。
4.2.7细胞膜流动性采用荧光光漂白恢复(FRAP技术还可对细胞膜流动性进行研究[9]。
利用NBD-C6-HPC 荧光探针标记细胞膜磷脂,然后用高强度的激光束照射活细胞膜表面的某一区域(1~2µm,使该区域的荧光淬灭或漂白,再用较弱的激光束照射该区域。
可检测到细胞膜上其它地方未被漂白的荧光探针流动到漂白区域时的荧光重新分布情况。
荧光恢复的速率和程度可提供有关的信息,如用于观察细胞受体介导内吞过程中膜磷脂流动性的变化情况。
NBD-C6-HPC 在温度稍高时可能会进入细胞内,因此荧光染色和测量时应在低于常温的环境下进行。
4.2.8细胞结构、受体、蛋白质、酶等激光扫描共聚焦显微镜可获得较一般普通光学显微镜分辨率高的细胞内线粒体、高尔基复合体、内质网、溶酶体等细胞器图象,同时还可动态观察活细胞状态下细胞器的形态学变化情况,此外还可通过光学切片即断层扫描技术进行三维重建,显示细胞器的空间关系及其变化。