微生物标本采集指南

微生物标本的正确采集正确采集微生物标本是进行病原学检查的关键步骤，因为只有采集到合适的标本，才能够准确、客观地检测出病原菌，为诊断和治疗提供科学依据。

以下是一些采集微生物标本的正确方法：一、注意清洁和消毒在采集标本前，必须对手部进行清洁和消毒，以减少污染的可能性。

使用肥皂和水清洁手部，或者使用酒精消毒剂消毒手部。

同时，还需要对采集标本所使用的器械进行消毒，确保无菌操作。

二、选择正确的标本类型不同的微生物感染会有不同的症状和体征，因此需要根据患者的具体情况选择正确的标本类型。

例如，对于呼吸道感染，可以使用鼻咽拭子、痰液等；对于胃肠道感染，可以使用大便标本等。

三、正确采集标本1.采集前准备：了解患者的病史和症状，确定需要采集的标本类型，准备好采集所需的器械和消毒用品。

2.采集方法：根据不同的标本类型，采用正确的采集方法。

例如，对于痰液标本，需要让患者用力咳嗽，将痰液咳出并放入收集器中；对于大便标本，需要让患者取适量的大便放入收集器中。

3.采集量：采集的标本量应该足够，以便进行实验室检测和分析。

一般来说，采集的标本量应该不少于检测所需量的两倍。

4.采集时间：采集标本的时间也有讲究。

例如，对于呼吸道病毒的检测，最好在患者发病的早期采集标本；对于肠道病毒的检测，最好在患者发病后一周内采集标本。

5.保存方式：采集完标本后，需要妥善保存。

一般来说，应该将标本保存在适当的介质中，如保存液或培养基中，以保持标本的活性和完整性。

同时，还需要注意温度和湿度等环境因素对标本的影响。

四、避免污染和交叉感染在采集标本的过程中，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染和交叉感染。

例如，在采集痰液标本时，应该让患者先用清水漱口，再用无菌棉签擦拭咽部，以减少口腔和咽部的细菌污染。

同时，还需要注意实验室内的清洁卫生和消毒工作，确保实验室内的空气和环境符合要求。

五、及时送检采集完标本后，需要及时送检。

一般来说，应该将标本尽快送到实验室进行检测和分析。

临床微生物学检验的标本采集一、血液和骨髓细菌学检验标本的采集（一）适应症菌血症、败血症和感染性骨髓炎等感染菌的培养鉴定和药物敏感试验。

（二）病人准备1．凡怀疑菌血症和败血症的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用过抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，或在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。

2．应在病人发热期或寒颤时采集（三）标本采集1．血培养瓶领取：凭医嘱和检验申请单到检验科细菌室领取。

按照实际情况选择相应类型的血培养瓶：如灰色瓶盖为普通成人培养瓶；粉红色盖为儿童需氧菌培养瓶；紫色盖为厌氧菌培养瓶。

2．将患者信息录入相应的血培养瓶条码中，并在作好病人姓名、科别、床号等标识。

2．采集方法：严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液或骨髓后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀。

3．标本量：成人每次采血5~10ml，小儿采血3~5ml，骨髓2~3ml，采血量足够则阳性率高，反之阳性率减低。

（四）注意事项1．抽血、抽骨髓和接种时，须严格注意无菌操作，避免污染杂菌。

2．从抽血、抽骨髓到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固。

3．成人不明原因发热、怀疑血流细菌感染时宜在不同部位抽血2套，每套2瓶（需氧、厌氧各一瓶）。

4．怀疑伤寒、亚急性细菌性心内膜炎及布鲁氏菌病的病人等，一般一日抽血三次培养，必要时需追加次数。

（五）标本送检和保存1．标本采集后应及时送检，一般不超过1h送交细菌室。

2．送检过程中应注意防止培养瓶打破或其它潜在性污染可能。

二、痰液或下呼吸道分泌物细菌学检验标本的采集（一）适应症肺炎、肺气肿、支气管炎、鼻窦炎、肺结核等感染菌的培养鉴定、药物敏感试验和抗酸菌检查。

（二）病人准备1．尽量在未使用抗菌素前留取标本。

准备好无菌标本容器，贴上条码、标明标识。

2．住院病人应留取清晨起床第一口痰。

为减少正常菌群的污染，嘱患者早上起床后用清水或生理盐水漱口，不要刷牙，除去鼻咽分泌物。

（三）标本采集1．一般病人用力咳出气管深处或肺部痰液，留于无菌标本容器内。

微⽣物标本采集⽅法及注意事项 微⽣物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有⼗分密切的关系。

医⽣、护⼠、检验⼈员均应重视微⽣物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进⾏正确采集标本的宣传和指导。

下⾯是yjbys店铺为⼤家带来的微⽣物标本采集⽅法及注意事项，欢迎阅读。

⼀、粪便标本采集和处理 (1)采集⽅法 1.⾃然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓⾎、或絮状物等有意义成分，2～3g或 1～2 m1，盛⽆菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋⽩胨⽔中(PH8.6)。

2. 直肠拭⼦法：难以获得粪便或排便困难患者及幼⼉可采⽤此法，将拭⼦前端⽤⽆菌⽢油或⽣理盐⽔湿润,然后插⼊肛门约 4～5cm(幼⼉ 2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。

擦取直肠表⾯粘液后取出，盛于⽆菌试管中或保存液中送检。

(2) 注意事项 1.尽可能在抗⽣素使⽤之前采集标本。

2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混⼊尿液及其他异物，采集过程应尽量⽆菌操作。

3.不应⽤厕纸收集粪便。

4.对同⼀病⼈在同⼀天不宜重复送检。

5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。

6.下列腹泻患者应连续3d送检标本 --社区获得性腹泻(⼊院前或72h内出现症状) --医院腹泻(⼊院72h后出现症状)，且⾄少有下列情况之⼀：⼤于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似院内暴发。

--怀疑肠道感染的⾮腹泻性表现。

7.肠炎和发热病⼈建议做⾎培养。

8.伤寒沙门菌感染时⾻髓培养⾼出⾎培养。

9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。

(3)标本拒收 ⼲燥的拭⼦、含钡粪便、黄软成形便、⼲便、明显污染的粪便、⼀⽇内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。

⼆、尿液标本采集和处理 (1)采集⽅法 1. 中段尿采集法：清晨起床后⽤肥皂⽔清洗尿道⼝和外阴部，再⽤清⽔冲洗尿道⼝周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿 5～10ml盛于带盖的⽆菌容器内⽴即送检，采集后于0.5h内进⾏接种。

临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则：1.1 严格的无菌操作，避免污染，避免来自寄生菌的污染，应当保证每份样本代表感染过程｡1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术，采集样本。

1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。

1.4 要收集足够量的样本，量少可能导致假阴性结果。

1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。

1.7 导尿留取样本时，不可从尿袋中采集样本。

引流液样本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。

1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌（煮沸、高热、或高压灭菌），但不得用消毒剂或酸类处理。

1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位，如伤寒沙门菌的阳性检出率，发病的第1～2 周采集血液，第3～4 周采集大便和尿液，阳性率较高。

1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。

1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检，应置室温保存（但不得超过24 小时）。

禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。

1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时，样本不能放4℃条件保存，应在30min内送检，并注意保温。

1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，应立即送检，因为这些细菌在自然环境中极易死亡。

1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检，应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水，以免导管干燥，病原微生物死亡。

1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检，如样本较小或不能在规定时间内送检，应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水，以免样本干燥，病原微生物死亡。

不可用纱布包裹组织样本。

2 常见临床微生物标本的采集方法。

2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目：血液及骨髓培养。

2.1.2 适应症病人出现以下临床表现：发热（38℃）或低温（36℃）、寒战、白细胞增多（白细胞数>10×109/L，特别有“核左移”时）、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。

临床微生物标本采集作业指导书一、引言本文档旨在提供临床微生物标本采集作业的指导，以确保标本采集的质量和准确性。

本指导书适用于医疗机构的相关工作人员，包括医生、护士和实验室技术人员等。

二、目的准确的微生物标本采集是诊断和治疗感染病例的重要环节。

本指导书的目的是提供清晰的指导，确保标本的采集过程符合规范，以减少错误和污染的风险，从而提高诊断的准确性。

三、采集前准备在进行微生物标本采集之前，需要做好以下准备工作：1.了解标本类型和采集方法：不同类型的标本需要采集不同的方法，例如血液标本、尿液标本和呼吸道标本等。

在采集前要了解每种标本的采集方法和要求。

2.准备采集工具和材料：根据标本类型和采集方法，准备好相应的工具和材料，例如采血针、尿液收集容器和标本袋等。

3.按照消毒和无菌要求准备采集区域：在采集前要确保采集区域干净、消毒和无菌。

根据需要，可以使用消毒剂和无菌覆盖物等。

四、标本采集步骤4.1 血液标本采集血液标本采集是常见的微生物标本采集方法之一。

下面是血液标本采集的步骤：1.确定采集部位：通常选择患者的上臂静脉作为采集部位。

2.消毒：用75%乙醇消毒采集部位，采用无菌棉球擦拭。

3.选择合适的采血针：根据患者的年龄和采血需要选择合适的采血针。

4.采集血液：在消毒后，用采血针穿刺患者的静脉，收集所需的血液量。

5.采集完毕后，用无菌棉球和胶布固定针头，然后将血液转移到标本管中。

6.标本管标记：在标本管上正确标记患者的信息和采集时间等。

4.2 尿液标本采集尿液标本采集常用于泌尿系统感染的诊断。

以下是尿液标本采集的步骤：1.洗手：采集前要洗手并戴好一次性手套。

2.选择合适的容器：选择容量合适的尿液收集容器。

3.女性患者：清洁外阴部，将尿液收集容器放置在外阴，以接收尿液。

4.男性患者：将尿液收集容器放置在清洁的阴茎上方，以接收尿液。

5.患者采集尿液：患者尽量采集中段尿，避免采集到开始或结束的尿液。

6.收集完毕后将尿液收集容器密封，标记患者的信息和采集时间等。

规范化标本采集是微生物检验分析前质量控制的重要内容微生物标本采集的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.收集真正感染的病灶处之样本，且不受邻近区域微生物的污染；3.收集样本时应执行严格的无菌操作技术，将污染情形降至最低；4.尽量在抗菌药物使用前采集标本5.采样后立即送检以保持微生物的生物活性，床旁接种可提高病原菌检出率6.使用无菌、密闭容器，但不得含有消毒剂、防腐剂7.送检标本应注明来源和检验目的一、血培养标本的采集1.血培养的临床指征：患者出现以下一种或同时具备几种临床表现时可作为血培养的重要指征：①发热（≥38 ℃）或低温（≤36 ℃），以间歇驰张型多见，革兰阴性杆菌，如大肠埃希菌引起的感染可见双峰热；②寒战；③白细胞增多（>10.0×109/ L，特别是有“核左移”时）；④粒细胞减少（<1.0 ×109/ L）；⑤血小板减少；⑥皮肤、黏膜出血，常见于溶血性链球菌感染的菌血症，伤寒病人第4-10天可出现玫瑰疹，斑疹伤寒第4-6天可出现暗红色斑丘血疹；⑦昏迷；⑧多器官衰竭；⑨血压降低；⑩呼吸加快（呼吸率>20/分或CO2分压<32mmHg）；以及肝脾肿大；关节疼痛；C反应蛋白、内毒素、降钙素原升高等；2.血培养的采集时间①对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。

②研究表明细菌通常在寒战或发热前1h入血，此时为采血的最佳时机。

③发热后细菌很快会从血液中清除，超过发热峰值后，病原菌的检出率会随之降低。

3.血培养的采集部位①对怀疑菌血症、真菌血症的患者，应同时或短时间间隔（10分钟内）从不同部位（如双臂）采集2～3套血培养标本，做到“双瓶双侧”。

②推荐从外周静脉采集血液标本。

③不推荐动脉血，因其诊断价值没有比静脉血更大。

④不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。

如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以助于对比和结果解释。

微生物标本采集微生物标本采集是一项基础且重要的工作，对于临床诊断、疾病防控以及科学研究都具有至关重要的作用。

本文将详细介绍微生物标本采集的基本原则、采集方法、注意事项以及标本的保存与运送。

一、微生物标本采集的基本原则1.及时性：微生物标本采集应在患者出现症状或怀疑感染微生物时尽快进行，以便获取具有代表性的标本。

2.无菌操作：采集微生物标本时，必须遵循无菌操作原则，避免污染标本，确保检测结果的准确性。

3.适量：采集的微生物标本应足够进行所需检测，同时避免过量采集，减少对患者造成的不适。

4.适宜的标本类型：根据微生物的生长特性、感染部位以及检测目的，选择适宜的标本类型。

5.标本标识：采集的微生物标本应进行清晰、准确的标识，包括患者姓名、标本类型、采集时间等信息。

二、微生物标本采集方法1.皮肤、黏膜表面：使用无菌棉签或无菌注射器，轻轻擦拭或抽取皮肤、黏膜表面的分泌物。

2.血液：采用无菌注射器抽取静脉血，避免皮肤消毒剂污染。

3.呼吸道标本：采用无菌吸痰管或纤维支气管镜采集呼吸道分泌物；咳痰患者应采集清晨第一口痰。

4.尿液：采集清洁中段尿，必要时可采用导尿术。

5.粪便：采集粪便标本时，应避免粪便与尿液混合，采用无菌容器。

6.生殖道分泌物：男性患者采用无菌拭子采集尿道口分泌物；女性患者采集宫颈分泌物。

7.组织标本：在无菌条件下，切取感染部位的组织，放入无菌容器。

三、微生物标本采集注意事项1.采集前准备：了解患者的病情、用药情况以及采集部位，确保采集时机适宜。

2.消毒：采集部位应进行充分消毒，避免污染标本。

3.避免污染：采集过程中，避免触及非无菌部位，确保无菌操作。

4.采集量：根据检测需求，采集适量的标本。

5.标本保存：采集后的微生物标本应尽快送检，无法及时送检的标本应妥善保存。

四、微生物标本保存与运送1.温度：根据微生物的生长特性，选择适宜的保存温度。

一般而言，细菌标本应在4℃保存，病毒标本应在-70℃保存。

微生物标本采集手册目录第一章血液及骨髓标本的微生物检验 (2)第二章痰标本的微生物检验 (6)第三章上呼吸道标本的微生物检验 (8)第四章尿液标本的微生物检验......................9第五章粪便标本的微生物检验......................11第六章化脓和创伤标本的微生物检验. (13)第七章脑脊液标本的微生物检验 (15)第八章胆汁标本的微生物检验 (16)第九章胸水标本的微生物检验 (18)第十章腹水标本的微生物检验 (19)第十一章心包液标本的微生物检验 (20)第十二章关节液标本的微生物检验 (22)第十三章鞘膜积液标本的微生物检验 (23)第十四章生殖道标本的微生物检验 (24)第十五章外眼部标本的微生物检验 (27)第一章血液及骨髓标本的微生物检验一、检查项目血液、骨髓液的细菌培养二、标本采集【标本采集前的注意事项】应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。

【标本送检指征】病人出现以下临床表现，或同时具备以下几种临床表现时应采集血培养。

1 发热（≥38℃）或低温（≤36℃）2 寒战3 白细胞增多（＞10×109/L，特别有“核左移”时）4 粒细胞减少（成熟的多形核白细胞＜1×109/L）5 血小板减少6 皮肤、粘膜出血7 昏迷8 多器官衰竭9 血压降低10 呼吸加快几种特殊情况：1 可疑新生儿败血症时，除发热或低温外，很少培养出细菌，应增加尿液和脑脊液培养。

2老年菌血症病人可能不发热或不低温，如伴有身体不适、肌痛或中风，可能是感染性心内膜炎，也应采取血培养。

骨髓培养与血液培养的送检指征是基本一致的，临床常规血液感染有指征时以抽取血培养为主。

但当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者，抽取骨髓培养阳性率会远高于血培养。

【标本采集的容器】法国梅里埃公司血培养仪配套血培养瓶(我院)或手工血培养瓶。

【标本的采集方法】防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培养的关键问题，采血前严格执行消毒程序是十分重要的。

微生物标本采集及保存要求一、总则：用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。

二、临床标本的采集（一）下呼吸道分泌物（痰液）令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。

（二）、尿液（中段尿）护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。

（三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。

（四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。

（五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。

（六）、：1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。

当然在病人发热或寒颤时采集也可。

2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml；3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀，4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。

（七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液：严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。

（八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。

（九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。

（十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。

如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。

微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。

2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。

3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。

4.标本采集后应立即送至细菌室。

床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。

6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。

一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。

2.采血部位：肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。

怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。

对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。

4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。

过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。

消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。

56医药健闻微生物检验标本的正确采集方法及注意事项刘洋 （河南京城皮肤中医院，河南郑州 450000）常见的微生物检验标本包括以下几种类型：血、骨髓、静脉导管标本，痰及下呼吸道标本，尿液标本，大便标本，生殖道系统标本，眼、耳、鼻、咽拭子标本。

血、骨髓、静脉导管标本正确采集方法：（1）先用75%酒精对静脉穿刺部位擦拭消毒30 s 以上，用一根碘棉签从穿刺点向外1.5~2 cm 的直径范围内再次消毒60 s 。

（2）使用75%酒精对血培养瓶和橡皮塞子消毒60 s 。

在血液注入血培养瓶前，先用无菌纱布或者棉签将橡皮塞子表面的残余酒精清除干净。

（3）在穿刺前或穿刺期间，佩戴乳胶手套将静脉进行固定，防止滑动，但是不可接触穿刺点；使用注射器无菌穿刺取血后，可直接注入血培养瓶中；在血标本进入到培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检，以免血液凝固。

（4）成人的采血量是8~10 ml ，儿童的采血量是1~3 ml ，骨髓采血量是1~2 ml 。

注意事项：（1）静脉采血的部位通常为肘静脉，不建议从动脉采血。

患者疑是细菌性心内膜炎时，可以选择肘动脉或者股动脉采血，勿要在静脉滴注抗菌药物时进行采血。

（2）使用注射器无菌穿刺取血后勿换针头，直接注入血培养瓶。

如果需要进行第二次穿刺，需要更换针头。

（3）多次采血时，应在不同部位的血管穿刺，以排除皮肤菌丛污染的可能。

除非无法从静脉穿刺处取血，否则不能从静脉植入管内取血。

（4）若是从静脉植入管内取血，应该同时自外周静脉采集血液进行培养，以协助判读血培养阳性结果，同时在申请单上注明标本类型。

（5）采血前，应该将患者信息、采血时间、部位、采血量写在标签上，并贴在培养瓶上。

（6）有血的培养瓶若不能立即送检，可放室温保存，切不可放入冰箱。

痰及下呼吸道标本正确采集方法：（1）能够自行取痰的患者，在清晨起床后未进食前，先用漱口水漱口，去除口腔细菌，再用清水漱口，深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，放置于无菌集痰器中并盖好瓶盖；无法咳痰或者不合作的患者，需要帮助其采取卧位，由上而下叩击背部，并戴好无菌手套，将无菌集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰器，按吸痰法将痰吸入无菌集痰器内，并盖好瓶盖，收集好后立即送检。