组织标本采取及处理的正确方法

组织标本的处理取材取材是制作切片程序中的首要步骤，取材不当，将直接影响病理诊断和科研工作的效果。

组织标本的选用特别重要，不能随便的切取组织来制作组织切片，否则病理检验的结果是不会令人满足的。

一、取材工具：取材刀具必需锐利。

切取标本不应当挤压和揉擦，不应使用有钩镊子或血管钳等手术器械镊取标本，以免损害组织造成人为组织变化，给诊断带来困难或导致错诊，漏诊。

二、标本的选取：应选择病变或可疑病变的组织。

必要时选取病变与正常组织交界处。

切取标本的原则是求准而不是求量多，所以切取组织宜小不宜大，以不超过24x24mm2为佳，厚度以35mm为度，过大过厚会影响对标本的固定，另方面也影响切片的制作。

特别目的者应属例外。

1.了使组织切片的结构清晰，取材要准时，组织块必需争取时间准时固定。

组织的固定以愈新奇愈好。

2.取材时对大体标本（肉眼标本）绘制图象，进行认真描述。

包括外形、大小，硬度，颜色，病灶（或可疑病变）部位等。

对所取的组织应定位编号。

3.切取各组织块时，切勿挤压损伤，对典型或具有教学和科研价值的肉眼标本，不能因取材而对标本造成人为的"病变'。

肠粘膜组织上沾有少量粪便，也不应以手拭去或以水洗去。

4.下的组织块应尽量防止其弯曲扭转，如胃肠等组织，应先平展于草纸上粘着以后，渐渐地放入固定液中（故应在动手剖验之前做好预备工作）。

固定液的量要充分，应为固定组织的10倍。

5.组织实行应在正常与病灶交界之处。

组织外形最好为方形或长方外形，这样有利于制片。

切不行以外形定位，组织厚薄要匀称。

由于组织块的厚度打算固定的速度，要充分满意它在肯定时间内全部达到相宜的固定。

如组织厚薄不均，在脱水时将会引起标本变形或曲，而影响制片。

在典型病变部位不妨多切数块，以备日后添制教学切片或讨论的需要。

6.微量标本和易碎标本，为避开破损或丢失应以纱布包裹，但包裹前纱布必需浸湿，以免标本粘附纱布上。

7.各组织块应包括各脏器的重要结构，如肾脏组织包括皮质部分和髓质部分。

微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。

可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。

为此应正确采集各种细菌学标本。

一、血液标本的采集1、采集方法（1）75%酒精清洁局部皮肤。

（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。

（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。

2、注意事项（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。

（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。

切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。

（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。

（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。

（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。

（7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。

（8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。

二、骨髓的采集1、采集方法在病灶部位或髂前（后）上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml，注入血培养瓶内。

2、注意事项（1）骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞，因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。

老鼠组织标本石蜡切片免疫组化实验的具体步骤及方法根据聚合酶技术把辣根过氧化物酶抗鼠或/和抗兔IgG分子结合在多聚酶上形成多聚物分子,其与待检的抗原特异性的结合后，加入底物显色。

1. 石蜡切片置于67℃烘箱中，烘片2小时，脱蜡至水，用pH7.4的PBS冲洗三次，每次3分钟（3×3’）。

2. 取一定量pH=6.0柠檬酸盐缓冲液，加入微波盒中，微波加热至沸腾，将脱蜡水化后的组织切片置于耐高温塑料切片架上，放入已沸腾的缓冲液中，中档微波处理10分钟，取出微波盒流水自然泠却，从缓冲液中取出玻片，先用蒸馏水冲洗两次，之后用PBS冲洗2×3’。

（注：不是所有的抗体都需要微波修复的，视具体情况而定）3. 每张切片加1滴3%H2O2，室温下孵育10分钟，以阻断内源性过氧化物酶的活性。

PBS冲洗3×3’。

4. 除去PBS液，每张切片加1滴相应的第一抗体（相应稀释倍数），室温下孵育2小时。

5. PBS冲洗3×5’。

除去PBS液，每张切片加1滴聚合物增强剂，室温下孵育20分钟。

PBS冲洗3×3’。

6. 除去PBS液，每张切片加1滴酶标抗鼠/兔聚合物，室温下孵育30分钟。

PBS冲洗3×5’。

7. 除去PBS液，每张切片加1滴新鲜配制的DAB液（二氨基联苯胺），显微镜下观察5分钟。

8. 苏木素复染，0.1%HCl分化，自来水冲洗，蓝化，切片经梯度酒精脱水干燥，二甲苯透明，中性树胶封固，晾干后观察。

注意事项1. 在切片加上一抗后，第二抗体标记多聚螯合物酶（HRP）的复合物与一抗结合，在多聚螯合物上有大量的HRP分子，使抗原信号有显著的放大，其敏感性较SABC、SP法高。

2. 由于多聚物在体内不存在，又不使用生物素，从而避免了由于生物素引起的非特异性背景染色，背景比SABC、SP法清晰。

3. 辣根过氧化物酶与二抗结合在多聚物上，替代传统方法的二抗、三抗，减少了实验步骤，且试剂孵育时间短，只需15分钟，使得免疫组化方法更简单，实验时间比SABC、SP法大为缩短。

实验室标本采集、处置和管理操作程序1.目的：规范实验标本的采集、运输、接收及保存，以保证原始标本在采集、运输、接收及保存过程中方法适当，原始标本中的待测成分不受影响。

2.范围：适用于科室所有标本的采集、运输、接收及保存。

3.职责：3.1 质量管理小组负责标本管理的指导和监督。

3.2 检验人员负责各自检测标本的管理和标本采集手册的编制。

4.工作程序：4.1标本采集4.1.1 由各专业实验室负责人组织实验室成员编制各自实验室的标本采集手册，标本采集手册应至少包括以下内容：患者准备；标本收集容器；标本的类型；所需标本量。

标本采集的注意事项：4.1.2 质量管理小组对标本采集手册的内容进行审查，经科主任批准后，由医院计算机中心负责将标本采集手册添加入医院系统，以便标本采集部门和各临床科室随时参阅。

4.1.3质量管理小组每年对标本采集手册进行审查，如发现不合格内容可要求实验室负责人修改。

4.1.4检验标本包括从门急诊，住院部患者和体检中心的体检人员等处采集的标本，标本由有以下资格人员采集：注册护士、执业医生、检验技术人员。

4.1.5检验申请单包括以下信息：患者姓名、性别、年龄、科室、住院号、病床号、申请医生、申请检验项目、采集标本的日期和时间、标本类型、是否需优先处理。

4.2 标本的运输4.2.1 标本应放在有盖、内有固定架的标本运输箱中运输，盒外贴上生物危害的标识，标本和检验申请单分开放置。

4.2.2 若标本运输箱被标本污染，应立即用消毒液消毒，用2000mg/L 有效氯消毒液倾入标本运输箱内，浸泡30-60分钟，再用流水冲洗。

4.3住院部标本采集和运送程序4.3.1临床医生出具检验项目申请，急诊医嘱立即通知责任护士。

4.3.2当班护士写上检验标签条码并贴于标本容器上。

4.3.3采集者在标本采集前仔细核对患者姓名、床号、检验项目、标本类型及特殊要求。

4.3.4当班护士与标本运送人员当面清点标本数量，并在登记本上签名，由后者将标本送至相关检验部门签收。

组织标本取材的一般方法和注意事项随着科学技术的不断发展，生物学研究的范围也不断扩大，而组织标本取材作为生物学研究的重要环节，其方法和注意事项显得尤为重要。

在进行组织标本取材时，我们要注意哪些方面呢？下面我将从深度和广度两个方面进行分析和探讨。

一、组织标本取材的一般方法1.术前准备在进行组织标本取材之前，需要做好充分的术前准备工作。

首先要对要取材的组织进行详细的观察和分析，确定取材部位、数量和方法。

其次要准备好取材所需的工具和材料，包括手术刀、消毒酒精、无菌手套等。

2.取材部位的选择取材部位的选择直接影响着组织标本的质量和研究结果的准确性。

一般来说，取材部位应当处于病变的中心位置，尽量避免有坏死或者较多纤维组织的部位。

同时还要根据不同的研究目的和方法选择合适的取材部位，比如对于肿瘤组织的研究，应当选择肿瘤的边缘部位。

3.取材方法在取材的过程中要注意使用无菌工具，并且尽量避免组织的损伤和变性。

对于不同的组织和病变，取材的方法也会有所不同，比如对于软组织样本，可以选择切割或者穿刺取样，而对于骨骼组织，则需要使用骨钻或者骨锯进行取材。

4.标本的保存和处理取材完成后，应当及时将标本放置在4°C冰箱中保存，并且尽量在24小时之内进行组织学染色或者其他实验处理。

另外，在进行染色和切片前，还需要将组织标本进行固定和脱水处理，以保证标本的质量和完整性。

二、组织标本取材的注意事项1.安全第一在进行组织标本取材的过程中，首要考虑的是安全问题。

要严格遵守实验室的安全操作规程，正确使用和处理实验工具和化学试剂，确保自己和他人的人身安全。

2.注意标本的标识在取材过程中要做好标本的标识工作，包括标注标本的编号、取样部位、取样时间等信息，以便后期的追溯和分析。

3.尽量减少操作在取材的过程中要尽量减少操作，避免损伤和污染标本。

尤其是在染色和切片的过程中，要尽量避免对标本的重复操作，避免标本的损伤和质量下降。

4.遵循实验伦理原则在进行组织标本取材的过程中，要严格遵守实验伦理原则，尊重动物和人体的权益，避免不当的伦理行为和实验操作。

从大体标本上切除适量的组织材料进行研究就是取材。

取材不仅在免疫组化而且在常规病理检查中也十分重要。

用于免疫组化的组织一般取材大小为1．OcmXl．OcmX0．2cra。

取材时应剔除脂肪和钙化，否则会影响切片，出现假阳性或假阴性结果。

组织标本包括动物标本、手术活检标本、尸体解剖标本及细胞标本等，有关各种标本的取材方法分述如下。

一、动物的致死法及取材(一)致死法(1)空气栓塞法向动物静脉内注入一定量的空气，使动物很快死亡。

一般适用大动物，例如兔、犬、猫等动物。

(2)麻醉法可将浸有乙醚或氯仿(三氯甲烷)的棉球连同动物一起放人密闭容器内进行麻醉，也可用4％戊巴比妥作静脉注射，或用20％氨基甲酸乙酯做腹腔注射。

适用于鼠等小动物。

(3)断头法用剪刀剪去动物的头部，待血液流出后立即取材。

适用于小动物。

(4)去头法用重物猛击头后部或将动物头后部猛撞桌沿。

(5)股动脉放血法动物麻醉后，切开股动脉放血致死。

(二)取材注意事项易变质，争取在死后半小时内取材完毕，否则免疫组化染色时会产生背景染色。

(2)切取组织使用的刀、剪要求锋利，避免来回挫动组织。

因动物组织质脆，因此夹取组织时切勿用力过重，以免挤压损伤组织。

二、尸体解剖的取材尸体解剖的取材应根据实际需要进行，一般取材部位和数量如下。

(1)心和大血管右心室一块，左心室一块，主动脉一块，取材部位可在距主动脉瓣5cm处。

(2)肺右下叶一块，切成正方形；左下叶一块，可切成长方形。

(3)肝右叶一块，切成正方形；左叶一块，切成长方形。

(3)脾一块。

(4)胰一块。

(6)肾两肾各一块，包括皮质、髓质和肾盂。

右肾一块切成正方形，左肾一块切成长(7)膀胱一块。

(8)肾上腺左、右各取一块。

(9)消化道食管一块，胃窦部一块，小肠一块，淋巴结一块，直肠一块。

(10)骨脊椎骨一块。

(11)胸腺一块。

(12)子宫宫颈和宫体数块。

(13)睾丸或卵巢各一块。

(14)脑左侧运动区一块，左侧豆状核一块，小脑一块。

标本制作的步骤与技巧标本制作是一项复杂而重要的工作，它能够为我们提供更多的生物学知识。

进行标本制作需要掌握一定的技巧和方法。

在这篇文章中，我们将讨论标本制作的基本步骤和技巧，帮助读者能够更好地进行标本制作。

一、材料准备标本制作的第一步就是材料准备。

需要准备的材料包括：1. 标本材料：标本材料可以是动物、植物等生物体的一部分，如整只动物、树枝、叶子等。

2. 防腐剂：用于保护标本不腐烂，防止昆虫及其它动物吃掉标本。

3. 水杨酸：用于去除标本中的水分，保证标本保存时间更长。

4. 夹板：把标本夹在夹板上，以方便制作和保护标本。

5. 刀具：用于切割标本、修整和清洁标本。

6. 其他工具：如毛刷、吸管等。

二、标本处理1. 清洗：将采集的标本材料进行清洗，以去除多余的沙子、泥土和异物。

2. 处理：在标本上涂上适当的防腐剂，让它渗透进标本中，保护标本不腐烂。

需要注意的是，在涂抹防腐剂时需要均匀涂抹，不能遗漏。

3. 去水：将标本浸泡在水杨酸中，去除标本中的水分。

需要注意的是，标本不要浸泡时间过长，否则会使标本变得脆弱。

4. 固定：把标本夹在夹板上，以便进行后续处理。

需要注意的是，在夹板上夹好标本后，夹板的压力要适当，不要压坏标本。

5. 切割、修整：用刀具对标本进行切割和修整，以保证标本的外观美观和保存时间更长。

三、保存1. 包装：将标本装入封闭的容器中，以保护标本不受损。

2. 存储：将标本存放在干燥、通风、阴凉的环境中，以防止标本受潮、发霉和腐烂。

3. 标注：在标本上标注物种名称、采集地点、采集时间等信息，以便后续的研究和查询。

四、技巧分享1. 选择质量好的标本材料。

标本材料要选取新鲜、完整、无污染的生物体材料。

2. 选择适当的防腐剂。

不同的防腐剂对不同的标本材料有不同的作用，必须根据标本材料的性质选择适当的防腐剂。

3. 选择合适的刀具。

不同的标本需要使用不同的刀具，刀片要锋利，以便快速、准确地进行切割和修整。

4. 保持标本的干燥性。

标本处理操作指南简介本操作指南旨在指导标本处理的正确方法，以确保样本的准确性和完整性。

在进行标本处理时，请务必遵循以下步骤和注意事项。

步骤1. 准备工作：准备工作：- 在进行标本处理之前，需准备好必要的工具和材料，如标本、手套、标签等。

- 确保工作区域的清洁和消毒，以防止污染标本。

2. 标本采集：标本采集：- 根据要求选择合适的标本采集方法，确保采集到代表性的样本。

- 在采集过程中，注意保持标本的无菌和无污染状态。

3. 标本存储：标本存储：- 将采集好的标本及时存放在适当的中，确保干燥、密封并注明标签。

- 若需要冷藏或冷冻保存标本，确保温度适宜，防止标本的变性或受污染。

4. 标本运输：标本运输：- 标本在运输过程中需保持稳定的温度和状态，以免影响后续处理或分析。

- 包装标本时，应使用防护措施，以防泄漏、破损或交叉污染。

5. 标本处理：标本处理：- 根据标本的特性和需求，选择适当的处理方法，如离心、分离、提取等。

- 操作时需谨慎，避免标本的损坏或污染。

6. 废物处理：废物处理：- 处理完标本后，应根据相关法规和规定，将产生的废物予以妥善处理。

- 废物包括使用过的标本、手套等，需要进行分类、封装和正确处置。

7. 记录和报告：记录和报告：- 在整个标本处理过程中，务必做好相关的记录，包括标本的信息、采集时间、处理方法等。

- 将处理完成的标本及相关记录进行归档和报告，以供后续参考和追溯。

注意事项- 每一步操作前都要确保清洁的工作环境和消毒的工具。

- 遵循标本的特性和要求，选择合适的处理方法。

- 避免标本的交叉污染，保证每个标本都有独立的和工具。

- 废物处理遵循相关法规和规定，确保环境和人员的安全。

- 对于特殊标本的处理，如有特殊要求，请参考专门的操作指南。

以上为标本处理操作指南，希望能帮助您正确处理和管理标本，保证实验和研究的准确性和可靠性。

如有任何疑问，请及时咨询相关专业人员。

手术组织标本运送流程及注意事项下载温馨提示：该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。

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海军总医院病理科活体组织检查标本送检规范一、标本采集和送检（常规活检、冰冻标本）（一）标本采集1、具有执业医生资格者才能采集患者的病理标本。

2、凡在本院手术切除或钳取及穿刺的组织标本，均应送病理科检查。

3、常规活检标本采集规范（包括病灶局部穿刺、咬取、切取和手术切除组织）：（1）取材应取到具有代表性的病变部位，尽量避免机械压挤，烧灼等影响诊断的操作。

（2）要保证标本的完整性：离体后的标本应全部完整送至病理科，临床医生不能在病理科发报告之前随意切取患者的病理标本。

（3）标本离体后应立即固定，从离体到固定的时间最长不易超过30分钟。

标本勿在空气中暴露，更不能在阳光下、暖气、火炉旁放置。

也不能将标本直接放在冰箱过夜或用生理盐水代替固定液。

（4）固定液为10%中性福尔马林液，用量为组织标本体积的4-5倍，确保标本全部置于固定液之中。

需要做特殊项目检查（如微生物、电镜、分子生物学等）的标本，应在取才前与病理科沟通，按以便相关的技术要求进行固定或预处理。

（5）空腔标本和大的实质性脏器临床医生必须及时切开固定，固定液一定要充分。

（6）临床医师要求照相或有其它特殊要求须在手术后立即通知病理科或在送检单上注明。

（7）用于固定标本的容器应清洁，开口宜大，避免强行塞入。

（-）病理申请单填写：1、病理申请单应填写患者姓名、性别、年龄、住院号、送检科室、送检医生、送检日期、临床诊断、病例摘要，各项特殊检查结果，治疗或用药情况（妇产科患者一定要填写相关病史、检查和治疗项目）、手术所见，标本数量、部位、名称，固定液种类。

2、如以前曾在我院做过病理检查须注明前次病理检查的病理号。

如在外院手术, 应由临床医师在术前出具证明由家属借来切片，以供参考。

3、结核、肝炎、HIV等传染性标本应注明。

4、申请单与标本必须同时送达，申请单保持清洁，勿放在标本袋中以防止污染。

5、冰冻申请单按以上要求填全后提前1天送至病理科预约次日的冰冻检查，并把相关的影像学资料提供给病理科，以便病理诊断医生提前了解病情，并做充分准备保证冰冻诊断的顺利完成。