标准操作规程(SOP)——呼吸道标本采集

上呼吸道标本的采集和处理上呼吸道是人体呼吸系统的重要部分，疾病常常通过上呼吸道传播。

因此，对上呼吸道标本的采集和处理具有重要意义，可以为临床疾病的确诊和治疗提供有价值的数据。

本文将介绍上呼吸道标本的采集和处理的基本流程和注意事项。

一、标本采集1. 采集工具准备在进行标本采集前，需要准备好以下工具：手套、消毒棉球、采集棉签、标本瓶等。

保证所有工具都是干净和无菌的。

2. 消毒双手采集标本前，务必彻底清洁双手，并戴上干净的手套，以防止交叉感染。

3. 标本采集一般来说，上呼吸道标本的采集可以通过咽拭子和鼻子拭子两种方式进行。

（1）咽拭子采集a. 持拭子，让被采集者将头向后仰；b. 用手指轻轻将舌头掰开，露出扁桃体部位；c. 用咽拭子沿咽壁轻轻刮擦，涂拭几次以确保充分采集样本；d. 将拭子放入标本瓶中，并将瓶盖翻紧。

（2）鼻子拭子采集a. 让被采集者坐直，并向后仰头；b. 握住拭子的一端，沿着鼻腔舒适的方向插入至鼻腔深处（约2.5厘米），然后旋转几次；c. 缓慢地将拭子取出，将其放入标本瓶中，并盖紧瓶盖。

4. 标本处理完成采集后，应及时将标本送到实验室进行处理，以确保采样质量和准确性。

在送检的过程中，需要严格按照相关规定，将标本妥善包装，防止污染和泄漏。

二、标本处理1. 标本储存将采集的上呼吸道标本妥善保存，以确保在送检之前不会失去有效性。

储存条件通常要求在2-8摄氏度下保存，防止细菌和病毒的生长和繁殖。

2. 预处理在进行实验室检测之前，需要对标本进行预处理。

常见的预处理方法包括标本离心，以分离细菌和病毒。

3. 实验室检测标本送到实验室后，将进行一系列的检测，以获取与上呼吸道相关的病原体信息。

具体的实验室检测方法将根据临床需要和实验室的技术能力而有所不同。

三、注意事项1. 采集过程中，要注意动作轻柔，避免对患者造成不适或伤害。

2. 在采集咽拭子时，应特别注意避免刮伤口腔黏膜，以减少出血和痛苦。

3. 采集和处理标本的工具必须干净且无菌，以避免交叉感染。

检验项目标准操作规程（SOP）- 1 - 检验标本的采集一、标本的正确采集标本采集必须符合2个条件，即必须满足检测结果正确性的各项要求和检测结果必须能真实地反映检验对象当前病情，避免干扰因素的存在。

二、标本的贮存标本采集后尽快送至实验室，若不能及时送检，已采集的标本要按检验规定的贮存条件，如室温、冰浴、温浴或防腐贮存，将标本直立置于稳定、干燥、避光、密闭的环境中，避免振摇，以免标本遗洒或溶血影响检测结果。

三、标本的运送必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果一致。

四、标本的签收临床工作人员从口才采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室人员接收临床标本，均应按标准化要求进行，做到认真核对，包括标本来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。

五、标本的处理1、实验室接收标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确性。

2、如果取血后未尽快转送或分离血清、血浆，血清与血块簪时间接触可发生变化。

3、实验室接收标本后处理应注意事项：（1）、时间：实验室接收标本后应尽快予以分类和离心。

①、促凝标本应尽早处理，可在采血5-15分钟后离心；②抗凝标本可采血后立即离心；③非抗凝（无促凝）标本采血30-60分钟后离心；④抗凝全血标本（全血细胞分析、ESR等）不需要离心。

（2）、温度：一般标本为室温（最好是22-25℃）放置；冷藏标本（对温度依赖性分析物）应保持在2-8℃直到温度控制离心。

（3）、采血管放置：应管口（盖管塞）向上，保持垂直立位放置。

（4）、采血管必须封口：管塞移去后会使血PH改变，影响检测结果，封口可以减少污染、蒸发、喷洒和溢出等。

六、分析前的可变因素1、生物因素：可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测方法无关，分为可变的和固定的生物因素。

2、干扰因素：在收集和分析标本过程中，干扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。

呼吸道标本留取标准操作程序
【目的】
指导呼吸道标本的正确采集。

【该SOP变动程序】
本标准操作程序的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：专业主管、科主任。

【步骤】
1.痰液标本的采集以清晨为好，因此时痰量多，含菌量大。

标本收集前，
病人必须用清水漱数次，除去腔内大部分杂菌。

然后用力自气管深部咳出痰液于无菌器皿内，及时送检。

咳痰时应尽量防止唾液及鼻咽部的分泌物混入，以减少污染。

2.痰量极少者可用45C10%氯化钠雾化吸入导痰，一般以清晨第一痰为
好
3.检查结核菌时，必要时可收集24小时痰液，以提高阳性率。

4.支气管分泌物内含的细菌常能正确地反映出下呼吸道中的病理变化，
标本的采集应由专科医生利用支气管镜直接从患者支气管内采取。

5.咽拭采集:嘱病人在留取标本之前，用清水反复漱以减少正常菌群的
污染，将拭子越过舌根到咽后壁或悬壅垂后侧，反复涂抹数次,注意避免拭子接触腔和舌拈膜，置无菌容器中尽快送检。

检验项目标准操作规程（SOP）- 1 - 检验标本的采集一、标本的正确采集标本采集必须符合2个条件，即必须满足检测结果正确性的各项要求和检测结果必须能真实地反映检验对象当前病情，避免干扰因素的存在。

二、标本的贮存标本采集后尽快送至实验室，若不能及时送检，已采集的标本要按检验规定的贮存条件，如室温、冰浴、温浴或防腐贮存，将标本直立置于稳定、干燥、避光、密闭的环境中，避免振摇，以免标本遗洒或溶血影响检测结果。

三、标本的运送必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果一致。

四、标本的签收临床工作人员从口才采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室人员接收临床标本，均应按标准化要求进行，做到认真核对，包括标本来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。

五、标本的处理1、实验室接收标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确性。

2、如果取血后未尽快转送或分离血清、血浆，血清与血块簪时间接触可发生变化。

3、实验室接收标本后处理应注意事项：（1）、时间：实验室接收标本后应尽快予以分类和离心。

①、促凝标本应尽早处理，可在采血5-15分钟后离心；②抗凝标本可采血后立即离心；③非抗凝（无促凝）标本采血30-60分钟后离心；④抗凝全血标本（全血细胞分析、ESR等）不需要离心。

（2）、温度：一般标本为室温（最好是22-25℃）放置；冷藏标本（对温度依赖性分析物）应保持在2-8℃直到温度控制离心。

（3）、采血管放置：应管口（盖管塞）向上，保持垂直立位放置。

（4）、采血管必须封口：管塞移去后会使血PH改变，影响检测结果，封口可以减少污染、蒸发、喷洒和溢出等。

六、分析前的可变因素1、生物因素：可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测方法无关，分为可变的和固定的生物因素。

2、干扰因素：在收集和分析标本过程中，干扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。

检验项目标准操作规程（SOP）- 1—检验标本的采集一、标本的正确采集标本采集必须符合2个条件，即必须满足检测结果正确性的各项要求和检测结果必须能真实地反映检验对象当前病情，避免干扰因素的存在.二、标本的贮存标本采集后尽快送至实验室，若不能及时送检，已采集的标本要按检验规定的贮存条件，如室温、冰浴、温浴或防腐贮存，将标本直立置于稳定、干燥、避光、密闭的环境中，避免振摇，以免标本遗洒或溶血影响检测结果.三、标本的运送必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果一致。

四、标本的签收临床工作人员从口才采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室人员接收临床标本，均应按标准化要求进行，做到认真核对，包括标本来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等,标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档.五、标本的处理1、实验室接收标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确性。

2、如果取血后未尽快转送或分离血清、血浆，血清与血块簪时间接触可发生变化。

3、实验室接收标本后处理应注意事项：（1）、时间：实验室接收标本后应尽快予以分类和离心.①、促凝标本应尽早处理,可在采血5-15分钟后离心；②抗凝标本可采血后立即离心；③非抗凝（无促凝)标本采血30—60分钟后离心；④抗凝全血标本（全血细胞分析、ESR等）不需要离心.（2）、温度：一般标本为室温(最好是22—25℃）放置；冷藏标本(对温度依赖性分析物）应保持在2—8℃直到温度控制离心。

（3)、采血管放置：应管口（盖管塞）向上,保持垂直立位放置。

（4）、采血管必须封口：管塞移去后会使血PH改变,影响检测结果，封口可以减少污染、蒸发、喷洒和溢出等。

六、分析前的可变因素1、生物因素：可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测方法无关，分为可变的和固定的生物因素。

2、干扰因素：在收集和分析标本过程中，干扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符.七、标本采集的基本原则遵照医嘱采集各种标本均应按医嘱执行。

标准操作规程（ＳＯＰ）——一、目的本SOP是为了保证呼吸道标本采集的操作的规范性以及确保采集标本的质量而制定。

二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行呼吸道标本的采集。

三、程序（一）生物安全要求采集疑似人高致病性禽流感病例和不明原因肺炎病人呼吸道标本时，采集人员需以BSL-3级防护；一般流感样病例，呼吸道标本的采集以BSL-2级防护。

具体参见“生物安全个人防护SOP”。

（二）材料1．无菌拭子：聚丙烯纤维头的拭子2．15-mL离心管3．常用的采样液配制：常用的上呼吸道采样液有：pH7.4～7.6的Hank's或MEM液400mL。

加入庆大霉素(50 mg/mL)0.8mL，多粘菌素B(250μg/mL)3.2mL。

加入抗菌素以后重新调节pH值为7.4，配制好以后，分装每个采样管2～3mL，-20℃冻存。

4．压舌板（三）实验步骤1．采集呼吸道标本呼吸道标本：包括鼻拭子、咽拭子、鼻咽抽提物、鼻洗液、咽漱液。

最佳采集时间为发病后的前3天，不超过7天。

（1）鼻拭子：采集者左手扶住患者的下颌部，右手持无菌拭子轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。

以另一拭子擦拭另侧鼻孔。

将拭子头浸入采样液中，在采样液中挤压拭子头部数次，用力折断拭子的尾部，将拭子的尾部弃去。

（2）咽拭子：左手用压舌板压住患者的舌头。

右手持无菌拭子擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁，将拭子头浸入采样液中，在采样液中挤压拭子头部数次，用力折断拭子的尾部，将拭子的尾部弃去。

亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中。

（3）漱口液：用10mL生理盐水漱喉。

漱时让患者头部微后仰，发“噢”声，让生理盐水在咽部转动。

然后，用平皿或烧杯收集洗液。

（4）鼻洗液：让患者取坐姿，头微后仰，用移液管将5 mL生理盐水注入一侧鼻孔，嘱患者同时发K音以关闭咽腔。

然后让患者低头使生理盐水流出，用平皿或烧杯收集洗液。

重复此过程洗两侧鼻孔。

（5）鼻咽抽取物：常用于采集气管和支气管分泌物。

标本的采集标准操作规程（SOP）一、目的确保标本的采集得到有效管理，保证样品的完好、完整、不被污染和污染环境。

二、范围艾滋病研究中心实验室血、尿液标本的采集。

三、责任标本采集员严格按规定操作。

四、定义无五、背景避免在采集标本过程中发生HIV暴露，同时保证采集的标本在质量和数量上满足检测的要求。

六、程序（一）尿液标本的采集1). 所需材料：一次性小便检验杯，卫生纸。

2)方法：每次采集HIV感染者尿液10-30ml。

●将被采者的PID标签贴在一次性带盖小便检验杯上，交给被采集者；●由被采者自己在卫生间内用一次性带盖小便检验杯接中段尿10-30ml；●采集完毕后，由被采集者将尿样交到收集标本处，采集员将检验杯直立按顺序放置；●采集员填写采样记录表，并签上姓名和日期；（二）静脉血的采集1). 设备和耗材乳胶手套、工作服、帽子、口罩、21-口径的蝶形采血针，止血带、10ml、2ml无菌真空采血管（EDTA抗凝，可以直接离心），5ml无菌真空采血管(无添加剂，可以直接离心)，采血套管、医用酒精棉球、无菌棉球、碘伏、采血枕、一次性纸垫、试管架。

2).采血方法每次采血量，根据检测项目决定。

●采血员穿工作服、洗手、戴手套、口罩、帽子；●用70%酒精清洁采血工作台面，铺上一次性纸垫；●核对被采血者身份；●准备好适当规格的采血管（10ml、5ml、2ml、2ml）；●将采被采血者PID贴在采血管上；●请被采血者坐在凳子上，露出一只胳膊直至上臂，袖口不可过紧；●请被采血者将胳膊放在采血枕上，掌心向上，用止血带扎紧上臂，肘部应低于心脏水平线；●在肘前区寻找鼓起的静脉，并且该静脉与周围组织固定良好，触摸该静脉，确认是静脉；●用碘伏成同心圆状向外消毒，不得用手接触已消毒部位；●将采血针头一侧的螺旋口与采血套管旋转连接，拧紧；●让被采血者用力握拳；●在采血入针位置，用左手固定静脉；●沿血流方向，以与前臂成15o将针头插入静脉；●沿采血套管方向将采血管推入；●血液自动流入采血管, 请被采血者慢慢松开拳头；●采血管装满后，血流自动停止，抽出并更换另一真空采血管后，血液又自动流入；●对已经采血完毕的采血管轻轻摇动，以便采集的血液与抗凝剂充分接触，抗凝；●将收集完毕的采血管直立按顺序插入试管架内；●采血完毕后，松开止血带，血流停止，将采血针头迅速拔出，同时用无菌棉球按住采血伤口；●嘱咐被采血者屈肘并按住棉球5分钟以上，抬起胳膊使之高于心脏水平；●将针头弃入专门的医用利器盒中，一次性纸垫等放入污物桶；●填写采样记录表，并签上姓名和日期。

SOP_15-5 病原微生物标本的采集运送标准操作程序一、病原微生物标本采集和运送基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。

2.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。

3.在感染的急性期、使用抗生素前或伤口局部治疗前收集样本。

4.收集真正感染的病灶处的样本，且避免邻近区域常居菌群的污染。

5.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

6.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收集样本。

7.采样后立即送检，最好在2h内。

为保持微生物活性，棉拭子等标本宜放入恰当的运送培养基送检。

如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。

8.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

（要标明病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、采集时间等）二、血培养标本采集和运送1.采集指征：临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血流感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。

及时、准确地从患者血液中分离出病原菌,才能正确实施有效地抗菌治疗,从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。

2.采集方法：1.采血时机:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。

2.采血次数及间隔:在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本。

对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。

对发热原因不明者两次抽血间隔60min;必要时于24～48h后再抽血2次。

因为1次血培养不足以说明问题,且会遗漏阳性结果。

国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%,2次检出90%,3次检出99%。

国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%,18家医院2次以上血培养阳性率14.8%。

自行咳痰采集法 取患者晨痰
留置于无菌容器
用冷开水漱口
深呼吸后用力咳出
呼吸道深部痰液
立即送检 立即送检 吸取痰液采集法 气管镜采集法 咽拭子采集法 24h 痰标本采集法 标本量不少于1ml
清水漱口 取出无菌拭子 用压舌板轻压舌部 蘸取少量生理盐水 迅速擦拭患者口腔两侧腭弓及咽、扁桃体分泌物 迅速把咽拭子插入无菌试管内塞紧 立即送检 叩击患者背部 患者取适当卧位 将集痰器与吸引器连接 抽吸痰液2～5ml 于集痰器内 记录痰标本总
量外观和性状 广口集痰瓶内 加少量清水 患者晨起进食前漱口后第一口痰开始留取，至次日晨起进食漱口后最后一口痰结束 全部痰液留入集痰瓶内 立即送检 采集标本 气管镜引导下 置于无菌容器。

生效日期: 2007年1月1日责任科室: _________________ 页码: 第1页共 2页________________医院检验科_____室（SOP）文件撰写人：审核人：批准人：批准日期：2007年7月31日启用日期：2007年8月 1 日二零零七年七月一日制编写修改内容及修改人批准人生效日期生效日期: 2007年1月1日责任科室: _________________ 页码: 第1页共 2页批准页根据《临床检验操作规程》(2006年,第三版)，化学放光仪（Anthos lucy）, 洗板机（Anthos fluido）使用说明书；免疫检验有关试剂盒、质控品的使用操作说明书；《消毒技术规范》以及医院内部有关管理制度、生物安全制度的规定和要求，临床免疫检验操作规程文件NO.2版经实际运行，现予以批准通过，于 2007年 8月 1日起生效并开始实施。

免疫室和检验科有关工作人员必须认真学习，严格遵照执行。

（NO.2版依据检验技术和我科工作发展及管理工作的需求进行的补充完善和改进另行通知）。

任何个人不得更改，实际工作中如发现不妥之处，请按程序以文字形式向审核人汇报；在未经批准人同意/批准新文件之前，仍执行此文。

_____________医院检验科2007年7月31日编写修改内容及修改人批准人生效日期生效日期: 2007年1月1日责任科室: _________________ 页码: 第1页共 2页呼吸道九联检操作规程1.项目中文名称：九项呼吸道感染病原体IgM抗体检测（间接免疫荧光法）项目英文名称：PNEUMOSLIDE IgM2.实验原理与方法：2.1 原理：间接免疫荧光法（IFA）是基于待测样本中的抗体与吸附在载玻片上的抗原发生的反应。

样本中存在的特异性抗体和抗原反应，未与抗原结合的免疫球蛋白在洗涤步骤中除去。

在下一步骤中，抗原-抗体复合物与荧光素标记的抗人球蛋白反应。

用免疫荧光显微镜观察结果。

呼吸道标本采集方法
痰标本合格率很低的主要原因在于自然咳痰极易受到上呼吸道正常菌群的污染，深部浓痰不易咳出，病人不懂无菌留取标本意识（比如直接吐于纸巾上），医护人员未监督病人正确咳痰等。

以下根据不同部位，不同取材方法进行讲述：
1.上呼吸道标本
a.鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深部停留20～30s，然后迅速地抽出（注意：避免受口或咽喉中细菌的污染）。

b.喉部标本：用压舌板压舌，用无菌拭子从咽后、扁桃体和发炎区采样。

喉拭子培养不能用于会厌发炎的病人。

将转运管安全封口，注明标识和日期，将标本尽快送到实验室。

2.下呼吸道标本
a.采集标本以晨痰为好。

b.自然咳痰法：在留取痰之前，用清水反复漱口，从气管深部咳出痰，吐入无菌容器内。

c.支气管镜下采集法：在病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。

d.气管穿刺法：在环甲膜下穿刺抽取痰液，收集标本，适用于厌氧菌培养。

e.棉拭采集法：用无菌棉拭子轻轻擦拭病人鼻咽部黏膜，留取标本，置无菌试管内送检，放置时间不应超过2h。

f.支气管灌洗液：用不少于140ml无菌生理盐水灌洗小支气管和肺泡，40～80ml回收的灌洗液中包含约1ml支气管末梢和肺泡中的分泌物；弃去前段可能污染的部分，收集其余部分后立即送检。

g.保护毛刷（PSB）：保护毛刷因有双层套管保护，不易污染上呼吸道和口腔定植菌。

用无菌剪刀剪断毛刷，置于含1ml生理盐水的无菌容器中（仅供需氧培养），快速送检。