葡萄球菌诱导型克林霉素耐药的检测(一)

D-试验检测耐红霉素葡萄球菌对克林霉素诱导耐药研究目的了解本院临床分离的耐红霉素葡萄球菌中诱导型克林霉素的检出率及耐药状况。

方法按临床试验室标准化研究所(CLISI)K-B纸片法检测葡萄球菌的耐药性,同时CLSI2004年推荐的双纸片协同法(D-试验)检测红霉素和克林霉素的耐药性。

结果293株葡萄球菌D-试验阳性的是62.2%,其中耐甲氧西林葡萄球菌57.7%,甲氧西林敏感葡萄球菌4.5%。

结论实验室常规开展D-试验检测红霉素对克林霉素的诱导耐药,提供临床医师合理选用大环内酯类、林可霉素类和链阳菌素B类(MLSB)抗菌药物。

【Abstract】Objective To understand the drug resistance of Staphylococcus to erythromycin and clindamycin and the prevalence of inducible clindamycin resistance of erythromycin-resistant Staphylococcus in our hospital.Methods Kirby-Baucr disk diffusion method were used to detect the drug resistancd of Staphylicoc- cus,and D-test suggested by CLSI 2004 guidelines were used to determine the induciabl clindamycin resistance in erythromycin resistance StaphylicoccusResults Among 293 cases,D-test positive rate 62.2%,and methecillin resistance staphylococcus (MRS)positive rate 57.7%,Methecillin sensitive staphylococcus positive rate 4.5%.Conclusion The clinical microbiology laboratory should detect the induciabl clindamycin resistance in erythromycin resistance Staphylicoccus by D-test. In order to help physicians to select reasonable macrolide-lincosarnide-streplogramin B(MLSB)for Staphylicoccus infection.【Key words】Staphylicoccus; D-Test;Drug resistance葡萄球菌广泛存在于自然界、人和动物的皮肤及与外界相通的腔道中。

葡萄球菌对克林霉素诱导耐药的检测和分析摘要】目的:调查临床分离的葡萄球菌对克林霉素诱导耐药状况。

方法:收集本院2012-2013年分离到的47株红霉素耐药、克林霉素敏感临床分离株，按美国国家临床实验室标准化研究所（CLSI/NCCLS)2004年推荐的双纸片法做克林霉素诱导耐药（D-试验）。

结果:47株葡萄球菌中克林霉素诱导耐药株16（34%）。

结论:我院葡萄球菌克林霉素诱导耐药率较高，应提高对诱导耐药葡萄球菌的监测和控制。

【关键词】克林霉素红霉素葡萄球菌 D 试验【中图分类号】R969 【文献标识码】A 【文章编号】1672-5085（2014）16-0150-01随着抗生素的不断发展和大量使用，葡萄球菌对克林霉素在体外敏感，但临床无效的病例不断上升。

多数葡萄球菌属对大环内酯类耐药的机制是靶位的改变和外排泵机制。

msrA基因编码对大环内酯类耐药是产生一种外排泵；erm基因编码使细菌核糖体23sRNA大亚基2058位的腺苷酸甲酰化引起的，造成细菌核糖体对大环内酯类—林可霉素—链阳菌素B（MLSB）类药物的亲和力降低，对克林霉素产生诱导耐药，同时也对链阳菌素B耐药，因此也称为大环内酯类—林可霉素—链阳菌素B（MLSB）耐药；少数是产生大环内酯类抗生素磷酸转移酶，使抗生素失活。

检测葡萄球菌的克林霉素诱导耐药率可以指导临床合理的经验用药和了解流行情况。

1 材料与方法1.1 材料1.1.1 菌株收集江西省南昌县人民医院2012年1月-2013年12月红霉素耐药、克林霉素敏感临床分离株47株，其中金葡菌11株，凝固酶阴性葡萄球菌36株。

标本种类包括痰液、咽拭子、脓液。

1.1.2试剂葡萄球菌的细菌鉴定为杭州天和微生物试剂有限分司;药敏试验培养基为MH培养基（江门凯林贸易公司）；克林霉素、红霉素纸片（英国BBL公司产品）。

1.1.3方法：双纸片法检测出克林霉素诱导耐药（D试验）：根据2004年NCCLS[推荐在MH琼脂培养基上贴克林霉素（2μg/片）纸片和红霉素（15μg/片）纸片，纸片边缘距离为16～26mm，孵育16～18h。

丘脑-垂体-肾上腺皮质功能,过度兴奋肾上腺髓质,出现生理损害和反应,如加快分解代谢㊁肌肉紧张㊁增快心率㊁增高血压㊁躁动不安,且患者呈非生理状态,因此,患者在非生理状态会严重影响诊疗效果和内镜操作,干扰栓塞㊁硬化㊁套扎治疗的准确性,加大治疗盲目性,引发再出血可能性㊂丙泊酚麻醉维持时间短,见效速度快,持续输注具有恢复速度快㊁毒性小㊁体内无蓄积㊁血药浓度稳定等特征,已发展为临床一线麻醉用药㊂但对心血管有明显抑制作用,针对缺乏血容量者,可能会引发循环衰竭㊂且药物代谢途径为肝脏,若肝硬化患者使用此药物麻醉,代谢速度缓慢,且停药后,苏醒时间长,肝脏负担加重㊂本研究中共纳入80例食管胃底静脉曲张内镜治疗术患者,分组讨论后,相比丙泊酚麻醉的对照组患者,采用七氟烷吸入全身麻醉的研究组血流动力学指标更为稳定,苏醒速度快,也同时证实了丙泊酚全凭静脉麻醉效果略次于七氟烷吸入麻醉,且研究报告与以往报道结果[3]相符㊂七氟烷也为临床手术常用麻醉药物之一,具有苏醒速度快㊁诱导快速,患者心血管受影响较小等优势㊂对肝肾功能影响小,体内生物转化的可能性小,药物大部分成分均从肺组织排出[4],仅少量从尿液排出,为此,可保证麻醉安全性㊂麻醉后,患者均为睡眠状态,无呛咳㊁躁动或其余不适,与生理状态相似,减弱胃肠蠕动,舒展官腔,内镜医生可在患者安静的状态下,明确观察到病变微小处,准确诊断㊂尤其是套扎㊁栓塞㊁硬化等干预食管胃底曲张静脉时,患者呈放松状态,不会出现呕吐㊁恶心症状,视野清晰,可仔细观察靶血管,准确定点,降低因注射针滑坡血管㊁注射不准确㊁套扎不完全等不良事件㊂综上所述,建议临床在制定食管胃底静脉曲张内镜术手术方案时考虑采用七氟烷吸入麻醉,此麻醉方式相对丙泊酚静脉麻醉,术后苏醒速度快㊁安全㊁血流动力学稳定,值得临床推广㊂4　参考文献[1]　王明仓,陈玲阳,周春莲,等.三种镇静方法用于内镜下食管胃底静脉曲张结扎术效果比较[J].浙江医学,2015,37 (19):1607.[2]　周光文,杨连粤.肝硬化门静脉高压症食管㊁胃底静脉曲张破裂出血诊治专家共识(2015)[J].中国实用外科杂志, 2015,10(10):1086.[3]　刘迎春.上消化道出血胃镜检查中应用丙泊酚静脉麻醉的价值[J].现代消化及介入诊疗,2016,21(4):632. [4]　刘玉明,姚志雄,叶孝银,等.盐酸羟考酮注射液复合丙泊酚麻醉用于内镜下食管胃底静脉曲张套扎术的疗效和安全性[J].岭南现代临床外科,2016,16(3):314.[收稿日期:2018-12-23　编校:王丽娜]微量肉汤稀释法检测金黄色葡萄球菌诱导型克林霉素耐药结果分析李秋燕,夏志杨,熊小敏,刘志琼,陈婉婷　(广东省东莞仁康医院检验科,广东　东莞　523952)[摘　要]　目的:分析微量肉汤稀释法检测金黄色葡萄球菌诱导型克林霉素耐药结果㊂方法:收集门诊患者和住院患者标本中分离的金黄色葡萄球菌共计372株进行临床研究㊂所有样本给予药敏试验㊁克林霉素诱导耐药试验,分析372株金黄色葡萄球菌对红霉素㊁克林霉素的耐药表型,对耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)和甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌(MSSA)的菌株数量,比较诱导型和结构型克林霉素耐药率之间的差异㊂结果:共计372株金黄色葡萄球菌中,MRSA共计205株,占55.11%(205/372);而MSSA共计167株,占44.89%(167/372)㊂结构型耐药97株,占26.06%(97/372)㊂诱导型耐药114株,占30.65%(114/372)㊂MRSA与MSSA中结构型耐药分别为34.15%㊁41.92%,差异无统计学意义(P>0.05),MRSA中诱导型耐药为13.17%,明显低于MSSA的26.35%,且差异有统计学意义(P<0.05)㊂结论:微量肉汤稀释法能够为指导临床抗生素的合理应用提供可靠依据㊂[关键词]　微量肉汤稀释法;金黄色葡萄球菌;诱导型;结构型Detection of Inducible Clindamycin Resistance in Staphylococcus aureus by Microbroth Dilution Method LI Qiu-yan,XIA Zhi-Yang,XIONG Xiao-min,et al(Departncent of laboraton,Guangdong Dongguan Renkang Hospital,Dongguan523952,China)Abstract:Objective To analyze the results of microbroth dilution method for detecting inducible clindamycin resistance of Staphylococcus aureus.Method A total of372strains of Staphylococcus aureus isolated from outpatients and inpatients in our hospital were collected for clinical study.Drug susceptibility test and clindamycin induced resistance test were used to analyze 372strains of Staphylococcus aureus resistant to erythromycin and clindamycin.The number of strains resistant to methicillin-resistant Staphylococcus aureus(MRSA)and methicillin-sensitive Staphylococcus aureus(MSSA)was compared.Differences in clindamycin resistance rates among configurations.Results There were372strains of Staphylococcus aureus,205strains of MRSA,accounting for55.11%(205/372),while167strains of MSSA,accounting for44.89%(167/372).97strains of struc⁃tural drug resistance accounted for26.06%(97/372).114strains of inducible drug resistance accounted for30.65%(114/ 372).Structural resistance was34.15%and41.92%in MRSA and MSSA,respectively.There was no significant difference (P>0.05).Inducible resistance was13.17%in MRSA,which was significantly lower than that in MSSA(26.35%),the difference was statistically significant(P<0.05).Conclusion Microbroth dilution method can provide reliable basis for guiding the rational application of antibiotics in clinic.Key Words:Microbroth dilution method;Staphylococcus aureus;Inducible type;Structural type 金黄色葡萄球菌是临床上引起化脓性感染㊁肺炎等感染性疾病的主要病原性葡萄球菌,治疗中以红霉素为代表的大环内酯类药物和以克林霉素为代表的林可霉素类抗菌药为主[1]㊂其中克林霉素的有两种耐药表型,分别为结构型和诱导型[2]㊂为了观察金黄色葡萄球菌诱导型克林霉素的耐药性,我院使用了微量肉汤稀释法进行检测,为后续的临床抗生素的应用提供参考㊂现报告如下㊂1　资料与方法1.1　菌株来源:收集2016年1月~2018年12月本院门诊患者和住院患者标本中分离的金黄色葡萄球菌,剔除同意患者同种标本重复分离的菌株,共计372株进行临床研究㊂所有菌株均经血浆凝固酶实验以及细菌鉴定分析仪确定㊂质控菌株为ATCC29213,购自广东省临床检验中心㊂1.2　仪器与试剂:细菌鉴定药敏分析仪:德国西门子公司生产,Mmcroscan-AS4型;CAMHB肉汤和PC33型葡萄球菌鉴定药敏复合板均为西门子公司生产的配套产品㊂1.3　方法1.3.1　药敏试验:红霉素㊁克林霉素的耐药性使用微量肉汤稀释法进行检测㊂红霉素敏感:≤0.5μg/ml为判断折点,1~ 4μg/ml位中介折点,≥8μg/ml为耐药折点;克林霉素敏感:≤0.5μg/ml为判断折点,1~2μg/ml位中介折点,≥4μg/ml为耐药折点㊂所有操作和标准严格按照2015版CLSI标准执行㊂1.3.2　克林霉素诱导耐药实验:在复合药敏孔中放置4μg/ml红霉素以及0.5μg/ml克林霉素,菌液浓度配置为5×105CFU/ml,放置于35℃的恒温培养箱中孵育18~24h,然后观察药敏孔中的情况判断药敏实验结果㊂阳性结果判断标准[3]:复合药敏孔中见细菌生长㊂1.3.3　耐药表型判断[4]:结构型耐药:红霉素和克林霉素均耐药;诱导型耐药:红霉素耐药,克林霉素敏感,诱导实验阳性㊂1.4　分析指标:分析2016年~2018年372株金黄色葡萄球菌对红霉素㊁克林霉素的耐药表型,对耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)和甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌(MSSA)的菌株数量,比较诱导型和结构型克林霉素耐药率之间的差异㊂1.5　统计学处理:所有数据采用SPSS19.0统计学软件进行处理,计量资料以均数±标准差(x±s)表示,采用t检验;计数资料以率(%)表示,行χ2检验㊂以P<0.05为差异有统计学意义㊂2　结果2.1　金黄色葡萄球菌对红霉素㊁克林霉素的耐药表型:2016年~ 2018年共计372株金黄色葡萄球菌中,MRSA分别为45株㊁75株㊁85株,共计205株,占55.11%(205/372);而MSSA分别64株㊁52株㊁51株,共计167株,占44.89%(167/372)㊂结构型耐药97株,占26.06%(97/372)㊂诱导型耐药114株(2016年MRSA 12株,MSSA22株;2017年MRSA27株,MSSA13株;2018年MR⁃SA31株,MSSA9株),占30.65%(114/372)㊂详见表1㊂表1　金黄色葡萄球菌对红霉素㊁克林霉素的耐药表型(株)项目2016年(n=109)MRSA MSSA2017年(n=127)MRSA MSSA2018年(n=136)MRSA MSSA合计EM-S/CM-S4134861752 EM-S/CM-I0201003 EM-S/CM-R0000000 EM-I/CM-S3******* EM-I/CM-I0210104 EM-I/CM-R1000102 EM-R/CM-S142935193713147 EM-R/CM-I47959741 EM-R/CM-R199241027897合计4564755285513722.2　诱导型和结构型克林霉素耐药率之间的差异比较:MR⁃SA与MSSA中结构型耐药分别为34.15%㊁41.92%,经比较,差异无统计学意义(P>0.05)㊂MRSA中诱导型耐药为13.17%,明显低于MSSA的26.35%,差异具有统计学意义(P<0.05)㊂详见表2㊂表2　诱导型和结构型克林霉素耐药率之间的差异比较[例(%)]组别例数结构型耐药诱导型耐药MRSA20570(34.15)27(13.17) MSSA16770(41.92)44(26.35)χ2值2.36710.346P值0.1240.0013　讨论 红霉素是治疗革兰阳性球菌所导致各种感染的主要药物,也是青霉素过敏患者的替代药物[5]㊂克林霉素是治疗革兰阳性球菌和厌氧菌多导致的感染,同时是金黄色葡萄球菌所导致的骨髓炎首选药物[6]㊂但是随着抗生素滥用情况的日益严重,MRSA检出率呈现逐年升高的趋势,葡萄球菌对于大环内脂类抗菌药物的耐药性也逐年升高㊂ 研究发现,葡萄球菌对于大环内脂类抗菌药的耐药机制主要是药物泵出以及核糖体药物结合靶位的改变两个方面[7]㊂泵出型耐药由msrA基因编码,所表现出来的是葡萄球菌对克林霉素敏感,而对红霉素呈现耐药表现,诱导试验结果为阴性㊂核糖体药物结合靶位改变时通过erm基因进行调控的,其变异包括两种,一种是自身结构变异,也被称为结构型耐药,细菌对红霉素和克林霉素同时耐药;另一种是红霉素诱导产生的变异,也被称为诱导型耐药,表现为红霉素耐药,对克林霉素敏感,但是经过红霉素诱导后克林霉素耐药[8]㊂诱导型耐药虽然在体外药敏试验中表现为克林霉素敏感,但是实际的治疗中克林霉素的治疗是无效的[9]㊂在临床检测中,结构型耐药最容易被检测出,而诱导型耐药也需要被检测,为临床抗菌素的应用提供指导㊂目前临床应用的实验室检测方法分为D试验法和微量肉汤稀释法㊂D试验法检测结果简单直观,更适用于手工检测,而微量肉汤稀释法更合适仪器检测[10]㊂ 在本次研究中,2016年~2018年共计372株金黄色葡萄球菌中,MRSA共计205株,占55.11%(205/372);而MSSA共计167株,占44.89%(167/372)㊂结构型耐药株97株,占26.06%(97/372)㊂诱导型耐药株114株,占30.65% (114/372)㊂可见MRSA已经占有主要地位㊂在耐药分型中,诱导型高于结构型㊂从耐药分型差异上看,MRSA与MSSA中结构型耐药分别为34.15%㊁41.92%,差异无统计学意义(P> 0.05),MRSA中诱导型耐药为13.17%,明显低于MSSA的26.35%,差异具有统计学意义(P<0.05)㊂在国内学者的报道中,诱导型克林霉素耐药要高于本次研究,考虑与细菌耐药基因的地区差异和抗生素的使用差异相关㊂ 综上所述,微量肉汤稀释法能够为指导临床抗生素的合理应用提供可靠依据,临床抗生素的应用应以检验结果为指导,避免抗生素的滥用造成耐药菌株的流行㊂4　参考文献[1]　李　英.儿科患者院内感染金黄色葡萄球菌耐药基因检测及耐药情况分析[J].中国病原生物学杂志,2016,11(1): 82-86.[2]　张静华,袁应华,刘　妍,等.2种表型试验检测葡萄球菌诱导型克林霉素耐药的评估及基因分析[J].检验医学, 2015,30(12):1238-142.[3]　全国细菌耐药监测网.2014~2017年中国儿童及新生儿患者细菌耐药监测研究[J].中华医学杂志,2018,98(40): 3279-3287.[4]　宋　涛,张平安.金黄色葡萄球菌克林霉素诱导耐药率[J].中国感染控制杂志,2016,15(6):430-431,435. 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诱导型克林霉素耐药葡萄球菌的检测发表时间：2013-04-15T09:52:31.543Z 来源：《医药前沿》2013年第5期供稿作者：孟洁[导读] 临床微生物实验室常规进行D试验检测葡萄球菌中红霉素对克林霉素的诱导耐药性。

孟洁（江苏省大屯煤电公司中心医院检验科江苏徐州 221611）【摘要】目的：了解我院葡萄球菌对红霉素,克林霉素的耐药性，以及红霉素对克林霉素诱导耐药的发生率。

方法：采用K一B法检测葡萄球菌对红霉素和克林霉素的耐药性，头孢西丁纸片扩散法检测耐甲氧西林葡萄球菌，D试验检测诱导型克林霉素耐药表型。

结果：所有156株葡萄球菌中对红霉素和克林霉素耐药(cMLS)为88 株(56.4%); 对红霉素耐药对克林霉素敏感但D 试验阳性(iMLS)为 37 株(23.7%); 对红霉素耐药对克林霉素敏感但D 试验阴性(MS)为31 株(19.9%)。

结论：临床微生物实验室常规进行D试验检测葡萄球菌中红霉素对克林霉素的诱导耐药性。

以免出现错误的药敏结果，而误导临床医生正确选用大环内酯类、林可霉素类、链阳霉素B类（MLS）抗生素。

【关键词】葡萄球菌红霉素克林霉素 D 试验【中图分类号】R446 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752（2013）05-0061-02 葡萄球菌广泛分布自然界，多存在于环境中以及人与动物的皮肤黏膜上，可致多种化脓性感染，是引起社区和医院感染的主要病原菌。

大环内酯类、林可酰胺类和链阳菌素B类抗生素被广泛使用于临床治疗葡萄球菌,其中克林霉素由于其组织渗透性强、价格低和可口服等特点,所以常被作为对青霉素过敏或耐甲氧西林葡萄球菌的首选替代药物,特别是皮肤和软组织的感染。

自动化仪器进行药敏试验时,cMLS 型耐药的葡萄球菌和B群链球菌可以准确的测定出，而iMLS型和MS型耐药菌株则无法鉴别,为区分这两种表型CLSI推荐了一种纸片法D试验。

本试验采用D试验检测临床分离的红霉素耐药葡萄球菌。

葡萄球菌中红霉素诱导型克林霉素耐药性分析【摘要】为了解葡萄球菌中可诱导的克林霉素耐药在我院的发生情况，用K-B法检测2006年1月―2007年2月246株葡萄球菌对12种抗菌药物的耐药性，双纸片法测定红霉素对克林霉素的诱导耐药表型。

结果万古霉素和替考拉宁抗菌活性最强。

在所检测的246株葡萄球菌中，D试验阳性菌占所检测葡萄球菌的16.3%(40/246)，占红霉素耐药而克林霉素敏感菌株(78株)的51.3%，甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌和甲氧西林耐药凝固酶阴性葡萄球菌对红霉素及克林霉素同时耐药分别占59.8%和52.6%。

在红霉素耐药而克林霉素敏感的金黄色葡萄球菌和凝固酶阴性葡萄球菌中，D试验阳性即对克林霉素具有诱导耐药性者分别为60.5%和40.0%。

我院有60.5%的金黄色葡萄球菌和 40.0%凝固酶阴性葡萄球菌对克林霉素具有诱导耐药性，临床微生物室应开展D试验，检测葡萄球菌中红霉素对克林霉素的诱导耐药，以指导临床合理使用抗生素。

【关键词】葡萄球菌红霉素克林霉素耐药性葡萄球菌属广泛存在于自然界，目前已是引起医院和社区感染的常见病原菌，特别是耐甲氧西林葡萄球菌(methicillin resistant staphylococcus，MRS)，对β-内酰胺类抗菌药物及其衍生物表现为多重耐药［1］。

目前大环内酯类即大环内酯类-林可霉素类-B类链阳霉素类抗菌药物(MLSb)常用于临床治疗MRS引起的感染，特别是对青霉素类过敏的患者，而常规的药敏试验不能检测可诱导的克林霉素耐药，影响临床对克林霉素的正确选用［2］。

为了解我院葡萄球菌属中克林霉素的诱导型耐药情况，我们对临床分离的246株葡萄球菌属进行了D试验即克林霉素诱导试验检测，现在报告如下。

1 材料与方法1.1 材料1.1.1 菌株收集我院2006年1月―2007年2月临床送检标本中分离出的246株葡萄球菌，其中金葡菌136株，凝固酶阴性葡萄球菌110株。

耐红霉素葡萄球菌对克林霉素诱导型耐药的检测杨燕;孙长贵;曾贤铭;张丽君;成军;钱文坚【期刊名称】《国际检验医学杂志》【年(卷),期】2007(028)003【摘要】目的了解本院临床分离的葡萄球菌对克林霉素诱导型耐药的发生率,帮助临床医师正确选择药物.方法采用K-B纸片琼脂扩散法检测葡萄球菌对红霉素和克林霉素的耐药性,按照CLSI/NCCLS推荐的D-试验方法检测克林霉素诱导型耐药.结果 133株受试葡萄球菌对红霉素和克林霉素耐药菌株数分别为66株(49.6%)和43株(33.3%),66株耐红霉素葡萄球菌中有20株(其中金黄色葡萄球菌10株、表皮葡萄球菌9株、腐生葡萄球菌1株)为克林霉素诱导型耐药株,占红霉素耐药株的30.3%.在红霉素耐药金黄色葡萄球菌和凝固酶阴性葡萄球菌中,克林霉素诱导型耐药的检出率分别达38.5%和25.0%.对红霉素和克林霉素同时敏感或克林霉素耐药株中,未检到克林霉素诱导型耐药株.结论对红霉素耐药而克林霉素敏感的葡萄球菌应进行D-试验,报道克林霉素诱导耐药性结果,以便临床正确选择药物.【总页数】3页(P206-208)【作者】杨燕;孙长贵;曾贤铭;张丽君;成军;钱文坚【作者单位】310013,杭州,解放军第117医院检验科;310013,杭州,解放军第117医院检验科;310013,杭州,解放军第117医院检验科;310013,杭州,解放军第117医院检验科;310013,杭州,解放军第117医院检验科;310000,浙江,温州医学院【正文语种】中文【中图分类】R978.15【相关文献】1.耐红霉素葡萄球菌对克林霉素诱导型耐药的检测 [J], 钱文坚;孙长贵;杨燕2.耐红霉素葡萄球菌和β溶血链球菌的诱导型克林霉素耐药 [J], 杨秀华;王金良3.葡萄球菌中红霉素对克林霉素诱导型耐药的检测及耐药性分析 [J], 李玉珍4.耐红霉素葡萄球菌对克林霉素诱导型耐药的检测 [J], 杨燕;孙长贵;曾贤铭;张丽君;成军;5.耐红霉素葡萄球菌中克林霉素诱导型耐药株的检测分析 [J], 郭红荔;符惠群;吴坤芳因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

葡萄球菌临床分离株克林霉素诱导耐药的检测贾坤如;胡晓彦;胡龙华;熊建球;曹莉萍;桂炳东【期刊名称】《南昌大学学报（医学版）》【年(卷),期】2007(047)005【摘要】目的了解葡萄球菌对克林霉素和红霉素的耐药性及红霉素对克林霉素诱导耐药的情况,以便更准确地指导临床合理使用抗生素.方法采用纸片扩散法检测葡萄球菌对克林霉素和红霉素的耐药性,依据NCCLS2004年发布的M100-S14 D试验方法检测并判读红霉素对克林霉素的诱导耐药性,头孢西丁纸片扩散法检测耐甲氧西林葡萄球菌.结果 92株金黄色葡萄对红霉素和克林霉素均耐药率的有44株,占47.8%,对红霉素耐药而克林霉素敏感的有34株,其中D试验阳性的有18株,占红霉素耐药而克林霉素敏感的52.9%,检出耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)56株,占60.8%;77株凝固酶阴性的葡萄球菌(CNS)对红霉素和克林霉素均耐药的有31株,占40.2%,对红霉素耐药而克林霉素敏感的有31株,其中D试验阳性14株,占红霉素耐药而克林霉素敏感的45.2%,检出耐甲氧西林凝固酶阴性葡萄球菌(MRCNS)51株占66.2%.结论葡萄球菌临床分离株对红霉素耐药性严重,红霉素对克林霉素诱导耐药的发生率较高,临床微生物实验室必需开展D试验,才能更准确地指导临床合理使用抗生素.【总页数】3页(P30-32)【作者】贾坤如;胡晓彦;胡龙华;熊建球;曹莉萍;桂炳东【作者单位】南昌大学第二附属医院检验科,南昌,330006;南昌大学第二附属医院检验科,南昌,330006;南昌大学第二附属医院检验科,南昌,330006;南昌大学第二附属医院检验科,南昌,330006;南昌大学第二附属医院检验科,南昌,330006;南昌大学第二附属医院检验科,南昌,330006【正文语种】中文【中图分类】R446.5【相关文献】1.葡萄球菌中诱导型克林霉素耐药株的检测及分析 [J], 钟红2.临床分离的葡萄球菌耐药性及克林霉素诱导耐药研究 [J], 周绮妮;章赛飞;梁玲飞;梁军兵3.262株葡萄球菌诱导型克林霉素耐药的检测与分析 [J], 林燕;李世云;刘鸿明4.772株葡萄球菌中红霉素对克林霉素诱导耐药检测 [J], 钱凤根;唐文明5.54株葡萄球菌中红霉素诱导克林霉素耐药株检测 [J], 许丽萍;张险峰;张莹因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。