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碘量法测定淀粉含量简介碘量法是一种常用的测定淀粉含量的方法。
淀粉是植物体内最重要的储能物质之一，广泛存在于植物的种子、块茎、根状茎和果实等部位。
淀粉的含量对于粮食、食品、饲料等行业具有重要的意义。
通过测定淀粉的含量，可以评估原料的质量和加工过程的效果。
原理碘量法是通过测定淀粉与碘之间的反应来测定淀粉的含量。
在碘溶液中，淀粉会形成蓝色复合物，其颜色的深浅与淀粉的含量成正比。
因此，通过比色法可以测定淀粉的含量。
实验步骤1.准备样品：将待测样品研磨成细粉，取约0.1g的样品称入50mL锥形瓶中。
2.加入试剂：向锥形瓶中加入10mL蒸馏水和2mL 1% 硫酸溶液。
3.摇匀：用玻璃棒搅拌溶解样品。
4.加入试剂：向锥形瓶中加入10mL 1% 碘溶液。
5.加入试剂：向锥形瓶中加入蒸馏水，使溶液体积达到刻度线。
6.摇匀：用玻璃棒搅拌溶液，使样品充分与试剂反应。
7.静置：将锥形瓶放置静置10分钟。
8.滴定：用0.1mol/L Na2S2O3溶液滴定至溶液颜色变为浅黄色。
9.计算：根据滴定所需的Na2S2O3溶液体积计算淀粉的含量。
注意事项1.确保使用的试剂纯度高，以避免对实验结果的影响。
2.在摇匀和静置的过程中，要确保样品与试剂充分反应。
3.在滴定的过程中，要小心控制滴定剂的滴加速度，以避免滴加过多而造成误差。
4.实验过程中，要注意安全操作，避免溶液的飞溅和皮肤接触。
数据处理1.计算滴定所需的Na2S2O3溶液体积，记为V。
2.计算淀粉的含量，公式为：淀粉含量（%）= V × 0.1 × 100 / 0.1结论通过碘量法测定淀粉含量的实验，可以得到样品中淀粉的含量。
该方法简单、快速、准确，被广泛应用于食品、饲料、粮食等行业。
通过测定淀粉含量，可以评估原料的质量和加工过程的效果，为产品质量控制提供科学依据。
淀粉检测方法淀粉是一种常见的碳水化合物，广泛存在于植物中，包括谷类、豆类、薯类等。
检测淀粉的方法有很多种，其中常见的有碘液法、酶法和红色亚甲基蓝法等。
下面将分别介绍这几种方法的原理和操作步骤。
碘液法是一种常用的淀粉检测方法。
其原理是淀粉与碘溶液反应生成蓝色复合物。
操作步骤如下：首先取少量待测样品，加入适量的水悬浮均匀；然后加入几滴碘液，观察颜色变化。
如果出现蓝色，即表示样品中含有淀粉。
酶法是利用淀粉酶水解淀粉生成葡萄糖，然后通过葡萄糖检测方法来间接检测淀粉的含量。
操作步骤如下：首先取少量待测样品，加入适量的酶溶液，放置一段时间使样品充分水解；然后加入酶抑制剂停止反应；最后使用葡萄糖检测方法来测定样品中的葡萄糖含量，从而间接得到淀粉的含量。
红色亚甲基蓝法是一种定量检测淀粉的方法。
其原理是淀粉与红色亚甲基蓝在酸性条件下反应生成蓝色复合物，根据复合物的颜色深浅来定量测定淀粉的含量。
操作步骤如下：首先取少量待测样品，加入酸溶液使其酸化；然后加入红色亚甲基蓝溶液，混合均匀；最后使用分光光度计测定样品溶液的吸光度，并根据标准曲线来计算淀粉的含量。
除了以上介绍的几种方法，还有一些其他的淀粉检测方法。
比如用硝酸和亚硝酸盐的混合液进行检测，淀粉会被氧化成胆固醇，然后再用三氟化硼浓溶液滴定，根据滴定的消耗量来确定淀粉的含量。
还有利用红外光谱仪等仪器设备进行淀粉定性定量分析的方法。
总结起来，淀粉的检测方法有碘液法、酶法、红色亚甲基蓝法等，每种方法都有其适用的场合和特点。
在实际应用中，根据需要选择合适的方法来进行淀粉的检测，可以有效地掌握样品中淀粉的含量，为相关研究和应用提供可靠的数据支持。
淀粉含量的测定方法淀粉是植物体内一种重要的直链多糖，是植物贮藏和储备能量的主要形式之一。
因此，淀粉含量的测定对于农业生产、食品加工和科学研究有着重要的意义。
传统的淀粉含量测定方法主要有碘滴定法和色度法。
碘滴定法是一种经典的淀粉含量测定方法，原理是利用碘对淀粉的着色反应来测定淀粉的含量。
首先将待测样品中的淀粉水解为葡萄糖，然后用碘滴定液滴定样品，当溶液中淀粉完全消耗后，多余的碘会与以前形成的淀粉-碘复合物发生颜色变化，根据滴定所需的碘量计算淀粉含量。
碘滴定法的优点是简单易行，操作方便，缺点是受到其他物质的干扰较大，结果误差较大。
而色度法是通过测定淀粉溶液与碘在一定条件下的吸光度，来计算淀粉的含量。
即使在微量下，碘和淀粉在水中的络合物也会变成兰色或黑色。
色度法的主要优点是对其他物质的干扰小，结果相对准确，但操作复杂，灵敏度较低。
但随着科技的进步，近年来一些新的测定方法也逐渐被引入到淀粉含量测定中。
比较常用的新方法包括光学显微镜法、高效液相色谱法和红外光谱法等。
光学显微镜法是将通过显微镜观察淀粉颗粒的密度、大小来测定淀粉含量，这种方法操作简单，而且结果准确。
但需要一定的专业知识和设备，并且不适用于淀粉颗粒比较小的样品。
高效液相色谱法（HPLC）是一种利用高效液相色谱仪测定淀粉含量的方法，可以直接测定样品中淀粉含量，并且具有高分辨率、灵敏度高等优点，但设备昂贵，操作技术要求高。
红外光谱法是近年来被广泛应用的淀粉含量测定方法之一，利用样品与红外光的相互作用，通过分析样品中代谢反映淀粉的含量。
这种方法操作简单，时间短，结果快速，但是对于一些非常微量的淀粉含量检测不够准确。
总的来说，不同的测定方法各有其优劣势，可根据需要选择合适的方法。
碘滴定法和色度法是传统方法，简单易行，但准确性不及其他新方法；而光学显微镜法、高效液相色谱法和红外光谱法虽然有一定的局限性，但在特定的样品和研究领域具有一定的优势。
需要注意的是，在测定淀粉含量时，应该根据不同的样品和实验目的选择合适的测定方法，并严格按照方法步骤进行操作，以保证测定结果的准确性。
植物组织中淀粉含量的测定植物组织中淀粉含量的测定植物是地球上最重要的生命体之一，它们是光能的主要捕获者并将其转化为化学能。
在光合作用中，植物通过将二氧化碳和水转化为葡萄糖等有机分子，来实现自身的生长和维持。
植物在进行光合作用时，会将多余的葡萄糖转化为淀粉，以储存起来。
因此，淀粉在植物中有着重要的生理功能，它不仅可以供给植物在营养不足情况下的能量需求，还可以调控植物的产物分配和生长发育等方面的生理过程。
因此，淀粉含量的测定对于研究植物的生长、代谢调节、环境适应等方面具有非常重要的意义。
1. 淀粉含量测定的原理淀粉是由葡萄糖分子组成的多聚体，可以通过碘化反应测定其含量。
碘化反应是一种特殊的化学反应，使用碘化钾与淀粉反应后形成蓝黑色的化合物，其反应机理如下：碘分子进入淀粉的分子链中，与淀粉分子链中的亚硫酸盐基团结合形成碘化物，形成了生物质和无定型复合物，从而导致总合成化合物的颜色变化。
因此，这种方法可以通过测定淀粉含量所导致的颜色变化来进行测定。
此外，由于淀粉含量测定通常需要提取和清洁样品，所以在测定过程中也可以根据需要进行其他生物化学分析。
2. 淀粉含量测定方法2.1. 淀粉含量测定前的样品处理首先要对植物组织进行样品处理，将挖取的组织粉碎成细粉，然后通过冷醇法沉淀并清洗样品。
然后，将样品在60℃的烘箱中干燥至恒定重。
其中，冷醇法即使用80%酒精进行沉淀，可以将其他碳水化合物等杂质去除。
2.2. 碘化反应法测定淀粉含量将干燥的样品称取1克，加入10毫升水，并加入1毫升1%碘化钾溶液，并震荡均匀。
然后加入50毫升的蒸馏水，继续震荡均匀，静置5分钟。
最后，使用吸光光度计在620nm波长下读取吸光度，并根据标准曲线计算出淀粉含量。
需要注意的是，标准曲线通常是使用淀粉标准品制作，强烈建议使用生物化学检测试剂盒进行测定，以保证结果的准确性和可靠性。
2.3. 比色法测定淀粉含量将样品粉末称取1克，加入10毫升水，并加入1毫升1%碘化钾溶液，并震荡均匀。
叶片淀粉含量测定摘要：淀粉是植物体内最重要的储藏物质之一，也是光合作用产物的主要形式之一。
测定叶片淀粉含量对于了解植物的能量代谢和生长发育具有重要意义。
本文介绍了一种常用的叶片淀粉含量测定方法，包括样品处理、提取淀粉、酶解和测定等步骤。
该方法简单、准确，适用于大多数植物的叶片淀粉含量测定。
1. 引言淀粉是植物体内最主要的储藏物质之一，它在植物的能量代谢和生长发育中起着重要的作用。
淀粉是由葡萄糖分子组成的多糖，可以在植物体内储存和转化为能量。
测定叶片淀粉含量可以帮助我们了解植物的能量储存和利用情况，对于研究光合作用、生长发育和植物的适应性等具有重要意义。
2. 测定方法2.1 样品处理首先，需要采集新鲜的叶片样品。
选择健康的叶片，避免受到机械损伤或病虫害的影响。
将采集的叶片样品迅速放入液氮中冷冻保存，以避免淀粉的降解。
2.2 提取淀粉将冷冻保存的叶片样品取出，将其研磨成粉末状。
将粉末样品转移到离心管中，加入适量的提取缓冲液（如Tris-HCl缓冲液），充分悬浮混合。
然后，将悬浮液离心，以去除粉末残渣和杂质。
2.3 酶解将离心后的悬浮液转移到新的离心管中，加入淀粉酶（如淀粉酶、α-淀粉酶等），并在适当的温度下孵育一段时间，使淀粉完全酶解为葡萄糖。
酶解反应结束后，加入热水或热酸停止酶活性。
2.4 测定将酶解后的样品取出，加入适量的碘试剂（如碘化钾溶液），使溶液呈现蓝色。
然后，用酒精或其他适当的溶剂稀释样品，直至溶液呈现淡黄色。
使用分光光度计在适当波长下测定溶液的吸光度。
根据标准曲线或已知浓度的淀粉溶液，计算样品中淀粉的含量。
3. 结果与讨论根据上述测定方法，可以得到叶片样品中淀粉的含量。
这些结果可以用来比较不同植物品种或不同生长条件下的淀粉积累情况。
此外，还可以进一步分析淀粉的组成和结构，以深入了解植物的能量代谢和调控机制。
4. 结论本文介绍了一种常用的叶片淀粉含量测定方法，包括样品处理、提取淀粉、酶解和测定等步骤。
第1篇一、实验目的1. 掌握淀粉的检测方法。
2. 熟悉淀粉在不同物质中的存在形式。
3. 了解淀粉的物理和化学性质。
二、实验原理淀粉是一种天然高分子碳水化合物，广泛存在于植物中。
淀粉分子由大量的葡萄糖单元通过α-1,4-糖苷键和α-1,6-糖苷键连接而成。
淀粉的检测通常基于其与特定试剂反应产生特征颜色变化。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 土豆- 玉米- 面粉- 淀粉酶- 碘液- 水浴锅- 研钵- 玻璃棒- 试管- 移液管- 滴管2. 实验仪器：- 电子天平- 恒温水浴锅- 显微镜- 紫外可见分光光度计四、实验步骤1. 淀粉提取（1）将土豆、玉米和面粉分别称取适量，分别研磨成粉末。
（2）取适量粉末放入试管中，加入蒸馏水，充分搅拌，使淀粉溶解。
（3）将溶液煮沸，冷却后过滤，得到淀粉提取液。
2. 淀粉检测（1）取适量淀粉提取液放入试管中，加入碘液，观察颜色变化。
（2）取适量淀粉酶溶液，加入淀粉提取液中，观察颜色变化。
（3）将淀粉提取液置于显微镜下观察淀粉颗粒形态。
（4）利用紫外可见分光光度计测定淀粉提取液的吸光度。
3. 结果分析（1）观察淀粉提取液与碘液反应后的颜色变化，若呈蓝色或紫色，则说明淀粉存在。
（2）观察淀粉酶溶液加入后颜色变化，若颜色逐渐变浅，则说明淀粉被水解。
（3）显微镜下观察淀粉颗粒形态，可判断淀粉的存在。
（4）紫外可见分光光度计测定淀粉提取液的吸光度，可进一步确定淀粉含量。
五、实验结果1. 土豆提取液与碘液反应后呈蓝色，说明土豆中含有淀粉。
2. 玉米提取液与碘液反应后呈淡蓝色，说明玉米中含有淀粉。
3. 面粉提取液与碘液反应后呈淡蓝色，说明面粉中含有淀粉。
4. 淀粉酶溶液加入后，土豆、玉米和面粉提取液颜色逐渐变浅，说明淀粉被水解。
5. 显微镜下观察淀粉颗粒形态，可确定淀粉的存在。
6. 紫外可见分光光度计测定淀粉提取液的吸光度，可确定淀粉含量。
六、实验讨论1. 淀粉在不同物质中的存在形式及提取方法。
马铃薯中淀粉含量测定（酸水解法）一、实验目的1、了解植物组织中淀粉的提取步骤。
2、掌握植物组织中淀粉含量测定的原理和酸水解法测定淀粉的方法。
3、熟悉722分光光度计的主要用途、工作原理及使用流程。
4、巩固容量瓶、移液管等仪器的使用。
二、实验原理1、淀粉提取，也称为浆渣分离或分离，是淀粉加工中的关键环节，直接影响到淀粉提取率和淀粉质量。
粉碎后的物料是细小的纤维，体积大于淀粉颗粒，膨胀系数也大于淀粉颗粒，比重又轻于淀粉颗粒, 将粉碎后的物料，以水为介质，使淀粉和纤维分离开来。
2、淀粉是食品中主要的组成部分，也是植物种子中重要的贮藏性多糖。
它广泛存在于植物的根、茎、叶、种子等组织中，是人类食物的重要组成部分，也是供给人体热能的主要来源。
淀粉跟稀硫酸在加热的条件下能够完全水解成葡萄糖、麦芽糖等还原糖。
还原糖的测定是糖定量测定的基本方法。
还原糖在NaOH 和丙三醇存在条件下会被氧化成糖酸及其他产物，3,5-二硝基水杨酸则被还原成桔红色的3-氨基-5-硝基水杨酸。
NO 2OH HOOCNO 2+还原糖NH 2OH HOOCNO 2黄色桔红色该物质在540 nm 波长处有最大吸收，在一定范围内，还原糖的量与桔红色物质的吸收值成正比关系，利用比色法可测定样品中的含糖量。
由于淀粉完全水解成还原糖的量是成正比的，所以，也与桔红色物质的深浅成正比关系。
三、实验仪器与材料、试剂1、仪器3、试剂四、实验内容1、溶液的配制（1）、6 mol/L NaOH 溶液：准确称取12 g NaOH固体，溶于15 mL蒸馏水中，并倒入50 mL 容量瓶中，用蒸馏水分几次清洗烧杯并将清洗的溶液倒入容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度线。
（2）、3,5-二硝基水杨酸（DNS）试剂：准确称取0.63 g DNS，2.1 gNaOH固体充分溶解于50 mL蒸馏水，再加入18.2 g酒石酸钾钠，0.5 g苯酚，0.5 g偏重亚硫酸钠，搅拌溶解，冷却后加蒸馏水定容至100 mL，贮于棕色瓶中备用。
板栗淀粉测定实验报告实验目的：本实验旨在通过板栗淀粉测定实验，了解淀粉的性质和测定方法，并掌握实验操作技能。
实验原理：淀粉是一种复杂的多糖类有机物，是植物的主要能量储存物质之一。
淀粉的组成单元为葡萄糖，通过酶的作用可以将淀粉水解成葡萄糖。
淀粉的测定方法有多种，其中常用的方法是碘液滴定法。
淀粉与碘液溶液反应生成紫蓝色络合物，通过滴定过程中消耗的碘液量来确定淀粉的含量。
实验材料与仪器：1. 板栗样品2. 碘液：酒精溶液中的0.01mol/L碘3. 水浴器4. 滴定管5. 雪平衡实验步骤：1. 取适量板栗样品，剥去外皮，将板栗肉磨成糊状，称取10g 样品，放入锡盘中。
2. 将锡盘放入水浴器中，加入适量的蒸馏水，开启水浴器，以80℃恒温蒸煮板栗样品30分钟，使其淀粉酶失活。
3. 取出锡盘，将蒸煮后的样品加入适量蒸馏水溶解，使体积恒定为200mL。
4. 取一定体积淀粉溶液(如20mL)，放入滴定管中，滴加碘液直至溶液变为深蓝色。
5. 记录滴定过程中滴加的碘液体积(V1)。
6. 重复上述步骤多次，取各个样品的淀粉溶液进行滴定，记录滴加的碘液体积。
7. 根据滴定结果计算出板栗淀粉的含量。
实验结果与分析：根据滴定实验数据计算出的板栗淀粉含量为x%，其中x为实际计算结果。
通过对不同样品的滴定实验，可以得到板栗淀粉含量的平均值和标准差。
实验结论：通过本次实验，我们成功测定了板栗样品中的淀粉含量。
该实验结果有一定的准确性和可靠性，但仍存在一定的误差。
淀粉的测定结果可以作为食品质量检测和研究的重要依据。
实验注意事项：1. 实验过程中要注意安全，避免碘液接触皮肤和吸入气体。
2. 滴定操作时要准确记录滴加的碘液体积。
3. 实验仪器和玻璃器皿要求干净，以免产生误差。
4. 实验过程中要注意实验操作的细节，避免影响实验结果的准确性。
植物组织中淀粉含量的测定_ (2)植物组织游离脯氨酸含量的测定原理植物在逆境条件下，游离脯氨酸便会大量积存，且积存指数与植物的抗逆性有关。
因此，脯氨酸可作为植物抗逆性的一项生化指标。
使用磺基水杨酸提取植物体内的游离脯氨酸，不仅大大减少了其他氨基酸的干扰，快速简便，而且不受样品状态（干或者鲜样）限制。
在酸性条件下，脯氨酸与茚三酮反应生成稳固的红色缩合物，用甲苯萃取后，此缩合物在波长520nm处有一最大汲取峰。
脯氨酸浓度的高低在一定范围内与其消光度成正比。
材料、仪器设备及试剂1.材料植物叶片2.仪器设备分光光度计；水浴锅：漏斗：大试管（20m1）；具塞刻度试管（20m1）注射器或者滴管（5～loml）。
3.试剂（1）3％磺基水杨酸溶液（2）甲苯；（3）2.5％酸性茚三酮显色液：冰乙酸与6mo1.l-l磷酸以3：2混合，作为溶剂进行配制，此液在4℃下2～3天有效；‘（4）脯氨酸标准溶液。
准确称取25mg脯氨酸，用蒸馏水溶解后定容至250ml，其浓度为100ug.ml-l。
再取此液10ml，用蒸馏水稀释至looml，即成10μg.ml-1的脯氨酸标准液。
1.标准曲线制作（1）取7支具塞刻度试管按表9.2-1加入各试剂。
混匀后加玻璃球塞，在沸水中加热40min。
（2）取出冷却后向各管加入5ml甲苯充分振荡，以萃取红色物质。
静置待分层后吸取甲苯层以0号管匀参照在波长520nm 下比色。
（3）以消光值为纵坐标，脯氨酸含量为横坐标，绘制标准曲线，求线性回归方程表9.2.1各试管中试剂加入量试管6脯氨酸标准溶液（m1）0.20.40.81.21.62.0水（m1）1.81.61.20.80.4冰乙酸（m1）2茚三酮显色液（m1）3样品测定（1）脯氨酸提取。
取不一致处理的剪碎混匀植物叶片0.2～0.5g（干样根据水分含量酌减），分别置于大试管中，加入5m13％磺基水杨酸溶液，管口加盖玻璃球，于沸水浴中浸提10min。
淀粉的测定实验报告淀粉的测定实验报告引言：淀粉是一种常见的碳水化合物，广泛存在于植物的根、茎、叶和种子中。
它是植物体内的主要能量储备物质，也是人类食物中重要的营养成分之一。
因此，准确测定淀粉的含量对于食品工业和农业生产具有重要意义。
本实验旨在通过一种简单而有效的方法，测定样品中淀粉的含量。
实验方法：1. 样品准备：将待测样品研磨成细粉，确保样品的均匀性。
2. 提取淀粉：将研磨好的样品加入适量的冷水中，搅拌均匀后过滤，收集滤液。
3. 沉淀淀粉：将滤液倒入锥形瓶中，加入冷酒精，使其浓度达到70%左右，放置数小时，观察到白色沉淀即可。
4. 过滤与洗涤：将沉淀用玻璃棒捣碎，加入适量的酒精，搅拌均匀后过滤，收集滤液。
重复此步骤2-3次，以去除杂质。
5. 干燥与称量：将收集到的淀粉沉淀放入干燥器中，用低温干燥至恒重。
称取一定质量的干燥淀粉沉淀，记录质量。
实验结果与分析：通过上述实验方法，我们得到了一定质量的干燥淀粉沉淀。
根据质量的测量结果，可以计算出样品中淀粉的含量。
假设样品的总质量为m，称取的干燥淀粉沉淀质量为m1，则样品中淀粉的质量为m1。
根据淀粉的化学式和摩尔质量，可以计算出样品中淀粉的摩尔数。
进一步，可以通过摩尔质量和样品总质量的比值，计算出样品中淀粉的含量。
实验结果的准确性与可靠性：为了确保实验结果的准确性与可靠性，我们在实验过程中注意了以下几点：1. 样品的研磨：样品的研磨程度对于提取淀粉的效果有重要影响。
因此，我们在样品准备过程中，尽量将样品研磨成细粉，以保证样品的均匀性。
2. 沉淀淀粉：将样品中的淀粉沉淀出来是实验的关键步骤。
为了确保沉淀的纯度，我们在提取淀粉的过程中，使用了适量的冷酒精，以提高淀粉的沉淀率。
3. 过滤与洗涤：过滤和洗涤是为了去除样品中的杂质，以保证测定结果的准确性。
我们在过滤和洗涤的过程中，多次重复操作，以确保样品中的杂质被彻底去除。
4. 干燥与称量：样品的干燥程度对于称量结果有重要影响。
实验14 植物组织中淀粉含量的测定Ⅰ蒽酮硫酸法一、原理淀粉是由葡萄糖残基组成的多糖，在酸性条件下加热使其水解成葡萄糖，然后在浓硫酸的作用下，使单糖脱水生成糠醛类化合物，利用蒽酮试剂与糠醛化合物的显色反应，即可进行比色测定。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料任何植物材料。
（二）试剂•浓硫酸（比重 1.84 ）。
•9.2mol/L HClO 4 。
•蒽酮试剂，同实验24 。
（三）仪器设备电子天平，容量瓶：100 mL 4 个、50 mL 2 个，漏斗，小试管若干支，电炉，刻度吸管0.5mL 1 支、2.0 mL3 支、5 mL4 支，分光光度计，记号笔。
三、实验步骤1. 标准曲线制作同实验24 恩酮法。
2. 样品提取称取50 ～100 mg 粉碎过100 目筛的烘干样品，置于15 mL 刻度试管中，加入6 ～7 mL 80 ％乙醇，在80 ℃水浴中提取30 min ，取出离心（3000 rpm ）5 min ，收集上清液。
重复提取两次（各10 min ）同样离心，收集三次上清液合并于烧杯，置于85 ℃恒温水浴，使乙醇蒸发至2 ～3 mL ，转移至50 mL 容量瓶，以蒸馏水定容，供可溶性糖的测定。
向沉淀中加蒸馏水 3 mL ，搅拌均匀，放入沸水浴中糊化15 min 。
冷却后，加入2 mL 冷的9.2 mol/L 高氯酸，不时搅拌，提取15 min 后加蒸馏水至10 mL ，混匀，离心10 min ，上清液倾入50 mL 容量瓶。
再向沉淀中加入2 mL 4.6 mol/L 高氯酸，搅拌提取15 min 后加水至10 mL ，混匀后离心10 min ，收集上清液于容量瓶。
然后用水洗沉淀1 ～ 2 次，离心，合并离心液于50 mL 容量瓶用蒸馏水定容供测淀粉用。
3. 测定取待测样品提取液1.0 mL 于试管中，再加蒽酮试剂5 mL ，快速摇匀，然后在沸水浴中煮10 min ，取出冷却，在620 nm 波长下，用空白调零测定光密度，从标准曲线查出糖含量（μg ）。
四、结果计算式中：C ——从标准曲线查得葡萄糖量，μg 。
V T ——样品提取液总体积, mL 。
V 1 ——显色时取样品液量，mL 。
W ——样品重，g 。
0.9 ——由葡萄糖换算为淀粉的系数。
Ⅱ碘- 淀粉比色法一、原理对于淀粉含量较少的植株样品，也可采用碘–淀粉比色法。
淀粉在加热情况下能溶于硝酸钙溶液中，当碘化钾和硝酸钙共存时，碘能以碘–淀粉蓝色化合物沉淀全部淀粉。
将此沉淀溶于碱液，并在酸性条件下与碘作用形成蓝色溶液进行比色。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料任何植物材料。
（二）试剂1 ．80 ％硝酸钙溶液。
2 ．0.5 ％碘液：称5.00 g 结晶碘和10.00 g 碘化钾，放入研钵混合干研，然后加10 mL 蒸馏水研至全部碘溶解，将溶液全部转入1000 mL 容量瓶定容后，贮于磨口试剂瓶。
3 ．5 ％含碘硝酸钙溶液：取10 mL 80 ％的硝酸钙溶液，加入160 mL 水再加入3 mL 0.5 ％的碘液混匀，现用现配。
4 ．标准淀粉溶液：称取纯淀粉50 mg 于研钵中，加3 mL 80 ％硝酸钙溶液，研细并转移到100 mL 的三角瓶中，用15 mL 80 ％的硝酸钙溶液冲洗研钵，无损地收集于三角瓶中。
将三角瓶置于沸水浴中煮沸5 min ，冷却后全部转入50 mL 容量瓶中并定容。
此液为 1 mg/mL 的淀粉标准液。
5 ．0.1 mol/L NaOH 。
6 ．0.1 mol/L HCl 。
（三）仪器设备分析天平，研钵，容量瓶，量筒，三角瓶，水浴，小漏斗，电炉，离心机，离心管，试剂瓶。
三、实验步骤1 ．称取1 ～3 g 叶片，剪碎放入研钵，加5 mL 80 ％的硝酸钙溶液，研磨成糊状移入100 mL 的三角瓶中，用10 mL 80 ％的硝酸钙冲洗研钵，无损地收集于三角瓶中，瓶口盖上小漏斗，在沸水浴上煮沸3 ～ 5 min （叶片含淀粉少的 3 min ，含淀粉多的 5 min ），使样品中淀粉转变为胶体溶液。
2 ．给三角瓶中加20 mL 蒸馏水，混合液转入离心管中离心（2000 ～3000 rpm ）2 ～3 min ，将离心后的淀粉胶体浑浊液移入100 mL 容量瓶（淀粉含量少时，可移入50 mL 容量瓶），三角瓶及离心沉淀物用5 ～10 mL 热蒸馏水冲洗并同样离心，离心液并入容量瓶中（共洗2 ～3 次）定容，即为淀粉提取液。
3 ．取5 ～10 mL 淀粉待测液，加入到盛有2 mL 0.5 ％碘液的离心管中，混匀静置15 min 后离心（3000 rpm ）5 min ，弃上清液。
沉淀用5 ％的含碘硝酸钙溶液冲洗两次，向冲洗后的沉淀中加入10 mL 0.1 mol/L 的NaOH 混匀，将离心管浸入沸水内5 min ，使沉淀溶解。
将溶液转入50 mL 容量瓶中，加入0.3 mL 0.5 ％碘液，用30 mL 左右的水冲洗并入容量瓶，加入 2 mL 1mol/L 的盐酸，用水定容并显色，在590 nm 波长处测定光密度。
4 ．绘制标准曲线取标准淀粉溶液（1 mg/mL ）0 、0.5 、1.0 、2.0 、3.0 、4.0 、5.0 mL 于6 个离心管中，用80 ％硝酸钙溶液将各管的体积补足至5 mL ，再向各管加入2 mL 0.5 ％碘液，混匀静置15 min 后离心，其他操作同样品测定步骤，显色后在590 nm 波长下测定光密度。
此系列溶液的淀粉含量分别为0 、0.5 、1.0 、2.0 、3.0 、4.0 、5.0 mg ，然后以光密度为横坐标，以淀粉含量为纵坐标绘制标准曲线。
四、结果计算式中：C ——从标准曲线查得葡萄糖量，mg 。
V T ——样品提取液总体积, mL 。
V 1 ——显色时取样品液量，mL 。
W ——样品重（g ）。
变性淀粉在调味酱中的应用调味品在九十年代开始了规模化生产，特别是在近几年，调味品也向品牌化发展，生产工艺由原来的手工制作变成机械化生产，这也就需要生产原料能适应工业化生产需求。
作为调味酱中的增稠稳定剂也在不断的变化，先后出现了原淀粉、简单变性淀粉、天然胶（植物胶、动物胶、微生物胶）、复配增稠剂、复合变性淀粉。
不同的调味酱，它们的特性要求和加工工艺不同，所选用的增稠添加剂也不相同。
本文主要谈谈怎样选择合适的增稠稳定剂。
1、几种增稠剂在苹果沙拉酱中作用苹果沙拉酱生产过程中，需要长时间的煮制，同时苹果酱需要在酸性条件下保存。
这就需要所选用的增稠稳定剂具有耐高温和耐煮制，同时在酸性条件下稳定。
几种增稠剂（添加量为5%）在苹果酱中（室温条件下放置30天后检测）的使用结果见表1由表1可知道：卡拉胶、复合变性淀粉在苹果酱中作用明显；玉米淀粉保水稳定性较差，容易老化结块；复合增稠剂比玉米淀粉稍好。
卡拉胶具有天然的稳定大分子结构，耐酸性、保水性粘度都很好，是良好的食品增稠剂，但由于卡拉胶价格高，其使用范围受到限制。
淀粉由于其价格较低、增稠稳定性好，已越来越被生产厂家看重。
原淀粉价格低，但其理化特性不稳定，不适宜苹果酱的生产；原淀粉抗老化性弱，容易析水结快，如果储藏条件不好，产品性能不稳定，会分层析水。
但是变性淀粉具有稠度高、稳定性好、成型性好等特点，可使制品在高温、煮制和搅拌后仍能恢复原状，保持柔滑的体态不变稀；同时可赋予制品较好的组织结构，使果酱口感爽滑，有较强的实体感。
变性淀粉的透明度、成膜性都较高。
加入后提高产品的透明度，同时赋予产品光滑、色泽鲜艳的外观。
同时变性淀粉耐酸性强，可加强制品在酸性环境下稳定性、延长储藏期。
2、几种增稠剂在番茄酱中作用对番茄酱，稠度和色泽的稳定性非常重要。
同时由于番茄酱营养丰富，低分子糖类物质含量高，极易败坏，一般会加入防腐剂，现在越来越提倡使用天然防腐剂，使用最广的为大蒜素，使用大蒜素时有一个较大的缺点，味道太浓。
所以希望有一种能掩盖和延缓风味物质释放的添加剂。
本实验通过添加不同的增稠掩盖剂，添加量为5%：明胶、木薯淀粉、海藻酸钠、江西东永的DY-DPP-2变性淀粉。
结果见表2（室温条件下放置30天后检测）由表2可以知道：明胶和DY-DPP-1的在色泽、稳定性、稠度和口感综合效果明显；木薯原淀粉性质不很稳定，加热后易老化，造成产品失水变稀，不利于消费者使用时后处理；明胶的效果最明显，综合性质好，但由于其价格较高，不能被广大消费者采纳；海藻酸钠酸性条件下不是很稳定，容易分解失效。
变性淀粉有很强的吸水保水性、较高的透明度、成膜性好、稳定性强等特点。
复合变性淀粉有很多的亲水基团（本身的羟基和外来的极性基团），有很好的保水性，强保水性可以很好的提高酱类制品中的水分含量，同时降低其它原料的含量，比如蔗糖、饴糖等量大对人体不利的低糖。
淀粉糊化后有很好的透明度和表面光泽，可以很好地与其他物质结合，形成透明有弹性的均匀分散体系，从而使添加的色素和风味物质稳定。
因为变性淀粉引入了其它外来极性基团，增强了亲水性和空间稳定性，可以很好地与制品中的某些成分络合，形成稳定的物质，能改善产品的风味和色泽。
同时产品有较好的耐酸、耐热性，可以稳定产品的PH和色泽（有色物质对PH敏感）。
耐热性可以加强产品的加工性。
综上所述，变性淀粉，特别使复合变性淀粉对提高酱类制品的理化性质有明显的功效，而且克服了使用天然胶造成产品成本高等不足。
