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辣根过氧化物酶标记抗体原理一、辣根过氧化物酶标记抗体的原理辣根过氧化物酶（HRP）是一种常用的酶标记物，具有很高的灵敏度和稳定性。
辣根过氧化物酶标记抗体原理主要是利用辣根过氧化物酶与抗体的特异性结合，通过其催化能力来检测目标分子的存在并定量分析。
辣根过氧化物酶标记抗体的制备过程主要分为两个步骤：辣根过氧化物酶的活化和抗体的标记。
1. 辣根过氧化物酶的活化辣根过氧化物酶通常以干燥粉末的形式存在，需要在一定条件下进行活化。
活化的过程中，辣根过氧化物酶会与过氧化氢发生反应，形成活性中间体。
这个活性中间体具有较强的催化能力，可以催化底物的氧化反应。
2. 抗体的标记在活化的辣根过氧化物酶中，将目标抗体与其特异性结合。
这个过程中，通常使用交联剂来进行共价结合，使得辣根过氧化物酶与抗体牢固地结合在一起。
这样就得到了辣根过氧化物酶标记抗体。
二、辣根过氧化物酶标记抗体的应用辣根过氧化物酶标记抗体在生命科学研究中具有广泛的应用价值，主要体现在以下几个方面：1. 免疫组化辣根过氧化物酶标记抗体可以用于免疫组化实验，通过与目标抗原的特异性结合，可以在组织切片中精确地定位抗原的存在位置。
辣根过氧化物酶的催化反应会产生可见的颜色，从而可以直观地观察到抗原的分布情况。
2. 免疫印迹辣根过氧化物酶标记抗体也可以用于免疫印迹实验，通过与目标蛋白的结合，可以检测目标蛋白的存在和表达水平。
辣根过氧化物酶的催化反应会产生发光信号或者颜色变化，从而可以定量地测量目标蛋白的数量。
3. 免疫荧光辣根过氧化物酶标记抗体还可以用于免疫荧光实验，通过与目标抗原的结合，可以在细胞或组织中观察到荧光信号。
这种方法可以用来研究细胞的定位、蛋白的相互作用等重要生物学过程。
4. 免疫流式细胞术辣根过氧化物酶标记抗体也可以应用于免疫流式细胞术，通过与目标抗原的结合，可以实现对细胞表面抗原的定量和检测。
通过流式细胞仪的高通量检测，可以同时分析大量细胞的抗原表达情况，为研究细胞免疫学提供了重要手段。
辣根过氧化物酶(hrp)标记抗体的简易方法
过氧化物酶(hrp)标记抗体是用来表征可以探针凝集反应的特异性抗体，在临床实验研究中的应用得到广泛的认可。
它的应用范围十分广泛，比如体液免疫学分析、组织学病理学分析以及疾病诊断、计量检验研究等等。
简单说，hrp标记抗体是把过氧化物酶hrp与抗体联合在一起，通过特异性抗体与被检物质（抗原）之间的可凝集反应得以应用，通过hrp的过氧化反应，这种反应被放大从而易于检测（可见部分检测反应使用对抗联系）。
hrp标记抗体的简易方法主要包括直接标记（direct labeling）和间接标记（indirect labeling）两种方法。
直接标记就是直接在抗体上表征过氧化物酶，而间接标记则是用一种不活性的人工抗原（Artificial antigen）表征过氧化物酶，再将其与抗体结合之后实现标记。
不同的是，直接标记方式要求抗体具有足够的处理过氧化物酶hrp 的敏感性和穩定性，另外在反应过程中要确保hrp能均匀分布在抗体表面，而间接标记有利于hrp的均匀分布，能够有效改善抗体的表位，延长其在反应中的有效性。
虽然hrp标记抗体分析系统在实验室研究中受到广泛应用，但是其具体的标记方法却不断地发生变化。
为了确保标记过程的准确性，要首先确定优选的hrp、hrp连接剂和标记抗体，并根据原料质量和实验程序做出必要的改变以保证标记抗体的有效性和稳定性。
其次，在进行标记前要检查原料和实验设备是否合适，确保反应条件的正确性，并在延迟反应过程中加入缓冲剂和阻垢剂以延长抗体、hrp以及hrp连接剂的稳定性。
最后，建议实验人员按照规定的步骤进行实验，以保证结果的可靠性，并且确保标记抗体在模板或探针过程中不会造成污染。
标记H R P——简易过碘酸钠法标记HRP——简易过碘酸钠法1. 原理：经典的过碘酸钠法中需采用二硝基氟苯封闭HRP上残留的α-和ε氨基基以避免酶分子之间的交联。
后来Wilson等改用在低PH下使NaIO４氧化HRP，从而省去了二硝基氟苯封闭HRP步骤。
HRP经NaIO４氧化后形成的醛化酶可与抗体分子的氨基相连，形成斯夫氏硷，后者可进一步用NaBH４(或乙醇胺)还原生成稳定的酶标记抗体试剂及器材(1) 0.1M NaIO４：称取241mg高碘酸钠溶于10ml蒸馏水中。
(2) 1mM PH4.4醋酸钠缓冲液:0.2M NaAc (1.361克／50ml) 3.7ml0.2M HAc (0.601ml／50ml) 6.3ml加蒸馏水至2,000ml。
(3) 0.2M PH9.5碳酸盐缓冲液:Na２CO３0.32克NaHCO３0.586克加蒸馏水至50ml再用蒸馏水作20倍稀释，即成0.01M PH9.5的碳酸盐缓冲液。
(4) NaBH４溶液(4mg／ml):临用时称取NaBH４4mg溶于1ml蒸馏水中。
(5) 0.15M PH7.4 PBS（6）饱和硫酸铵操作步骤(1) 称取5mgHRP溶解于1ml蒸馏水中。
(2) 于上液中加入0.2ml新配的0.1M NaIO４溶液，室温下避光搅拌20分钟。
(3) 将上述溶液装入透析袋中，对1mM PH4.4的醋酸钠缓冲液透析，4℃过夜。
(4) 加20μl0.2M PH9.5碳酸盐缓冲液，使以上醛化桯RP的PH升高到9.0～9.5，然后立即加入10mg IgG(抗体，或SPA5mg)在1ml 0.01M碳酸盐缓冲液中，室温避光轻轻搅拌2小时。
(5) 加0.1ml新配的4mg／ml NaBH４液，混匀，再置4℃2小时。
(6) 将上述液装入透析袋中，对0.15M PH7.4 PBS透析，4℃过夜。
(7) 在搅拌下逐滴加入等体积饱和硫酸铵，置4℃1小时。
(8) 3000rpm离心半小时，弃上清。
几种常见的抗体标记方法-酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记抗体标记主要有酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记等，还有一些其他的标记方法例如金标记，本文主要讲述了这些抗体标记的基本原理、操作步骤。
、酶标记1 、辣根过氧化物酶(HRP) 标记辣根过氧化物酶(HRP) 标记单抗和多克隆抗体的常用方法是过碘酸钠法。
其原理是HRP 的糖基用过碘酸钠氧化成醛基，加入抗体IgG后该醛基与IgG 氨基结合，形成Schiff 氏碱。
为了防止HRP中糖的醛基与其自身蛋白氨基发生偶合，在用过碘酸钠氧化前先用二硝基氟苯阻断氨基。
氧化反应末了，用硼氢化钠稳定Schiff 氏碱。
这里介绍两种程序。
程序一：(1)将5mg HRP 溶于0.5ml 0.1mol/L NaHCO3 溶液中加0.5ml 10mmol/LNaIO4 溶液，混匀，盖紧瓶塞，室温避光作用2 小时。
(2)加0.75ml 0.1mol/L Na2CO3 混匀。
(3)加入0.75ml 小鼠已处理的腹水，或纯化单抗等(15mg/ml) ，混匀。
(4)称取SephadexG25 干粉0.3g ，加入一支下口垫玻璃棉的5ml 注射器外筒内;随后将上述交联物移入注射器外套;盖紧，室温作用(避光)3小时或4C过夜。
(5)用少许PBS 将交联物全部洗出，收集洗出液，加1/20V 体积新鲜配制的5mg/mlNaBH4 溶液，混匀，室温作用30 分钟;再加入3/20V NaBH4溶液，混匀，室温作用1小时(或4C过夜)。
(6)将交联物过Sephadex g200 或Sepharose6B(2.6 X 50cm)层析纯化，分管收集第一峰。
(7)酶结合物质量鉴定：克分子比值测定酶量(mg/ml)=OD403 X 0.4IgG 量(mg/ml)=(OD280- OD403X 0.3) X 0.62克分子比值(E/P)=酶量X 4/IgG量，一般在1-2之间。
酶结合率=酶量X体积/抗体，标记率一般为0.3-0.6，即1-2个HRP 分子结合在一个抗体分子上，标记率可大于0.6，0.8，0.9;OD403/OD280 等于0.4 时，E/P 约为1 。
HRP标记抗体原理及方法（戊二醛二步法和过碘酸钠法）酶标记物包括酶标记抗原、酶标记抗体和酶标记SPA 等。
酶标记物质量的好坏直接关系到免疫酶技术的成功与否，因此被称为关键的试剂。
酶标记物中最常用的是酶标记抗体，它是将酶与特异性抗体经适当方法连接而成。
酶标记抗体的质量主要取决于纯度好、活性强及亲和力高的酶和抗体，其次要有良好的制备方法。
目前，高质量的酶(如辣根过氧化物酶，简称HRP)国内已有商品供应。
高质量的抗体则可通过提取纯化而获得。
在制备方法上，宜选用产率高、不影响结合物的活性和不混杂干扰性物质且操作简便易行的方法。
(一) 酶制剂及其底物凡无毒性又能呈现有色化学反应的酶，原则上均可作为标记用。
但作为标记抗体用的酶应满足下列要求：(1)来源方便，易于纯化；(2)比活性高，性质稳定；(3)酶活性和量能用简单方法测定。
目前在免疫酶技术中常用的酶为辣根过氧化物酶(HRP)和硷性磷酸酶(AP)，其次还有葡萄糖氧化酶，β-半乳糖苷酶、溶菌酶和苹果酸脱氢酶等。
由于辣根过氧化物酶(Horseradish Peroxidase,HRP)比活性高，稳定，分子量小，纯酶容易制备，所以最常用。
HRP广泛分布于植物界，辣根中含量高，它是由无色的酶蛋白和棕色的铁卟啉结合而成的糖蛋白，糖含量18％。
HRP由多个同功酶组成，分子量为40,000,等电点为PH3～9,酶催化的最适PH因供氢体不同而稍有差异，但多在PH5左右。
酶溶于水和58％以下饱和度硫酸铵溶液。
HRP的辅基和酶蛋白最大吸收光谱分别为403nm和275nm，一般以OD403nm／OD275nm的比值RZ(德文ReinheitZahl)表示酶的纯度。
高纯度的酶RZ值应在3.0左右(最高可达3.4)。
RZ值越小，非酶蛋白就越多。
值得注意的是，纯度并不表示酶活性，如当酶变性后，RZ值仍可不变。
HRP的催化反应需要底物过氧化氢(H2O2)和供氢体(DH2)。
供氢体多为无色的还原型染料，通过反应可生成有色的氧化型染料(D)。
标记抗体技术免疫标记技术是将一些既易测定又具有高度敏感性的物质标记到特异性抗原或抗体分子上，通过这些标记物的增强放大效应来显示反应系统中抗原或抗体的性质与含量。
常用的标记物包括荧光素、酶和放射性核素等，用这3种标记物进行标记的免疫检测技术被称为3大免疫标记技术。
目前，使用的免疫标记物还有化学发光物质、铁蛋白和胶体金等。
一、辣根过氧化物酶(HRP)标记抗体a. 辣根过氧化物酶(Horseradish Peroxidase, HRP ）HRP广泛分布于植物界，它是由无色的酶蛋白和棕色的铁卟啉结合而成的糖蛋白，糖含量18％。
HRP由多个同功酶组成，分子量为40,000,等电点为pH3～9，酶催化的最适PH因供氢体不同而稍有差异，但多在pH5左右。
酶溶于水和58％以下的硫酸铵溶液。
HRP的辅基和酶蛋白最大吸收光谱分别为403nm和275nm，一般以OD403nm ／OD275nm的比值RZ(德文Reinheit Zahl)表示酶的纯度。
HRP的催化反应需要底物过氧化氢(H2O2)和供氢体(DH2)。
供氢体多为无色的还原型染料，通过反应可生成有色的氧化型染料(D)。
HRPDH2＋H2O2──────→D＋2H2Ob. 辣根过氧化物酶标记方法酶标记抗体的制备方法主要有两种，即戊二醛交联法和过碘酸盐氧化法。
辣根过氧化物酶的标记常用过碘酸盐氧化法，这种方法法只适用于含糖量较高的酶。
过碘酸钠将HRP分子表面的多糖氧化为醛基，醛基与抗体分子上的氨基形成Schiff 碱而结合。
后者可进一步用NaBH４(或乙醇胺)还原生成稳定的酶标记抗体。
在酶标过程中一般都混有未结合的酶和抗体。
游离酶理论上不影响最终的显色。
但游离的抗体则不同，它会与酶标抗体竞争固相抗原，从而减少了结合到固相上的酶标抗体的量。
因此需要对制备的酶结合物进行纯化，去除游离的酶和抗体。
纯化的方法很多，硫酸铵盐析法最为简便，但效果并不理想。
用离子交换层析、分子筛法可得到最佳的分离效果，但费用较贵。
