CTAB法提DNA
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一、CTAB法提取DNA主要试剂及配方:
CTAB缓冲液(2%):
试剂 用量(g/L)
CTAB 20
NaCl 81.816
Tris-base 7.444
EDTA-Na2 12.114
β巯基乙醇 2~3mL
pH 8.0
称量好后65℃水浴,搅拌,直至完全溶解,然后定容,调pH
24:1溶液:
24:1为体积比,如果是一瓶新的三氯甲烷(500mL),可直接加入21mL异戊醇即可。
70%乙醇:
二、CTAB法提取DNA的简要步骤
步骤 备注
1将新鲜叶片叶脉去掉,剪碎置于研钵中,加入液氮快速研磨成粉末状,转入2mL离心管,加入65℃预热的CTAB提取液900 uL充分混匀,65℃保温40
-60min,在此期间轻轻颠倒离心管几次。 加入CTAB后,需及时充分混匀,然后水浴。开始混匀可以使劲,后面的混匀要轻,保证DNA的完整性。此步骤是裂解细胞,释放细胞产物
2水浴完后,冷却至室温,加入等体积的氯仿/异戊醇(24:1)混合液轻轻摇动10 min。12000 r/min离心10 min; 第一次抽提24:1尽量加满2mL的离心管,摇和离心的时候尽量轻拿轻放。此步骤是用氯仿抽提有机相,异戊醇的作用是去除气泡。
3取上清液,再用等体积的氯仿/异戊醇抽提一次,12000 r/min离心10 min; 离心后,DNA溶于上层水相,变性蛋白溶于下层氯仿,第二次24:1抽提加1mL即可。
4小心吸出上清液于另一2mL离心管中,加入0.6倍上清液体积的异丙醇,缓慢混匀,于-20℃冰箱中沉淀DNA; 第二次吸上清尽量不要吸到中间层,按需要浓度大小,可选择性吸取。异丙醇用前需预冷。
5挑出成团的DNA,用70%乙醇洗2~3次; 挑出的DNA还是含有一定的杂质,因此,第一次70%乙醇洗时间建议长些,一般不低于10分钟,期间上下摇晃几次,但不可太长,否则DNA要断裂
6无水乙醇洗1次;
7倒干残余乙醇,自然干燥 也可以进行真空干燥
8加无菌水溶解DNA
RNA酶可以加到水中,溶解DNA 9 RNA去除,按100微升DNA溶液加1微升RNA酶
10溶解后放置几小时后(尽量过夜)便可电泳检测,浓度测定
三、提取过程中可能出现的一些情况(主要是提玉米DNA)
可能出现的情况 可能原因 建议
第一次24:1抽提后上清是绿色的浑浊液体。 样取的较多 1、样品取样适量;2、加CTAB时可以适量多点。
第一次上清是褐色的(正常情况应该是浅黄色,透明) 样品在裂解过程中被氧化了或是降解了。 取样的时候尽量取了及时放在液氮中;确定β巯基乙醇按比例加在了CTAB缓冲液中;再者,样磨完了加CTAB缓冲液的时候速度要快,混匀要充分;如果机器磨样,尽量倒出钢珠,再加CTAB缓冲液。
加入异丙醇后没见絮状沉淀 取样太少;样品碾磨不够好 12000r/min离心2min,一般都会有沉淀附着管壁,同样可以收集到DNA。
DNA电泳检测时候有拖尾,点样孔不干净 拖尾是DNA降解,点样孔不干净是含有部分蛋白 对于这两种情况,只能尽量做好每一步,减少每一步不必要的影响
四、10×TBE配方
Tris-base 108g/L
硼酸 55 g/L
EDTA-Na2 7.444 g/L
pH 8.0