肿瘤细胞表达的整合素通过促进侵袭和穿越血管壁

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肿瘤细胞表达的整合素促进侵袭和穿越血管壁,便于肿瘤转移。

αV整合素受体在活化的血管内皮细胞和肿瘤细胞中高度表达,但在安静的血管内皮细胞和多数正常组织中不表达,这为抗血管新生策略提供了潜在的靶点。

采用mAbs、环形RGD肽拮抗剂和模拟肽对αV整合素受体活性的抑制可以诱导血管内皮细胞凋亡、抑制血管新生并增加内皮渗透性。

多数动物实验表明整合素αvβ3活性的抑制与肿瘤体积的减小密切相关。

无创可视化且定量分析整合素αvβ3表达为确证肿瘤(肿瘤细胞和新生肿瘤血管)整合素水平,更适当地选择适于抗整合素治疗的病人以及监测疗效提供了新的契机。

除了易于被非靶向微泡检测的肿瘤微血管血容量和血液流速外,针对血管内皮细胞表达的αv整合素的靶向超声微泡造影还可用于肿瘤整合素显像。

Sipkin在动物实验中证实使用MRI和抗体修饰的顺磁性脂质体可方便地对整合素αvβ3表达进行显像。

同时近红外荧光染料共轭的环状RGD肽能显示皮下接种的整合素阳性肿瘤。

目前,许多研究关注于适宜SPECT或PET显像的放射性核素标记的小RGD肽类拮抗剂。

与SPECT相比,PET的灵敏度更高。

高计数统计的获得对于使用少量的放射性物质就可以检测单位体积内更少的细胞尤其可贵。

整合素表达PET显像探针在持续研发中。

Haubner等最初对RGD肽单体(c(RGDyV)进行了125I标记。

该化合物亲脂性强,在肿瘤中快速清除且通过肝肠进行代谢。

肝脏和肠的高放射性活度浓聚限制了其的进一步应用。

RGD肽的乳糖化降低了亲脂性并相应地减小了肝的摄取。

通过辅基18F-氟丙酸可对相同的乳糖化肽进行18F标记。

M21黑色素瘤移植瘤模型表明1整合素αvβ3阳性肿瘤对18F-Galacto –RGD特异性摄取。

最初在健康志愿者和少量肿瘤患者上进行的临床测试表明该示踪剂安全且能检测出整合素阳性表达的病灶。

威尔科克森符号秩检验测试显示RGD/PET标准摄取值(SUV)与肿瘤血管密度(CD31染色)相关。

近年来,我们研发了一系列RGD肽探针用于肿瘤整合素表达多模式显像,包括PET(18F, 64Cu, 86Y, 和124I),SPECT(125I,99mTc, and 111In), 和NIR 荧光(荧光染料和)。

我们首先通过辅基氟苯甲酸对RGD肽单体c(RGDyK)进行18F标记。

[18F]FB-RGD虽具有良好的肿瘤/血液和肿瘤/肌肉摄取比,但在肿瘤中快速摄取且通过肝肠进行代谢。

这使得该示踪剂难以显示腹腔底部的病灶。

除了引入一个氨基糖分子增加亲水性外,我们插入了一个两亲性(聚乙二醇)连接剂以改善药代动力学。

聚乙二醇化显著延长肿瘤保留值且从肝和肾中快速清除。

胆汁代谢的减少使肠中放射性活度摄取最小化且增加靶与非靶比。

但是,聚乙二醇化也会降低RGD肽的亲和力。

总体而言,[18F]FB-RGD在肿瘤中的摄取值与未修饰的RGD 肽相近,但药代动力学得到改善。

然而,聚乙二醇(M.W.=3400)不是单一分子而是许多平均分子量为3400Da分子的集合,这使得示踪剂的表征较复杂。

由于C(RGDyK)已在弯曲的构象上进行了优化,以适应进入整合素αvβ3的α和β单位之间的深裂,因此不太可能通过微调五肽的构象从而进一步改善RGD肽单体与整合素的亲和性和选择性。

基于此,我们,应用多价效果,即利用谷氨酸将环五肽单元进行连接,研发RGD肽二聚体和多聚体。

与相应的C(RGDyK)单体相比,RGD肽二聚体E[c(RGDyK)]2和受体的亲和力几乎增加了一个数量级。

该二聚体的18F标记产物,[18F]FB-E[c(RGDyK)]2(缩写为[18F]FRGD2)优先通过肾脏排泄。

同一个动物模型实验表明,[18F]FB-E[c(RGDyK)]2在肿瘤中的摄取值是C(RGDyK)单体的2倍。

RGD肽二聚体示踪剂的优良显像性能可能来源于多价协同作用和改善的药代动力学。

另外,我们在多种移植瘤模型上进行了动态扫描。

通过示踪剂动态分析得到的亲和力值与经SDS-PAGE/自显影测量所得肿瘤整合素表达水平相关性良好。

这是首例报道通过体内非创伤性PET显像定量测定整合素表达水平,这为无需活检且精确确定肿瘤整合素水平提供了基础。

由小鼠分布数据估算出的人体辐照剂量表明,[18F]FRGD2的有效辐照剂量低于[18]FDG扫描。

尽管[18F]FRGD2能定量PET显像整合素αvβ3表达。

但是受产率低的影响,其在临
床上的应用受到限制。

为了提高标记率同时不影响肿瘤靶向性和体内动力学,我们引入亲水性双功能min-PEG间隔。

所得产物[18F]-FB-PEG3-E[c(RGDyK)]2 ([18F]FPPRGD2)结构如下。

并入一个min-PEG间隔可以显著提高[18F]FPRGD2的标记率。

与[18F]FPRGD2) 相比,([18F]FPPRGD2)具有相似的肿瘤靶向性且在肾中摄取也较少。

由于[18F]galacto-RGD使用[18F]FPA作为标记辅基,因此我们也使用相同的策略研发[18F]FPPRGD2。

多种移植瘤模型实验表明,[18F]FPPRGD2与[18F]FPRGD2的肿瘤靶向性能和体内药代动力学性能均优于[18F]galacto-RGD。