血培养标本采集导管相关性血流感染
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中心静脉导管相关血流感染监测流程图
为了监测中心静脉导管相关血流感染,需要遵循以下流程:
1.患者带有血管内导管或者在48小时内拔除血管内导管。
2.如果患者出现发热、体温≥38℃、寒颤或低血压等感染
表现,或者静脉穿刺部位出现脓液/弥漫性红斑,或者沿导管
的皮下走行部位出现疼痛性红斑,就需要进行血常规和血培养检查。
3.临床医生需要填写检验申请单,并按照医院下发的血液
标本采集流程采集血标本。
如果判断为中心静脉导管相关血流感染,需要根据微生物结果选择抗菌药物,并在24小时内填
写《医院感染病例报告卡》上报感控科。
4.在治疗过程中,需要做好病程记录、导管相关血流感染
监测登记和医院感染病例登记。
医院感染监控专职人员每周收集登记数据,并观察与感染有关的因素。
血培养标本采集注意事项血培养标本采集注意事项血培养是临床诊断败血症的重要方法,阳性结果对明确诊断、对症治疗有极高的应用价值。
但据文献报道目前国内的血培养阳性率仅为17.8%~18.4%。
为了提高血培养的阳性率,客观的反映出败血症患者血内存在病原菌的实际状况,需要临床医生精确选用血培养,检验师精心分离鉴定,更需要护理人员正确、无菌的操作技术!下面是yjbys店铺为大家带来的血培养标本采集注意事项,欢迎阅读。
一、采血时机1、尽可能在抗菌药物使用前;2、对已经使用抗菌药物的病人,最好在下次用药前采集;3、寒战和发热初起时采血可提高阳性率;4、怀疑血流感染时应尽早采血,不要强调体温超过39才抽血。
二、采集方法1、手卫生:洗手或手消毒,最容易忽略,却也是很重要的一条;2、准备血培养瓶:根据检验申请单,选择合适的`血培养瓶,检查血培养瓶有无破损、保质期,用75%酒精消毒血培养瓶塞,作用60s,待干。
在血液注入血培养瓶之前,用无菌纱布或棉签清除橡皮塞残留的酒精;3、皮肤消毒:按常规消毒穿刺部位皮肤,使用消毒剂[碘酊或聚维酮碘(碘伏)]对皮肤进行严格仔细的消毒处理,消毒范围为8×10cm,待干,防止皮肤寄生菌或环境引起的污染。
4、持采血针按常规方法刺入静脉,另一头刺入相应血培养瓶内,利用瓶内真空抽取血标本,如用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头直接注入血培养瓶。
(使用采血针采血时应先采集需氧瓶后采集厌氧瓶,使用注射器采集标本时则反之)5、建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶,有利于微需氧菌和厌氧菌的检出。
如果不能满足推荐的采血量时,应首先满足需氧瓶;婴幼儿血培养一般只抽一瓶需氧瓶进行培养,无需常规做厌氧瓶。
6、血液注入血培养瓶后轻摇瓶子以防血液凝固。
三、标本运送1、已采集的标本应视为潜在性生物危险品,均应置于防漏、防渗、相对密封的容器中收集、存储与转运。
2、血培养采样结束后应由专人立即送至微生物实验室核收,一般不得超过2小时;如因某种原因不能及时送检,应将已采集好的血液培养瓶放在室温,切勿放入冰箱内冷藏或冷冻。
导管相关血流感染防控措施导管相关血流感染(CRBSI)是指在血管导管插入或使用期间引起的血流感染。
它是医院内常见的院内感染,并且可能导致患者严重并发症甚至死亡。
因此,对于导管相关血流感染的预防和控制是至关重要的。
以下是一些有效的防控措施:1. 导管选择选择适当类型的导管对于预防CRBSI至关重要。
根据患者的临床情况和预期的导管置入时间,选择合适类型的导管。
优先选择无导向导管,减少侵入性操作次数。
2. 导管插入导管的插入过程应该严格遵循无菌操作规范。
医护人员在插入导管之前必须严格执行手部消毒操作,使用无菌巾将插入部位覆盖,并确保环境无菌。
3. 导管固定导管固定是预防导管感染的关键环节。
确保导管固定方式合适,避免导管的剧烈晃动和脱落,减少导管周围细菌交叉感染的机会。
4. 导管护理定期对导管进行护理是预防CRBSI的重要手段。
定时更换导管贴固定物,保持导管皮肤穿刺部位清洁干燥,并严格遵循导管护理操作规程。
5. 导管使用时机合理使用导管,避免不必要的导管置入和过度使用。
及时拔除不必要的导管,减少导管在体内停留时间,可有效降低CRBSI的发生率。
6. 严格隔离措施对于已发生CRBSI的患者,应采取严格的隔离措施,防止感染的扩散。
医疗人员应佩戴合适的个人防护用品,并遵循感染控制的相关规范。
结语导管相关血流感染是一种常见但严重的院内感染,对患者健康造成威胁。
通过遵循以上防控措施,可以有效减少CRBSI的发生率,保护患者的安全。
同时,医护人员应保持良好的个人卫生习惯,严格执行操作规范,共同努力降低导管相关血流感染的发生率。
在诊断导管相关血流感染时,如何正确采集血培养标本?
诊断导管相关血流感染时,根据是否保留血管内导管采取不同的采集方法。
1.保留血管内导管
对怀疑是CRBSI的患者至少做 2 套血培养:
(1)用注射器从非置管侧肢体的外周静脉穿刺采集1套血培养标本,并标记“外周静脉血“。
(2)从中心静脉导管或VAP隔膜采集1套血培养标本,并标记“导管血”。
2.不保留血管内导管
用注射器从不同部位的外周静脉分别采集各 1套血培养标本(每套血包括一个需氧培养瓶和一个厌氧培养瓶),取血量为每瓶 8~10 ml(或按厂家说明书),并标记“外周静脉血”,两个部位采血时间必须小于或等于5分钟。
无菌状态下取出可疑的导管,取导管尖端5 cm 送检。
疑似中心静脉通路装置导管相关血流感染血培养标本采集的最佳证据总结摘要:中心静脉通路装置在长期静脉输液、肿瘤化疗、肠外营养等领域广泛使用,是临床常用的治疗手段。
其中导管相关血流感染是其最常见的并发症之一。
CRBSI是指安置有血管内导管或拔除导管后48h内的患者,出现菌血症或真菌血症,伴发热(≥38℃)、寒颤或低血压等感染表现,且除导管外无其他明确的血行感染源。
虽然CRBSI发生时会出现上述的临床症状及体征,但其缺乏特异性和敏感性,不能单以此确诊,需结合血液培养进行确诊。
血培养标本的阳性结果直接影响了CRBSI病原体检测结果的准确性,也是抗生素治疗用药准确强有力的证据,其药敏结果能有效避免临床经验性抗生素治疗所导致的医疗费用增加、住院时间延长,疾病负担增加,死亡上升(死亡率14%~16%)等风险。
本文主要分析疑似中心静脉通路装置导管相关血流感染血培养标本采集的最佳证据总结。
关键词:中心静脉通路装置;导管相关血流感染;血培养标本;最佳证据;循证护理引言正确的标本采集,不仅能提高检验结果的阳性率、合格率,而且能辅助临床医生做出准确诊断。
血培养是临床诊断败血病的重要方法,阳性结果可以明确诊断、对治疗具有极高的价值。
血液培养的结果受时间、部位、次数、血量的影响,给临床诊断带来困惑,因此规范血培养标本采集是至关重要的。
1、资料与方法1.1确定问题采用JBI循证卫生保健中心的问题开发工具PIPOST模式构建本次循证的临床问题。
包括证据应用的目标人群:CVADs导管相关血流感染患者;干预措施:CVADs导管相关血流感染血培养采集工作流程及规范化管理;证据应用的实施者:临床医护人员及临床管理者;主要结局指标:CVADs导管相关血流感染血培养检出率及污染率;证据应用场所:涉及静脉输液、肿瘤化疗及肠外营养的相关科室;证据类型:临床决策、指南、专业标准、系统评价、专家共识及随机对照实验(RCT)。
1.2证据的纳入和排除标准纳入标准:研究对象为CVADs导管相关血流感染疑似患者或确诊患者;涉及血培养采集、保存与运输管理;结局指标包括:CVADs导管相关血流感染血培养检出率、污染率;研究类型为临床决策、指南、证据总结、系统评价、专家共识。
导管相关血流感染标本采集
时机:
1.使用抗菌药物前、停用抗生素后
2.寒战开始时、发热高峰前0.5-1小时采血,不知晓发热规律时在
寒战或发热半小时后采血
3.如不能停用抗菌药物,应于下次抗菌药物使用前采集
部位:
1.同时分别从外周静脉两个部位采集标本
2.因特殊原因自留置导管内采血时,对侧肢体血培养标本应选择从
外周静脉采集
消毒方法:
1.橡皮塞:用75%酒精反复摩擦、消毒血培养瓶;用无菌棉签或纱布清
除表面剩余酒精
3.皮肤:用75%酒精消毒采集处皮肤位点,消毒液接触皮肤时间至少
30秒,待干;再用碘伏消毒采集处皮肤位点,消毒液接触皮肤至少1-2分钟,待干
顺序:
1.按先厌氧瓶、后需氧瓶顺序采集,每个部位应需氧和厌氧培养
各一瓶
血量:
2.成人每培养瓶采血8-10ml,5分钟内完成采集
3,婴幼儿每培养瓶(儿童瓶)采血l-5ml,采集量是总血量的1%
保留导管:
1.分别从外周静脉和导管内各采取1套血培养标本
2.在培养瓶上标注采集部位,送往微生物实验室
不保留导管:
1.在外周静脉采集2套血培养标本
2.同时通过无菌操作剪取已拔出的导管尖端5cm,放置于无菌瓶
中送往微生物实验室。