课题3 血红蛋白的提取与分离
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血红蛋白的提取和分离教案血红蛋白的提取和分离教案引言血红蛋白是存在于人类和其他脊椎动物血液中的一种蛋白质。
它具有运输氧气和二氧化碳的重要功能,并且是维持身体正常运作所必需的。
本篇文章将为您介绍血红蛋白的提取和分离方法,帮助您更好地理解和研究这一重要蛋白质。
一、血红蛋白的提取方法1. 在提取血红蛋白前,我们需要准备以下材料:- 外周血样本- 1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)- 过硫酸铵溶液- 冷冻离心管- 高速离心机- 冷藏离心机2. 提取步骤如下:- 将外周血样本收集到冷冻离心管中,并添加适量的1M磷酸盐缓冲液。
- 现将样本离心5分钟,以将红细胞与其他成分分离开。
- 小心地将上清液转移至新的冷冻离心管中。
- 向上清液中加入过硫酸铵溶液,使最终浓度达到约20%。
- 待浑浊沉淀形成后,使用高速离心机以12000g离心20分钟。
- 移除上清液,留下血红蛋白沉淀。
- 用冷磷酸盐缓冲液轻轻洗涤血红蛋白沉淀,以除去残留的过硫酸铵。
- 用冷磷酸盐缓冲液重新悬浮血红蛋白沉淀。
二、血红蛋白的分离方法1. 准备以下材料:- 细胞膜- 3M尿素溶液- 离心管- 高速离心机2. 分离步骤如下:- 将提取得到的血红蛋白沉淀加入3M尿素溶液中。
- 使其达到适当浓度,将溶液倒入离心管中。
- 将离心管放入高速离心机中,以12000g离心15分钟。
- 小心地移除上清液,保存血红蛋白沉淀。
- 将血红蛋白沉淀重新悬浮于适量的磷酸盐缓冲液中。
- 将悬浮液转至新的离心管中,在高速离心机中以12000g离心15分钟。
- 再次移除上清液,留下较纯的血红蛋白。
三、实验注意事项1. 在实验过程中,应注意安全操作,避免对自身和他人造成伤害。
2. 所用材料应严格按照规定使用,避免交叉感染或污染。
3. 实验室工作台面应保持干净整洁,及时清理实验废弃物。
4. 离心过程应注意离心管的平衡布置,以防离心过程中发生意外。
结论通过本文的介绍,我们了解到了提取和分离血红蛋白的基本方法。
血红蛋白的提取和分离教案教案一: 血红蛋白的提取和分离教学目标:- 理解血红蛋白的结构和功能。
- 学习血红蛋白的提取和分离方法。
- 掌握实验室中分离血红蛋白的步骤和操作技巧。
教学步骤:引入活动:在开始实验之前,首先向学生介绍血红蛋白的结构和功能,以及为什么需要提取和分离血红蛋白。
1. 血红蛋白的提取:a. 实验材料准备:- 鲜血样本- 磷酸缓冲溶液(pH 7.4)- 离心管- 离心机- 冷藏器b. 实验步骤:1) 将鲜血样本取出,用磷酸缓冲溶液稀释。
2) 将稀释后的样本置于离心管中,离心10分钟。
3) 将离心后的上清液转移至新的离心管中,置于冷藏器中。
2. 血红蛋白的分离:a. 实验材料准备:- 血红蛋白样本- 离心管- pH 4.7缓冲溶液- pH 5.2缓冲溶液- pH 6.0缓冲溶液- pH 7.0缓冲溶液b. 实验步骤:1) 将血红蛋白样本转移到离心管中。
2) 分别加入pH 4.7、pH 5.2、pH 6.0和pH 7.0缓冲溶液,使其达到不同的酸碱度。
3) 转动离心管,使其充分混合。
4) 将混合溶液置于冰箱中冷藏一段时间。
5) 通过离心,收集上层液体,然后分别加入酸、碱溶液,使其达到酸碱中和。
6) 重复以上步骤,直到获得纯净的血红蛋白。
实验注意事项:- 实验过程中要注意安全,佩戴实验室衣物和手套。
- 实验器材要严密封闭,避免反应物外泄。
- 实验后要彻底清理实验场地。
教学总结:通过本次实验,学生可以了解血红蛋白的结构和功能,并掌握了提取和分离血红蛋白的方法。
同时,学生也了解了实验室实验的注意事项和操作技巧。
课题3 血红蛋白的提取和分离【学习目标】1、简述蛋白质提取和分离的基本原理2、理解蛋白质提取与分离的实验操作过程【重点与难点】重点:蛋白质提取和分离的基本原理难点:蛋白质提取与分离的实验操作(凝胶色谱操作)过程【知识链接】1.血红蛋白存在于何种细胞?其特性和作用分别是什么?2.为何不选用鸡血做实验材料?3.分离不同种类蛋白质的依据是什么?【自主学习内容一】基础知识(记忆)1.凝胶色谱法:凝胶色谱法也称做,是根据分离蛋白质的有效方法。
凝胶实际上是一些由构成的多孔球体,在小球体内部有许多贯穿的通道,相对分子质量不同的蛋白质分子通过凝胶时的速度不同,相对分子质量较小的蛋白质由于能够路程较,移动速度;而相对分子质量较大的的蛋白质,只能在移动,路程,移动速度。
2.缓冲液缓冲液通常是由1~2种缓冲剂(如NaHCO3、(NH4)2SO4)溶解于水中配制而成;其作用是。
3.电泳:电泳是指电泳利用了待分离样品中各分子以及,使带电分子产生不同的,从而实现样品中各种分子的分离。
两种常用的电泳方法是和。
在测定蛋白质分子量时通常使用,其中SDS的作用是,。
蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶电泳中的迁移率取决于它以及等因素。
【自主学习内容二】实验操作(凝胶色谱法)1.蛋白质的提取和分离一般分四步:、、和。
2.样品处理(1)红细胞的洗涤:洗涤红细胞的目的是采集的血样要及时通过采用的方法使红液分层,用胶头吸管吸出上层透明的黄色,将下层红细胞倒入烧杯,再加入,缓慢搅拌低速离心,如此重复三次,直到,表明红细胞忆洗涤干净。
注意:离心转速及离心时间不能过长,否则,达不到分离效果。
(2)血红蛋白的释放:原理是当外界溶液浓度低于细胞内液浓度时,细胞,红细胞由于没有的保护,而,释放出血红蛋白;使用的试剂是。
(3)分离血红蛋白溶液:将搅拌好的混合溶液离心后,试管中的溶液分为4层。
第一层为无色透明的,第2层为白色薄层固体,是,第3层是红色透明的液体,这是,第4层是红细胞破碎物沉淀物(其他杂质,呈色)。
课题3_血红蛋白的提取和分离_教学设计_教案教学准备1.教学目标(一)知识与技能1、尝试从血液中提取和分离血红蛋白2、了解色谱法、电泳法等分离生物大分子的基本原理(二)过程与方法体验血红蛋白提取和分离的实验的严格要求,注意按照操作提示进行相关步骤(三)情感、态度与价值观初步形成科学的思维方式,发展科学素养和人文精神2.教学重点/难点课题重点凝胶色谱法的原理和方法课题难点样品的预处理;色谱柱填料的处理和色谱柱的装填3.教学用具多媒体4.标签生物,教案教学过程(一)引入新课蛋白质是生命活动的主要承担者,是细胞内含量最高的有机化和物。
对蛋白质的研究有助于人们对生命过程的认识和理解。
所以需要从细胞中提取蛋白质进行研究。
怎样提取蛋白质呢?(二)进行新课1.基础知识蛋白质的物化理性质:形状、大小、电荷性质和多少、溶解度、吸附性质、亲和力等千差万别,由此提取和分离各种蛋白质。
1.1凝胶色谱法(分配色谱法):(1)原理:(图5-13a)分子量大的分子通过多孔凝胶颗粒的间隙,路程短,流动快;分子量小的分子穿过多孔凝胶颗粒内部,路程长,流动慢。
(2)凝胶材料:多孔性,多糖类化合物,如葡聚糖、琼脂糖。
(3)分离过程:(图5-13b)混合物上柱→洗脱→大分子流动快、小分子流动慢→收集大分子→收集小分子*洗脱:从色谱柱上端不断注入缓冲液,促使蛋白质分子的差速流动。
1.2缓冲溶液(1)原理:由弱酸和相应的强碱弱酸盐组成(如H2CO3-NaHCO3,HC-NaC,NaH2PO4/Na2HPO4等),调节酸和盐的用量,可配制不同pH的缓冲液。
(2)缓冲液作用:抵制外界酸、碱对溶液pH的干扰而保持pH稳定。
1.3凝胶电泳法:(1)原理:不同蛋白质的带电性质、电量、形状和大小不同,在电场中受到的作用力大小、方向、阻力不同,导致不同蛋白质在电场中的运动方向和运动速度不同。
[思考]阅读教材后,填写下表:。
课题3 血红蛋白的提取和分离导学案[导学诱思]1.凝胶色谱法凝胶色谱法也称做,是根据分离蛋白质的有效方法。
凝胶实际上是一些由构成的多孔球体,在小球体内部有许多贯穿的通道,相对分子质量不同的蛋白质分子通过凝胶时速度不同,相对分子质量较小的蛋白质进入凝胶内部的通道,路程,移动速度;而相对分子质量的蛋白质无法进入凝胶内部的通道,只能在移动,路程,移动速度。
相对分子质量不同的蛋白质分子因此得以分离。
2.缓冲溶液缓冲溶液的作用是。
缓冲溶液通常由溶解于水中配制而成的。
生物体内进行的各种生物化学反应都是在一定的pH下进行的,例如:血浆的pH是,要在实验条件下准确模拟生物体内的过程,必须保持体外的pH与体内的基本一致。
3.电泳电泳是指。
许多重要的生物大分子,如多肽、核酸等都具有可解离的基团,在一定的pH下,这些基团会带上。
在电场的作用下,这些带电分子会向着与其所带电荷的电极移动。
电泳利用了待分离样品中各分子以及分子本身的、的不同,使带电分子产生不同的,从而实现样品中各种分子的分离。
两种常用的电泳方法是和,在测定蛋白质分子量时通常使用。
蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中的迁移率取决于以及等因素。
4.蛋白质的提取和分离蛋白质的提取和分离一般分为四步:、、和。
5.样品处理血液由和组成,其中红细胞最多。
红细胞具有的特点。
红细胞中有一种非常重要的蛋白质,其作用是,血红蛋白有个肽链组成,包括,其中每条肽链环绕一个,磁基团可携带。
血红蛋白因含有呈现红色。
红细胞的洗涤洗涤红细胞的目的是,采集的血样要及时采用分离红细胞,然后用胶头吸管吸出上层透明的,将下层暗红色的倒入烧杯,再加入,缓慢搅拌,低速短时间离心,如此重复洗涤三次,直至,表明红细胞已洗涤干净。
血红蛋白的释放在和作用下,红细胞破裂释放出血红蛋白。
分离血红蛋白溶液将搅拌好的混合溶液离心后,试管中的溶液分为4层。
第一层为无色透明的,第2层为白色薄层固体,是,第3层是红色透明液体,这是,第4层是其他杂质的暗红色沉淀物。