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螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化和分析螺旋藻酸性杂多糖是指以螺旋藻糖属多糖为主要成分的杂合多糖，其在自然界中的分布极为广泛，被广泛应用于食品添加剂、保健品等领域。
然而，对于螺旋藻酸性杂多糖的分离、纯化技术仍然存在技术瓶颈，而且还存在许多不确定性因素，如未知杂质定性和定量、活性成分分子量和分布，这些因素限制了螺旋藻酸性杂多糖的有效应用。
为解决螺旋藻酸性杂多糖的分离、纯化技术的技术瓶颈，目前实现螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化方法主要有分子印迹吸附技术、膜分离技术、超滤分离技术、改性技术以及其他结合技术。
分子印迹吸附技术是指利用非特异性吸附剂与特异分子结合形成分子印迹体系，通过改变吸附剂的活性来控制分子的吸附和离子的交换。
在此基础上，可以实现对螺旋藻酸性杂多糖的精细分离，并获得高纯度的产品。
膜分离技术是一种常用的螺旋藻酸性杂多糖分离技术，它利用膜的选择性透过性，可以有效地实现螺旋藻酸性杂多糖的过滤和精细分离。
超滤分离技术是利用滤膜中的孔径差异，仅对螺旋藻酸性杂多糖具有选择性的膜来实现高效分离，它可以用于粒径和分子量等物理性质的相关物质分离和精制。
此外，还有改性技术，即利用抗性酶、抗性蛋白等改性物质来实现对螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化，从而获得不同活性成分的产品。
而其他结合技术也是一种螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化技术，它可以有效地实现螺旋藻酸性杂多糖活性成分的分离，其特点是综合利用结合技术，可以得到不同的产品的特点，如结合离子交换法、结合抗性蛋白和结合抗性酶等。
因此，通过不同的技术手段，可以有效地实现螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化技术，同时也可以得到不同活性成分的产品，从而有利于螺旋藻酸性杂多糖的应用。
另外，分离纯化技术的研究也不断深入，如分子印迹技术的改进和膜技术的发展等，这些都在探索螺旋藻酸性杂多糖的有效分离纯化技术。
此外，螺旋藻酸性杂多糖的分析也很重要。
主要有以下几种：质谱分析、核磁共振分析、二维核磁共振、放射性核素分析等。
螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化和分析螺旋藻酸性杂多糖是一种存在于藻类植物细胞外壁上的复杂多糖，具有多种生物活性，能抑制病原体的生长，促进机体免疫力，缓解创伤等作用，因此被广泛用于药物和保健品的研发制造。
然而，由于螺旋藻多糖的复杂结构，使其分离纯化和分析存在一定的困难。
首先，螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化。
要想有效分离纯化螺旋藻酸性杂多糖，首先需要对细胞壁材料进行有效破碎，以提取出颗粒态的藻多糖，然后采用层析分离技术进行分离，最后再通过填料固相萃取纯化螺旋藻多糖，获得高纯度的产品。
其次，螺旋藻酸性杂多糖的分析。
为了可靠地定量和定性分析螺旋藻酸性杂多糖的结构，应当全面利用光谱学和色谱技术，以揭示螺旋藻多糖的反应机理，同时采用其他分析技术，如振实谱分析，主成分分析（PCA）和灰色关联分析（GCA）等，以进一步明确螺旋藻酸性杂多糖的成分结构，完成对螺旋藻酸性杂多糖的分析和评价。
另外，为了保证实验的可靠性和准确性，应当制定严格的实验程序，以便得到准确的实验结果。
针对不同类型的螺旋藻多糖，应该选择合适的实验条件，同时应该将实验过程进行优化，以提高实验效率。
综上所述，利用层析分离技术，填料固相萃取技术，光谱学和色谱技术，振实谱分析，主成分分析（PCA）和灰色关联分析（GCA）等技术，可以有效分离纯化和分析螺旋藻酸性杂多糖的结构，为后续的研究及应用提供重要依据。
在实验实施过程中，应当制定严格的实验程序，并对实验条件进行合理选择、设计与优化，从而实现实验结果的精确和可靠。
总之，螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化和分析，是一项复杂的实验过程。
当前，应当加强对螺旋藻多糖结构特征的研究，在分离纯化和分析过程中，采用适当的实验条件和实验程序，从而探索出螺旋藻酸性杂多糖的有效成分，为螺旋藻酸性杂多糖的进一步应用提供重要参考。
螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化和分析最近几十年来，螺旋藻酸性杂多糖（SAPs）在生物学领域引起了极大的关注，因为它们在植物，微生物和动物的细胞中都具有重要的生物学功能。
螺旋藻酸性杂多糖被认为是一种新兴的传感器，可以用来监测水污染，寻找病毒感染，以及将蛋白质和小分子药物分配到特定的细胞环境中。
此外，它们也可以作为表面活性剂，可以改善泡沫和浑浊的特性，以及促进消毒剂的作用。
螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化和分析是理解其生物学功能的基础。
近年来，越来越多的研究者开发了多种技术来分离纯化螺旋藻酸性杂多糖，并分析其结构，以研究它们在生物学中的作用。
一种最常用的分离纯化技术是离子交换技术，是根据离子交换分子对螺旋藻酸性杂多糖的结构和物理性质进行筛选的。
离子交换技术的优点是可以用来从大型的聚合物中分离出螺旋藻酸性杂多糖，但它也有其缺点：离子交换技术只能用于分离出大于一百六十个碳原子数的螺旋藻酸性杂多糖，而小于一百六十个碳原子数的螺旋藻酸性杂多糖只能在离子交换体系中被分离出来。
此外，色谱技术也经常用来分离纯化螺旋藻酸性杂多糖，包括凝胶色谱（GPC），液相色谱（HPLC），聚丙烯酰胺（PAGE）等。
通过色谱技术，可以按照比例分离出高纯度的螺旋藻酸性杂多糖，但也有一些缺点，例如产品更新慢，收集率低等。
此外，若要分析螺旋藻酸性杂多糖的结构，分子量分析技术是解决这一问题的一种有效方法。
分子量分析技术是一种常用的细胞化学技术，可以用来测定螺旋藻酸性杂多糖的分子量。
它通常包括分子质谱（MS）、散射诱导荧光技术（SIF），电泳技术，以及气相色谱-质谱（GC-MS）等，这些技术可以帮助研究者准确的确定螺旋藻酸性杂多糖的结构，以便进行定量分析。
以上是螺旋藻酸性杂多糖的分离纯化和分析的技术，它们的应用可以更准确地确定螺旋藻酸性杂多糖的物理性质，从而使研究更深入，更完整。
同时，这些技术也可以在用于监控环境污染，治疗疾病，以及其它各种应用中发挥重要作用。
天然螺旋藻多糖的提取纯化及降血糖活性实验研究
贾少婷;殷文政
【期刊名称】《农产品加工·学刊》
【年(卷),期】2007(000)001
【摘要】螺旋藻营养丰富,含有多种生物活性物质,特别是其中的螺旋藻多糖,能够
降低血糖.采用内蒙古鄂尔多斯地区天然生长的螺旋藻,经脱脂、破壁、抽提、浓缩、醇析、脱蛋白等方法提取.再经DEAE-52纤维素层析和SephadexG-200凝胶层
析纯化,得螺旋藻多糖.以螺旋藻多糖(PSP)100 mg/kg,200 mg/kg分别对昆明种小鼠连续灌胃(以下简称ig)10 d.结果发现,螺旋藻多糖能显著对抗葡萄糖及肾上腺素
而致小鼠血糖升高.上述结果说明,PSP具有一定的降血糖活性,值得进一步深入研究.【总页数】3页(P46-47,50)
【作者】贾少婷;殷文政
【作者单位】内蒙古农业大学,食品学院,内蒙古,呼和浩特,010018;内蒙古农业大学,食品学院,内蒙古,呼和浩特,010018
【正文语种】中文
【中图分类】TS201.2
【相关文献】
1.螺旋藻多糖提取纯化及其抗结肠腺癌活性评价 [J], 王群;陈诗科;李浩尧;陈雪香;
曹庸
2.响应面法优化枸杞叶粗多糖提取纯化工艺及其降血糖活性 [J], 江磊;梅丽娟;刘增
根;李洁琼;王启兰;邵赟;陶燕铎
3.钝顶螺旋藻多糖降血糖调血脂实验研究 [J], 左绍远;钱金(x);万顺康;狄勇;周静华
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5.螺旋藻多糖降血糖活性实验研究 [J], 左绍远;钱金;万顺康;狄勇
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![从螺旋藻中提取多糖的提取方法[发明专利]](https://img.taocdn.com/s1/m/1633496c814d2b160b4e767f5acfa1c7aa00821e.png)
(10)申请公布号(43)申请公布日 (21)申请号 201510279200.X(22)申请日 2015.05.28C08B 37/00(2006.01)(71)申请人江西三达新大泽生物工程有限公司地址342500 江西省赣州市瑞金市金龙工业园(72)发明人郑祖凤 郑训艺(54)发明名称从螺旋藻中提取多糖的提取方法(57)摘要本发明公开了一种从螺旋藻中提取多糖的提取方法，其步骤为：A、取螺旋藻藻粉，与灭菌水以1:5比例混合，煮沸萃取1h，得到萃取液；B、将萃取液过滤，滤液进入离心机去渣，得到澄清的、咖啡色的多糖提取液；C、将多糖提取液冷却到10℃以下，使多糖在水中形成沉淀；获得浓缩倍数4～5倍的多糖浓缩液；D、往多糖浓缩液添加食用酒精至酒精含量达到80％，多糖以沉淀形式析出；E、将多糖沉淀物经80％酒精2次清洗脱色，获得米白色螺旋藻多糖粗提物；F、将多糖粗提物冷冻干燥，获得成品。
本发明的提取方法，简单、经济、无环境污染、提取率高、纯度高，能够提高多糖收率。
(51)Int.Cl.(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请权利要求书1页 说明书3页(10)申请公布号CN 104844722 A (43)申请公布日2015.08.19C N 104844722A1.一种从螺旋藻中提取多糖的提取方法，其特征在于：该提取方法的步骤为：A、取螺旋藻藻粉，将螺旋藻藻粉与灭菌水以1:5～6比例混合，放入到常压搅拌热萃取罐中，煮沸萃取1～2h，得到萃取液；B、将萃取液经200～400目筛过滤，除去细胞碎片，所得到的滤液进入离心机去渣，离心力5000×g，得到澄清的、咖啡色的多糖提取液；C、将上步所得到的多糖提取液迅速冷却到10℃以下，使多糖在水中形成沉淀；弃去上层水层，获得浓缩倍数4～5倍的多糖浓缩液；D、往多糖浓缩液添加食用酒精至酒精含量达到80％，多糖以沉淀形式析出，水、杂质和色素溶解在酒精相中，倾去含水、杂质和色素的酒精相；E、将多糖沉淀物经80％酒精2次清洗脱色，获得米白色螺旋藻多糖粗提物；F、将多糖粗提物冷冻干燥，获得成品。
第36卷第5期2000年9月南京大学学报(自然科学)JOURNAL OF NANJING UNIVERSIT Y(NATU RAL SCIENCES)Vol.36,No.5Sept.,2000文章编号:0469-5097(2000)05-0579-06极大螺旋藻多糖的分离纯化及化学结构分析*邓时锋,刘志礼,李兆兰,喻利(南京大学生物科学与技术系,江苏南京210093)摘要:极大螺旋藻干粉经热水提取、醇析、Sevag法脱蛋白得粗多糖,经Sephadex G-100凝胶柱层析得白色粉末状多糖纯品(P olysaccharide of Spirulina max ima,PSM).纸层析、凝胶柱层析、高效液相色谱分析表明为均一组分.硫酸-咔唑法、硅胶薄层层析和气相色谱分析表明PSM是一种由L-鼠李糖、D-木糖、D-葡萄糖、D-半乳糖、D-阿拉伯糖、D-甘露糖和葡萄糖醛酸组成的酸性杂多糖,其摩尔比为1.947B0.905:1B1.182B0.338B0.347B1.330.高碘酸氧化和Smith降解表明该多糖中主要含有1y3位和1y6位键合的糖苷键,其主链由L-鼠李糖以1y3位键合的糖苷键组成.红外光谱分析和核磁共振氢谱分析表明其糖苷键键型为A型.Sephadex G-200凝胶柱层析表明其分子量约为2.95万.关键词:螺旋藻多糖;分离纯化;结构测定中图分类号:Q946.3文献标识码:A极大螺旋藻(Sp ir ulina max ima Setch.et Gacdn)是一种多细胞丝状蓝藻,属蓝藻门、颤藻目、螺旋藻属,是一种重要的营养和药物资源.近年来,随着糖科学和糖技术的发展,藻类多糖与其它多糖一样,在作为医药产品方面已日益为人们所重视.如钝顶螺旋藻多糖能够提高机体免疫功能[1],能够增强小鼠骨髓细胞增殖能力,减轻小鼠细胞的辐射遗传损伤[2],并能明显抑制体内移植性癌细胞的增殖[3];极大螺旋藻多糖能明显抑制人血癌细胞的生长[4].本文从工业生产的极大螺旋藻干粉中提取、分离、纯化获得PSM纯品,并对其单糖组成、连接方式、糖苷键键型以及分子量等作了较深入的分析.1材料与方法标准多糖Dex tran T-10、40、70、100、2000(蓝色葡聚糖)均为Sigma公司产品,其余试剂均为国产分析纯试剂.极大螺旋藻粉由江苏常熟生物制品厂提供.1.1提取螺旋藻粉经ZK高速自控组织捣碎机破壁处理,镜检无螺旋状藻体存在.加入10倍体积的蒸馏水,70e保温提取24h,离心,上清液浓缩后加入3倍体积95%乙醇醇析.1.2分离纯化1.2.1小分子杂质及蛋白质的去除粗多糖溶于水中,Sevag法脱蛋白,考马斯亮兰检测为阴性.流水透析2d,蒸馏水透析过夜,浓缩至小体积,加入3倍体积95%乙醇醇析.1.2.2Sephadex G-100凝胶柱层析凝胶柱为70cm@2.6cm,0.1mol/L NaCl洗脱,每管4m L,硫酸-苯酚法检测.*收稿日期:1999-06-18作者简介:邓时锋,男,1976年生,南京大学生物系98级硕士研究生.1.3 纯度鉴定[5]1.3.1 纸层析(PC) 新华中速滤纸(3.5cm @30cm),点样,饱和2h,室温展层6h,展层剂为正丁醇:浓氨水:水(40:50:5),0.5%甲苯氨蓝乙醇液染色,95%乙醇漂洗至背景褪色.1.3.2 凝胶柱层析 Sephadex G -200柱层析(35cm @2.6cm),流速7.5mL/h,0.1mol/L NaCl 洗脱,每管2.5mL 硫酸-苯酚法检测.1.3.3 高效液相色谱分析(H PLC) Waters 600E 高效液相色谱仪,TSK3000GW 层析柱(7.5mm @300mm ),洗脱液为H 2O,流速为0.7m L/m in,示差折射仪检测.1.4 紫外光谱分析(UV) PSM 溶液(2m g/mL)经日立U -3000紫外分光光度计于200nm ~400nm 扫描.1.5 糖苷键键型分析[5]1.5.1 红外光谱分析 PSM 经KBr 压片,经NICOLET 170SFT 型红外光谱仪分析,扫描范围为4000~650cm -1.1.5.2 核磁共振氢谱分析 PSM 在BRUKER AM -500MH z 核磁共振仪上进行分析,溶剂为重水(D 2O),参考标准为四甲基硅烷(TM S).1.6 单糖组成分析[5,6,7]1.6.1 硅胶薄层层析 0.5%CMC 溶液和0.1mol/L NaH 2PO 4的溶液调制硅胶H 薄板,105e 活化30min.取PSM 10mg ,加入3m L 2mol/L 的H 2SO 4封管100e 水解6h,碳酸钡中和,浓缩点样,展层剂为正丁醇:冰醋酸:水(4:1:5),苯胺-邻苯二甲酸试剂显色,与相应的标准品对照.1.6.2 硫酸-咔唑反应 采用Dische 法测定.图1 PSM 的高效液相色谱图Fig.1 C hrom atography of HPLC of PSM1.6.3 气相色谱分析 取PSM 10mg,加入3mL 2mol/L 的三氟乙酸,封管100e 水解6h,减压抽干,加入3mL 甲醇,减压抽干(共3次),加入10mg 盐酸羟胺,0.5m L 吡啶,90e 水浴反应30min,取出冷至室温,加入0.5mL 乙酸酐,90e 继续反应30min,产物直接进行气相色谱分析,标准单糖经同样处理作为对照.HP6890型气相色谱仪,HP -5融熔石英柱(30m @0.25m m),检测器(FID)温度300e ,载气N 2,流速1.4mL/min.1.7 相邻单糖基连接方式的分析[5]1.7.1 高碘酸氧化 取PSM 30mg 溶于55mL 15mmol/L 的NaIO 4溶液,放置暗处(4e ),间或振荡,间隔24h 取样,稀释250倍于223nm 处测定吸光值.1.7.2 Smith 降解 经高碘酸氧化后的多糖液约40mL,加入2mL 乙二醇,搅拌30m in,流水透析48h,蒸馏水透析过夜,浓缩至30mL,加入60#580#南京大学学报(自然科学)第36卷mg NaBH 4,室温暗处搅拌还原24h,用0.1mol/L 的乙酸调节pH 至5.5,对流水透析2d,蒸馏水透析过夜,冷冻干燥得多糖醇,加入3mL 2mol/L 三氟乙酸,封管100e 水解6h,减压蒸干,加入3mL 甲醇,减压蒸干(共3次),加入20mg 盐酸羟胺,1mL 吡啶,90e 振荡反应30min,取出冷至室温,加入1mL 乙酸酐,90e 继续反应30m in,产物直接进行气相色谱分析,气相色谱条件同前.图2 PSM 的红外光谱图Fig.2 IR of PSM1.8 分子量测定 凝胶柱层析法(Sephadex G -200,35cm @2.6cm)测定其分子量.标准多糖分别上样,上样量为3mg ,流速0.2mL/min,每管2ml,0.1mol/L NaCl 洗脱,苯酚-硫酸法检测,分别求得洗脱体积(V e).蓝色葡聚糖在相同条件下上样,测定其洗脱体积(V o),以分子量对数(lg M )为横坐标,V e/V o 为纵坐标,绘制标准曲线.PSM 在相同条件下上柱,测定其洗脱体积.2 结 果2.1 分离纯化 极大螺旋藻粉100g 提取粗多糖,经脱蛋白、透析、凝胶柱层析,收集单一洗脱峰,透析,冷冻干燥得白色粉末状PSM 纯品840mg,纯多糖得率为0.84%.2.2 纯度鉴定 纸层析结果为单一海蓝色斑点,图3 PSM 的氢谱图Fig.31H -NMR of PSM凝胶柱层析和高效液相色谱分析(图1),结果均为单一对称洗脱峰,表明组分均一.2.3 紫外光谱分析 结果显示在260nm 和280nm 处无明显吸收峰,表明PSM 中不含核酸和蛋白质等杂质成分.2.4 糖苷键键型分析 2.4.1 红外光谱分析 结果表明,PSM 在3400cm -1附近有O -H 伸缩振动的强吸收峰,2900cm -1有C -H 的伸缩振动,1400~1200cm -1有C -H 的变角振动吸收峰,839.9cm -1处有吸收,表明PSM 为A 型糖苷键(图2).2.4.2 核磁共振氢谱分析 结果表明,Cl 位氢主要峰的化学位移大于5.0,无明显裂分,说明PSM 为A 型糖苷键(图3).2.5 单糖组成分析2.5.1 硅胶薄层层析 结果表明PSM 由L -鼠李糖、D -木糖、D -半乳糖、D -葡萄#581# 第5期邓时锋,等:极大螺旋藻多糖的分离纯化及化学结构分析糖、D -甘露糖、葡萄糖醛酸组成,其RF 值分别为0.61、0.58、0.38、0.41、0.50、0.12.2.5.2 硫酸-咔唑反应 结果为阳性,表明PSM 单糖组成中有己糖醛酸.根据T LC 结果,以葡萄糖醛酸配制标准溶液,得回归方程y =0.00765x +0.01625,r =0.99944(n =5).图4 硫酸-咔唑比色法标准曲线Fig.4 Standard curve of sulfuricacid -carbazole method测得葡萄糖醛酸含量为18.873%(图4).2.5.3 气相色谱分析 结果表明(见图5,表1),PSM 由L -鼠李糖、D -木糖、D -半乳糖、D -葡萄糖、D -甘露糖和D -阿拉伯糖组成.表1 PSM 的气相色谱分析结果Table 1 GC analysis of PSMR etT ime/min A rea/%L-鼠李糖17.28834.0430D-阿拉伯糖19.126 5.91814D-木 糖19.37815.81754D-甘露糖28.911 6.07201D-葡萄糖29.07017.48596D-半乳糖29.37720.66611综上所述,PSM 由L -鼠李糖、D -木糖、D -葡萄糖、D -半乳糖、D -阿拉伯糖、D -甘露糖和葡萄1.L -rhamnose17.487;2.D -fuctose;3.D -arabinose;4.D -x ylose;5.D -mannose;6.D -g lucose;7.D -galax tose图5 PSM 的气相色谱图Fig.5 GC analysis of PSM糖醛酸组成的酸性杂多糖,其摩尔比为1.947:0.905:1:1.182:0.338:0.347:1.330.2.6 相邻单糖基连接方式分析[5] 2.6.1 高碘酸氧化 10d 后OD 值稳定,根据NaIO 4标准曲线:y =23.681x -0.0323,r =0.9996(n =10),计算高碘酸钠消耗量.吸取10mL 溶液,加入1mL 乙二醇,用NaOH 溶液(0.01mol/L 的邻苯二甲酸氢钾溶液标定)滴定甲酸生成量,其关系为多糖:高碘酸钠消耗量:甲酸生成量=1:0.3891:0.1629,根据高碘酸氧化规则可知,1y 6位键合的糖基占16.29%,1y 3位键合的糖基占77.38%.2.6.2 Smith 降解 气相色谱分析结果表明(见图6),降解产物中L -鼠李糖的含量为53%,表明PSM 的主链由L -鼠李糖以1y 3位键合的糖苷键组成.同时极少量的甘油、赤藓醇表明PSM 中含有少量的1y 2位或1y 4位糖苷键.#582#南京大学学报(自然科学)第36卷1.glycerol;2.erythritol;3.L -r hamnose;4.D -arabinose;5.D -x ylose;6.D -mannose;7.D -gluctose;8.D -g alaxtose图6 Smith 降解的气相色谱图Fig.6 GC analysis of Smith degradation2.7 分子量测定 经Sephadex G -200凝胶柱层析测得其外水体积为52mL,PSM 的洗脱体积为102mL,根据标准多糖的回归方程y =7.112- 1.157x ,测得其分子量约为2.95万.3 讨 论极大螺旋藻多糖成份复杂,分离纯化难度较大,由于其单糖组分较多,因此PSM 精细结构难以测定.实验中对几种脱蛋白的方法进行了比较,发现T CA 沉淀法和H Cl 等电点法效果较好,脱蛋白效率很高,但多糖损失率达38%和34%,为避免多糖降解和损失,因此还是选择较温和的Sevag 法(用氯仿:正丁醇=4:1,混合振荡),纯多糖经紫外光谱扫描表明脱蛋白质、核酸等大分子效果很理想.纸层析、凝胶柱层析和高效液相色谱分析表明纯多糖组分均一,其中高效液相色谱图不是十分好,这可能主要是由于色谱仪稳定性和检测器灵敏度较差的缘故.气相色谱采用糖腈乙酸酯衍生法进行,每种单糖(酮糖除外)均能得到单一的色谱峰,故可根据其峰面积推断单糖的摩尔比.TLC 比GC 少检出一个阿拉伯糖,主要是因为阿拉伯糖含量较低,而TLC 的灵敏度较差所致,GC 未检出葡萄糖醛酸,主要是因为葡萄糖醛酸还原乙酰化产物仍含有羧基,极性大,在此条件下不易气化出峰.多糖具有广泛的生物学活性,是一种天然来源的免疫调节剂,其最大的优点是毒副作用小,来源广.作为抗肿瘤药物,它可以克服肿瘤病人化疗和放疗过程中在杀死肿瘤细胞的同时造成的对机体正常细胞的损伤.因此极大螺旋藻多糖的研究具有广阔的应用前景,其药理药效方面的工作有待于进一步的深入.#583# 第5期邓时锋,等:极大螺旋藻多糖的分离纯化及化学结构分析[参 考 文 献][1] 刘力生,郭宝江,阮继红,等:螺旋藻多糖对机体免疫功能的提高作用及其机理研究[J].海洋科学,1991;(6):44~49.[2] 郭宝江,庞启深,阮继红,等:螺旋藻多糖对植物细胞辐射遗传损伤的防护效应[J].植物学报,1992;34(10):809~812.[3] 刘力生,郭宝江,阮继红,等:螺旋藻多糖对移植性癌细胞的抑制作用及其机理的研究[J].海洋科学,1991;(5):33~37.[4] 刘宇峰,张成武,沈海燕,等:极大螺旋藻胞内多糖对人血癌细胞生长的影响[J].中草药,1999,30(2):115~118.[5] 张惟杰.糖复合物生化研究技术[M ].第3版.浙江大学出版社,1994.202~206.[6] 张惟杰.复合多糖生化研究技术[M ].上海科学技术出版社,1987.294~296.[7] Staub A N.M ethods in Carbohydr [J].Chemistr y,1965,5:5.ISOLATION,PURIFIC ATION AND CHEMICAL STRUCTURE ANALYSIS OF POLYSACCHARIDE FRO MSPIR ULINA MAXIMADENG Shi -f eng,LI U Zhi -li,L I Zhao -lan,Y U li(Department of Biological Science and T echnology,Nanjing U niversity,Nanjing,210093,China)Abstract: Polysaccharide o f Sp ir ulina max ima (PSM )w as isolated and purified from Sp ir ulina max ima by hot water extr action,alcohol precipitation,Sevag method and gel filtr atio n(Sephadex G -100).Its homog eneity w as ex amined by paper chromatography,Sephadex G -200g el column chromatography and HPL C.T he av erag e molecular weight of PSM is 29500.Infr ar ed analysis and t he 1H spectrum of nuclear magnetic resonance analysis show ed that PSM has A -glycoside linkage.I ts mono -saccharide compositio n was identified by thin -layer chromatography and GC.PSM consists of L -rhamnose,D -arabinose,D -x ylose,D -mannose,D -glucose,D -g alactose and glucuronic acid in the ratio of 1.947:0.338:0.905:1:0.347:1.182:1.330.T he results of periodate oxidation and Smith degradation showed that the major linkage of PSM is (1y 3)L -rhamnose.Key words: polysaccharide of sp ir ulina max ima ;isolation and purification;chemical str ucture analysis#584#南京大学学报(自然科学)第36卷。
