第八章动物实验基本操作方法

在基础医学实验中，正确捉拿与固定动物，是实验工作的基础，也是实验顺利进行的保证。

掌握正确捉拿、固定动物的目的就是防止实验者被动物咬伤抓伤， 同时也是为了维持动物的正常生理活动，从而不影响实验观察结果。

一、实验动物的捉拿与固定方法在基础医学实验中，最常用的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、蟾蜍、 捉拿与固定方法依次予以介绍。

1. 小鼠捉拿时先用右手将鼠尾抓住提起，放在较粗糙的台面或鼠笼上，拉尾（图5-1），用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和头颈部皮肤，将其置于左手心中，拉直 四肢并用左手无名指压紧尾和后肢 （图5-2），右手即可作注射或其他实验操作。

取尾血及尾静脉注射时，可将小鼠固定在金属或木制的固定器上（图5-11）。

2. 大鼠方法基本与捉拿小鼠相同，但实验者事先应戴帆布防护手套。

用右手将鼠尾抓住提起，较粗糙的台面或鼠笼上， 抓住鼠尾向后轻拉， 左手拇指和食指抓紧两耳和头颈部皮肤， 三指紧捏鼠背部皮肤，如果大鼠后肢挣扎厉害，可将鼠尾放在小指和无名指之间夹住， 个鼠固定在左手中， 右手进行操作。

若进行手术或解剖， 则应事先麻醉或处死，然后用棉线 活结缚四肢，用棉线固定门齿， 背卧位固定在大鼠固定板上。

需取尾血及尾静脉注射时，可 将其固定在大鼠固定盒里，将鼠尾留在外面供实验操作。

3. 豚鼠豚鼠具有胆小易惊的特性，因此抓取时要求快、稳、准。

一般方法是：先用右手掌迅速、轻轻地扣住豚鼠背部，抓住其肩中上方，以拇指和食指环握颈部， 对于体型较大或怀孕的豚鼠， 可用另一只手托住其臀部（图5-3、图5-4）。

蛙、家兔和犬，现分别就其 在其向前爬行时，右手向后图5-1图5-2放在余下 将整5-4图5-34. 蛙和蟾蜍用左手将动物贴紧在手掌中，并以左手中指、无名指、小指压住其左腹侧和后肢，拇指和食指分别压住左、右前肢，右手进行操作。

根据实验需要，可用图钉，采取俯卧位或仰卧位固定在蛙板上。

抓取蟾蜍时，禁忌挤压两侧耳部毒腺，以免毒液射入眼中。

动物实验的基本操作技术实验报告实验报告一、实验目的1.学习毒理学实验中有关动物实验的基本操作技术2.掌握健康小鼠的外观检查方法、性别鉴定、捉拿和固定方法、小鼠灌胃给药与小鼠腹腔注射给药等技术3.掌握小鼠颈椎脱臼法处死方法、小鼠脏器系数的概念及其测定方法、病理学意义4.熟悉小鼠的标记、小鼠解剖步骤及正常脏器观察5.了解实验动物的被毛去除方法、实验动物粪、尿的收集、小鼠血液样本采集方法二、实验材料和器材1.动物：小鼠2.器材：鼠笼、天平、注射器、灌胃针、止血钳、手术剪、平皿、托盘、烧杯若干。

三、实验方法1.对小鼠进行观察观察的指标主要包括：小鼠的体型、发育情况；毛发是否清洁浓密有光泽，是否顺贴不蓬乱；行动是否迅速，反应是否灵敏；眼睛是否明亮有神，瞳孔是否清晰等圆；天然孔道是否干净、有无分泌物。

2.小鼠的捉拿右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。

此时迅速用左手拇指和食指捏任小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。

3.小鼠性别鉴定主要观察肛门与生殖器之间的距离。

雄性大鼠的距离较大，雌性的距离较小，且成年雄鼠尾部可见睾丸，成年雌鼠可见乳头。

4.小鼠称重打开电子天平，待读数显示稳定后，将平皿置于天平上，去皮；将小鼠置于平皿中，待读数显示稳定后，读数得25.95g。

5.小鼠灌胃1）准备灌胃针头，将注射器针头拔下，更换为灌胃针头；根据小鼠的体重，按0.1ml/10g 灌胃量计算：V=25.950*0.1/10=0.26ml用注射器取0.26ml液体（自来水）；2）按“三-2-1）”的方法抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线；3）灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后即可推注药液，然后原方向将灌胃针抽出。

6. 腹腔注射1）吸取液体（自来水），将针头向上，吸取一段气体后，再缓慢排除气体，以达到取出气泡的效果。

动物实验基本操作一、实验动物的抓取与固定。

（一）小鼠。

1. 抓取。

- 用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙表面上。

当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指迅速捏住小鼠两耳后颈背部皮肤，无名指和小指夹住小鼠尾巴根部，将小鼠固定成头部略向上的姿势。

- 原因：捏住尾巴提起小鼠可以避免小鼠咬伤操作人员，将其放在粗糙表面上是利用小鼠的本能反应（向前挣扎），便于后续准确抓取其颈背部皮肤。

而固定成头部略向上的姿势有利于进行诸如灌胃、注射等操作，并且能防止小鼠咬伤操作人员脸部等部位。

2. 固定。

- 如需进一步固定，可将小鼠放在特制的小鼠固定器内，将其身体和四肢固定好。

也可以将小鼠固定在泡沫板上，用大头针固定其四肢（这种方法常用于解剖实验）。

- 原因：使用固定器可以确保小鼠在实验过程中保持稳定，减少因挣扎而影响实验操作的准确性，同时也能保障操作人员的安全。

对于解剖实验，在泡沫板上用大头针固定四肢可以充分暴露小鼠的身体结构，便于进行精细的解剖操作。

（二）大鼠。

1. 抓取。

- 先用右手抓住大鼠尾巴中部，将大鼠提起，放在粗糙平面上。

然后用左手戴防护手套（大鼠体型较大且可能会激烈挣扎，容易咬伤操作人员），从大鼠背部绕到其胸前，拇指和食指捏住大鼠两耳后颈背部皮肤，其余手指握住大鼠身体，将其提起固定。

- 原因：与小鼠抓取类似，先抓住尾巴提起是为了初步控制大鼠，放在粗糙平面上利用其向前挣扎的本能便于后续抓取。

戴防护手套是因为大鼠的咬合力较强，为了防止操作人员受伤。

2. 固定。

- 可将大鼠放入大鼠固定器中固定。

对于需要进行手术等操作的大鼠，也可将其麻醉后固定在手术台上，用绑带固定其四肢。

- 原因：固定器和手术台固定都能保证大鼠在实验过程中保持稳定，使实验操作能够顺利进行，尤其是在进行需要精细操作的手术时，稳定的固定是确保手术成功的关键因素之一。

二、实验动物的给药操作。

（一）口服给药。

1. 灌胃法（以小鼠为例）- 准备好灌胃针（一般为特制的金属针具）和相应的药物溶液。

动物实验的基本操作方法动物实验是一种科学研究方法，用于研究动物的生理、病理、行为和药理等方面的问题。

在进行动物实验时，必须严格遵守相应的伦理和法律规定，并采取一系列操作措施保证动物的福利和安全。

下面将介绍一些动物实验的基本操作方法。

1.动物选材：选择合适的动物品种和个体，以确保实验结果的准确性和可重复性。

根据实验目的和动物特征，选择合适的动物模型，如小鼠、大鼠、家兔、猪等。

2.动物饲养：为动物提供适宜的饮食、住所和环境条件，确保动物的生理和行为需要得到满足。

饲养动物的场所需要保持清洁、干燥和温度适宜。

饲养员需要定期检查和维护饲养设施，确保良好的饲养条件。

3.动物标记：在实验开始前，通常需要为动物进行标记，以便对个体进行识别和追踪。

常见的标记方法包括使用耳标、颈环、脚环等。

标记方法应该选择无害和可靠的方式，以避免对动物造成不必要的伤害或不适。

4.麻醉和麻醉恢复：在一些实验操作中，需要给动物进行麻醉，以减轻或消除动物可能遭受的疼痛和不适。

麻醉方法应根据动物品种和体重选择合适的药物和剂量，并在麻醉过程中密切观察动物的麻醉深度和生命体征。

在实验结束后，需要给动物提供适当的护理和监测，以保证动物能够恢复到正常的生理状态。

5.动物取样：在一些实验中，需要从动物身体中取样，如血液、组织、尿液等，以进行后续的分析和检测。

在进行取样操作时，需要注意采用无菌操作技术，并控制好取样的时间和方法，以减少对动物的伤害和痛苦。

6.实验控制组：为了保证实验的可靠性和可重复性，通常需要设置实验对照组。

对照组和实验组之间应尽量保持一致的环境和操作条件。

同时，需要收集和记录相关的数据和信息，以便后续的数据分析和结论的推断。

7.实验设计和随机分组：在进行动物实验时，应采用合适的实验设计和统计分析方法，以尽量降低误差和偏差。

实验分组应进行随机分配，以保证所研究的因素对实验组和对照组的影响是均匀的。

8.数据分析和结果解释：在完成实验后，需要对实验数据进行统计分析和结果解释。

动物实验基本操作技术1. 什么是动物实验？动物实验，顾名思义，就是用动物来做实验。

这可是个很有争议的话题，有人觉得这是科学进步的必要步骤，有人则认为这样对小动物太不公平。

其实，动物实验在医学、心理学、毒理学等领域都扮演着重要角色，就像是科学界的小伙伴，帮助我们找到很多问题的答案。

它让我们在研发新药、测试产品之前，先看看这些东西对生命的影响。

嘿，谁会愿意拿自己去试验呢，对吧？2. 动物实验的基本操作2.1 准备工作开始实验前，咱们得做好充分的准备工作。

想象一下，你准备去野外露营，得先把帐篷、食物、睡袋全都备齐，动物实验也是一样。

首先，你得了解实验的目的，确保你知道自己要干嘛。

接着，选好实验动物，常见的有小鼠、大鼠、兔子等。

它们可是咱们的实验小明星哦！要确保动物的健康状况良好，毕竟，咱们可不能让小动物们在实验中受苦。

2.2 操作过程好了，准备工作都做好了，咱们就可以开始操作了。

在实验过程中，保持冷静和专注是关键。

比如说，给小动物打针的时候，手一定要稳，不然就像大厨切菜时不小心切到手一样，得不偿失。

此外，注意观察动物的反应，如果它们表现得很不舒服，那可得立即停止实验。

记住，咱们不是要折磨它们，而是要让它们帮助我们获取知识。

3. 实验后的处理3.1 数据记录实验结束后，别急着松一口气，咱们还有一项重要工作——记录数据。

好比你考试后要整理笔记，数据记录能帮助咱们分析实验结果。

确保每一个细节都被记录下来，包括动物的状态、实验条件等等，这些都是今后研究的重要参考。

没有记录，实验就像是没吃过的榴莲，香味全无，完全没办法享受。

3.2 动物的安置最后，咱们得考虑动物的安置问题。

根据实验的性质，有些动物可能需要被安乐死，而有些则可以继续观察一段时间。

无论怎样，处理动物的时候一定要尊重它们。

动物也有生命，它们的价值不仅仅在于实验数据，更在于它们是这个地球上的一部分。

我们得对它们负责，尽量给它们一个体面的归宿。

4. 总结动物实验虽然重要，但这并不意味着我们可以随意对待小动物。

动物实验的基本操作方法第一节实验动物的抓取、固定、编号、标记方法抓取固定动物是建立在对各种动物的一般习性有所了解的基础之上的，以免被动物咬伤、抓伤，或造成动物的伤亡和应激反应，使动物安静、顺利地进行各项实验。

一、小鼠抓取与固定（一）抓取：用右手拇指和食指的指腹抓住尾部中央提起或用两手捧起(对于幼年的小鼠)。

（二）固定1、徒手固定（1）提起小鼠放在饲养盒盖子上，轻轻向后拉住。

（2）左手环指、小指背轻压鼠背后，拇指和食指抓住颈、背部中央皮肤并绷紧。

（3）翻转抓住颈背部的左手，右手拉住鼠尾，再用左手的小指、环压住尾根及后腿，使整个小鼠呈一条直线。

2、固定板固定：适用于心脏采血或外科手术（1）将小鼠麻醉后，用细绳捆住小鼠四肢。

（2）准备一个15-20cm，边缘钉有5个钉子的方木板。

（3）将四肢用细绳固定在木板两侧的钉子上，在上颚切齿处用细绳固定在木板前方的钉子上。

3、固定器固定：适用于尾静脉注射或取尾血用特制的不锈钢或玻璃小鼠固定器让小鼠钻进去并露出尾巴固定好。

二、大鼠的抓取与固定（一）抓取：周龄较小的大鼠，可以像小鼠一样抓住尾部提起；周龄较大的大鼠需捉提尾根部。

注意：大鼠易怒，抓取时不要长时间将大鼠悬在空中，以防激怒大鼠。

（二）固定1、徒手固定（1）对体重较小的大鼠可用拇指、食指捏住大鼠耳部及颈部皮肤，余下三指紧捏住背部皮肤，置于掌心，调整好大鼠在手中的姿势即可（有点类似于小鼠）。

（2）周龄较大的大鼠可张开左手虎口，迅速将拇、食指插入大鼠的腋下，虎口向前，其余三指及掌心握住大鼠身体中段，并将其保持仰卧位，然后调整左手拇指的位置，紧抵在下颌骨上即可。

注意：为防大鼠咬伤，抓取固定时最好戴帆布防护手套或用旧浴巾、毛巾叠厚层将大鼠罩住。

2（3）、固定板（器）固定与小鼠同，只是固定板（器）大些。

亦可以可乐瓶剪去盲端代替（腹腔注射）。

三、豚鼠的抓取与固定（一）抓取抓取幼龄豚鼠时，用两手捧起。

成熟豚鼠先用右手掌迅速扣住背部，抓住其肩胛上方，以拇指、示指捏住颈部，其余手指握持躯干，即可轻轻提起。

动物实验的基本技术操作方法动物实验是一种科学研究的重要手段，也是科学发展和医学进步的必要步骤之一、在进行动物实验时，研究人员需要掌握一系列基本的技术操作方法。

下面将介绍几种常见的动物实验技术操作方法。

1.动物麻醉操作：动物麻醉是进行动物实验的前提条件，可以减少动物的痛苦和压力，保证实验结果的可靠性。

常用的麻醉方法包括静脉麻醉、吸入麻醉和局部麻醉。

研究人员需要掌握药物的剂量、给药途径和监测动物麻醉深度的方法。

2.动物手术技术：在进行一些复杂的实验时，需要进行动物手术操作。

手术技术操作包括皮肤消毒、手术切口、血管或器官的外露和缝合等。

研究人员需要掌握无菌操作的技巧和手术操作的规范，以确保手术的成功和动物的生存率。

3.器械使用和数据记录：在动物实验中，研究人员需要掌握各种生物学实验仪器的使用方法，如离心机、显微镜、血液分析仪等。

同时，需要准确记录实验过程中的数据，包括动物身体指标、实验参数和操作步骤等。

4.体内注射技术：动物实验中常用的一项技术是体内注射，包括静脉注射、皮下注射和腹腔注射等。

研究人员需要掌握注射针头的选择、皮肤局部麻醉的方法和注射位置的确定等。

5.血液采集技术：在一些实验中需要进行动物的血液采集，以获取血液样本进行化验或分析。

血液采集技术包括尾脉、静脉和心脏穿刺等。

研究人员需要掌握相应的采血器具的使用方法，以及合理的采血量和采血速度。

6.器官取材和组织处理技术：在一些器官相关的实验中，需要对动物进行器官取材和组织处理。

器官取材技术包括猝死动物器官取材和活体器官取材。

组织处理技术包括固定处理、包埋和切片等。

研究人员需要掌握无菌操作技术和组织处理的标准流程，以获得有效的实验结果。

7.动物分组和饲养技术：在进行动物实验前，需要对动物进行分组和饲养。

分组技术包括随机分组和对照组的设计等。

饲养技术包括提供适宜的饲料和水源、维持良好的生活环境等。

研究人员需要了解动物的生理特点和各种实验动物的饲养要求，以保证动物的健康状态和实验的可靠性。