大鼠尾静脉采血经验总结

大鼠取血方法及注意事项以大鼠取血方法及注意事项为标题，我们将详细介绍大鼠取血的步骤和需要注意的事项。

大鼠取血是实验室常用的操作步骤之一，正确的取血方法能够确保实验结果的准确性和可靠性。

一、大鼠取血的方法1. 麻醉大鼠：在进行大鼠取血前，首先需要麻醉大鼠。

常见的麻醉方式包括：静脉注射麻醉剂、吸入麻醉剂或麻醉气体等。

选择合适的麻醉方式应根据实验的需要和大鼠的品系、年龄等因素来确定。

2. 选择合适的取血部位：大鼠取血可选择的部位有尾静脉、颈静脉、股静脉等。

一般情况下，常用的取血部位是尾静脉，因为该部位较容易操作且出血量较大。

3. 准备取血器材：取血器材包括注射器、针头、血管夹等。

注射器的容量应根据实验需要来选择，一般常用的是1ml或3ml的注射器。

针头的选择应根据大鼠的大小来确定，一般较小的大鼠可选择22G 或23G的针头。

4. 清洁取血部位：在进行大鼠取血前，需要先用70%酒精或碘酒等消毒液清洁取血部位，以避免感染。

5. 插入针头：将针头插入静脉血管中，一般插入角度为30度左右，插入后要确保针尖进入血管腔内。

6. 固定针头：当针头插入到合适的位置后，需要用血管夹固定住针头，以防止针头脱出或移位。

7. 采集血液：打开注射器的活塞，缓慢地抽取所需血液量。

在抽取血液时，要注意避免对大鼠造成过度的伤害或疼痛。

8. 停止出血：当取得足够的血液样本后，可以用消毒棉球轻压在取血部位，帮助止血。

9. 处理取血部位：取血结束后，要及时用消毒液清洗取血部位，以防止感染。

二、大鼠取血的注意事项1. 需要遵守实验伦理规范：在进行大鼠取血前，需要确保已经获得了相关的伦理批准，并遵守实验动物的使用和保护规定。

2. 需要专业技术人员操作：大鼠取血需要经过专业培训和指导后才能进行，确保操作的准确性和安全性。

3. 需要注意大鼠的健康状况：在进行大鼠取血前，需要确保大鼠的健康状况良好，没有明显的疾病或受伤。

4. 需要合理控制取血量：取血量应根据实验的需要来确定，避免过度取血造成大鼠的伤害。

大鼠和小鼠的采血方法1.麻醉方法：在采血前，先给大鼠或小鼠进行麻醉，以减少它们的疼痛感受。

常用的麻醉方法有以下几种：-静脉麻醉：将合适剂量的麻醉剂通过尾静脉或背静脉注射给大鼠或小鼠，使其进入麻醉状态。

-吸入麻醉：将麻醉气体或气溶胶通过麻醉箱或麻醉罩给大鼠或小鼠吸入，达到麻醉效果。

-局部麻醉：将麻醉剂涂抹在采血部位的皮肤上，使局部麻木，减少疼痛感。

2.采血部位：常用的大鼠采血部位有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉等，而小鼠采血部位则有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉、前肢静脉等。

3.采血工具和器材：-采血针：选择合适大小的采血针，不同大小的动物需要选择不同规格的针头。

-注射器：用于抽取和储存血液样本的容器。

常用的有离心管、毛细管等。

-注射器插管：将采集到的血液导入注射器中储存。

4.采血方法：-尾静脉采血：将大鼠或小鼠的尾巴用温水浸泡，使其尾部静脉扩张。

然后用酒精消毒尾巴，用手指轻轻压住尾部静脉靠近尾根的部位，使尾尖鼓胀，再用采血针针尖刺破尾尖的皮肤，顺着静脉方向将血吸入注射器中。

-颈静脉采血：将大鼠或小鼠定位于侧卧位，用酒精消毒颈部的皮肤。

手指轻轻压住颈侧的静脉，使其充血，然后用采血针针尖针插入触及到静脉，将血液吸入注射器中。

-眼眶突静脉采血：先给大鼠或小鼠进行眼眶突的局部麻醉，随后用消毒酒精将眼眶突部分消毒。

再用适当大小的针头插入眼眶突静脉，将血液抽取到注射器中。

5.采血后的处理：-停血：采血后需用无菌棉球或无菌纱布轻轻按住针刺处，让血液凝结停止流血。

-保存：将采集到的血液样本转入离心管中，用离心机离心，分离血浆和血细胞。

将血浆或血细胞储存在冷冻管中，冷冻保存。

以上就是大鼠和小鼠采血的最全方法。

在进行采血操作时，需要注意动物的麻醉和疼痛管理，操作要轻柔、快速、准确，以减少动物的痛苦和疼痛。

另外，为了确保采血的科学性和准确性，还需要遵守实验室的相关规范和伦理要求，确保实验与动物实验道德的合理性。

尾静脉采血技术操作流程概述说明以及解释1. 引言1.1 概述:尾静脉采血技术是一种常用的实验动物采血方法，通过从小鼠或其他实验动物的尾部提取静脉血样本，为科研工作和临床实践提供了重要的生物学信息。

这种技术简单易行，具备许多优势，如非侵入性、低风险以及能够提供较大的血样本量等。

1.2 文章结构:本文将首先介绍尾静脉采血技术的操作流程，包括准备工作、操作步骤等；接着将详细说明需要注意的事项和安全措施，以确保采血过程中不会造成损伤或感染；然后将列举常见困难并提供相应解决方法；最后将总结该技术的操作流程，并对其应用范围和优势进行讨论，并展望未来发展方向与挑战。

1.3 目的:本文旨在提供一个清晰明确、详细可行的尾静脉采血技术操作流程指南，帮助读者正确掌握该技术并进行顺利实施。

同时，通过解释操作流程中的每个步骤和涉及到的注意事项，读者将对尾静脉采血技术有更深入的了解，并能够避免常见错误和困扰，从而提高实验成功率。

2. 尾静脉采血技术操作流程：2.1 简介尾静脉采血技术：尾静脉采血技术是一种常用的实验动物（如小鼠、大鼠等）体内取样的方法。

此技术通过在动物的尾部静脉采集样本，用于进行生理、药代动力学以及毒性研究等方面的分析和评估。

2.2 操作流程步骤：（1）选择适当的尾部：确保选择一个适合插入针头并让尾部稳定的区域。

宜选择毛发较少、无明显血管外突或肌肉组织过厚的位置；（2）准备工作：对实验动物进行安抚，并清洗尾部。

注意消毒使用无菌盐水或酒精棉球沿着要插入针头处轻轻擦拭。

（3）握紧尾巴使之充满血液：轻轻地将手指放在离希望采集样本点约5-10mm 远处，并且用另一条手臂固定住该只实验动物，然后从基底向远端按压尾部。

轻揉或敲击尾部也能增加静脉血液流动，有助于良好的血样质量。

（4）定位针头入口点：掌握一个45度角度，并用与尾部平行的方向将针头靠近至入口点。

（5）穿刺：稳定手臂和针头，确定好入口点后，快速而坚决地推入穿透皮肤并进入血管。

大鼠取血方法1. 割（剪）尾采血：当所需血量很少时采用本法。

每鼠一般可采血10余次以上。

小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3〜0.5ml。

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此法町采L5-2 mL2. 鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。

先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。

用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉, 拔出针头时即有血滴出，一次可采集10〜50mm3。

如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

3. 眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml ;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。

将天M冊建庄实验台边Sfir左手抓囂大區拥那皮肤囿定头部，井轻轻向下压迫用導先稚备好的io 号舍JM甘头顶蝎（怦尖斛閒朝内人垂氏插人内就并向眼底方向转动以便切开押体丛「血敕便会连缨不斷地溝人采血用此法大约可取？-3 取血宪毕•立刻用脱册郴压迫也环境材料0.9mm x 100mm,背牛人习櫃便用丫经常骨—断.30mm晴、弁去屮阀段=EP 曲虻人0.1% IH-比钠< >150U/mgJ 0J mL-均匀涧湿・50P减下I輻适帀1mL伞血的抗甌效果肛人取血则感须熒I R J衿住骨的质昂.杯号井汕. 邀当劣备.1 Mi ■. ■■ iV ■■■. >■ -K> ■宽敬台曲*輕了F组多步驟同时操作］| ■ cm ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■■ ■琴L9tt»EP&J动物处理功物作亟耍求权不% J 250g给西前禁的2・24h・给药前探前0.5-1-Oh fe0.5-1.0% iV/W）给水实验粥问•补充休液.H前苛煜为:取血质常胃给予等统计4•理社加衙帝樹涪液.实验之后,外用泊炎药涂布眼部2 <1AF保定2压迢颈曽3加的剌入4固定采血5去背止jft 6样加擂匀4.叵定身怎.圧住石肢，放桧手祈，緞轿毛ML沆畅出血.6血样曾轻轻罷匀,防止窠血・濤血.Step 1A建议；L于内枚鼻•涌陆止摟見：B 一定更帶手豪；C开址必倾卑牢83定隹头邙头那乱动.扎位JT黑易棉僞离.且易枕咬伤:D可衣此叶将丸只取如的的乍須剪掉.彷止按总栽£・1 •料大R歿壬牲歐1±.捋钟*3 •右手持“曾从纹内*部，与6L土脱45的.从轻剌入5•取血丸成，之EF瞼去歿部压力.再采去界拔出，按圧吐上.1左手保定Stcpl.W大鼠按压在亂笼上.il&Wfff：藝部t2•紧携頤都，R追頌两侧.使卑突出・匝后铮脉丛充血r»ge 7•押•Stcp2A 可円管试来鼻段碰Cl 球是否巳疑 突出.1'此甘丈乱反此身扎JU ♦窑・保送 爪緊钓司时.不ttKii.便其宣息死亡.Step3A 针头钎面走尙at 班・的入后再转 一定角度便斜面廿着瓯聊&界；B 制入凍度.小区为2・4・大区 釣卜X ・考禺型有也力时即护止牠进. 同时.管逼出约0. 1-0. 5twr ・边迅边就 转；C 不要使用管的尖位伶利期描入. 场穷璇購碎片右叹内，迪成持纹伤芳. 使埒下次反抗增“；D 拿昔的子要保持工净，常血潢的 子損不妥搽狀管的的坊，另龟安疑血・ 可刃鮮水搏洗・Sgp2•禁祖fiS 部.压迪 it两侧・使銀交出.屯一I 后静脉丛It 血Step! WL 內如, 45匸夬代・戎转倒 入，夂转谴出.A -般血减速戊快.证明•«膩了殴匝劝脉. 如舉白兀迄皮慢.证明要调怒皂侦胥的位JL 占液祁克釘爼保中了，没版毛师打漉出来；B岀血过租*知週到出£不杨不用着宦械毛如管可以调兰一下毛细管的扎入付Jf或深戎浅的找止一下&会玄新沉出；C加肴“浹已经冬毛fw$中｛固必须込迫拔除毛细管，再搽工净眼哺.f*JMf4L4t；D筝到出血点将力it 删到大II的身体上大鼠出现英动的惜况檢大的一邯分力是他旳吉吹仗出来约保迄抱的后咬尢法乱蹬就瓮很好的供定大鼠.集后传中指和*第处… •U可以保iL血淹的雁畅5去育止ItStep SA自曙自繪宣的血量6.即冷去3千到1部的圧力.同时.并覆土茎抜出.以防土术6 £併扎出直.B尿乞把1RM罔18的血潢摄干冷，遊丸储块附徇下次2・6"品摇匀S"M・血桿片U经汎勺.---- 障止心・Step 44同龙采血・ ±fr 力.将集血2｛锻出.扶/!止血\ -* II4.断头取血： 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大 （小）鼠的颈部皮肤，并作动物头 朝下倾的姿势。

大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得- -大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。

小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。

通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。

在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。

如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。

或者用这个方法：1 小鼠要固定好，自制一个笼子，前面通气，中间最好有一个挡板，让小鼠不能后退，筒子后面开一个口，尾巴从这里出来，这样固定牢靠；2、注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；3、先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办；4、进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。

至于能否穿进，个人手感如何，全靠自己啦。

多练习，一定很快掌握的，不难，绝对不难！我练习10余只小鼠就比较熟练了2. 用酒精棉球擦拭尾巴,使血管扩张;或者用热水或者热毛巾焐热，使静脉扩张；选用适当的针头，越细越好；在尾部较靠近上段的地方注射，这里血管比较大。

用酒精或热水擦拭，擦拭的时候，可把尾巴用力扯在桌面上。

注射状态为尾巴发白，紧靠白色的尾骨两侧清晰可见两根红色静脉。

3.用左手的食指,中指,无名指及大拇指将小鼠尾巴固定,; 手法：握住1ml注射器前面0.1ml处。

右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处按此手形进针；看针尖前面那个斜面有3/4（关键），如果血管充盈则进1/2，进入，停，上挑针头，进针；左右轻摆动，如可动，可注射。

原则是：把你第一次打进的手形，完全固定下来，每次都重复。

4.注射:注射时左手扯尾，使尾巴紧贴桌面，尾巴与桌边紧贴转弯处为进针部位，一般选择距尾尖1/4或1/3处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易。

参加技能比赛静脉采血的心得体会
今日我参加了组织的技能比赛静脉采血，通过我这段时间的联系静脉采血的心得体会如下：
静脉采血选择采血部位
一般病人的采血首选肘正中静脉，体型偏瘦的患者较为明显，肉眼观察比较清楚，而且容易固定：体型偏胖的患者，皮下脂肪厚，不要轻易下针，用手指按压才能感觉出血管的充盈度、以及走向、深浅，才可进针:婴幼儿的采血应首选颈静脉和股静脉，如只采血常规时可
采末梢血（指手指，耳垂、脚后跟部位等采血）：
对于肿瘤患者，由于反复化疗，对血管的损伤太大，选择静脉局限，采血时尽量选择末梢较粗血管，而乳腺癌的患者应选择健侧采血：对于严重贫血、恶液质，吸毒者可采用股静脉采血：浮肿较严重的患者不用扎止血带，直接用手指按压血管使皮下液推向两侧，摸出血管时采血。

正确的采血方法
选择好穿刺的血管后，消毒穿刺部位，顺时针由中心向外滚动式消毒，直径大约5厘米，选择6.5~7针头，针头斜面向上，根据所选血管的深浅度掌握好进针角度，如所选血管的肢体是上肢应尽量紧贴桌面，迅速进入血管，针进入血管后有一定的落空感，并在针栓处有少量回血，迅速回抽即可：遇到刺穿血管这种情况不必拔了重新穿刺，应边退针边抽吸回血，如有回血时立即停止退针即可抽出所需血液。

抽血在体检中是项很重要的操作，工作人员一定要有熟练的技术，
高度的责任心和高质量的服务，还要求工作人员掌握一定的血液生化和基础解剖知识，通过大量的临床操作和实践，才能使采血技术得不断提高。

希望通过这个技能大赛我能取得好成绩也能更好的提升静脉采血的技术。

大鼠尾静脉采血的技巧
1. 嘿，一定要找好位置呀！就像找宝藏一样得仔细，大鼠尾静脉就在那呢，你要是找错了可就麻烦啦！比如说，要是没找准位置就下针，那不是白折腾嘛。

2. 进针可别太犹豫呀！果断一点，想象一下你戳破一个气球的瞬间，就是那种干脆！要是犹犹豫豫的，大鼠都不耐烦啦！你看，上次小王就是因为太磨蹭，弄了半天都没采到血。

3. 采血速度得控制好哇！太快太慢都不行，就如同开车，速度得适中。

要是太快了，大鼠不得难受得乱动，要是太慢，血都凝住了还怎么采呀！记得有一次我没控制好，哎呀，那场面。

4. 角度很关键呐！要恰到好处，这和投篮一样，角度不对怎么能进呢！要是角度错了，根本采不到血呀，白忙活一场。

5. 别紧张呀，你一紧张大鼠都能感觉到！就像考试紧张就容易出错一样，一紧张手一抖，那可就糟了。

就像小张上次，紧张得不行，结果弄得乱七八糟。

6. 采完血得处理好呀！这就像打完仗要打扫战场一样，不能乱糟糟的不管啦。

要是不处理好，大鼠多遭罪，咱们也不专业呀！那次小李采完就不管了，被狠狠批评了一顿。

7. 多练习才是王道啊！就像练武功一样，越练越厉害。

只有多练习，才能掌握这些技巧，做到采血轻松又准确！
我的观点结论就是：大鼠尾静脉采血看似简单，实则有很多技巧和门道，只有掌握好这些，才能做得又快又好！。

采血技术实习总结引言在医学领域，采血是一项重要的常规操作。

通过采集血液样本，可以为临床诊断、治疗和疾病监测提供关键的信息。

我作为一名实习生，在过去的几个月中，有幸参与了采血技术实习。

本文将对我的实习经历进行总结，包括所学到的技术知识、实践中的问题和对未来的展望。

技术知识在本次实习中，我学习到了许多与采血技术相关的知识。

首先，我深入了解了人体的血液循环系统以及不同类型的血管。

我学会了如何选择合适的采血部位，并了解了各个部位的特点和常用的采血工具。

其次，我学习了不同的采血方法。

我了解到了最常用的方法是静脉采血和指尖采血。

静脉采血适用于较大的静脉血管，如手臂上的肘部或手腕部位。

指尖采血则适用于需要小样本量的情况，如血糖监测。

此外，我还学习了血样的处理和保存技巧。

保持血液样本的完整性和稳定性对于后续实验和检测是至关重要的。

我学会了正确标记和贮存血样，并了解了不同类型的血样适用于不同的实验室检测项目。

实践中的问题在实习期间，我也遇到了一些实践中的问题。

首先，对于初学者来说，找到合适的采血部位是一项挑战。

有时候，患者的血管可能较难触及或较窄，这需要更多的耐心和技巧。

然而，随着经验的积累，我逐渐掌握了正确的技术和方法。

其次，我在实践中遇到了一些难处理的特殊情况。

有些患者可能对采血过程感到紧张或恐惧，这就需要与患者进行有效的沟通和建立信任。

在一些情况下，患者可能出现晕厥或其他不适症状，我们需要及时采取措施保证患者的安全。

对未来的展望通过这次采血技术实习，我深刻体会到了专业知识和实践经验的重要性。

我相信在未来的实践中，我将继续完善自己的技术和方法，并逐渐成长为一名熟练的采血技术人员。

同时，我也意识到了沟通和与患者建立良好关系的重要性。

这将有助于减少患者的紧张和恐惧感，提高采血的效率和准确性。

此外，我还希望不断学习和探索新的采血技术和研究。

随着科学技术的不断发展，采血技术也在不断更新和改进。

作为一名专业人员，我希望能够保持学习的姿态，不断提升自己的专业水平。

尊敬的领导，亲爱的同事们：随着202X年的落幕，我在静脉采血岗位上度过的一年也即将画上句号。

在此，我谨以此篇年终总结，回顾过去一年的工作，总结经验，查找不足，为今后的工作提供借鉴。

一、工作回顾1. 爱岗敬业，提高自身素质在过去的一年里，我始终以高度的责任感和使命感，坚守岗位，爱岗敬业。

通过不断学习，提高自己的专业技能，熟练掌握了采血操作流程和各项规范，为患者提供优质的采血服务。

2. 严谨细致，确保采血质量在采血过程中，我始终保持严谨细致的工作态度，严格按照操作规程进行操作，确保采血质量。

对于特殊情况，能够及时沟通，妥善处理，避免了差错事故的发生。

3. 优化服务，提升患者满意度在服务患者的过程中，我始终以患者为中心，关注患者的需求，耐心解答患者的疑问，提供温馨、周到的服务。

通过优化服务流程，缩短患者等待时间，提升患者满意度。

4. 团结协作，共同进步在工作中，我注重与同事们的沟通交流，相互学习，共同进步。

在遇到困难时，积极寻求帮助，共同解决问题。

通过团队协作，提高了工作效率，确保了采血工作的顺利进行。

二、不足与反思1. 工作中存在一定的急躁情绪，有时不能很好地控制自己的情绪，给患者带来不便。

2. 在专业知识方面，还有待于进一步深入学习，以适应不断发展的医疗技术。

3. 在服务态度上，有时对部分患者缺乏耐心，需要进一步提高服务质量。

三、展望未来1. 深入学习专业知识，提高自身业务水平，为患者提供更优质的采血服务。

2. 优化服务流程，缩短患者等待时间，提升患者满意度。

3. 加强团队协作，与同事们共同进步，为我国医疗事业的发展贡献自己的力量。

总之，202X年对我来说是充实而难忘的一年。

在新的一年里，我将继续努力，以更高的标准要求自己，为患者提供更加优质的静脉采血服务，为我国医疗事业的发展贡献自己的一份力量。

敬请领导和同事们批评指正！此致敬礼！[您的姓名][年月日]。

大鼠和小鼠的采血方法（最全）这里主要介绍几种大小鼠的采血方法，以帮助试验中需要用到相关技术的人员。

1）尾尖取血：当所需血量很少时采用本法。

固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用二甲苯等化学药物涂擦，使局新血管扩张。

将鼠尾擦干，剪去尾尖，血自尾尖流出，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。

如需间隔一定时间，多次采取鼠尾尖部血液，每次采血时，将鼠尾剪去很小一段，取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。

也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。

这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。

（2）眼眶后静脉丛取血：当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。

用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。

刺入深度小鼠2～3mm，大鼠4～5mm。

当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。

得到所需的血量后，拨出毛细管。

若手法恰当，小鼠约可采血0.2～0.3ml，大鼠约可采血0.4～0.6ml。

（3）断头取血：当需要较大量的血液，而又不需继续保存动物生命时采用此法。

左手捉持动物，使其头略向下倾，右手持剪刀猛力剪掉鼠头，让血液滴入盛器。

小鼠可采血0.8～1.0ml，大鼠可采用5～8ml。

（4）眶动脉和眶静脉取血：此法既能采取较大量的血液，又可避免断头取血法中因组织液的混入导致溶血的现象，现常取代断头取血法。

先使动物眼球突出充血后，以弯头眼科镊迅速钳取眼球，并将鼠倒置，头向下，眼眶内很快流出血液，让血液滴入盛器，直至不流为止。

此法由于取血过程中动物未死，心脏不断在跳动，因此取血量比断头法多，一般可取鼠体重4～5％的血液量，是一种较好的取血方法。

我分享的经验也只局限在我做过的那几个实验方法当中。

1、第一个就是尾静脉注射的问题，看到好多虫子都想采用尾静脉注射给药，尾静脉注射呢其实到最后都讲究的是手感，但是如果作为新手的话，小妖还是觉得必须得拿老鼠来练手，这是必须的！
2、注射器呢一般选用1ml的注射器。

3、大鼠的尾巴上其实有三根静脉，在尾巴的正面有一根，但是这一根是凹陷在尾巴里面的，一般不采用注射这一根静脉，在尾巴的两个侧面各有一根静脉，通常都注射的是这两根静脉，因为这两根静脉是凸出来的。

4、冬天注射的时候可以将尾巴在热水里面浸泡一阵，这样让血管扩张，大鼠的尾端一般比较脏，再不是太冷的情况之下，小妖都是用酒精棉球擦拭大鼠的尾部，这样过后皮变得也好穿透一些。

5、另外注射部位通常在尾巴的下端皮要薄一些，这样比较容易的插进针头，同时也好进入血管中。

6、另外如果注射的时间久了过后，你可以采取用拇指和食指压住两侧的血管，另外一只手有上往下拨，这样能将血集中到一段静脉当中，方便注射。

7、通常情况下判断针头是否进入血管的主要方法就是看回血，但有的时候也没有回血，这样你就可以轻轻的推注射器，如果推的阻力不大，甚至是几乎没有阻力，并且看到静脉血管变白了就是进入血管了，要是没有进入血管的话，就会发现皮下会有一个隆起，并且推注的阻力也会很大。

小妖自己的判断就是感觉进入血管了后回抽针头一小点，再往前推一小点，如果往前推的过程是比较空的，没有阻力的那基本上都是进入了血管当中了。

8关于注射的剂量的问题，尽量控制在0.3~0.8ml左右。

好了，这次就主要分享下静脉注射的问题，等下次小妖想好了再分享另外的实验经验，希望对要静脉注射的虫子们有所帮助!。

大鼠尾动脉取血的方法和评价23_2一Z-222-嘻;验技术?大鼠尾动脉取血的方法和评价肛班贵阳医学院病理生理学教研室(贵阳550(1)4)桂华珍张国忠大鼠是常用的实验动物.但其形体较小,如何能顺利地采得一定量血液而不伤害动物,目前仍值得探讨.从大鼠取得血液的方法很多,侧如球后静脉丛穿刺,断头,切断股或尾动,静脉,心腔穿刺,腹主动脉和腔静脉穿刺等.这些方法简单易行,但均造成动物严重刨伤乃至死亡,在需要长期连续取血观察的实验中不宜使用.尾静脉取血也是一种常用的方法,对动物损伤小,可反复穿刺,但取得的血量十分有限.股动脉显微穿刺或插管取血可得到较多量的血液,但操作麻烦,对动物有一定损伤大鼠尾动脉穿刺,可取得较多量血液据我们了解,过去没有人报道过这种取血方法,因此,找们对较常用的Wistar和Sp畸一Dan.1ev(sD)大鼠的尾部进行了显微解剖,规范了取血方法,收到了满意效果.一,穿刺部位的选择:解剖显示,大鼠尾动脉走行于腹侧正中的尾骨陷凹内,从尾根部到尾尖逐渐变细,并且逐渐趋向浅表.如果将整条鼠尾平均分为三段,近根部为上1/3,这部分较粗,皮下组织较丰富,动脉位置深,穿刺命中率相对较低.从中1/3到下1/3,皮下组织相对较少,动脉比较浅表,是穿刺取血的较好部位,成功率高.表1 为6o只Wistar大鼠,体重150—200g,雌雄各半,尾部各段一次穿刺成功例数和比例.表1尾动脉一次穿朝成功倒散和比例Tab1Suet~ssf:ulcaseBandrole0ftallarteaypierei~二,操作步骤:1.麻醉:尾动脉穿刺前应将动物麻醉.麻醉可用乙醚吸人或其它全身麻醉药.我们习惯用乙醚麻醉,麻醉深度和时间易于控制,苏醒快,对动物正常生活影响小.2.穿刺取血:动物仰卧于手术台上,用消毒剂轻擦待穿部位.用手指托起井固定尾部. 找到隐约可见的尾动脉,用头皮针穿过皮肤朝根部方向进针.一般用7或8号针头,穿刺成功后,血液很快进入连接针头的塑料管中.用注射器轻轻抽吸即可得到一定量血液.取血完毕,用干棉球压迫止血.三,影响穿刺成功的因素及注意事项:1.麻醉要适度,不宜过浅或过深.在穿刺未能很快完成时,可用"面罩"开放吸人维持.2.穿刺先从尾部的下1/3开始,这样不但易获得成功,而且在一次穿刺失败后,还可沿根部方向的其他位点进行多次穿刺.穿刺手法要通过练习才能熟练掌握.一次取血不宜过多,以免影响动物血容量乃至休克.3.穿刺成功后血流应畅快,如果血流不畅,可能为没完全蒯人动脉或穿刺过深而贯通动脉壁,可调整针头位置,但不宜在同一位点反复多次穿刺致血管严重受损而闭塞或血管因蒯激而收缩,即使换刺其他位点亦难成功.4.多位点穿刺后,由于局部组织及血管壁多:损伤,应隔3～7d后才能再次从尾动脉取血,以利血管完整性恢复和血流畅通.5.鼠龄大而肥胖的大鼠,尾部较粗,皮层变厚,表皮角化明显,不利于穿刺.四,对尾动脉穿刺取血的评价:1.穿刺成功率高,对动物的损伤小223?2.鼠肇长,可供多次穿刺,适用于自体前后对照和长期问断取血观察的实验研究.3.可取得远较尾静脉多的血液量,很少发生溶血及混人非血液成分.4.本法的缺点是需对动物进行麻醉此外,休克,濒死和极度消瘦的动物,血管充盈度低.尾动脉取血不易,不宜用本法.(1996年7月I8日收稿,1997年6月5丑修回) (上接第22i页)参考文献1Nage~awaH.KogureKCorrelationbetweencerebral bloodflowandl~stologiecba.sawmodel0fmiddlecerebralarteryn兀SⅡ,1989,20:1037.2BaroneFC,SchmidtDB,ftilleg~sLM,etalRI:Ej0|1in啷s皓IleutmpIandleukoaieneB4艘ptorbinding ratfcali~ehemia.SⅡDke,1992,∞:13373rDN.Role0fm出Ⅲidaand吲eBin如hea一印h0|1iryAmJPh~ioltl988,255:H12田.4HarlanJMLeukocyte—e~,tc&amp;elialimemefi~,laBlcod, 1985.65:513.5Natsu~Y,On~deraH.SlIi朗Y,etalCorrel~ionbEeen myelin-一oldd~epuanfflednltlpl1ilac吼Ⅲ丑t_mandi~ehemicbinjlⅡylmlilt:Effects0fⅡep}lilde? pitonStmke.i994.25:i469.6CknH,Ct.叩pM,B0C№血aL峭?mileeeretlr~世如tmr~lerltn衄ec自℃almery∞cl0|1inrat.Neura~iR瞎c[血吼m,1992,l1:93.7FurieNil,Mchu曲叻,Mi~onofneutr~衄南硅瑚Ⅲ0n隅issti『mdaIedby吨a嘶曲t0fthera~olayerstIlIL一1Or哪Jlnmmnol,1989,i43:3309.8酬|I1a,NelsonP,MSeleefim.JClinlnve~1993,91:3799I豳LA.Selects:iⅡIpt目sd∞Ⅱ一~geeifiecaI血此ⅢInHonduringl珊I衄d0T】.Se/ence,1992, 258:964l0Crce~teinBN.w卿m眦Gn,~esion~leeulesofintl~mUonAtisRh唧,1993,36:147.儿A邢肿utMASlnlemreandflir~Olrl0ft}leleukocytead—I~esion『ucDt】/cD18Bloat,1990,75:11137.12el~elPB,RichardMv,Gi删M,eta1.ElIdd】eIal—le~'yteadhemoleculesinhumandlse~e.ArmuMed,1994,45:361i3丑ngjI￡,C}.叩|M,BadeyNilr/edecbar'gesintherat嘶n.舳Ⅱan日mmiIdleoenan州0ccIl_. sionJNeu~lSei,1995,128():22.14MirIⅢIM,Kurai~Y,Yab叫hiK,毗a1._mdII0T】0fIL —1日mRNAmratbminr~'usientf~ainis?ehen~JNetm~hem,1992.58:390.15Y瑚蛆kiY,Mtt~IUlllNIN,sIa山amH,etIL～1鼬path0臼c蛐丑￡i0T】0fisehe~e山衄inI船.st呻ke,1995,26:676.16WinterR,Nau11,}王日cIceW.0a1.Treatmentisehemle cerebrali岫dl,o耐neNennemm,l995,66(8):596.17g~edelV,Bemal0wjA,Paul11Faperimen~ltmeumo.c∞alf眦nin;船ehI呦1Iaf0憾,nede.啪,andm∞i"8e丑lIn皿皿『Ia坶nkedtothepI duefionof劬c.&amp;nnNeuml,1995,37(3):31318EugeneL.Leak~te—ellda1cellre∞d∞:three(0rInoIe)stepstop商anddivemty.Cell,i991,67:103319MullerW A,w啦SA,Dengx,eta1,PEcAM一1isquiⅡd0【I-Blia1migrationdb叮}e8JbpMe,t,1993,178:449.20Bowe~MP,Zin/A,lt~l'lein11M忧l∞岫theIf_~M一1need0dinarabbitoerebra1embdlsms0ke~odelE邛Nml101. 1993.119:215.21Irer~emE,Fem~o舡,tt,eIa1.出en_d0tbcel1.on~leeule一1o0n廿ibu自瞄toen. dotheli~barri口.FEBsIn,1995,374(3):3∞.22mE,Del—lg~hloA.呷血and functionalreofcelltOcelljLIⅡc∞indotheliumrI1mm山Hm0st,1995,74(1):31;9.23c0Ind叽.1le∞dapoN~inln【—ills trocktodeath.Jl珊mu,1,l54:3289(1996年5月21日收稿,1996年l0月l0日修回)。

大鼠尾静脉采血经验总结第一篇：大鼠尾静脉采血经验总结1.大鼠固定:大鼠塞入固定器后调整鼠笼尽量使大鼠无法转动身体2.进针：由辅助人员抓住大鼠尾巴，抓的位置离进针位置约2cm 左右，拇指压住静脉使血管充盈，用75%酒精擦拭使血管充盈，采用头皮针或4.5号针头30°进针后微微上挑水平推进，回抽有回血说明已经进入血管3.部位选择：从离尾尖1/4部位开始进针，失败后往上进针，选择左右两侧静脉给药4.推药：回血后开始推送，辅助人员尽量保持大鼠尾巴不动，给药过程拇指按住头皮针防止针头掉出血管第二篇：静脉采血静脉采血一、血液标本采集血液是由血浆和血细胞两部分组成，在体内通过循环系统与全身各个组织器官密切联系，与机体各组织间发生物质交换，同时参与机体的各项生理功能活动，对维持机体正常的新陈代谢、功能调节和机体内、外环境的平衡起着至关重要的作用。

在病理情况下，血液系统疾病可使血液发生变化，也可以累及全身各个组织器官，而组织器官的病变也可直接或间接地引起血液发生变化。

所以，血液检查可判断血液系统病变，又可判断体内某些组织器官异常变化的最重要指标之一，是临床最常用的检验项目，也可为判断病人病情进展程度，以及治疗疾病提供参考。

临床收集的血标本分四类即全血标本、血清标本、血培养标本和动脉血标本。

全血标本用作血沉、血常规检查和测定血液中某些物质的含量，如肌酐、尿素氮、尿酸、肌酸、血氨、血糖；血清标本用于测定血清酶、脂类、电解质，肝功能等；血培养标本则用于查找血液中的致病菌；动脉血标本常用于血液气体分析。

（一）毛细血管采血法用于血常规检查。

由于该采血方法目前由检验人员执行，具体方法从略。

（二）静脉采血法【目的】协助临床诊断疾病，为临床治疗提供依据。

【部位】四肢浅静脉、头皮静脉及股静脉（详见静脉注射）。

【评估】1.评估病人的一般情况。

2.了解病人的病情、诊断和目前治疗情况。

3.明确病人需作的检查项目、决定采血量及是否需要特殊准备，如使用抗凝剂等。

一、实训目的本次实训旨在通过实际操作，掌握动物采血的基本技术和方法，了解不同动物采血的特点和注意事项，提高对动物实验操作的熟练度和安全性，为今后从事生物实验和研究工作打下坚实基础。

二、实训时间与地点实训时间：2023年X月X日实训地点：XX大学实验动物中心三、实训内容1. 实验动物种类及特点本次实训涉及的实验动物主要有小鼠、大鼠、兔等。

2. 采血方法及注意事项（1）尾静脉采血法适用于小型啮齿动物，如小鼠、大鼠等。

具体操作如下：1）将动物固定在实验笼中，用酒精棉球消毒尾部皮肤；2）轻轻提起尾部，用手指捏住尾部皮肤，使静脉暴露；3）用消毒的细针头从静脉中穿刺，待血液流出后，收集所需血液量；4）采血结束后，用消毒棉球压迫穿刺点，防止出血。

（2）心脏穿刺法适用于需要获得较大量血液样本的情况。

具体操作如下：1）将动物固定在实验笼中，进行麻醉；2）在无菌条件下，用消毒的细针头从动物心脏部位穿刺，收集所需血液量；3）采血结束后，立即停止注射，用消毒棉球压迫穿刺点，防止出血。

（3）耳静脉采血法适用于兔等大型动物。

具体操作如下：1）将动物固定在实验笼中，用酒精棉球消毒耳部皮肤；2）轻轻提起耳部皮肤，暴露耳静脉；3）用消毒的细针头从耳静脉中穿刺，收集所需血液量；4）采血结束后，用消毒棉球压迫穿刺点，防止出血。

3. 采血注意事项（1）操作前需熟悉动物解剖结构，了解不同动物的采血部位和方法；（2）操作过程中，严格遵守无菌操作原则，防止感染；（3）采血过程中，注意观察动物反应，如出现异常情况，立即停止操作；（4）采血结束后，对穿刺点进行压迫止血，防止出血；（5）采集的血液样本需妥善保存，避免污染。

四、实训结果与分析本次实训，我们按照实验要求，成功完成了小鼠、大鼠、兔等动物的采血操作。

通过实际操作，我们掌握了不同动物的采血方法，提高了实验操作的熟练度和安全性。

同时，我们认识到以下几点：1. 采血方法的选择应根据实验目的、动物种类和所需血液量等因素综合考虑；2. 采血过程中，严格遵循无菌操作原则，确保实验结果的可靠性；3. 操作过程中，关注动物的反应，确保动物福利。