样品采集
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样品采集操作规程一、采样准备1、采样人员应在采样前制定采样计划,确定采样方式和采样点。
2、准备充足、合适、干净的采样用器具和容器以及化学试剂等。
二、样品采集1、采样时应保证采样点的位置准确。
2、采样时应注意除去水面的杂物、垃圾等漂浮物,不可搅动水底部的沉积物。
3、用装样容器直接采样时,必须用水样冲洗三次后再行采样。
但当水面有浮油时,采油的容器不能冲洗。
4、如采样现场水体很不均匀,无法采到有代表性样品,则应详细记录不均匀的情况和实际采样情况,供使用该数据者参考。
5、测定油类的水样,应在水面至水的表面下300mm采集柱状水样,并单独采样,全部用于测定。
采样瓶(容器)不能用采集的水样冲洗。
6、如果水样中含沉降性固体(如泥沙等),则应分离除去。
分离方法为:将所采水样摇匀后倒入筒形玻璃容器(如1—2L量筒),静置30min,将已不含沉降性固体但含有悬浮性固体的水样移入盛样容器并加入保存剂。
测定总悬浮物和油类的水样除外。
7、测溶解氧、生化需氧量和有机污染物等项目时的水样,必须注满容器,不留空间,并溢出部分水样后塞紧瓶塞。
8、测定油类、硫化物、余氯、粪大肠菌群、悬浮物等项目的水样要单独采样,全部水样用于测定。
9、在选用特殊的专用采样器(如油类采样器)时,应按照该采样器的使用方法采样。
10、凡需现场监测的项目,应进行现场监测。
11、认真填写“样品采样交接单”,用签字笔或硬质铅笔在现场记录,字迹应端正、清晰,项目完整。
12、采样结束前,应核对采样计划、记录与水样,如有错误或遗漏,应立即补采或重采。
13、保证采样按时、准确、安全。
实验室检测样品采集程序1目的为保障检测实验的顺利进行,规范采样程序,防止病原微生物在采样过程中产生污染。
2适用范围适用于实验室样品的采集。
3职责3.1采集检测样品的工作人员在采集过程中应当防止病原扩散,并对样本的来源、采集过程和处理方法等作详细记录。
3.2检验人员必须严格按照本操作规程操作,不可擅自做出超出本规程的操作,所有实验人员对所从事的工作负相应的责任。
4过程要求4.1工作要求采集和处理检测样品应当具备下列条件:4.1.1具有采集、处理样品所需要的生物安全防护设备;4.1.2具有掌握相关专业知识和操作技能的工作人员;4.1.3具有有效的防止病原扩散的措施;4.1.4具有保证检测样品质量的技术方法和手段。
4.2实验材料准备灭菌的解剖器械(剪刀、镊子、手术刀、大刀、斧头等)、灭菌试管、平皿或自封袋、载玻片、棉签、营养肉汤、30%、50%甘油盐水缓冲液、加抗生素的PBS(病毒保存夜)、50%甘油磷酸盐缓冲液、酒精灯、灭菌注射器、15mL的离心管、L5mLEP管、记号笔、签字笔、防护服、无粉乳胶手套、防护口罩、铅笔、空白标签纸、胶布、75%酒精棉球、碘酒棉球、冰袋、冷藏容器、消毒药品、采样单等。
4.3活畜样品的采集4.3.1血清样品的采集4.3.1.1采血方法对采血部位的皮肤先剃(拔)毛,碘酊消毒,75%的酒精消毒,待干燥后采血。
采血方法推行生猪站立式前腔静脉、牛羊站立式颈静脉、禽类翅静脉采血,采血过程严格无菌。
4.3.1.2采血数量单一病种抗体监测的每头(只)采集2〜3mL全血,多病种抗体检测的每头(只)采集5〜10mL全血。
4.3.1.3全血保存采集好的全血转入盛血试管,斜面存放,室温凝固后直接放在盛有冰块的保温箱,送实验室。
从全血采出到血清分出的时间不超过10h。
4.3.1.4血清分离凝固全血在室温2〜4h后,有血清析出时,用无菌针剥离血凝块,然后放入4℃冰箱4〜8h后,待大量血清析出时,吸出血清。
样品采集的基本要求
1. 样品采集得有代表性呀!就像选美比赛里挑出最美的那个,得能真正代表整体呀!比如采集湖水样本,就不能光在一个小角落舀一点,得在不同地方都取一些才行呢。
2. 采集的工具得合适哟!这就好比战士得有称手的兵器,不能拿个破勺子去采重要样品吧!就像采集土壤,要用专门的土壤采样器呢。
3. 时间也很关键嘞!不能随便啥时候都去采呀,这就像约会要选对时间,不然就乱套啦!比如要采清晨树叶上的露水,总不能大中午去呀。
4. 采集过程得小心谨慎呀!可不能毛手毛脚的,不然就像抱宝贝不小心给摔了一样!像采集蝴蝶标本,动作粗鲁可就弄坏啦。
5. 采集的量要合适呗!多了浪费,少了又不够,就像做饭放调料,得恰到好处啊!采集花粉做研究,太多太少都不行呀。
6. 样品的保存要做好哇!不然就像把美食放坏了一样可惜哟!比如血液样本,如果保存不好,那之前的努力不都白费啦?
7. 对采集的记录要详细呀!这就跟写日记一样,把所有细节都写上,以后才好回忆呀!采集了花朵,颜色、大小、形状都得记清楚才行呢。
我的观点结论:样品采集真不是随随便便就能做好的,每一个环节都得认真对待,这样才能得到有价值的样品呀!。
样品采集的原理和方法样品采集是指在科学研究和实践中,收集原料样品或代表性样本以及外来物质的过程。
样品采集的原理和方法可以根据具体的研究对象和要求有所不同,下面以地质样品和生物样品为例进行介绍。
1. 地质样品采集:地质样品采集的原理是通过收集地质物质的样品,了解地球的组成、性质和变化。
采集地质样品的方法主要有以下几种:- 露天采集:对于露天地质样品,可以直接在地表或者露天矿坑、露天矿石中进行采集,如用铲子、锤子和钻石等工具进行破碎和采集。
- 取样钻探:对于地下地质样品,可以利用水泥或金属钻头进行钻探,获取样品。
常用的取样钻探方法有手动钻探、旋转钻探和绳索钻探等。
- 抽样:对于岩石、土壤等地质样品,可以利用工具如小铲子、铁锨等进行抽样获取样品。
2. 生物样品采集:生物样品采集包括植物、动物、微生物等生物体的样品采集。
生物样品采集的原理是收集生物样品以研究其形态、生理、分子等特征。
采集生物样品的方法主要有以下几种:- 采摘:对于植物样品,可以直接将植物的叶子、花、果实等部分采摘下来,进行后续的研究。
- 标本采集:对于植物和动物样品,可以进行采集制作标本,将整个植物或者动物固定在标本纸上,保留其形态特征。
- 组织采集:对于植物和动物样品,可以采集其组织样品,如动物的皮肤、肌肉、器官等组织,植物的茎、根、叶等组织。
- 拭子采集:对于微生物样品,可以使用棉签、刷子等工具进行拭子采集,将微生物从表面采集下来。
除了以上的方法,样品采集还需要注意一些基本原则:- 样品的代表性:采集的样品应该能够代表整体的特征,避免局部现象的影响。
- 采集时机:根据研究对象的特性和变化规律,选择合适的时间进行采集,以确保样品的准确性。
- 采集环境:采集样品时要注意周围环境的影响,避免污染或干扰,保证样品的纯净性和完整性。
- 采集工具:根据需要选择合适的工具进行采集,确保样品的完整性和准确性。
样品采集方法与运用
一、采样原理
1、采样的定义
采样是指从一个具有其中一种特征的总体中,取出一部分具有该特征的样本的过程。
采样是统计学上分析其中一特性的重要依据,而这些样本又是抽样理论的基础,是进行抽样统计调查的基础。
2、采样的重要性
采样有助于收集、整理和分析大量的统计数据,从而深入研究大量统计数据中隐藏的规律性,而这些规律性又可以为制定长远计划和政策提供有效的参考依据。
二、样品采集方法
1、单点采样法
单点采样法是指在一定的空间区域内,取一个地点进行采样,其优点是简单、快捷,但适用于空间分布均匀的样本,兵不适用于空间分布不均匀的样本。
2、网格采样法
网格采样法是在一定的空间区域内,将空间分割为一个个的网格,然后在每个网格中进行采样,这种方法在面积较大,样本分布不均匀的情况下,有助于反映样本真实的分布特征。
3、系统采样法
系统采样法是指将样本空间分割成一些相关的小的空间,然后在每个小的空间中进行采样,这种采样法可以在一定程度上反映样本真实的分布特征,同时又可以使得采样有一定的系统性。
三、样品运用
1、数据分析
采样运用于数据分析,可以通过收集和整理样本,从而深入分析样本中隐藏的信息。
样品采集及注意事项在禽流感监测工作过程中,样品的采集是最关键的一步。
只有采集的样品确实可靠,保持良好的状态,才会有准确可信的监测结果。
所以需要认真对待样品的采集工作,才能做好监测工作。
我们在采样前,首先要做的是保存液的准备。
保存液里的抗生素可以抑制棉拭子样品因感染细菌腐败,甘油或血清可以保护病毒的感染力,使病毒不容易失活。
1、保存液配制和分装1.1保存液配制在500ml PBS溶液中加入以下抗生素:青霉素(80万单位/0.48 g):2.6g链霉素(100万单位/1 g):5.0g庆大霉素(针剂,8万单位/2 ml):2.6ml制霉菌素(0.5万单位/片):5片将抗生素溶解到400 mlPBS溶液中,并调PH值至7.2,然后加入终浓度为10%的甘油或终浓度为5%的小牛血清,并定容至500ml。
1.2 保存液的分装将配制好的保存液分装到2ml离心管中,每管1ml,-20℃保存备用。
2、活禽棉拭子的采集要点2.1 取咽喉拭子时要确保将拭子深入喉头口及上颚裂来回刮3-5次取咽喉分泌液;2.2 取泄殖腔拭子时将拭子深入泄殖腔约1.5~2.0cm转一圈并沾取少量粪便。
2.3 采集的棉拭子样品需马上放置含有终浓度为10%甘油或终浓度为5%的小牛血清的PBS缓冲液保存中,加盖、编号。
2.4 采集的样品应当尽快放入加有冰块的泡沫盒低温保存。
2.5 注意事项2.5.1 有些鸭子泄殖腔可能比较难找,有的同志可能只是在靠近鸭子泄殖腔的部位转一圈了事;也有一些棉拭子进入了鸭子泄殖腔,但不够深,没有采集到新鲜粪便。
这样采集到的样品不能保证其有效性。
2.5.2 再次强调采集的样品应当马上保存在含有甘油和抗生素的PBS中。
不能拿空离心管装棉拭子,等回去再加保存液,这样的样品所含病毒可能在运输过程中就已经死亡甚至降解。
3、组织样品的采集要点病死的家禽应当采集脾脏、肺脏、气管、脑组织等样品,样品采集后,放入密闭的塑料袋内,并应立即置于加冰的保温箱中,低温保存和运输。
样品采集
样品采集是一种取样的方式。
样品采集- 样品的分类
样品一般分为检样,原始样品和平均样品三种.
检样:从整批待测食品的各个部分所采取的少量样品.
原始样品:把质量相同的许多份检样综合在一起.
平均样品:原始样品经过处理再抽取其中一部分供分析检验用.
样品采集- 采样的数量
采样的数量应能反映该批食品的卫生质量和满足检验项目对试样量的需要;
采样的数量一式三份供检验,复检和备查用,每份不少于0. 5 kg 样品采集 - 采样的方法
采样的一般方法
具体样品的抽取方法
采样的一般方法
样品的采集通常采用随机抽样的方法.
随机抽样是指不带主观框架,在抽样过程中保证整批食品中的每一个
单位产品(为检验需要而划分的产品最小的基本单位)都有被抽取的机会.
抽取的样品必须均匀地分布在整批食品的各个部位.
最常用的方法有简单随机抽样,分层随机抽样,系统随机抽样和阶段随机抽样.
(1)简单随机抽样
整批待测食品中的所有单位产品都以相同的可能性被抽到的方法,叫
简单随机抽样,又称单纯随机抽样.
(2)系统随机抽样
实行简单随机抽样有困难或对样品随时间和空间的变化规律已经了解时,可采取每隔一定时间或空间间隔进行抽样,这种方法叫系统随机抽样.
(3)分层随机抽样
按样品的某些特征把整批样品划分为若干小批,这种小批叫做层.同一层内的产品质量应尽可能均匀一致,各层间特征界限应明显.在各层内分别随机抽取一定数量的单位产品,然后合在一起即构成所需采取的原始样品,这种方法称为分层随机抽样.
(4)分段随机抽样
当整批样品由许多群组成,而每群又由若干组构成时,可用前三种方法中的任何一种方法,以群作为单位抽取一定数量的群,再从抽出的群中,按
随机抽样方法抽取一定数量的组,再从每组中抽取一定数量的单位产品组
成原始样品,这种抽样方法称为分段随机抽样方法.
上述方法并无严格界线,采样时可结合起来使用,在保证代表性的前提下,还应注意抽样方式的可行性和抽样技术的先进性.
2. 具体样品的抽取方法
采样时,应根据具体情况和要求,按照相关的技术标准或操作规程所规
定的方法进行.
(1)有完整包装(桶,袋,箱等)的食品首先根据下列公式确定取样件数:
式中,n为取样件数;N为总件数.
从样品堆放的不同部位采取到所需的包装样品后,再按下述方法采样.
a.固体食品
如粮食和粉状食品,用双套回转取样管插人包装中,回转180o取出样品.每一包装须由上,中,下三层取出三份检样,把许多份检样综合起来成为原
始样品,再按四分法缩分至所需数量.
b.稠的半固体样品
如动物油脂,果酱等,启开包装后,用采样器从上,中,下三层分别取出
检样,然后混合缩减至所需数量.
c.液体样品
如鲜乳,酒或其他饮料,植物油等,充分混匀后采取一定量的样品混合.用大容器盛装不便混匀的,可采用虹吸法分层取样,每层各取500mL左右,装人小口瓶中混匀后,再分取缩减至所需数量.
(2)散装固体食品
可根据堆放的具体情况,先划分为若干等体积层,然后在每层的四角和
中心分别用双套回转取样管采取一定数量的样品,混合后按四分法缩分至
所需数量.
(3)肉类,水产,果品,蔬菜等组成不均匀的食品
视检验目的,可由被检物有代表性的各部位(肌肉,脂肪,或果蔬的根,茎,叶等)分别采样,经捣碎,混匀后,再缩减至所需数量.体积较小的样品,
可随机抽取多个样品,切碎混匀后取样.有的项目还可在不同部位分别采样,分别测定.
(4)罐头,瓶装食品或其他小包装食品
根据批号连同包装一起采样.同一批号取样数量, 250g以上包装不得少于3个,250g以下包装不得少于6个.
样品采集- 采样的注定事项
1. 采样工具应该清洁,不应将任何有害物质带人样品中.
2. 样品在检测前,不得受到污染,发生变化.
3. 样品抽取后,应迅速送检测室进行分析.
4. 在感官性质上差别很大的食品不允许混在一起,要分开包装,并注明其性质.
5. 盛样容器可根据要求选用硬质玻璃或聚乙烯制品,容器上要贴上标签,并做好标记.
1.6.2 分析试样的制备
样品的制备是指对所采取的样品进行分取,粉碎,混匀等过程.
由于用一般方法取得的样品数量较多,颗粒过大且组成不均匀,因此必须对采集的样品加以适当的制备,以保证其能代表全部样品的情况并满足分析对样品的要求.
一,常规食品样品的制备
制备时,根据待测样品的性质和检验项目的要求,可以采取不同的方法进行,如摇动,搅拌,研磨,粉碎,捣碎,匀浆等.
1. 液体,浆体或悬浮液体一般将样品充分摇匀或搅拌均匀即可.常用的搅拌工具有玻璃棒,搅拌器等.
2. 互不相溶的液体如油和水的混合物,可分离后再分别取样测定.
3. 固体样品
可视情况采用切细,捣碎,粉碎,反复研磨等方法将样品研细并混合均匀.常用的工具有研钵,粉碎机,绞肉机,高速组织捣碎机等.
需要注意的是,样品在制备前必须先除去不可食用部分,水果除去皮,核;鱼,肉禽类除去鳞,骨,毛,内脏等.
固体试样的粒度应符合测定的要求,粒度的大小用试样通过的标准筛的筛号或筛孔直径表示,标准筛的筛号及筛孔直径的关系见表1.5.
表1.5 标准筛的筛号与孔径大小
4. 罐头水果类罐头
在捣碎前要先清除果核;鱼类罐头,肉禽罐头应先剔除骨头,鱼刺及调味品(葱,姜,辣椒等)后再捣碎,混匀.
制备过程中,还应注意防止易挥发性成分的逸散和避免样品组成及理化性质发生变化.
二,测定农药残留量时样品的制备
1. 粮食充分混匀后用四分法取20g粉碎,全部过0. 4mm筛.
2. 肉类除去皮和骨,将肥瘦肉混合取样,每份样品在检测农药残留量的同时还应进行粗脂肪的测定,以便必要时分别计算脂肪与瘦肉中的农药残留量.
3. 蔬菜,水果洗去泥砂并除去表面附着水,依当地食用习惯,取可食用部分沿纵轴剖开,各取1/4,然后切碎,混匀.
4. 蛋类去壳后全部混匀.
5. 禽类去毛及内脏,洗净并除去表面附着水,纵剖后将半只去骨的禽肉绞成肉泥状.检测农药残留量的同时应进行粗脂肪的测定.
6. 鱼每份鱼样至少三条,去鳞,头,尾及内脏后,洗净并除去表面附着水,纵剖取每条的一半,去骨,刺后全部绞成肉泥状,混匀.
1.6.3 样品的保存
样品采集后应于当天分析,以防止其中水分或挥发性物质的散失以及
待测组分含量的变化.
如不能马上分析则应妥善保存,不能使样品出现受潮,挥发,风干,变质
等现象,以保证测定结果的准确性.
制备好的平均样品应装在洁净,密封的容器内(最好用玻璃瓶,切忌使
用带橡皮垫的容器),必要时贮存于避光处,容易失去水分的样品应先取样
测定水分.
容易腐败变质的样品可用以下方法保存,使用时可根据需要和测定要
求选择.
1. 冷藏短期保存温度一般以0~5 0C为宜.
2. 干藏可根据样品的种类和要求采用风干,烘干,升华千燥等方法.
其中升华干燥又称为冷冻干燥,它是在低温及高真空度的情况下对样品进
行干燥(温度:-30~-100C,压强:10~40Pa),所以食品的变化可以减至最小
程度,保存时间也较长.
3. 罐藏不能即时处理的鲜样,在允许的情况下可制成罐头贮藏.例如,将一定量的试样切碎后,放人乙醇(φ=96%)中煮沸30min(最终乙醇浓度应
在78%~82%的范围内),冷却后密封,可保存一年以上.
一般样品在检验结束后应保留一个月以备需要时复查,保留期从检验
报告单签发之日起开始计算;易变质食品不予保留.保留样品加封存入适当
的地方,并尽可能保持原状. 采样时,必须注意样品的代表性和均匀性,要
认真填写采样记录.
样品一般分为检样,原始样品和平均样品三种.
采样是指从整批被检食品中抽取一部分有代表性的样品,供分析化验用.采样是食品分析的首项工作.采样的正确与否,是检验工作成败的关键.
采样的数量应能反映该批食品的卫生质量和满足检验项目对试样量的
需要;采样的数量一式三份供检验,复检和备查用,每份不少于0. 5 kg .
样品的采集通常采用随机抽样的方法.最常用的方法有简单随机抽样,分层随机抽样,系统随机抽样和阶段随机抽样.
样品的制备是指对所采取的样品进行分取,粉碎,混匀等过程.
由于用一般方法取得的样品数量较多,颗粒过大且组成不均匀,因此必
须对采集的样品加以适当的制备,以保证其能代表全部样品的情况并满足
分析对样品的要求.
样品采集后应于当天分析,如不能马上分析则应妥善保存,容易腐败变
质的样品可用冷藏,干藏,罐藏等方法保存,一般样品在检验结束后应保留
一个月以备需要时复查.
样品采集- 注意事项
定义:所谓采样是指从整批被检食品中抽取一部分有代表性的样品,供分析化验用.采样是食品分析的首项工作.
意义:采样的正确与否,是检验工作成败的关键.
食品的种类繁多,且组成很不均匀.不管是制成品,还是未加工的原料,即使是同一种样品,其所含成分的分布也不会完全一致,如果采样方法不正确,试样不具有代表性,则无论操作如何细心,结果如何精密,分析都将毫无意义,甚至可能导致得出错误的结论.
要求:
1. 采样时,必须注意样品的代表性和均匀性,以确保所采样样品能代表整个供试材料的平均组成.
2. 采样时,要认真填写采样记录,写明样品的生产日期,批号,采样条件,方法,数量,包装情况等.外地调入的食品还应结合运货单,商检机关和卫生部门的化验单,厂方化验单等,了解起运日期,来源地点,数量,品质及包装情况.同时注意其运输及保管条件,并填写检验目的,项目及采样人.。