「实验笔记」流式细胞术实验过程中的操作要点
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流式检测上机前细胞处理流程与注意事项流式细胞检测是一种常见的细胞学技术,用于研究和分析细胞的表型特征。
流式细胞检测通常包括细胞样品的处理、染色和分析等步骤。
下面将介绍流式检测上机前的细胞处理流程及注意事项。
流式细胞检测的基本流程包括:细胞样品制备、细胞染色、样本处理与检测。
在上机前的细胞处理阶段,需要进行以下步骤:1.细胞培养和扩增:首先,选择所需的细胞系进行培养和扩增。
细胞应该在适当的培养基和培养条件下生长,并保持细胞的活性和稳定性。
2.细胞收获:当细胞达到适当的生长状态后,使用适当的方法(例如胰蛋白酶消化、细胞刮取等)将细胞从培养瓶中收获。
3.细胞计数和离心:将收获的细胞进行计数,以确定要投入到流式细胞仪中的细胞数量。
通常使用血球计数板或自动细胞计数仪进行计数。
然后,用适当的速度进行离心,以收集和清洗细胞。
4.细胞固定和渗透化:对细胞进行固定和渗透化处理,以保持细胞在染色过程中的形态和结构。
常用的方法包括用乙醇固定和洗涤溶液进行渗透化处理。
5.抗体染色:根据研究的目的和需要,选择适当的标记抗体对细胞样品进行染色。
可以选择直接染色或间接染色方法,通过荧光标记的抗体对特定的细胞表面标记物或细胞内标记物进行检测。
6.控制样品的制备:在流式细胞检测中,为了进行质量控制和校准,需要准备确定性阳性和阴性对照样品。
阳性对照样品含有已知的标记物,用于评估流式细胞仪的性能和染色的品质。
注意事项:1.选择适当的细胞培养条件:细胞培养的条件对于细胞的生长和功能非常重要。
细胞应在适当的培养基和培养条件下生长,并定期检查细胞的健康状态。
2.加入适量的细胞:投入到流式细胞仪中的细胞数量应根据实验需要和仪器的要求来确定,过多或过少的细胞都会对结果产生影响。
3.使用合适的固定和渗透化方法:细胞固定和渗透化处理要严格按照方法的要求进行,以确保细胞在染色过程中保持完整和稳定。
4.选择适当的抗体和染色方案:根据研究的目的和需要选择合适的抗体和染色方案。
流式细胞仪操作规程流式细胞仪是一种用于单个细胞分析的高通量仪器,广泛应用于生物医学研究、药物开发和临床诊断等领域。
为了确保流式细胞仪的正常运行和准确结果的获取,需要制定一套规范的操作规程。
以下是流式细胞仪操作规程的一些基本要点:一、实验前准备:1.确保流式细胞仪处于稳定状态,并将其连接到电源并打开电源。
2.检查仪器的液氮箱和压力容器,确保液氮和气源充足。
3.准备实验所需的标本样品和相应试剂。
4.检查流束对齐和测量准备:校准激光、确定流速、检查流束质量控制。
二、流式细胞仪样品制备:1.使用无菌技术制备样品,并严格遵循相关操作规范。
2.样品的准备应考虑到细胞的数量和稳定性,避免细胞聚集、损伤或死亡。
3.样品的制备应注意避免氧化和污染的发生,以确保结果的准确性。
三、样品装载和分析:1.使用无菌技术将样品加载到流式细胞仪中,并确保样品注射器和管道清洁和无气泡。
2.对于多个样本的分析,应注意正确的样品顺序和识别,以避免混淆。
3.设置合适的仪器参数和测量条件,例如流速、激发和发射光源、滤光片设置和增益调节等。
4.开始样品分析之前,应进行负空白检测和仪器的系统背景校正。
5.开始实验后,密切观察结果窗口,并根据需要进行相应的数据记录和保存。
四、实验后操作:1.实验结束后,关闭流式细胞仪和相关辅助设备,并进行正常关机程序。
2.将仪器和试剂的残留物清洁干净,并按照相关操作规范进行废弃物的处理。
3.维护仪器的常规保养,例如清洁仪器表面、更换滤光片、标定仪器等。
4.及时记录和整理实验数据,并进行必要的数据分析和结果解释。
五、安全注意事项:1.在操作过程中,应遵守相关的生物安全和化学安全规范,例如穿戴好实验室服装、戴手套、戴眼镜等。
2.对于辐射性或有毒性样品的操作,应采取额外的防护措施,例如使用密封容器、穿戴防护服等。
3.在使用激光和其他高能源光源时,注意防护眼睛和暴露部位,避免直接观察激光光源。
总结:流式细胞仪是一种复杂的仪器,需要严格的操作规范来确保实验结果的准确性和数据的可靠性。
流式细胞术实验技巧及数据分析一、实验技巧1.细胞样本的准备在进行流式细胞术之前,首先需要准备好细胞样本。
对于悬浮细胞,可以通过离心分离获得单细胞悬浮液;对于贴壁细胞,需要利用胰酶等方法将细胞从培养皿上剥离。
样本的细胞浓度需要适当调整,以保证在实验过程中细胞数目在仪器检测范围内。
2.细胞标记与染色3.样本的处理与染色控制为了减少噪音和误差,需要进行相应的样本处理和染色控制。
常用的处理包括细胞固定、膜破裂和核酸溶解等。
另外,对照组的设置也非常重要,包括负对照、单标对照和血细胞淋巴细胞控制等,以校正仪器和标记的相关性。
4.流式细胞仪的设置与操作流式细胞仪是进行流式细胞术的关键仪器,需要正确设置和操作。
首先,要校准仪器的激发光源、滤光片和检测器等参数,以确保获得准确的荧光信号。
其次,要根据标记物的激发光和发射光波长选择合适的检测通道。
最后,通过检测标记物阳性细胞的信号强度和分布,调整仪器的敏感度和流速,以获得符合实验要求的数据。
二、数据分析1.数据获取与记录在流式细胞术实验结束后,需要用相应的软件(如FlowJo、CellQuest等)获取和记录仪器所产生的原始数据。
这些数据包括细胞整体的荧光信号和散点图等。
2.质量控制与后处理对于数据质量的控制,首先需要排除掉背景信号。
通过设置负对照,根据荧光信号的阈值来确定阳性细胞的比例。
另外,还需要剔除激活的、死亡的和颗粒干扰的细胞等。
3.数据可视化通过制作直方图、散点图和轮廓图等,可以直观地展示细胞的其中一种特定特征(如表达一些蛋白质、细胞周期等)在整个细胞群体中的分布情况。
从图形中可以得出相应的统计结果,并可以进一步比较不同样本之间的差异。
4.数据统计与分析对于一些研究问题,需要计算不同细胞亚群的百分比、中位数、平均值和标准差等。
此外,还可以利用双参数散点图,通过计算相关系数(如Pearson相关系数)来分析两个特征之间的相关性。
总结:流式细胞术作为一种快速、高通量和灵敏的细胞分析技术,对于研究细胞标记物的表达和功能等提供了有力的手段。
一、实验目的本实验旨在通过流式细胞术技术,对细胞群体进行快速、精确的分析和定量测定,研究细胞的物理与化学性质,并对细胞进行分类和分选。
通过本次实验,掌握流式细胞仪的工作原理,了解其在细胞生物学研究中的应用。
二、实验原理流式细胞术(Flow Cytometry,FCM)是一种对液流中排成单列的细胞或其它生物微粒逐个进行快速定量分析和分选的技术。
其基本原理是将经过荧光标记的细胞或微粒,在流动系统中以高速通过,同时利用激光束照射细胞,通过光散射和荧光信号来获取细胞的大小、形态、表面标记物等信息。
最后,通过数据分析和可视化展示,对细胞进行计数、分类和分析。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:- 细胞样本:小鼠脾细胞、Jurkat细胞- 荧光标记抗体:CD45-FITC、CD3-PE、CD4-APC- 溶液:磷酸盐缓冲盐溶液(PBS)、荧光染料(如PI)2. 实验仪器:- 流式细胞仪(如BD FACS Calibur)- 离心机- 恒温培养箱- 移液器四、实验步骤1. 细胞制备:- 收集小鼠脾细胞或Jurkat细胞,用PBS洗涤后,调整细胞浓度为1×10^6个/mL。
- 加入荧光标记抗体,室温下孵育30分钟。
- 用PBS洗涤细胞两次,去除未结合的抗体。
2. 流式细胞术分析:- 将处理好的细胞加入流式细胞仪,设置合适的参数进行检测。
- 收集数据,进行细胞分类和分析。
3. 数据分析:- 利用流式细胞术分析软件(如CellQuest、FlowJo)对数据进行分析,包括细胞计数、分类、DNA含量分析等。
五、实验结果与分析1. 细胞分类:- 通过流式细胞术,成功将小鼠脾细胞和Jurkat细胞分为不同的亚群,如T细胞、B细胞等。
2. DNA含量分析:- 通过PI染色,检测细胞的DNA含量,发现小鼠脾细胞和Jurkat细胞均处于G0/G1期。
3. 表面标记物分析:- 通过CD45-FITC、CD3-PE、CD4-APC抗体检测,发现Jurkat细胞为T细胞,小鼠脾细胞中含有B细胞和T细胞。
流式细胞术操作规程流式细胞术是一种常用的细胞分析技术,它可以用来检测和分析细胞表面标记物、细胞数量、细胞分布等信息。
以下是一份流式细胞术操作规程,详细介绍了该技术的操作步骤和注意事项。
一、实验前准备1. 准备所需的实验材料,包括流式细胞仪、标记抗体、孵育培养基、样本组织、显微镜片等。
2. 检查流式细胞仪的功能是否正常,确认仪器能够正常运行。
3. 清洁实验台面,确保操作环境干净整洁。
4. 准备所需的试剂和溶液,如PBS缓冲液、抗体染色溶液等。
二、样本处理1. 准备样本组织,将其转移到离心管中,并添加适量的孵育培养基使其完全浸泡。
2. 使用离心机将样本离心,去除上清液。
3. 重悬样本,将其转移到离心管中,并加入足够的PBS缓冲液进行洗涤。
4. 重复洗涤过程,直到样本完全洗净。
三、标记抗体染色1. 取出经过洗涤的样本,将其转移到离心管中,并加入足够的标记抗体溶液。
2. 在黑暗条件下孵育样本,使其与标记抗体充分结合。
3. 静置反应15-30分钟,确保充分染色。
4. 在光线和温度适宜的条件下冰冻样本,避免抗体的结合。
5. 根据实验需求,可以选择单标记或多标记抗体。
四、样本准备1. 取出经过标记抗体染色的样本,将其转移到离心管中,并加入足够的PBS缓冲液进行洗涤。
2. 将样本离心并去除上清液。
3. 重悬样本,并根据实验需要加入适量的PBS缓冲液进行稀释。
4. 检查样本的细胞数目和活性是否符合实验要求,如有必要,可以使用显微镜进行观察和计数。
五、流式分析1. 打开流式细胞仪,并确认仪器的设置和参数是否符合实验要求。
2. 调整仪器的流速和灵敏度,使其适应样本的特性。
3. 将样本转移至流式细胞仪的样本管中。
4. 开始流式细胞分析,记录并保存实验数据。
5. 根据实验需要,可以进行不同的数据分析和处理,包括细胞分布、细胞数量、表面标记物的表达等。
六、实验后处理1. 关闭仪器,清洁工作台和操作区域。
2. 处理和储存实验数据,可以使用相应的图像科学软件进行数据处理和结果分析。
流式细胞仪操作步骤一、样品准备1. 确认样品是否符合实验要求,如细胞浓度、荧光标记等。
2. 根据实验需求,选择合适的试管和细胞样品。
3. 确认样品中是否有杂质或污染物,必要时进行离心和洗涤。
4. 尽可能缩短样品处理时间,避免细胞活性受到影响。
二、样品上机1. 打开流式细胞仪,确认仪器正常工作。
2. 将样品加入到流式细胞仪的样品管中。
3. 根据实验需求,设置合适的流速和压力。
4. 开始采集数据,观察仪器工作状态,确保数据准确可靠。
三、参数设置1. 根据实验需求,选择合适的荧光标记和检测参数。
2. 根据细胞类型和特性,设置合适的门控和阈值。
3. 确认仪器校准和定标工作已完成。
4. 根据需要,设置多色分析,以便于进行细胞分群和定量分析。
四、数据采集1. 在采集数据时,观察仪器工作状态,确保数据准确可靠。
2. 根据实验需求,确定采集的数据量,确保数据具有代表性。
3. 记录采集数据的时间和条件,以便于后续数据分析。
4. 在采集数据时,注意观察细胞活性、浓度和分布情况,及时调整实验条件。
五、数据分析1. 使用专业软件对采集的数据进行处理和分析。
2. 根据实验需求,对数据进行去噪、归一化和定量分析。
3. 进行细胞分群、细胞周期和细胞凋亡等分析。
4. 对数据进行统计学分析和可视化展示。
六、结果输出1. 根据分析结果,输出相应的图表和数据表格。
2. 对结果进行解释和注释,以便于读者理解和应用。
3. 如果需要,可将结果整理成报告形式,提供给相关人员参考和使用。
七、质量控制八、实验室清理。
《流式细胞术操作规程》一、操作准备1.准备所需材料和试剂:包括流式细胞仪、标记抗体、细胞悬液、PBS缓冲液、显微镜玻片、培养基等。
2.检查仪器:确保流式细胞仪各项功能正常,包括激光、光电倍增管等。
3.样本处理:根据实验需要,选择适当的细胞处理方法,如细胞孵育、酶解消化等,确保获取到高质量的细胞悬液。
二、细胞标记1.标记抗体的选择:根据实验需求,选择适当的标记抗体,包括单抗、荧光染料、生物素等。
2.细胞标记试剂的制备:根据实验方案,将标记抗体按照要求的浓度进行稀释,制备成相应的标记试剂。
3.细胞标记操作:将所需细胞悬液分散在适量的PBS缓冲液中,加入标记试剂,轻轻摇晃混合,静置于室温下孵育一段时间,使标记抗体与细胞表面结合。
三、流式细胞术操作1.调整流式细胞仪参数:根据实验需求,设置细胞悬液的流速、激光功率、波长和光电倍增管放大倍数等参数。
2.流式细胞术管套的准备:取一个净化过的管套,用流式细胞术管套清洁剂反复洗涤,然后用蒸馏水清洗,最后用细胞稀释液冲洗一遍。
3.样本装入:将已标记好的细胞悬液加入清洗过的流式细胞术管套中,再用细胞稀释液冲洗一下,确保样本进入流式细胞仪前不会发生凝集或沉淀。
4.样本检测:将样本放入流式细胞仪中,启动仪器开始检测。
通过选择适当的波长和参数,记录并分析细胞的标记情况,如荧光强度、细胞计数、细胞大小等。
5.数据分析:根据实验需求,使用相关软件对所得的数据进行处理和分析,生成数据图表和归纳、总结实验结果。
四、实验结束与清洁1.实验结束:在完成实验后,将仪器设置恢复到初始状态,关闭仪器和电源,清理工作台和废弃物。
2.仪器清洁:使用适当的清洗剂和纯水,清洁仪器内部和外部的各个部分,如样品流路、流式细胞仪的探头等,确保仪器干净整洁。
3.数据保存:将实验所得数据保存到与实验相关的记录文件夹中,以备后续数据分析和验证。
以上是流式细胞术的操作规程。
在进行实验前,要确保仪器的正常运行和合适的细胞标记试剂的选择,严格按照操作规程进行操作,保证实验的顺利进行和数据的准确性。
流式细胞术——原理,操作及应用(二)流式细胞术原理流式细胞术(Flow Cytometry)是一种通过流式细胞仪对细胞进行高速连续检测和分析的技术。
它利用细胞与荧光标记的抗体等特异性反应,通过流式细胞仪的高速流体流动和多通道探测系统来实现对数千个细胞的快速检测和分析。
操作1.细胞准备:首先需要从样品中获得待检测的细胞,并进行细胞的染色。
常用的染色方法包括直接染色和间接染色,可以利用荧光标记的抗体或荧光染料对细胞进行染色。
2.样品处理:将染色后的细胞悬浮液注入流式细胞仪的进样室中,通过机械或压力的方式使细胞以单细胞的形式通过流式细胞仪。
3.流式细胞仪操作:设置流式细胞仪的相关参数,包括激光光源的波长、光学滤波系统、探测器的选择等。
4.数据获取和分析:流式细胞仪会记录每个细胞的各项参数,包括细胞形态、大小、荧光强度等。
可以利用专门的数据分析软件对获取的数据进行分析和图表的制作。
应用流式细胞术在生命科学研究中有广泛的应用,以下是一些常见的应用:1.免疫学研究:利用流式细胞术可以对免疫细胞进行表面标记,例如CD4+ T细胞、CD8+ T细胞、B细胞等的检测和分析,以研究免疫应答、免疫细胞的亚群分布等。
2.血液学研究:流式细胞术可以用于血液中不同细胞类型的检测和分类,例如红细胞、白细胞以及不同亚群的白细胞等,有助于了解血液疾病的发生机制。
3.肿瘤学研究:利用流式细胞术可以检测肿瘤细胞的特定标记,例如细胞表面抗原、细胞周期相关蛋白等,帮助进一步了解肿瘤细胞的类型、分化程度、增殖活性等。
4.微生物学研究:流式细胞术可以用于微生物的检测和计数,例如细菌、酵母菌等,有助于研究微生物的生长特性、代谢活性等。
5.细胞生物学研究:流式细胞术可以用于对细胞周期的分析、细胞凋亡的检测、细胞增殖速度的测定等,有助于了解细胞生物学的基本过程和调控机制。
总结:流式细胞术是一种非常强大和多功能的技术,在生命科学研究中得到广泛应用。
流式细胞术实验步骤流式细胞术(flow cytometry)是一项非常常用的细胞生物学研究技术,在许多领域都有着广泛的应用。
本文将为您介绍流式细胞术实验步骤,帮助您更好地掌握这一技术。
1. 细胞样品制备首先需要一个合适的细胞样品进行实验。
样品的选取要考虑细胞类型、细胞密度、细胞状态等因素,以保证实验结果的准确性和可靠性。
对于非粘附生长的细胞,先用PBS洗涤一次,离心沉淀,将上清液倒掉,然后用PBS冲洗沉淀细胞一次,离心沉淀,去掉上清液,用含0.25%胰蛋白酶和0.02%EDTA的PBS中消化脱落细胞。
之后用PBS洗涤脱落细胞,离心沉淀,去掉上清液,最后加入凝胶化培养基冻存备用。
2. 细胞计数在流式细胞术中,细胞计数非常重要。
可以使用hemocytometer或自动计数器进行计数。
计数完毕后,将细胞密度调整到准确的浓度,以免在后续实验中出现杂质和误差。
3. 细胞标记细胞标记可使用fluorescently-labeled antibodies或其他的探针,标记细胞表面分子或胞内分子。
标记的目的是识别和区分样品中的不同细胞类别。
处理方法:向细胞样品中加入适量标记抗体或荧光素等探针,使其与样品中的目标分子发生特异性结合。
4. 细胞过筛将经过标记的样品通过过滤网口,筛去大于0.22um的细胞碎片等杂质,以获得单个细胞进行后续实验。
5. 流式细胞术分析使用流式细胞仪进行分析,将样品喷入细胞术的流管中,在激光束之下,测量样品中标记细胞的荧光强度、散射度等参数。
通过比较样品与对照组,分析细胞类型、浓度和状态,建立起荧光相关表达式,以判定目标细胞类别。
6. 数据解析在流式细胞术分析的过程中采集了大量的数据,需要使用专业的软件进行数据解析、图形和表格生成。
数据解析的准确性和可靠性,对于实验结果和结论的推导有着至关重要的作用。
流式细胞术是一项详细的实验过程,需要严格遵守操作规范,才能获取可重复的实验结果。
本文简单介绍了流式细胞术实验步骤,希望能够提供实验操作指导,为广大科研工作者开展实验研究提供一定的帮助。
流式细胞仪技术要点学习流式细胞仪这么久,今天来说说关键要点。
首先呢,我理解流式细胞仪最基本的一个要点就是它的样本制备。
这个可得特别小心。
样本要是没弄好呀,后面那些高大上的检测啥的全白搭了。
就好比你要做饭,食材没洗干净或者没切对,那做出来的菜肯定不好吃。
在制备样本的时候,细胞得是分散的单个状态,不能有成团的现象。
我之前就老把这个搞砸,要么细胞太密集了,要么就有杂质,搞得检测出来的数据乱七八糟的。
我总结了个小技巧,在处理样本的时候啊,每一个步骤都要很轻柔很仔细,就像对待稀世珍宝一样。
另外,流式细胞仪的荧光标记这部分也超重要。
不同的荧光染料对应检测不同的细胞特性。
我记得我一开始总是搞混几种染料的用途,后来我就专门找了个小本子,把每一种常用的荧光染料对应的功能都抄下来,闲的时候就拿出来看看加强记忆。
这就像背单词似的,多重复才能记得住。
我理解这个荧光标记就像是给细胞穿上不同颜色的衣服,这样仪器就能识别不同类型的细胞了。
比如说你标记了绿色荧光的染料在某种细胞上,在仪器检测下,那种细胞就会显示出绿色的信号。
还有还有,参数的设置也是个难点啊。
好多个参数在那儿,什么散射光参数、荧光强度参数之类的。
我有时候看着那些参数就懵,不知道从哪儿下手。
后来我就慢慢一个个地去了解每个参数的意义,多试几次不同的设置,看看检测结果有啥变化。
就类似调整相机的参数来拍出不同效果的照片一样,这个参数设置错了,可能得出来的图像就很模糊或者根本看不出关键信息。
对了还有个要点,那就是仪器的校准。
我觉得这是很容易被忽视的一点。
校准没做好,准确性就无从谈起了。
这就跟秤没校准则称东西不准是一个道理。
要准确地使用标准微球等来校准仪器,这样检测的数据才有说服力。
我知道我对流式细胞仪的技术要点理解还不是非常全面,但这些都是我实打实学习过程中的一些经验分享。
我也是在不断学习摸索。
如果想要更深入精确的知识,可以去看一些专业的书籍,像《流式细胞术原理与应用》就很不错,还有很多相关的专业论文在知网上也能找到参考。
「实验笔记」流式细胞术实验过程中的操作要点
流式细胞术可以同时分析单个细胞的多个参数。
目前广泛应用于细胞表面和细胞内分子表达特征的分析,界定不同种类的细胞群,测定分离出的亚类纯度,分析细胞的大小和总量等方面,在流式流式细胞术实验过程中,以下操作要点一定要注意,避免影响实验结果。
1、上机前处理
小心荧光淬灭
操作时必须严格按照孵育时间,如果抗体孵育时间过长,荧光是会逐渐淬灭的。
那如果不得不推迟实验怎么办?可以把试管放在冰里面,这样会稍稍延长淬灭的时间。
注意染色顺序
在进行多荧光染色的时候,相同的细胞会因为染色顺序不同而导致荧光强度的差异。
解决办法为:预实验。
做一系列的不同染色顺序的样本,通过对染色前和染色后的各种样本进行比较分析,判断染色顺序对细胞造成的影响。
选好染色方案
染色方案不合理也可能会导致荧光染色信号太弱。
解决的方案:预实验。
在正式开始实验之前,通过预实验,设计出一个完美的染色方案。
(考虑试剂种类,试剂质量,试剂用量,孵育时间,洗涤次数,染料浓度,染色时间及染色温度等其他因素。
)
做好阴性对照及同型对照试验
细胞阴性对照可以显示细胞基准的荧光水平。
同型对照则是为了查看抗体非特异性结合的水平。
选择同型对照需要注意采用相同物种、相同亚类、相同染料、相同浓度,否则,检测的时候会出现乱七八糟的同型对照结果。
选择合适的抗体
通用原则是:为表达最弱的抗原选择染色指数最高的荧光素。
根据使用的流式细胞仪性能、激光器、滤光片种类来选择。
对于多色实验,需选择发射光谱重叠小的染料。
2、参数设定
数据的获取必须是在仪器性能的校准均合格的基础上进行。
仪器散射光和荧光信号的光电倍增管电压、增益、颜色补偿等参数的设定会直接影响结果。
电压
电压的调节需根据阴性对照管来调节。
阈值
可以以任意参数及多个参数的组合作为阈值;大多数样本都可以设定FSC/SSC;阈值以下的信号不存储;可以根据阴性对照管来调节。
目的是将不需要的杂质信号,噪音信号,无用的细胞信号等扣除,使收集到的都是有用信号。
补偿
流式细胞分析中经常要用到2种以上的荧光标记抗体进行染色,而目前所使用的多种荧光染料发射谱间有一定重叠。
荧光补偿则可以从探测器种除去匹配荧光以外的任何荧光信号。
补偿方式:任意两个通道之间都可以调节。
补偿的调节:根据单染对照管来调节。