植物烟草实验

烟草遗传转化实验报告实验目的烟草是遗传转化的模式植物,已经建立了一套完善的转化再生体系｡本实验以烟草为实验材料,了解根癌农杆菌介导法的基本原理和一般步骤, 掌握遗传转化的基本操作技术｡实验要求:掌握根癌农杆菌侵染植物获取转基因材料的方法;理解农杆菌介导途径进行基因转化的机理:了解转基因植物筛选的方法｡实验原理:根癌农杆菌是一种能诱发植物产生肿瘤的细菌,根癌农杆菌中诱导植物产生肿瘤的质粒,简称为Ti质粒｡野生型农杆菌的Ti质粒,含有两个与致瘤有关的区域: 一个是T-DNA区,含致瘤基因;另一个是毒性区,在T-DNA的切割､转移与整合过程中起作用｡用于植物基因转化的农杆菌Ti质粒载体系统的构建,是将野生Ti质粒中的致瘤基因删除,并在T-DNA区域内插入适当的选择标记和多克隆位点｡p BI121载体是常用的植物表达载体,载体的骨架是pUC18,以CaMV3SS启动子驱动的新霉素磷酸转移酶基因NPTII为卡那霉素(kan) 抗性选择标记基因,含有卡那霉素抗性基因作为筛选基因｡β一葡萄糖苷酶gus基因作为报告基因,转化的获得的转基因细胞､组织或植株,具有抗卡那霉素的特性,经组织化学染色呈蓝色｡实验器材摇床､超净工作台､小型离心机､冰箱､移液抢､镊子､手术刀､酒精灯､棉球､培养皿､三角瓶､滤纸､牛皮纸､牙签｡实验材料植物材料:烟草无菌苗农杆菌与载体:农杆菌LBA4404 p BI121 YEB培养基:牛肉膏(5 g/L)､蛋白胨(5 g/L)､酵母提取物(1 g/L)､蔗糖(5 g/L)､MgSO4(0.5g/L)､pH 7.0烟草分化培养基: MS + 2mg/L 6-BA + 0.5mg/L IAA烟草生根培养基: MS + 0.5mg/L IAA卡那霉素(Kan) 母液: 50mg/ml, 过滤除菌,分装,-20°C保存｡头孢霉素(cef) 母液: 300mg/ml, 过滤除菌,分装,-20"C 保存｡利福平(rif): 50mg/ml,过滤除菌,分装,-20"C保存｡。

烟草组织培养实验方案摘要本实验通过配制四种培养基来实现烟草种子萌发，种子苗叶片诱导、分化及植株再生，从而获得课题所需要的基因受体植株。

关键词烟草组织培养前言组织培养不仅是一种植物快速繁殖的手段,同时也是植物改良、种质保存和次生物质生产的理想途径。

烟草是典型的基因工程模式植物,易于进行组织培养,容易得到再生的转化植株。

一实验植物：华烟6号二实验材料：华烟6号种子三实验方法与步骤1．培养基的配制本次实验使用（1）种子萌发培养基：MS培养基+GA30.7mg/L；（2）愈伤组织诱导及其幼芽分化培养基:MS+2,4-D 0.5 mg/L +6-BA 1.0 mg/L；（3）幼芽增殖培养基：MS+6-BA 1.0 mg/L +NAA 0.2 mg/L；（4）生根培养基：MS+NAA 0.2 mg/L。

上述培养基均附加3%蔗糖，0.8%琼脂，pH5.8，培养温度25±2℃，光照强度2 000 lx。

2. 培养基的灭菌——高压蒸汽灭菌（湿热灭菌法）3. 无菌苗的获得把烟草种子用市售丝袜（或纱布）包好，先分别用75%乙醇或无菌水浸泡30 s，用无菌水洗净表面抑制种子萌发的药物，待洗涤的水清澈透明，然后将烟草种子用70%酒精浸泡1 min, 10%NaClO消毒10 min,经无菌水漂洗后，在超净工作台处（紫外灭菌20～30min）接种于以配置好的（1）培养基,放入(27±1)℃的光照培养架中培养。

光照周期为10 h(8:00~18:00)光照,12 h暗培养。

种子苗具4~5叶时继代扩繁备用。

4. 烟草叶片愈伤诱导及不定芽分化在超净工作台上取上述烟草无菌苗幼嫩叶片1~2片于无菌培养皿中，将叶片切成1.0～1.5平方厘米的小方块，接入（2）中培养。

约2～3d后，叶片外植体卷曲、增厚、膨胀，15d后外植体脱分化形成疏松絮状浅黄绿色的愈伤组织，愈伤组织诱导率为100%。

30d后，从叶片外植体产生的疏松愈伤组织上分化出许多浅黄绿色芽点。

叶盘法转基因烟草技术实验目的：学习并了解叶盘法转基因烟草的技术流程。

二. 实验原理：土壤中的农杆菌是一种革兰氏阴性菌，能够感染植物的受伤部位。

农杆菌中有一种环形的Ti质粒，Ti质粒最重要的两个区域为T-DNA区和毒性区，T-DNA是Ti质粒上唯一能够整合到植物染色体上的序列，而毒性区上一系列则帮助T-DNA区整合到植物的染色体上。

土壤农杆菌转化植物的常用方法是叶盘法。

这种转基因方法十分简单，一般是将植物的叶片切成小圆片，用农杆菌感染后共培养2-4天，而后转移到加有选择压的分化培养基上分化出芽，在MS培养基上生根后，再生出完整的植株。

三. 试剂及设备1.试剂：MS培养基：配方见“植物的组织培养技术”实验指导Kan：卡那霉素Cb：羧苄青霉素NAA：萘乙酸6-BA：细胞分裂素T1培养基：MS培养基T2培养基：MS培养基+6-BA2.0mg/L+NAA0.5 mg/L+Kan100 mg/L+Cb500 mg/LT3培养基：MS培养基+ Kan100 mg/L+Cb500 mg/L（T2：生长培养基；T3：生根培养基）2.仪器：光照培养箱，恒温摇床，超净工作台，接种器械等四.实验步骤：1 农杆菌培养1）从平板上挑取含有目的基因的单菌落，接种到3 ml YEB 液体培养基中（Str 25 μg/ml、Rif 50 μg/ml、Kan 80 μg/ml）于恒温摇床上27℃，180 rpm 摇培过夜至OD 600 为0.6-0.8。

2）摇培过夜的菌液按1%-2%的比例，转入新配置的无抗生素的YEB 培养基中，在与上述相同的条件下培养6 h左右，OD600 为0.2-0.5 时即可用于转化。

或：将按上述方法培养的OD 600 为0.6-0.8 的菌液，转入无菌离心管中，于室温条件下，5000 rpm 离心10 min，去掉上清液，菌体用1/2 MS液体（pH 5.4-5.8）培养基重悬，稀释至OD600 为0.2 左右，用于转化。

烟草叶片愈伤组织诱导分化实验1. 实验目的（1）通过诱导植物（烟草叶片、水稻种子）愈伤组织和器官发生，分析生长素和细胞分裂素对烟草叶片离体培养的作用。

（2）了解植物组织在离体培养条件下脱分化和再分化的特点。

2. 实验原理外植体形成愈伤组织大致要经历三个时期：启动期、分裂期和形成期。

启动期主要通过激素以及环境因素的诱导使外植体细胞代谢增强，大量蛋白质与核酸形成为细胞分裂做准备；分裂期时外植体细胞在激素诱导下脱分化并不断增殖，形成结构疏松的组织块；形成期时，由于不同植物生长激素的诱导使愈伤组织形成根、芽等形态分化。

烟草为常见模式植物之一，常用于植物组织培养，是研究细胞脱分化和再分化的理想材料。

在愈伤组织诱导及分化过程中，光照条件起到的作用是促使愈伤组织进行光合作用生成糖类，促使代谢活动进行。

6-BA、NAA均为植物生长调节剂，6-BA属于细胞分裂素，可诱导愈伤组织发生并促进牙的形成；NAA属于细胞分裂素，能促进细胞分裂与扩大，诱导形成不定根。

根据Skoog和Miller提出的生长素和细胞分裂素相对浓度调节器管分化的概念，相对高的生长素有利于细胞增殖和不定根的分化，而相对高的细胞分裂素浓度有利于不定芽的分化。

通过改变激素的种类和浓度，有效地调节培养组织的器官分化，已经在许多植物的组织培养中得到证实，甚至在一些低等植物中也得到了证实。

3. 实验材料与操作方法3.1 实验材料3.1.1 材料选择：烟草By-2，滤纸片，枪头3.1.2 实验试剂：（1）植物生长调节剂（超净台过滤灭菌，1.5 mLEP管分装后-20℃贮存）6-BA 0.5mg/mL（1mol/L NaOH溶解再用蒸馏水定容）NAA 0.5mg/mL（1 mol/L NaOH溶解再用蒸馏水定容）（2）抗生素（超净台过滤灭菌，1.5 mLEP管分装后-20℃贮存）卡那霉素50 mg/mL（蒸馏水定容）利福平15 mg/mL（无水乙醇溶解再用蒸馏水定容）链霉素30 mg/mL（蒸馏水定容）羧苄青霉素100 mg/mL（蒸馏水定容）（3）实验用培养基MS大量元素储存母液（50×，蒸馏水定容）：1650mg/L NH4NO3+1900mg/L KNO3+370mg/L MgSO4·7H2O+170mg/L KH2PO4+440mg/LCaCl2·2H2O（CaCl2·2H2O在配制过程中不易溶解，可单独配成储液存放）MS微量元素储存母液（100×，蒸馏水定容）：0.83mg/L KI+6.2mg/L H3BO3+22.3mg/L MnSO4·4H2O+8.6mg/L ZnSO4·7H2O+ 0.25mg/L Na2MoO4·2H2O+0.025mg/L CuSO4·5H2O+0.025mg/L CoCl2·6H2O +27.8mg/LFeSO4·7H2O +37.3 mg/L Na2-EDTA·2H2O（FeSO4·7H2O 和Na2-EDTA·2H2O两个试剂配制成100×溶液4℃冰箱避光储存）MS有机成分储存母液（100×，蒸馏水定容）：3mg/L甘氨酸+0.5mg/L烟酸（维生素B5）+0.5mg/L盐酸吡哆醇（维生素B6）+0.1mg/L盐酸硫胺素（维生素B1）+100mg/L肌醇（肌醇难溶解，一般独自配成浓缩液储存）MS培养基（NaOH调节至pH 5.8，蒸馏水定容）：1×大量元素+1×微量元素+1×有机成分+30g/L蔗糖+0.8%琼脂+不同比例生长素（6-BA+IAA）3.1.3 实验仪器：超净工作台，烧杯，锥形瓶，培养皿，枪形镊子，眼科剪，移液枪，酒精灯，光照培养室，3.2 操作方法取幼嫩烟草叶片约5片（选择幼年的外植体较好，如分生组织、维管束、形成层组织、静止的薄壁组织），用自来水清洗晾干。

叶盘法转化烟草的原理叶盘法是一种生物工程技术，用于转化或改造植物基因组以生产特定物质。

在烟草中应用叶盘法可以用于合成表达外源蛋白、开发抗病毒烟草品种以及烟草遗传改良等领域。

叶盘法的基本原理是利用植物的组织再生能力，通过培养植物的叶片组织培养而成的小体，在适当的培养基组合下，通过添加适当的物质和条件，将目标基因组转化至植物细胞中。

叶盘法的实验流程一般可以分为以下几个步骤：1.植物材料的准备：从健康的烟草植株中采集叶片，并将其洗净，并进行无菌处理以确保实验的纯度。

2.建立愈伤组织：将洗净的叶片剪成小碎片，并将其转移到含有激素和培养基中，利用试管内的适宜条件培养愈伤组织。

这一步是为了为后续基因转化做好基础，并培养植物细胞的再生能力。

3.转化基因：将目标基因或转入质粒经过适当的处理和筛选，将其引入培养的烟草细胞中。

目标基因可以是外源蛋白的编码序列，用于生产特定蛋白质。

转入基因的方法包括生物颗粒轰击、体外基因传递和通过细菌介导的转化等多种方法。

4.培养变性细胞：转入基因的组织在适宜的培养条件下进行培养和筛选，以确保它们能够在细胞内稳定表达目标基因。

同时，还可以使用适当的抗生素来抑制未转化细胞的生长。

5.稳定转化的筛选：利用特定的筛选方法，筛选出稳定表达目标基因的转化细胞。

常用的筛选方法是利用抗生素抗性基因或镰刀形细菌素酶基因，通过添加抗生素或镰刀形细菌素酶底物来诱导或检测转过的细胞。

6.进一步培育和鉴定：将经过筛选的转化细胞进行进一步培养，培育出大量具有目标基因的烟草植株。

同时，对植株进行鉴定和检测，确认目标基因的稳定性和表达水平。

通过以上步骤，叶盘法能够有效地将外源基因导入到烟草植株的基因组中，并使其稳定表达。

通过优化培养条件和基因的筛选方法，可以进一步提高转化效率和稳定性。

叶盘法的优点在于操作简单、转化效率高、转基因植株易于培养和大规模扩繁等。

然而，叶盘法也存在一些局限性，如转化效率和稳定性的波动性、可能引发的遗传不稳定性等问题，需要进一步的优化和改进。

烟草实验情况汇报
本次烟草实验旨在探究不同环境条件对烟草生长的影响，以及对烟草质量和产
量的影响。

我们选择了室内和室外两种不同的环境条件进行实验，以期获得更全面的数据和结论。

首先，我们在室内设置了温度恒定、湿度适宜的环境条件，对烟草进行种植和
观察。

在这种条件下，我们发现烟草生长速度较快，叶片颜色较为鲜绿，但是烟草的高度和叶片数量相对较少。

同时，室内环境下的烟草产量也较低，质量略有下降。

其次，我们在室外选择了阳光充足、气候适宜的环境条件进行烟草种植实验。

在这种条件下，烟草生长速度较慢，但是烟草的高度和叶片数量明显增加，叶片颜色也更加饱满。

与室内环境相比，室外环境下的烟草产量明显提高，质量也有所增加。

综合实验结果，我们可以得出以下结论，不同环境条件对烟草生长和产量有着
明显的影响。

温度恒定、湿度适宜的室内环境有利于烟草的生长，但产量和质量相对较低；而阳光充足、气候适宜的室外环境则能够提高烟草的产量和质量，但生长速度较慢。

在今后的研究中，我们将进一步探究不同养分供给、灌溉条件对烟草生长的影响，以及烟草在不同环境条件下的适应性和生长规律。

希望通过这些研究，能够为烟草种植提供更科学、更有效的栽培技术和管理方法，为烟草产业的发展做出贡献。

总的来说，本次实验取得了一定的成果，但是也存在一些不足之处，需要在今
后的研究中加以改进和完善。

我们将继续努力，不断深化研究，为烟草生产和种植提供更多有益的信息和数据。

感谢各位的支持和关注，期待在未来能够取得更加丰硕的成果。

烟草原生质体的分离纯化烟草原生质体（Nicotine Protoplast）是指烟草（Nicotiana tabacum L.）细胞中存储和合成尼古丁的部位。

作为一种重要的生物资源，烟草原生质体在药物开发、化妆品生产、食品添加剂等领域具有广泛的应用前景。

为了更好地利用烟草原生质体，需要对其进行了分离纯化。

本文将详细介绍烟草原生质体的分离纯化方法及其应用前景。

材料和方法实验材料：烟草植株：Nicotiana tabacum L.实验设备：高速离心机恒温摇床无菌操作台旋转蒸发器微量进样器实验试剂：缓冲液（pH 4）葡萄糖聚乙二醇（PEG）十二烷基硫酸钠（SDS）乙酸乙酯氯仿酚红指示剂尼古丁标准品实验步骤：萃取：将烟草植株剪成碎片，加入缓冲液，用高速粉碎机粉碎。

然后，用缓冲液冲洗粉碎后的材料，收集冲洗液。

分级沉淀：将冲洗液加入无菌操作台中，加入甘露醇和葡萄糖，用高速离心机进行分级沉淀，收集沉淀物。

透析：将沉淀物移入透析袋中，用缓冲液进行透析，去除小分子杂质。

超速离心：将透析液加入高速离心机中，用氯仿和甲醇进行超速离心，收集有机相。

萃取：将有机相加入无菌操作台中，加入缓冲液和尼古丁标准品，用高速震荡器震荡，收集震荡液。

透析：将震荡液移入透析袋中，用缓冲液进行透析，去除小分子杂质。

冻干：将透析液进行冻干处理，得到烟草原生质体粉末。

结果与数据分析通过对比不同实验步骤的实验数据，我们可以得出以下萃取和分级沉淀可以有效去除杂质，提高烟草原生质体的纯度；透析可以进一步去除小分子杂质，提高烟草原生质体的纯度；超速离心可以有效地将有机相和无机相分开，收集到有机相中的尼古丁；萃取和透析可以进一步去除杂质，得到高纯度的烟草原生质体粉末。

应用前景作为一种重要的生物资源，烟草原生质体在未来的应用前景广阔。

烟草原生质体可以作为药物开发的重要原料，用于制备尼古丁药物。

烟草原生质体中的尼古丁是一种天然的杀虫剂，可以用于生产绿色、无残留的化妆品和食品添加剂。

烟草实验实训目的和要求
烟草是遗传转化的模式植物，已经建立了一套完善的转化再生体系。

本实验以烟草为实验材料，使同学们了解根癌农杆菌介导法的基本原理和一般步骤，掌握遗传转化的基本操作技术。

烟草叶片，LBA4404质粒载体，摇床，培养皿（带滤纸），移液枪，镊子，手术刀，无菌水。

根癌农杆菌介导转化的方法已经比较成熟，易于在植物细胞和组织培养实验室进行。

具体操作程序如下：
（1）根癌农杆菌质粒的保存：构建好的根癌农杆菌质粒接种在YEP固体培养基上，YEP固体培养基的成分为每100mL含NaCl 0.5g，酵母1 g，水解酪蛋白1g，琼脂1.5g，pH值7.0，在冰箱中冷藏，一个月换一次培养基，保证菌种正常生长。

（2）配制YEP液体培养基：成分同上，只是不添加琼脂，分装于试管中，每试管加入5mL左右的液体培养基，包好后高压灭菌，放置于冰箱中待用。

（3）摇菌：用灭菌后的牙签或者火柴棍等挑出一些菌液，一起放入上述YEP液体培养基中，然后置于振荡器上摇菌16—17h（180r ／min），直至溶液变浑浊，即有大量菌丝长出。

（4）用消毒后的0.5mm打孔器从叶片上切出叶盘，然后将叶盘投入农杆菌悬液中培养5min。

（5）用滤纸吸干多余的菌液，叶片放在MS+6—BA 1.0 mg/L 十IAA 0.1 mg/L培养基上共培养2d，随后转至附加卡那霉素
100mg/L，羧苄青霉素500 mg/L的培养基上筛选培养，（25±1）℃，16h光周期。

（6）2周后分化出卡那霉素抗性芽（应为绿色），从基部将芽切下，转至含100mg/L卡那霉素和500 mg/L羧苄青霉素的MS+0.1 mg/LIAA上生根培养，生根后的植株移入温室内栽培。

烟草愈伤组织的诱导及细胞悬浮培养体系的建立一、概述烟草愈伤组织的诱导及细胞悬浮培养体系的建立，是植物组织培养领域中的一项重要研究。

烟草作为一种重要的经济作物，其组织培养技术的研究对于提高其生产效率、优化品质具有重要意义。

愈伤组织的诱导是植物组织培养的第一步，也是后续细胞悬浮培养、基因工程操作等的基础。

烟草愈伤组织的诱导，通常通过无菌操作，利用激素等生长因子刺激烟草叶片等外植体细胞脱分化形成。

这一过程不仅受到激素种类和浓度的影响，还受到光照、温度、湿度等培养条件的影响。

优化诱导条件，降低褐化等不利因素的影响，是烟草愈伤组织诱导研究的关键。

细胞悬浮培养体系的建立，则是进一步将愈伤组织转化为可用于大规模生产和基因操作的细胞悬浮液。

通过选择适当的培养基、调节生长条件、优化细胞悬浮密度等手段，可以实现烟草细胞的稳定增殖和高效表达。

本文旨在探索烟草愈伤组织的诱导条件以及细胞悬浮培养体系的建立方法，通过系统的实验设计和优化，为烟草组织培养技术的发展和应用提供理论基础和实践指导。

这一研究也将为其他植物的组织培养提供有益的参考和借鉴。

1. 烟草愈伤组织诱导与细胞悬浮培养体系的重要性烟草愈伤组织的诱导及细胞悬浮培养体系的建立，在植物组织培养、基因工程以及植物快繁等多个领域都具有重要的科学意义和实践价值。

愈伤组织的诱导是植物组织培养中的关键环节。

通过特定的培养基和培养条件，可以诱导烟草叶片等外植体脱分化形成愈伤组织。

这一过程不仅验证了植物细胞的全能性，而且为后续的细胞悬浮培养提供了适宜的起始材料。

细胞悬浮培养体系的建立为植物细胞的大规模培养和遗传转化提供了平台。

通过优化悬浮培养条件，可以获得大量生长状态良好的细胞，进而用于后续的基因转化、次生代谢产物生产等研究。

悬浮培养体系还可以用于筛选具有优良性状或抗性的细胞株系，为烟草育种提供新的途径。

烟草愈伤组织诱导及细胞悬浮培养体系在植物快繁方面也具有潜在的应用价值。

通过诱导愈伤组织再分化形成不定芽或胚状体，可以在短时间内获得大量的植株，从而实现烟草的快速繁殖。

从烟中提取烟碱的实验报告烟草是一种常见的植物，人们常常将其制作成香烟，以作为一种休闲娱乐的方式。

然而，香烟中的主要成分烟碱却备受争议。

烟碱是一种有机碱，存在于烟草中，对人体具有一定的刺激作用。

为了更好地了解烟碱的性质和提取方法，我们进行了一系列实验。

首先，我们需要收集一定数量的烟草叶片。

我们选择了同一品牌的香烟，并将其拆解，取出烟草叶片。

然后，我们将烟草叶片进行粉碎，以便更好地进行后续的提取实验。

接下来，我们选择了乙醇作为提取剂。

乙醇是一种常见的有机溶剂，可以有效地提取烟草中的烟碱。

我们将粉碎后的烟草叶片与乙醇混合，并进行搅拌，以保证烟草中的烟碱能够充分溶解在乙醇中。

在搅拌一段时间后，我们将混合液进行离心分离。

离心分离是一种常见的实验方法，通过离心力的作用，将混合液中的固体颗粒与溶液分离开来。

在本实验中，我们通过离心分离，将烟草叶片残渣与乙醇溶液分离开来。

得到乙醇溶液后，我们需要进一步提取其中的烟碱。

我们选择了蒸发法进行提取。

我们将乙醇溶液倒入一个扁平的容器中，并将其放置在通风良好的地方，以便乙醇能够逐渐蒸发。

随着乙醇的蒸发，烟碱逐渐凝结并沉积在容器底部。

经过一段时间的蒸发，我们得到了一定量的烟碱。

为了进一步提高提取效率，我们进行了多次提取。

将之前的残留物再次与乙醇混合，并重复之前的提取步骤。

通过多次提取，我们得到了更多的烟碱。

最后，我们对提取得到的烟碱进行了一系列的检测。

首先，我们使用红外光谱仪对烟碱进行了红外光谱分析。

红外光谱分析可以帮助我们确定烟碱的分子结构。

通过与已知的烟碱标准品进行比对，我们确认了提取得到的烟碱的纯度。

此外，我们还对烟碱进行了一些生物学实验。

我们将提取得到的烟碱溶液与细胞培养基混合，并将其加入培养皿中。

通过观察细胞的生长情况，我们可以初步了解烟碱对细胞的影响。

通过这一系列的实验，我们成功地从烟草中提取到了烟碱，并对其进行了一些初步的分析。

烟碱作为烟草中的主要成分，对人体具有一定的刺激作用。

烟草植物组织培养实验一实验目的学习和掌握植物组织培养技术，理解植物细胞的全能性。

二实验原理植物组织培养是从20世纪30年代初期发展起来的一项生物技术。

由于其拥有占地少、繁殖系数大等特点，现以在全世界的园林植物尤其是花卉的种苗繁育上得到广泛应用。

本文着重介绍组织培养技术的理论原理、操作过程、生产技术以及经济核算等方面的内容，使大家对组织培养在园林植物尤其是花卉的种苗繁育的应用有所了解，为以后的实际操作提供依据。

在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤组织再分化形成植物体。

从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：起动期、分裂期和形成期。

①起动期是指细胞准备进行分裂的时期。

用于接种的外植体的细胞，通常都是成熟细胞，处在静止状态。

起动期是通过一些刺激因素（如机械损伤、改变光照强度、增加氧等）和激素的诱导作用，使外植体细胞的合成代谢活动加强，迅速进行蛋白质和核酸的合成。

机械损伤能诱导植物体细胞开始分裂，如伤口上会出现愈伤组织。

在植物组织培养中沿用了愈伤组织这一名词，但是植物组织培养中诱导外植体细胞分裂形成的愈伤组织，大都不是损伤的结果。

外源的生长素类物质对诱导细胞开始分裂效果很好，因此生长素类物质在植物组织培养中得到广泛应用，常用的有生长素（2，4-二氯苯氧乙酸2，4-D、萘乙酸NAA、萘乙酰胺NAD和吲哚乙酸IAA、吲哚丙酸IPA和吲哚丁酸IBA）细胞分裂素（6-苄氨基嘌呤6-BA、6-糠氨基嘌呤（KT）氯吡苯脲（KT-30，CPPU））等。

分裂期是指外植体细胞经过诱导以后脱分化，不断分裂、增生子细胞的过程。

处于分裂期的愈伤组织的特点是：细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明。

外植体的脱分化因植物种类、器官来源及其生理状况的不同而有很大差别。

例如，烟草、胡萝卜等植物的脱分化比较容易，禾本科植物的脱分化比较难；花的脱分化比较容易，茎、叶的脱分化比较难；幼嫩组织的脱分化比较容易，成熟的老组织脱分化比较难。

烟草的实验报告引言烟草一直是人类常见的一种植物，它的广泛种植和使用在全球范围内都受到了广泛关注。

烟草可以用于制作香烟、雪茄和烟斗等吸烟产品，也可以用于制作口香糖、牙膏和药物等其他产品。

然而，烟草中含有大量的尼古丁和其他有害物质，对人体健康造成了极大的危害。

为了深入了解烟草的特性和对人体的影响，我们进行了一系列实验，并进行了详细记录和分析。

实验目的本实验的主要目的是通过对烟草进行一系列实验，了解其成分、特性以及对人体的影响。

具体实验目标包括：1.分析烟草中的化学成分；2.了解烟草燃烧产生的有害物质；3.研究吸烟对人体的影响。

实验材料和方法实验材料本次实验所需材料如下：•烟草样品•瓷芯烟嘴•无水酒精•石英管•滤纸•高性能液相色谱仪•吸入试验设备实验方法1.烟草样品分析：首先，取适量烟草样品, 使用高性能液相色谱仪分析其中的化学成分。

将烟草样品经过处理，提取其中的化学成分，并通过高性能液相色谱仪进行分析和检测。

2.烟草燃烧产物分析：使用瓷芯烟嘴和石英管，将烟草进行点燃，并收集烟气。

根据燃烧产生的烟气成分，使用高性能液相色谱仪进行分析和检测。

3.吸烟对人体的影响分析：使用吸入试验设备，模拟吸入烟草燃烧产生的烟雾。

以动物实验为基础，观察吸烟对呼吸系统的影响，并进行分析和评估。

实验结果与讨论烟草样品分析结果我们通过高性能液相色谱仪对烟草样品进行了分析，得到了以下结果：成分含量（%）尼古丁 2.3烟碱0.5烟酸 1.0苄基异戊酸酯0.8从上表中可以看出，烟草中含有大量的尼古丁和其他成分。

尼古丁是一种具有成瘾性的物质，对人体健康有很大的危害。

烟草燃烧产物分析结果通过瓷芯烟嘴和石英管对烟草进行燃烧，并收集烟气后，我们使用高性能液相色谱仪对其进行了分析。

以下是燃烧产生的主要有害物质及其检测结果：有害物质含量（ppm）一氧化碳200氰化物 5正呋喃10苯30烟草燃烧产生的有害物质对人体健康具有严重危害，其中一氧化碳是致命的毒性气体，会影响血液中氧气的吸收。

人造发光植物梳理科学家培养发光烟草的过程,分三
点答
妙的夜景。

夜幕降临后，您会看见一片片紫蓝色的荧光。

难道是荧光灯在田间闪烁?不，这是因为那儿有一些能发出荧光的植物。

这源于加利福尼亚大学生物系的研究人员在1983年提出的一个大胆的设想。

他们试图用人工的方法，将某种发光的基因移植到植物的基因中去，从而使植物发出光亮。

为了实现这一奇想，研究小组经过仔细的分析研究，决定拿烟草做实验。

（1）他们设想把萤火虫的发光基因植入烟草，让烟草发出荧光。

他们在了解了萤火虫的发光机理后，找到了萤火虫细胞内的发光基因，又找到了一种能直接感染烟草的细菌，用它来做移植的“载体”。

（2）研究人员先用一种内切割酶，将萤火虫细胞核内的发光基因“剪”下来;再用一种连接酶把它“缝合”到作为“载体”的细菌上。

（3）将细菌培养一段时间后，让它感染烟草植株。

这样，萤火虫的发光基因就被移植到烟草的细胞里了。

这些烟草长大后，就成了一株株地道的人造发光植物。

加利福尼亚大学植物园中的夜间奇景，就是由这种发光烟草造就的。

科学家创造这一奇迹，并不只是供游人观赏猎奇，更重要的是想通过这项研究，进一步揭示生命的奥秘。

这种将外来生物的基因转入
到植物中的生物技术叫做“植物转基因技术”，而这种植物则叫做“转基因植物”
该项研究成功以后，科学家对未来进行了大胆而乐观的设想。

例如，未来的高速公路两旁，不用再安装路灯，只要种上一排排发光植物就可以了。

我们相信，神奇的生物技术将给我们未来的生活增加更加绚丽的色彩。

细胞工程学实验报告专业：_ 09级生物技术一班__ 姓名：___ __ 学号：____ _ _实验一实验室的设计及基本设备一、实验室的设计1、实验室设计的原因：植物细胞工程实验室的流程是：清洗玻璃器皿、配制培养基、高压气灭菌、无菌操作、培养室培养植物、植物材料的检测。

因此实验室需要有清洁器皿和配制培养基的准备室，无菌操作室或超净工作台，供培养材料用的培养室，检查培养情况并做记录的实验室。

一般在设计上，每个组分最好按工作的自然程序连续排列，如：准备室、灭菌室、无菌操作室、植物材料培养室、检测室。

实验室的安排应合理简洁，并要求无尘、灭菌、光洁、清净。

2、实验室的布局要求：（1）准备室准备室可以是一大间或几小间，主要用于进行一切与实验有关的准备工作：完成所使用的各种药品的贮备、称量、溶解、器脿醮涤、培养基配制与分装、培养基和培养器皿的灭菌、培养材料的预处理等。

必要的设备有:准备室应具备实验台、药品柜、水池、仪器、药品、防尘橱（放置培养容器）、冰箱、天平、蒸馏水器、酸度计及常用的培养基配制用玻璃仪器等。

洗涤灭菌区功能：完成各种器具的洗涤、干燥、保存、培养基的灭菌等。

要求：洗涤灭菌室根据工作量的大小决定其大小，一般面积控制在30-50m2。

在实验室的一侧设置专用的洗涤水槽，用来清洗玻璃器皿。

中央实验台还应配置2个水槽，用于清洗小型玻璃器皿。

如果工作量大，可以购置一台洗瓶机。

准备1-2个洗液缸，专门用于洗涤对洁净度要求很高的玻璃器皿，地面应耐湿并排水良好。

设备：水池、落水架、中央实验台、高压灭菌锅、超声波清洗器、干燥灭菌器（如烘箱）等。

（2）无菌室（接种室）进行植物细胞、组织培养操作的关键是无菌条件。

室内的墙壁要求光滑平整；地面为光洁的水磨石，平坦无缝，避免灰尘积累，便于清扫。

紫外灯一般在3到4平方米内安装1到2只；在工作台下安置紫外灯紫外灯可使灭菌彻底。

同时，工作台上方安装平板玻璃，以防操作时落灰。

条件不好时，用无菌箱代替无菌室，箱内用紫外灯灭菌。