HER2免疫组化检测的质量控制

乳腺癌改良根治术标本处理SOP1.目的：及时、充分固定组织标本，保证HER2免疫组化和FISH检测质量。

2.操作者：乳腺科手术医师和病理科负责取材的技术员、病理医师3.步骤3.1乳腺切除标本的及时固定：手术医生必须在标本离体后半小时内将标本放入10％中性福尔马林液体固定（要求液体量至少为切除标本的4-5倍），或者立刻将标本送至病理科（新鲜标本按《冰冻送检乳腺肿瘤切除标本处理SOP》进行处理）。

3.2标本签收：病理科负责接收标本技术员核对患者基本信息、标本类型与送检单描述是否相符后给予签收（包括签收人姓名及时间）；3.3标本取材3.3.1取材医师在取材前再进行一次核对，先登记、编号再取材，记录者应对申请单上的各项内容逐一加以叙述。

如有不一致的情况，应及时与送检手术医师联系，在取得联系前不宜进行取材。

若对标本的病变、解剖关系或送检要求等有不明确之处，可邀请手术医师共同参与取材。

3.3.2确定标本的方位，将标本安放在切板上，皮瓣面向上，以腋窝脂肪作为乳房外侧的标志，确定乳腺标本的四个象限。

大体摄像（要求照片充分反应标本原始情况，包括正反面，背景干净，有标尺）。

3.3.3观察外表形态特征，触扪标本内有无肿块或结节。

3.3.4将标本底部朝上，第一刀需经乳头中央底部（但保持皮肤完好），在与肿瘤中心的连线处用长利刀切开乳房，再以第一刀平面的两侧每隔1cm作与第一刀平行的多个切面，顺序地展开薄片，并保持其方位，仔细检查每一薄片并新鲜取材。

如需固定过夜，用纱布分隔每一个切面，保证固定液足量。

3.3.5乳头及皮肤取材：在乳头基底部横切面取组织一块，乳头再平行纵切成4-5块全部取材。

皮肤如有病变则代表性取材。

3.3.6切缘取材：按解剖方位放好标本，内、外、上、下及基底部切缘各取一块。

3.3.7病变取材：先对病变处进行摄像，然后取材（要求照片充分反应病变情况，背景干净，有标尺）。

肿瘤取材按最大径为几厘米则至少取材几块，必要时多取材；3cm以下的肿瘤要求全部取材；其他四个象限分别检查并代表性取材。

乳腺癌免疫组化内容
一、标记物选择
在乳腺癌免疫组化实验中，通常会选择以下标记物：
1.ER（雌激素受体）：用于评估乳腺癌对激素治疗的反应性。

2.PR（孕激素受体）：与ER一起评估激素治疗的反应性。

3.HER2（人类表皮生长因子受体2）：用于评估乳腺癌的恶性程度和预测化疗效果。

4.Ki-67：反映肿瘤细胞的增殖活性。

5.p53：与肿瘤恶性程度和预后相关。

二、实验步骤
1.样本处理：将乳腺癌组织样本进行固定、脱水、透明、浸蜡等处理，以便进行免疫组化实验。

2.切片制备：将处理好的组织样本切成薄片，附着在载玻片上。

3.抗原修复：使用抗原修复液对组织切片进行加热，以暴露抗原并使其易于与抗体结合。

4.抗体孵育：将标记物抗体与组织切片混合，并在适宜温度下孵育一定时间，使抗体与抗原结合。

5.信号转化：使用酶或其他介质将抗原-抗体复合物转化为可见信号，以便在显微镜下观察。

6.染色观察：对组织切片进行染色，并在显微镜下观察标记物的表达情况。

7.结果分析：根据染色强度、阳性细胞比例等因素对结果进行分析，评估乳腺癌的生物学特性。

注意事项：
1.免疫组化实验需要使用特定的抗体，不同的抗体可能对不同的抗原具有特异性，因此选择合适的抗体非常重要。

2.实验过程中需要注意温度、时间和pH值等条件，以确保抗体与抗原的结合和信号转化的顺利进行。

3.免疫组化实验结果需要进行客观、准确的评估，避免出现假阳性或假阴性结果。

her2过表达标准关于HER2过表达标准的文章（1500-2000字）引言：HER2基因是一种与乳腺癌发生相关的重要基因，在许多乳腺癌患者中都会出现过表达的情况。

HER2过表达会导致肿瘤的恶性程度增加，并且预示着患者的预后可能较差。

因此，准确判断HER2过表达的标准对于乳腺癌的诊断和治疗具有重要意义。

本文将从HER2过表达的定义、检测方法、相关标准和治疗策略等方面逐步解析。

一、HER2过表达的定义：HER2基因位于人体第17号染色体上，是一种编码成蛋白质的基因。

HER2（人体表皮生长因子受体2）是一种细胞膜上的受体蛋白质，参与调控乳腺细胞的生长和分化。

当HER2基因发生异常，出现拷贝数扩增或突变等情况时，会导致HER2过表达。

HER2过表达的乳腺癌细胞具有更强的增殖能力和侵袭能力，从而增加患者的复发风险和死亡率。

二、HER2过表达的检测方法：目前常用的HER2过表达检测方法主要有免疫组化（IHC）和原位杂交（ISH）两种。

1. 免疫组化（IHC）：免疫组化是通过对乳腺癌组织样本进行染色，检测HER2蛋白在肿瘤细胞膜上的表达情况。

根据IHC的染色结果，HER2过表达通常被分为0-3级。

IHC 0级表示无HER2表达，IHC 1+级表示低表达，IHC 2+级表示中等表达，IHC 3+级表示强烈表达。

2. 原位杂交（ISH）：原位杂交是通过对乳腺癌组织样本进行染色，检测HER2基因的扩增情况。

常用的ISH方法包括荧光原位杂交（FISH）和辣根过氧化物酶原位杂交（CISH）。

FISH技术利用荧光标记的探针与HER2基因发生结合，形成特定的荧光信号，从而判断HER2基因是否扩增。

CISH技术则使用酶标标记的DNA探针，通过染色反应形成可见的颜色信号，评估HER2基因扩增的情况。

三、HER2过表达的相关标准：根据乳腺癌患者HER2表达情况的不同，可将HER2分为HER2阴性（-）、HER2低表达（+）、HER2中度表达（2+）和HER2强烈表达（3+）四个等级。

免疫组化在临床诊断中的应用在临床病理诊断中，免疫组织化学（IHe）是一种很重要的技术和手段，从20世纪70年代开始，免疫组化技术就应用于病理诊断，对于诊断肿瘤、肿瘤分类、判断预后产生了巨大的影响，同时也扩展了人们对于各种疾病及肿瘤形成过程的认识，提高了病理诊断与研究水平。

但是，随着免疫组化的广泛应用，发现免疫组化技术存在一些局限性。

深入研究免疫组化原理和技术，必须熟悉各种抗体真阳性反应部位，实现实验室间免疫组化标准化，使免疫组化在病理诊断中发挥最大的辅助作用。

在病理诊断中，随着各种抗体新的用途不断被发现及越来越多的新型抗体的出现，免疫组化在肿瘤诊断及鉴别诊断、分类、预后判断等方面产生了重大的影响。

由于免疫组化技术也存在一些局限性，因此，深入研究免疫组化原理和技术，并努力实现规范化的操作，才能充分发挥免疫组化在病理的诊断及鉴别诊断、判断预后、指导临床治疗中的作用。

1.免疫组化技术观察组织切片中抗原的数量及其在组织中的分布情况，对抗原进行定位、定性及定量的研究，称为免疫组织化学，由于抗原与抗体特异性结合，因此通过免疫组化使标记抗体的显色剂（酶、荧光素、同位素、金属离子等等）显色来确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质）。

IHC所用标本主要为两大类:组织标本和细胞标本，其中制作组织标本最常用、最基本的方法是石蜡切片。

石蜡切片对于组织形态保存好，有利于各种染色对照观察，而且能长期保存；石蜡切片中使用的甲醛固定剂对组织内抗原暴露有一定的影响，但可进行抗原修复，是免疫组化中首选的组织标本制作方法。

2.免疫组化技术在临床诊断中的作用目前免疫组化技术应用于临床主要有以下几个方面：2.1肿瘤良恶性的判断对于反应性增生还是肿瘤性增生，可用免疫球蛋白（Ig）的轻链抗体检测B淋巴细胞增生的单克隆或多克隆性来区别。

在滤泡反应性增生时，滤泡反应中心的细胞不表达细胞凋亡蛋白（bc1-2）,be1-2阴性；而在滤泡性淋巴瘤中，由于90%以上肿瘤性滤泡细胞有bc1-2的高表达，bc1-2阳性。

HER-2染色在两种不同免疫组化染色平台结果不一致的分析申敬伟董芳莉杨海军安阳市肿瘤医院病理中心，河南455000通信作者：杨海军，Email：【摘要】目的分析HER-2染色在两种不同免疫组化染色平台结果不一致的原因。

方法收集2019年1—9月本院病理科存档的肿瘤标本40例，25例浸润性乳腺癌和15例胃癌在Roche VentanaXT和Leica Bond Max全自动免疫组化仪上分别进行HER-2染色，其结果严格参照HER-2检测指南进行判读。

结果25例浸润性乳腺癌HER-2在Roche Ventana XT和Leica Bond Max全自动免疫组化仪的染色结果比较差异有统计学意义（P＜0.05），Kappa值0.135，一致性较差。

15例胃癌HER-2在Roche Ventana XT和Leica Bond Max全自动免疫组化仪的染色结果比较差异无统计学意义（P＞0.05），Kappa值0.186，一致性较差。

结论不同免疫组化染色平台染色效果存在一定的差异，为了提高病理切片质量，推进规范化操作流程，针对不同的抗体选用合适的染色平台。

【关键词】染色平台；免疫组织化学；HER-2Inconsistent analysis of HER-2staining results in two different immunohistochemical staining platformsShen Jingwei,Dong Fangli,Yang HaijunPathological Center,Anyang Tumor Hospital,Anyang455000,ChinaCorresponding author:Yang Haijun,Email:【Abstract】Objective To analyze the reasons of the inconsistent results of HER-2 staining in two different immunohistochemical staining platforms.Methods HER-2staining was performed in25cases of invasive breast cancer and15cases of gastric cancer on Roche Ventana XT and Leica Bond Max automatic immunohistochemistry autostainer,respectively,and the results were interpreted strictly in accordance with the HER-2guidelines.Results The staining results of HER-2 in Roche Ventana XT and Leica Bond Max staining platforms of25cases of invasive breast cancer showed statistically significant difference and poor consistency(P<0.05,Kappa=0.135).In15cases of gastric cancer,there was no statistically significant difference(P>0.05),but the consistency was poor(Kappa=0.186).Conclusion In order to improve the quality of pathological sections and promote the standardized operation process,appropriate staining platforms should be selected for different antibodies.【Key words】Staining platform;Immunohistochemistry;HER-2人表皮生长因子受体-2（HER-2）是定位于染色体17q12-21，32上的原癌基因-人表皮生长因子受体2基因（C-erbB-2基因）编码的相对分子质量为185000的跨膜受体样蛋白，具有酪氨酸激酶活性。

荧光原位杂交技术与免疫组化对乳腺癌HER2检测的对比研究杨光明;杨列;蒋丽;代云;张建平【摘要】目的:对比分析荧光原位杂交技术(fluorescence in situ hybridization,FISH)与免疫组化(immunohistochemistry,IHC)法对乳腺癌人类表皮生长因子受体2(human epidermal growth factor receptor-2,HER2)检测的效果,为临床检测乳腺癌HER2蛋白的方法选择提供理论依据.方法:随机选取2014年1月至2016年1月到医院就诊并确诊患乳腺癌的患者80名记为实验组,无乳腺疾病患者80名记为对照组.所有患者皆取乳腺石蜡标本,均采用IHC和FISH法检测,观察比较2组患者在不同检测方式下的HER2蛋白检出率的差异,对2种检测手段的应用效果进行评价.结果:观察组患者使用FISH后的阳性率为97.50％,使用IHC 的阳性率为88.75％,FISH的阳性检出率大大高于IHC,差异有统计学意义(P＜0.05);对照组患者使用FISH的阴性率为80.0％,而使用IHC的阴性率为92.50％,IHC的阴性率明显高于FISH,差异有统计学意义(P＜0.05).结论:FISH有较高的阳性检出率,能够明显减少假阴性的发生,适用于乳腺癌的确诊实验和对转移及预后的评估;IHC有较高的阴性率,能够明显减少假阳性的发生,更适合于乳腺癌的筛查和排除诊断.【期刊名称】《医疗卫生装备》【年(卷),期】2016(037)011【总页数】3页(P72-74)【关键词】乳腺癌HER2基因;荧光原位杂交;免疫组化【作者】杨光明;杨列;蒋丽;代云;张建平【作者单位】213300江苏溧阳,溧阳市人民医院病理科;213300江苏溧阳,溧阳市人民医院病理科;213300江苏溧阳,溧阳市人民医院病理科;213300江苏溧阳,溧阳市人民医院病理科;200040上海,复旦大学附属华山医院外科【正文语种】中文【中图分类】R318;R446乳腺癌（breast carcinoma）是一种乳腺上皮恶性肿瘤，其发病率在女性肿瘤中位居第一[1]。

广东省人民医院病理医学部病理科乳腺癌HER2免疫组化判读及报告SOP1.目的：保证乳腺HER2判读的准确。

2.责任人：负责乳腺癌治疗相关指标专项报告的责任医生。

3.步骤：3.1拿到切片后，常规核对编号、标识等资料；3.2低倍镜（2×或4×）扫描整个切片（包括阴性及阳性对照片），查看有无掉片、皱褶、缺损等影响判读的情况；3.3低倍镜观察，评估组织的质量，对浸润癌进行大致定位，浸润癌的大致范围，染色效果；3.4观察阳性及阴性对照片的染色效果，如果正常，进行下一步观察；3.5观察正常乳腺导管的着色情况，应该无染色或弱(至多弱－中度强度)染色，且整个切片对比鲜明，间质无着色，再进行下一步观察；3.6在10×观察，判断浸润癌着色细胞的比例；3.720×（必要时40×）观察膜染色的完整性，染色的深浅，再按标准进行评分；3.8评分标准（中国乳腺癌HER2检测指南2009版）：0: 无着色；1+：任何比例的浸润癌细胞膜的呈现微弱、不完整的细胞膜着色；2+：>10%的浸润癌细胞呈现弱－中等强度、完整但不均匀的细胞膜棕黄着色或<30%的浸润癌细胞呈现强且完整的细胞膜棕褐着色；3+：>30%的浸润癌细胞呈现强且完整的细胞膜棕褐着色；3.9报告的内容：患者信息，标本信息（病理号和蜡块号），标本类型，标本固定液的种类，标本固定前时间，标本固定的时间，抗体信息（克隆号及生产商），使用方法（检测方法及生产商），对照片情况，样本量是否足够用于评估，判读标准（乳腺癌HER2检测指南2009版），判读结果及结论，注释。

4.质量控制：4.1两名判读医生交互阅片，计算两人的一致率，需达95％以上；4.2每月统计分析HER2评分的分布情况，与文献报道及既往本科室的HER2评分的分布不能有太大的偏差；4.3每月分析HER2免疫组化与FISH结果的一致性，达到ASCO/CAP的标准。

免疫组化的质量控制免疫组化染色切片的好坏直接影响着病理医生对其染色结果的判断，进而影响病理诊断，所以制作一张良好的免疫组化切片至关重要，它需要病理医生与病理技师两者间的相互协调，密切配合和共同努力，病理医生选择抗体，设置对照，判读结果，指导技术;而技术人员进行实验操作，保证染色质量。

在免疫组化切片的制作过程存在多个环节，每一环节的失误都可能影响最终的检测结果，如抗原保存，蛋白酶消化，增强技术及对抗体的管理、使用和试剂的浓度等等，因此制作一张高质量的免疫组织化学切片是多方面相互配合的结果。

为了保证免疫组化染色结果的可靠性，每个实验室都必须进行有效的质量控制，规范免疫组化操作流程与步骤，应注意以下几点:(1)规范行为技术标准:例如使用中性福尔马林(添加PBS的4%福尔马林) 固定，并且固定及时、烤片不宜时间过长及浸蜡温度不宜过高等等，温度过高会破坏抗原决定簇，产生假阴性;(2)试剂最佳浓度:试剂最佳浓度的确定受到固定方法、时间、组织处理过程的影响;最合适的稀释度是以得到最大强度的特异性染色和最弱的背景染色为标准;(3)为了保证免疫染色的质量，主要的步骤便是对照的设立，包括阳性对照、阴性对照和空白对照，须同时设立，以达到最佳的质控效果。

对已知存在抗原的阳性对照组，如含抗原的正常组织，最好是使用含少量抗原的瘤组织作为对照，使与所检测切片中的抗原水平趋于一致，而且后者可能含有表达抗原的非瘤组织，可以作为内部对照;阴性对照应用缺乏抗原的组织切片;空白对照可以采用非免疫血清，缓冲液取代初级抗原的位置。

总之，只有阳性对照染色阳性，阴性对照组织阴性，这样的免疫组化染色结果才有说服力;(4)抗原修复的一致性:抗原热修复工具选用微波炉或高压锅，修复温度及修复时间要尽量一致，修复温度至少要达到100℃，且修复总时间不低于15min;修复液的PH值在7.0~8.0之间，如Tris(pH7~8)、EDTA(pH8.0)修复液;(5)熟悉抗体的阳性定位:每种抗体均有阳性定位，染色之前应确定该抗体阳性位置，是胞浆、胞膜或胞核，如ER、PR、P53、Ki-67定位于细胞核，若胞质或胞膜阳性也为假阳性;CD4、CD5、CD8、CD20、CD30、C-erb B-2等定位于细胞膜，若胞质弥漫阳性或细胞核阳性则为假阳性;还有的抗体可表现为二种阳性反应类型。

免疫组化实验流程审批免疫组化实验是一种常用的生物学和医学研究技术，它对于疾病的诊断、治疗和研究具有重要意义。

为了确保实验的准确性、可靠性和安全性，需要建立一套严格的实验流程审批制度。

一、免疫组化实验的基本原理和应用免疫组化实验基于抗原与抗体特异性结合的原理。

通过将特定的抗体与组织或细胞中的抗原结合，再利用显色反应或荧光标记等方法，使抗原所在的位置得以显示。

这一技术广泛应用于肿瘤诊断、病理学研究、神经科学、免疫学等领域。

在肿瘤诊断中，免疫组化可以帮助确定肿瘤的类型、来源、分化程度以及预测肿瘤的预后和对治疗的反应。

例如，乳腺癌中雌激素受体、孕激素受体和HER2 的检测，对于治疗方案的选择具有重要指导意义。

二、实验前的准备工作1、实验人员资质从事免疫组化实验的人员应具备相关的专业知识和技能，经过系统的培训，并熟悉实验室的安全操作规范。

实验人员需要了解免疫组化的基本原理、实验步骤、常见问题及解决方法。

2、实验材料和试剂选择合适的组织样本、抗体、显色剂等实验材料和试剂至关重要。

组织样本应保证新鲜、固定良好，并经过正确的处理和保存。

抗体的选择应根据实验目的和样本类型，确保其特异性和亲和力。

显色剂应具有良好的稳定性和显色效果。

3、实验设备和仪器准备齐全且性能良好的实验设备和仪器，如切片机、孵育箱、显微镜等。

设备应定期进行维护和校准，以保证实验结果的准确性和可靠性。

三、免疫组化实验流程1、组织样本处理（1）取材：从生物体中获取组织样本时，应遵循无菌操作原则，避免样本受到污染。

（2）固定：将组织样本迅速放入适当的固定液中，如福尔马林，以保持组织的形态和结构。

（3）脱水：通过梯度酒精脱水，去除组织中的水分。

（4）包埋：将脱水后的组织样本包埋在石蜡中，便于切片。

2、切片制作使用切片机将包埋好的组织切成薄切片，通常厚度为 4-6 微米。

切片应平整、完整，无褶皱和裂痕。

3、脱蜡和水化将切片放入二甲苯中脱蜡，然后依次经过梯度酒精进行水化。

荧光原位杂交与免疫组化联合检测乳腺癌组织HER-2价值评价摘要目的分析荧光原位杂交（FISH）与免疫组化（IHC）联合使用对乳腺癌患者HER-2检测的效果。

方法选取我院收治的乳腺癌患者96例作为实验组，另选取96名健康志愿者作为对照组，对比两种检测方法检测效果。

结果 FISH与IHC检出率差异较大，其中FISH能够阳性检出率远高于IHC，而IHC阴性检出率远高于FISH，两种方法合用检出正确率为100%。

结论 FISH、IHC联合使用能够有效避免假阴性和假阳性的发生，具有更高的检出准确率。

关键词乳腺癌；荧光原位杂交；免疫组化HER-2乳腺癌是目前影响女性生命健康的最常见的肿瘤，据世界卫生组织统计，乳腺癌的发病已经不仅局限于女性，在男性身上也发现了乳腺癌，对乳腺癌的研究刻不容缓，目前尚没有一种机制能够完全证明乳腺癌的发生、发展，但HER-2的异常是乳腺癌患者的共同特征，因此，把HER-2作为检出乳腺癌的重要指标[1]。

在本次研究中重点分析FISH、IHC联合使用对乳腺癌患者HER-2检测的效果，现将试验流程以及结果分析如下：1基本资料和分析方法1.1基本资料选取我院收治的乳腺癌患者96例作为实验组，另选取96名健康志愿者作为对照组，其入选标准是：年龄在23～65岁；均为首次接受治疗，具有较高的治疗依从性；除乳腺癌以外没有其他肿瘤疾病或心血管、心肝肾功能异常。

两组患者乳腺癌症状、发病位置等对研究没有影响。

1.2分析方法两组研究对象在入院以后按照分组进行试验，两组研究对象分别接受FISH、IHC两种方法检查，均采用乳腺石蜡切片标本检查，保证检测方法、时间等一致性，确保没有无关变量。

制作石蜡标本：取患者标本，浸泡福尔马林24h，然后采用酒精由低浓度到高浓度进行梯度脱水，然后浸蜡，包埋后切成石蜡片[2]。

FISH检测方法：取切片保温24h，采用高浓度大低浓度脱水，然后使用酸性亚硫酸钠处理、SSC洗片2次，蛋白酶孵育，再次洗片、脱水，然后风干后加入探针封片，保温24h杂交，再次洗片、乙醇（70%）浸泡，风干后滴加染色剂观察；IHC检测方法：取切片采用高浓度大低浓度脱水，使用PBS冲洗2次、高温修复、再次冲洗2次，加入过氧化物酶阻滞液中孵育，再次冲洗2次，滴加HER-2一抗孵育1h后再次冲洗2次，加入链霉菌抗生素-过氧化酶溶液孵育10min后再次冲洗2次，然后经过染色、二次复染、冲洗后封片观察[3-4]。

分析绝经前子宫内膜癌病理免疫组化特征绝经前子宫内膜癌（endometrial carcinoma）是一种发生在绝经前女性子宫内膜上皮的恶性肿瘤，并具有异质性和不同分子亚型。

病理免疫组化技术可用于鉴别和分类子宫内膜癌，以指导治疗和评估预后。

本文将分析绝经前子宫内膜癌的病理免疫组化特征。

病理免疫组化技术主要用于检测肿瘤标记物在组织切片中的表达情况，从而帮助确定细胞类型、分化程度、分子亚型和预后。

在绝经前子宫内膜癌中，常用的免疫组化标记物包括ER、PR、Ki-67、p53、HER2和p16等。

1. 雌激素受体（ER）和孕酮受体（PR）：ER和PR是子宫内膜癌中常见的核受体。

它们的阳性表达与较好的预后和对激素治疗的敏感性相关。

绝经前子宫内膜癌中ER和PR的阳性表达率较高。

2. Ki-67：Ki-67 是一种核抗原，可作为细胞增殖标记物。

高 Ki-67的表达与肿瘤的恶性程度相关，预后较差。

Ki-67的高表达与绝经前子宫内膜癌的低分化和侵袭性生长相关。

3. p53：p53 是一种肿瘤抑制基因，具有重要的调节细胞生长和凋亡的功能。

p53基因突变与细胞凋亡途径异常和细胞增殖失控相关。

绝经前子宫内膜癌中p53突变常见，与较差的预后和复发率增加相关。

4. HER2：HER2是一种细胞膜受体酪氨酸激酶，参与细胞生长信号传导。

HER2的过表达与子宫内膜癌的侵袭性和预后不良相关。

5. p16：p16 是一个细胞增殖和凋亡的抑制因子。

p16的阳性表达与动态内膜粘附的改变和不良预后相关。

综合上述免疫组化标记物的表达情况，可以对绝经前子宫内膜癌进行分类和分级。

细胞表达ER和PR、低 Ki-67、p53和HER2的阴性表达、以及p16的阴性表达，可能与良性或低度恶性的内膜癌相关。

相反，细胞表达ER和PR的减少、高 Ki-67、p53和HER2表达的增加以及p16阳性表达，可能与高度恶性的内膜癌相关。

需要注意的是，病理免疫组化技术并非诊断绝经前子宫内膜癌的唯一依据，还需结合临床表现、病理形态学特征和其他辅助检查结果进行综合分析。