常见实验动物的捉持和给药方法

常用动物实验操作指南一、实验动物的抓取与固定。

（一）小鼠。

1. 抓取。

- 用右手拇指和食指抓住小鼠尾巴中部，将小鼠提起，放在鼠笼盖上或其他粗糙表面。

- 当小鼠试图抓住粗糙表面时，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠双耳及颈部皮肤，无名指、小指和手掌心夹住小鼠背部皮肤及尾部，将小鼠固定成头部向上的直立位。

- 原因：抓住尾巴提起小鼠是为了能够将其从饲养环境中移出，而后续的固定方式可以限制小鼠的活动，避免被咬伤，同时方便进行各种操作，如注射等。

这种固定方式能够稳定地控制小鼠的身体，保证操作的准确性。

2. 固定。

- 如需进行尾静脉注射等操作，可将小鼠放入专门的小鼠固定器中，固定器可调节大小以适应不同体型的小鼠，固定器上有开口以便露出尾巴等部位进行操作。

- 对于一些简单操作如灌胃，也可以由一人用上述抓取方法固定小鼠，另一人进行操作。

（二）大鼠。

1. 抓取。

- 先用右手抓住大鼠尾巴中部，将大鼠提起，放在较粗糙的平面上。

- 然后用左手戴防护手套（大鼠体型较大且可能会用力挣扎和咬伤实验者），从大鼠背部抓住其肩部和颈部皮肤，将大鼠固定。

- 原因：大鼠力量较大，戴手套是为了保护实验者。

先抓尾巴提起是为了便于后续的抓取固定操作，从背部抓住肩部和颈部皮肤可以有效限制大鼠的活动，使其头部和身体得到控制，便于进行实验操作。

2. 固定。

- 对于需要长时间操作的情况，可将大鼠放入大鼠固定架中，固定架可以固定大鼠的四肢，使大鼠呈仰卧或俯卧位，根据实验需求调整。

- 在进行一些短期操作如皮下注射时，可由实验者用上述抓取方法固定大鼠，助手协助进行操作。

二、实验动物的给药操作。

（一）口服给药。

1. 小鼠灌胃。

- 准备合适的灌胃针（一般为1 - 2ml注射器连接特制的灌胃针头）。

- 将小鼠固定如前所述，使小鼠头部向上。

- 灌胃针从小鼠嘴角插入口腔，沿上腭后壁轻轻推进食管，插入深度约为3 - 4cm（根据小鼠大小调整）。

- 缓慢推动注射器活塞，将药物注入食管，然后缓慢拔出灌胃针。

动物实验的基本操作（动物的捉拿与给药方法）小鼠捉拿法有二种：一种是用右手提起尾部，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后上方轻拉，此时小鼠前肢紧紧抓住粗糙面，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤并用小指和手掌尺侧夹持其尾根部固定手中；另一种抓法是只用左手，先用拇指和食指抓住小鼠尾部，再用手掌尺侧及小指夹住尾根，然后用拇指及食指捏住其颈部皮肤。

大鼠捉拿时，右手抓住鼠尾基部，将大鼠放在粗糙面上，左手戴上防护手套或用厚布盖住大鼠，抓住其整个身体并固定其头部以防咬伤。

捉拿时勿用力过猛，勿捏其颈部，以免引起窒息。

家兔捉拿时一手抓住其颈背部皮肤。

轻轻将兔提起，另一手托住其臀部。

猫捉拿时先轻声呼唤，再慢慢将手伸入猫笼中，轻抚猫的头、颈及背部，抓住其颈背部皮肤并以另一手抓其背部。

如遇凶暴的猫，不让接触或捉拿时，可用套网捉拿，必要时可用固定袋将猫固定。

实验动物的给药方法1．灌胃法小鼠灌胃法将小鼠放在粗糙面上，左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤，无名指或小指将尾部紧压在手掌上，使小鼠腹部朝上，注意使口腔和食管成一直线。

右手持灌胃针管从小鼠口角插入口腔内，经舌面紧贴上腭进入食管，进针2~3cm 后，如此时动物安静并无呼吸异常，即可将药注入。

如遇阻力或动物憋气时则应抽出重插，不能强插以免刺破食管或误入气管使动物死亡。

兔灌胃法用兔固定箱，可一人操作。

右手将开口器固定于兔口中，舌压在开口器下面，左手将导管经开口器中央小孔插入。

如无兔固定箱，则需两人协作进行，一人就坐，腿上垫好围裙，将兔的躯体夹于两腿间，左手紧握双耳，固定其前身，右手抓住其两前肢。

另一人将开口器横放于兔上下颌之间，固定在舌面上,将导管自开口器中央的小孔插入，慢慢沿兔口腔上腭壁插入食道约15～18cm。

插管完毕将胃管的外口端放入水杯中，切忌伸入水过深。

如有气泡从胃管逸出，说明不在食道内而是在气管内，应拔出来重插。

如无气泡逸出，则可将药推入，并以少量清水冲洗导尿管保证管内药液全部进入胃内。

实验1 实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1．蛙和蟾蜍通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢，右手将下肢拉直，左手用无名指及小指夹住（图1）。

图1 蟾蜍捉持法2．小鼠（1）双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。

迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图2）。

图2 小鼠双手捉持法（2）单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤（图3）。

图3 小鼠单手捉持法3. 大鼠大鼠容易激怒咬人，捉持时应戴防护手套。

先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与掌部握住背部和腹部。

注意不要捏其颈部，以防用力过大、过久，窒息死亡。

4．家兔一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，使兔呈蹲坐姿势（图4）。

切不可用手握持双耳提起兔子。

图4 家兔捉持法5．豚鼠豚鼠性情温和，不咬人，用手轻轻握住身体即可抓起。

6. 猫应戴好防护手套。

轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻抚猫头、颈和背部，一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住腰背部。

性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持，操作中应防其利爪和牙齿伤人。

7. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套，用绳带固定于耳后颈部；凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部，然后套上嘴套。

狗嘴也可用绳带固定，操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结，再绕到颈后部打结，以防绳带滑落。

狗麻醉后四肢固定于手术台上，取下嘴套或绳带，将一金属棒经两侧嘴角，穿过口腔压于舌上，再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴，并固定于手术台上。

应将狗舌拉出口腔，以防窒息。

二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。

适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。

口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。

若为保证剂量准确，可应用灌胃法。

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。

2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。

2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

常见实验动物的捉持和给药⽅法常见实验动物的捉持和给药⽅法⼀、⼩⽩⿏的捉持和给药⽅法1、捉持⽅法右⼿提起⿏尾，放在粗糙物（如⿏笼）上⾯，轻向后拉其尾；此时⼩⿏前肢抓住粗糙⾯不动；⽤左⼿拇指和⾷指捏住双⽿及头部⽪肤，⽆名指、⼩指和掌⼼夹其背部⽪肤及尾部，便可将⼩⿏完全固定。

腾出右⼿，可以给药。

此外，也可单⼿捉持，难度较⼤，但速度快。

先⽤拇指和⾷指抓住⼩⿏尾巴，⽤⼩指、⽆名指和⼿掌压住尾根部，再⽤腾出的拇指、⾷指及中指抓住⿏双⽿及头部⽪肤⽽固定。

2、给药⽅法ａ.灌胃法⼩⿏固定后，使腹部朝上，颈部拉直，右⼿⽤带灌胃针头的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从⼝交插⼊⼝腔，再从⾆背进沿上腭进⼊⾷道。

若遇阻⼒，应退出后再插，切不可⽤⼒过猛，防⽌损伤或误⼊⽓管导致动物死亡。

灌胃量⼀般不超过0.25ml/10g。

ｂ.腹腔注射法抓⿏⽅法同上，右⼿持注射器（5～6号针头），从耻⾻联合上⼀侧向头端以30度⾓刺⼊腹腔（应避开膀胱）。

可先刺⼊⽪下2～3mm，再刺⼊腹腔，以防药液外漏。

针头刺⼊部位不宜太⾼太深，以免刺破内脏。

注射量⼀般为0.1～0.25ml/10g。

ｃ.⽪下注射法⼀般两⼈合作。

⼀⼈左⼿抓住⼩⿏头部⽪肤，右⼿拉住⿏尾；另⼀⼈左⼿提⾼背部⽪肤，右⼿持住注射器（针头号同上），将针头刺⼊提起的⽪下。

若⼀⼈操作，左⼿⼩指和⼿掌夹住⿏尾，拇指和⾷指提起背部⽪肤，右⼿持注射器给药。

⼀般⽤量为0.05～0.25ml/10g。

ｄ.肌⾁注射法两⼈合作时，⼀⼈抓⿏⽅法同上，另⼀⼈左⼿拉直⼀侧后肢，右⼿持注射器，注射部位多选后腿上部外侧（针头号同上）。

如⼀⼈操作，抓⿏⽅法类似腹腔注射，只是药液注射在肌⾁内。

每腿的注射量不宜超过0.1ml。

ｅ.尾静脉注射法将⼩⿏置于待置的固定筒内，使⿏尾外露，并⽤酒精或⼆甲苯棉球涂擦，或插⼊40℃～50℃温⽔中浸泡⽚刻，使尾部⾎管扩张。

左⼿拉尾，选择扩张最明显的⾎管；右⼿持注射器（4～5号针头），将针头刺⼊⾎管，缓慢给药。

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

实验动物常用操作方法1.小鼠的抓取与固定抓取和固定是动物实验操作中一项最基本的技术，所有的动物实验都要涉及到。

由于动物害怕陌生人接触其身体，对于非条件性的各种剌激会进行防御性反抗。

因此，在抓取、固定前应对动物的生活习性有所了解，根据其生活习性采用相应的抓取固定方法。

一般在抓取固定动物过程中首先慢慢友好地接近动物，并注意观察其反应，让动物有一个适应过程。

抓取时的动作力求准确、迅速、熟练，争取在动物感到不安之前抓取到动物。

（1）抓取方法习惯用右手者，首先用右手从笼盒内将小鼠尾中部或基部抓住(不可抓尾尖)，并提起或放在左手上或笼盖表面。

如下图。

也可用尖端带有橡皮的镊子夹住小鼠的尾巴。

抓取时需注意如果过分用力，会使动物窒息或颈椎脱臼，力过小，动物头部能反转来咬伤实验者的手。

因此实验者必须反复练习，熟练掌握。

（2）固定方法①徒手固定：右手抓取小鼠尾，将小鼠放在笼盖(或表面粗糙的物体)上，轻轻向后拉鼠尾。

然后在小鼠向前挣脱时，用左手(熟练者也可用同一只手)拇指和食指抓住两耳和颈部皮肤，无名指、小指和手掌心夹住背部皮肤和尾部，并调整好动物在手中的姿势。

习惯用左手者，操作时可调整左右手。

这类抓取方法多用于灌胃以及肌肉、腹腔和皮下注射等实验。

②固定板固定：小鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。

此方法常用作心脏采血、解剖、外科手术等实验。

③固定架固定：让小鼠直接钻入固定架里，封好固定架的封口，露出尾巴。

此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。

④简易固定：进行尾静脉注射或抽血时，如果没有这些固定装置，也可采用一种简易的办法。

即倒放一个烧杯或其他容器，把小鼠扣在里面，只露出尾巴。

然后酒精擦拭，暴露血管，注射或采样。

这种烧杯或容器的大小和重量要适当，既能够压住尾部不让其活动，同时起到压迫血管的作用。

2.小鼠的麻醉方法实验动物的麻醉就是用物理的或化学的方法，使动物全身或局部暂时痛觉消失或痛觉迟饨，以利于进行实验。