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碱性磷酸酶的提取分离和比活力的测定项目名称碱性磷酸酶的提取分离和比活力的测定xinpingzhao@实验目的1. 了解酶提取纯化的基本实验技术;2. 掌握碱性磷酸酶酶活力及比活力的测定方法实验材料新鲜兔肝或兔肾主要仪器设备匀浆器,冷冻离心机,分光光度计,电子天平等.实验原理碱性磷酸酶（简称AKP）在磷酸盐代谢中起重要作用。
核酸序列分析、DNA重组技术、酶标免疫检测技术以及临床检验中都需要利用此酶。
本实验取材于兔肝，经匀浆、正丁醇抽提、硫酸胺分段盐析或者有机溶剂沉淀，获得碱性磷酸酶制品。
本实验采用对硝基苯磷酸二钠（p-NPP）为底物的方法测定酶活。
对硝基苯磷酸二钠在碱性磷酸酶的作用下被水解为游离磷酸及对硝基苯酚，对硝基苯酚在强碱性条件下显示亮黄色，在405nm处有强烈的吸收峰。
因此可以测定405nm处的吸收值A405nm来计算产物的生成量，从而计算出酶活力，然后通过各级纯化步骤产物蛋白含量的测定,从而计算出酶的比活力.第一部分: 碱性磷酸酶的提取以下操作均在4℃进行。
方案一:1. 称取新鲜兔肝2g，剪碎后，置于玻璃匀浆器中，按1:2（m/v）加入预冷的0.05mol/LTris-HCl （pH9.0）缓冲液，匀浆后4℃抽提20 min；4℃，8000r/min离心10min；取上清；此为A 液。
另取1支试管编号为A，取0.1mLA 液，加1.9mLTris缓冲液(pH 8.8)，混匀，供测酶活性用。
2.上清液中加入1/5体积预冷正丁醇脱脂20min；8000r/min离心10min，取上清；此为B液。
吸取0.1m1B 液，置于编号为B 的试管中，加入1.9m1Tris 缓冲液(pH 8.8)，供测酶活用。
3.加入硫酸铵至35%饱和度；4℃30 min；8000r/min离心10min，弃沉淀；取上清；此为C 液。
吸取C 液0.2m1置于编号为c 的试管中，加入1.8m1Tris 缓冲液(PH 8.8)，供测酶活性用4.然后在上清液中加入硫酸铵至75%饱和度，4℃静置30 min后8000r/min离心10min，得沉淀..用0.05mol/LTris-HCl（pH9.0）缓冲液溶解沉淀；此为D 液。
碱性磷酸酶的分离纯化实验报告实验报告：碱性磷酸酶的分离纯化引言：碱性磷酸酶是一种常见的酶类，在生物化学和生物工程领域有着重要的应用价值。
分离纯化碱性磷酸酶可以有效地提高其催化活性，从而更好地满足利用需求。
本实验旨在通过分离纯化的方法获得高纯度的碱性磷酸酶。
材料与方法：材料：1. 含有碱性磷酸酶的混合酶液；2. DEAE-纤维素离子交换柱；3. 带有荧光物质的酶学百科试剂盒；4. 透析膜。
方法：1. 将50 mL含有碱性磷酸酶的混合酶液，通过DEAE-纤维素离子交换柱进行分离纯化；2. 用PBS缓冲液洗涤纤维素柱，收集洗脱液以及洗脱后的洗脱液，测定酶活力；3. 分别将洗脱后的洗脱液和洗脱液透析入PBS缓冲液中；4. 用带有荧光物质的酶学百科试剂盒测定样品的酶活力。
结果：样品中碱性磷酸酶的活性经过分离纯化后得到了提高，相对活性提高了3倍以上。
同时，样品纯度也有了显著的提高。
分析和讨论：本实验通过离子交换柱和透析膜的方法，成功地分离和纯化了碱性磷酸酶。
实验中使用的DEAE-纤维素离子交换柱是一种较为成熟且常见的方法，具有操作简单、精度高等特点。
透析膜则可以更为彻底地去除不需要的杂质，进一步提高受体的纯度。
在实验结果中，我们发现酶的相对活性得以提高，这说明经过纯化后酶的质量得到了提高，可以进行更好地应用。
但同时，这样的分离纯化也存在一定的局限性，如纯度并没有达到100%，仍存在需进一步提高的空间。
结论：本实验成功地纯化和分离了碱性磷酸酶，提高了其相对活性，获得了具有实际应用需求的高纯度酶样品。
同时，在实际应用过程中，需要根据需求进行更为严格的纯化和分离，以满足更加精细化的需求。
碱性磷酸酶的分离纯化碱性磷酸酶的分离纯化、⽐活性测定与定⼒学分析⼀、实验原理(⼀)碱性磷酸酶的分离纯化、⽐活性测定1.机械破碎法制备肝匀浆低浓度⼄酸钠：低渗破膜低浓度⼄酸镁：保护和稳定AKP2.有机溶剂沉淀法分离纯化AKP加⼊不同有机溶剂重复离⼼正丁醇：沉淀部分除AKP的蛋⽩质33%丙酮、30%⼄醇：溶解AKP50%丙酮、60%⼄醇：沉淀AKP3.⽐活性的定义＊单位重量的蛋⽩质样品中所含的酶活性单位。
＊通常⽤每毫克蛋⽩质具有的酶活性单位来表⽰。
＊⽤以鉴定酶的纯化程度，是酶提取与纯化成功与否的评价指标之⼀。
4.测定样品的⽐活性必须测定：＊每毫升样品中的酶活性单位数。
＊每毫升样品中的蛋⽩质毫克数。
5.磷酸苯⼆钠法测定碱性磷酸酶活性测定AKP 4-氨基安替⽐林＊磷酸苯⼆钠→→酚→→→→醌衍⽣物（红⾊）铁氰化钾↓根据红⾊的深浅⽤⽐⾊法测定酚的含量。
＊37℃保温15分钟产⽣1mg酚者为1个酶活性单位。
(⼆)底物浓度对AKP活性的影响K m 即为⽶⽒常数，V max为最⼤反应速度＊上式表⽰,⽶⽒常数是反应速度为最⼤值的⼀半时的底物浓度。
因此,⽶⽒常数的单位为mol/L。
当反应速度等于最⼤速度⼀半时,即V= 1/2 V max, K m = [S] ＊吸光度表⽰不同底物浓度时的酶反应速度。
以吸光度的倒数作纵坐标，以底物浓度的倒数作横坐标，按Lineweaver-Burk作图法求出Km 值。
双倒数作图法（三）PH对AKP活性的影响酶的催化活性与环境pH有密切关系，通常各种酶只在⼀定pH范围内才具有活性，酶活性最⾼时的pH，称为酶的最适pH，⾼于或低于此pH时酶的活性都逐渐降低。
不同酶的最适pH不同。
酶的最适pH不是⼀个特征性的物理常数，对于⼀个酶，其最适pH因缓冲液和底物的性质不同⽽有差异。
（四）温度对AKP活性的影响酶的催化作⽤受温度的影响很⼤，⼀⽅⾯与⼀般化学反应⼀样，提⾼温度可以增加酶促反应的速度。
通常温度每升⾼10℃，反应速度加快⼀倍左右，最后反应速度达到最⼤值。
酶工程实验内容实验一碱性磷酸酶的分离纯化一、实验目的1.掌握酶分离纯化的一般步骤及相关原理2.悉碱性磷酸酶的分离纯化的方法步骤。
二、实验原理本实验采用有机溶剂沉淀法从肝匀桨中分离纯化碱性磷酸酶简称AKP。
先用低浓度醋酸钠低渗破模作用制备肝匀浆。
醋酸镁则有保护和稳定AKP 的作用。
匀浆中加入正丁醇可使部分杂蛋白变性释出膜中酶过滤后以去除杂蛋白。
含有AKP 的滤液用冷丙酮和冷乙酸进行重复分离纯化。
根据AKP 在33的丙酮或30的乙醇中溶解而在50的丙酮或60的乙酸中不溶解的性质用冷丙酮和冷乙醇重复分离提取可从含有AKP 的滤液中获得较为纯净的碱性磷酸酶。
三、仪器、原料与试剂仪器移液管、量筒、玻璃勺浆器管、剪刀、离心机、新华定性滤纸。
原料新鲜兔肝试剂 1. 0.5mol/L 醋酸镁溶液107.25g 醋酸镁溶于蒸馏水中定容至1000 m1。
2. 0.1mol/L 醋酸钠溶液8.2g 醋酸钠溶于蒸馏水中定容至1000 m1 3. 0.0lmol/L 醋酸镁一0.01mol/L 酸酸钠溶液准确吸取20mL 0.5mol/L 醋酸镁溶液及100mL0.14mol/L 醋酸钠溶液混匀后定容至1000 m1。
4. Tris—HCl pH8.8缓冲液称取三羟甲基氨基甲烷12.1g用蒸馏水溶解后定容至1000mL即为0.1mol/LTrls 溶液。
取100m10.1mol/LTrls 溶液加蒸馏水约780mL再加0.1mol/L 醋酸镁溶液100m1混匀后用1冰醋酸调pH 为8.8用蒸馏水定容至l000m1。
5. 正丁醇、丙酮、95乙醇均为分析纯试剂。
四、实验操作分离纯化碱性磷酸酶的操作流程如下以下操作均在0-4℃进行将分离提取的碱性磷酸分装成2ml瓶冰冻干燥保存或液体保存也可但均置于-60℃低温冰箱保存。
应用时稀释5—7倍测其Km值。
实验二碱性磷酸酶的动力学鉴定——Km测定一、原理当温度、PH及酶浓度恒定的条件下酶促反应的初速度随作用物浓度S增大而增大但增大到一定限度时作用物浓度再增加则反应速度不再增加。
1、详细介绍碱性磷酸酶（SOD、木瓜凝乳蛋白酶、精氨酸激酶）的提取、分离纯化方案及采用每种技术（如：如果采用阴离子交换层析，那为什么不采用阳离子交换层析呢，要解释清楚）的原因，在分离纯化过程中怎样检测纯度？一、精氨酸激酶的介绍无脊椎动物的精氨酸激酶类似于脊椎动物中的肌酸激酶，是细胞代谢中的磷酸激酶，它将Mg2+和ATP上的磷酸基转移到精氨酸上，产生磷酸精氨酸、Mg2+和ADP，是无脊椎动物体内能量代谢的关键调控酶[1]。
它不仅在对墨鱼的能量代谢过程中具有重要作用，而且在墨鱼体内的表达量也很高。
因此，对精氨酸激酶深入研究十分必要。
本实验主要对墨鱼肌肉组织的精氨酸激酶进行分离、纯化及部分酶学性质的鉴定。
对该酶的性质进行分析结果表明,精氨酸激酶的最适作用温度为55℃,当温度高于65℃时,酶活力显著下降；pH8时酶活力较高,低浓度的精氨酸对酶活力有促进作用。
二、工艺路线三、研究内容与方案1.对虾精氨酸激酶的提取、分离取10g于-20℃贮存的新鲜对虾肌肉,高速组织捣碎机2000r·min-1匀浆5min,加入40mL预冷的缓冲液A(0.1mmol·L-1Tris-HCl,10mmo l·L-1巯基乙醇,5mmol·L-1叠氮化钠,20mmo l·L-1苯甲基磺酰氟(PMSF),pH8.0),搅拌均匀,把悬液放置于预冷的离心管中,4℃,5000×g离心20min后保存上清。
＊选择使用巯基乙醇和PMSF的原因：巯基乙醇可以防止蛋白酶在分离提取过程中的氧化、PMSF是蛋白酶抑制剂，可以防止蛋白酶水解＊注意事项该步骤完成后，要对粗酶液进行酶活力的测定2.对虾精氨酸激酶的纯化1）DEAE-纤维素柱层析装柱直接取商品DEAE cellulose DE-52装柱(2.5x40cm)装柱前，先在柱中加入一定量的层析柱平衡液（约10cm高），然后倒入凝胶，打开柱底部的出口，使其自然沉降，当柱中形成明显分界面时，放入两层大小合适的滤纸片与凝胶顶部，接上恒流泵，流速选用2.5ml/min，当柱不再进一步压缩时，保持柱顶部缓冲液1-2cm高[4]。
牦牛乳酸菌的分离与鉴定研究牦牛乳酸菌是一类生长在牦牛乳制品中的微生物，它们能够发酵乳制品并产生乳酸。
对于牦牛乳酸菌的分离与鉴定研究，是为了探索其在乳制品加工过程中的作用、发酵特性、功能以及潜在的应用价值。
本文将从牦牛乳酸菌的分离、鉴定方法和研究进展方面进行探讨。
一、牦牛乳酸菌的分离牦牛乳酸菌的分离是研究的第一步，通过分离可以获取到原始的菌株，为后续的鉴定和研究提供基础。
常用的分离方法包括表面划线法、稀释法和厌氧法等。
具体操作步骤如下：1. 表面划线法：将牦牛乳制品样品均匀涂布在适宜的固体培养基上，使用无菌的匀涂棒划线，然后在适当的温度下进行培养。
待菌落出现后，用无菌环针进行遴选，然后重新培养以确保单菌落数量。
2. 稀释法：将牦牛乳样品适当稀释，然后将稀释液均匀涂布在固体培养基上，培养后进行挑选和筛选。
3. 厌氧法：对于一些需要在厌氧条件下生长的乳酸菌，可以采用厌氧培养法进行分离。
将样品接种到含有适宜酸碱指示剂的厌氧培养基中，通过颜色变化来判断是否有乳酸菌生长。
二、牦牛乳酸菌的鉴定鉴定牦牛乳酸菌的目的是确定其分类地位和种属。
鉴定可以使用多种方法，包括形态学观察、生理生化特性分析和分子生物学方法。
具体措施如下：1. 形态学观察：观察牦牛乳酸菌的形态特征，包括菌落形态、菌体形态、气泡形成和芽孢形成等。
2. 生理生化特性分析：通过检测牦牛乳酸菌的生理生化特性，如产酸能力、气体产生、温度和pH值耐受性等。
常用的方法包括酶活性测定、糖利用能力测试和抗生素敏感性试验等。
3. 分子生物学方法：利用分子生物学方法可以更准确地鉴定牦牛乳酸菌的分类地位和种属信息。
例如，可以使用16S rRNA基因序列分析、PCR扩增和限制酶切以及序列分析等。
三、牦牛乳酸菌的研究进展近年来，对牦牛乳酸菌的研究取得了一些重要进展。
以下是几个研究方向的简要介绍：1. 发酵特性：研究人员对牦牛乳酸菌的发酵特性进行了深入研究，包括产乳酸速率、产物种类和酸度调节等方面。
牦牛肉组织蛋白酶L的分离纯化及部分特性研究牦牛肉组织蛋白酶L的分离纯化及部分特性研究摘要：牦牛作为高原特有的家畜动物，其肉品具有独特的纹理和口感。
为了进一步了解牦牛肉中的蛋白质降解过程以及相关酶的特性，本研究对牦牛肉组织中的蛋白酶L进行了分离纯化，并对其部分特性进行了研究。
研究结果表明，经过离心、超滤、离子交换层析和凝胶过滤四步分离纯化，最终得到了纯度较高的牦牛肉组织蛋白酶L。
在pH 6.0和温度37℃的条件下，酶活最高，随着温度升高和pH值偏离最适条件，酶活均呈下降趋势。
进一步研究发现，牦牛肉组织蛋白酶L对某些蛋白质底物具有较高的选择性，比如对BAPNA的催化作用明显高于AAPFNA和AAPLNA。
关键词：牦牛肉，蛋白酶L，分离纯化，特性研究1. 引言作为世界三大高原动物之一，牦牛适应了生活在高海拔、低氧环境下的生活。
由于其饲养方式独特，其肉质与其他畜禽有很大差别。
在牦牛肉中，蛋白质是主要的营养成分之一，而蛋白质降解是牦牛肉在加工和储存过程中不可避免的过程。
蛋白酶是在生物体内分解、合成蛋白质的重要酶类，其中蛋白酶L在肉类蛋白质降解中起着重要作用。
本研究的目的是分离纯化牦牛肉组织中的蛋白酶L，并对其部分特性进行研究，以进一步了解牦牛肉中蛋白质降解的机制。
2. 材料与方法2.1 样品准备收集牦牛肉样品，去除筋膜和脂肪，并切成小块。
将肉样加入PBS缓冲液浸泡，并用高压均质器均质打浆，离心后收集上清液。
2.2 牦牛肉组织蛋白酶L的分离纯化上清液经过超滤浓缩，溶液中添加离子交换剂，并进行离子交换层析，以去除其他蛋白质和杂质。
分离后的样品经过凝胶过滤层析，最终得到纯度较高的牦牛肉组织蛋白酶L。
2.3 酶活测定采用牛血清白蛋白降解活性（BAPNA）方法研究牦牛肉组织蛋白酶L的酶活性。
将酶样与底物BAPNA和缓冲液混合，在37°C恒温槽中进行反应。
通过测定反应液吸光度的变化，计算出酶活。
3. 结果与讨论3.1 牦牛肉组织蛋白酶L的分离纯化经过超滤、离子交换层析和凝胶过滤层析的操作，最终得到了纯度较高的牦牛肉组织蛋白酶L。
实验名称碱性磷酸酶的分离纯化、比活性测定与动力学分析实验日期2011年10月25号实验地点生化实验室合作者指导老师总分教师签名批改日期碱性磷酸酶（AKP或ALP）是一种底物特异性较低，在碱性条件下能水解多重磷酸单脂化合物的酶，需要镁和锰离子为激活剂。
AKP具有磷酸基团转移活性，能将底物中的磷酸基团转移到另一个含有羟基的接受体上，如磷酸基团的接受体是水，则其作用就是水解。
AKP最适ＰＨ范围为８.６－１０，动物中AKP主要存在于小肠粘膜、肾、骨骼、肝脏和胎盘等组织的细胞膜上。
血清AKP主要来自肝，小部分来自骨骼。
AKP可从组织中分离纯化，也可以采用基因工程表达的方式获得：将碱性磷酸酶基因克隆到重组载体，转入宿主菌中进行重组表达，并从表达菌提取，并进行酶动力学分析。
一实验原理1、碱性磷酸酶的分离纯化AKP分离纯化的方法与一般蛋白质的分离纯化方法相似，常用中性盐盐析法、电泳法、色谱法、有机溶剂沉淀法等方法分离纯化。
有时需要多种方法配合使用，才能得到高纯度的酶蛋白。
本实验采用有机溶剂沉淀法从兔肝匀浆液中提取分离AKP。
正丁醇能使部分杂蛋白变性，过滤除去杂蛋白即为含有AKP的滤液，AKP能溶于终浓度为33%的丙酮或30%的乙醇中，而不溶于终浓度为50%的丙酮或60%的乙醇中，通过离心即可得到初步纯化的AKP。
2、碱性磷酸酶的比活性测定根据国际酶学委员会规定，酶的比活性用每毫克蛋白质具有的酶活性来表示，单位（U/mg••pr）来表示。
因此，测定样品的比活性必须测定：a每毫升样品中的蛋白质毫克数；b每毫升样品中的酶活性单位数。
酶的纯浓度越高酶的比活性也就越高。
本实验以磷酸苯二钠为底物，由碱性磷酸酶催化水解，生成游离酚和磷酸盐。
酚在碱性条件下与4-氨基安替比作用，经铁氰化钾氧化，生成红色的醌衍生物，颜色深浅和酚的含量成正比。
于510nm 处比色，即可求出反应过程中产生的酚含量，而碱性磷酸酶的活性单位可定义为：在37摄氏度保温15min每产生1mg的酚为一个酶活性单位。
碱性磷酸酶的分离纯化与性质研究生物技术1101班其曼古丽·麦麦提2摘要：经过匀浆，正丁醇处理，凝胶过滤等步骤，从猪肝中部分纯化了碱性磷酸酶。
以磷酸苯二钠为底物,测得该酶的最适pH为10，最适温度为37℃,Km=1。
6565。
KH2PO4对酶的活性有不同程度的抑制作用。
关键词：猪肝，碱性磷酸酶，分离纯化，性质碱性磷酸酶(Alkalinephosphatase，简称AKP)是一种底物专一性较低的磷酸单酯酶,广泛存在于人体、动物、植物与微生物中，在生物体内直接参与了磷酸基团的转移和代谢过程【1】。
它在脊椎动物的骨化过程中发挥了重要作用【1】。
海洋中的甲壳动物锯缘青蟹体内的碱性磷酸酶是其赖以生长、生存的重要酶类之一，它对海水中钙质的吸收、磷酸钙的形成、甲壳素的形成与分泌都具有重要作用【2】。
提纯的碱性磷酸酶可用于核酸研究、毒物学研究及医学研究【3】。
由于有益于皮肤细胞的再生和新陈代谢,该酶还可添加到药用化妆品中【4】。
为了满足生产实践上的需要，仅国内以猪肝为材料来分离纯化碱性磷酸酶并对其性质进行分析的研究工作即已有若干.1。
1材料与方法1.1.1实验材料新鲜的猪肝脏.1。
1。
2试验仪器玻璃匀浆器，离心机,加样抢,恒温水浴锅。
1。
1.3试验试剂0。
5mol/L醋酸镁溶液；2,0.1mol/L醋酸钠;3，0。
01mol醋酸镁—0。
01mol/L 醋酸钠溶液；4，Tris—HClPH8。
8缓冲液；5，正丁醇；6，丙醇;7，95％乙醇；8,0.04mol/L作用物底物；9，0.1mol/L碳酸盐缓冲液（PH10。
0）;10，碱性磷酸酶液;11，0.5mol/LNaOH溶液；12，0。
3%-氨基安替比林；13,0.5mol/L铁氰化钾;14,基质液，15,0.2m甘氨酸;16，0。
2NaOH；1。
1。
4试剂配制0。
5mol/L醋酸镁溶液：107.25g醋酸镁溶于蒸馏水中,定容至1000ml。
0.1mol 醋酸钠溶液：8.2g醋酸钠溶于蒸馏水中，定容至1000ml。
牦牛乳碱性磷酸酯酶的分离、纯化与部分性质测定*张良1，徐志浩1，毛海岩2，吴达2，种惠君2，邵宝平1，王建林11．兰州大学生命科学学院，兰州(730000)2．甘肃出入境检疫检验局，兰州(730000）E-mail：jlwang@摘要：从青海牦牛牛乳中提取和纯化碱性磷酸酯酶（ALP），并对其性质进行测定。
纯奶经正丁醇处理得粗酶液；粗酶液依次经盐析、Sephadex G-25层析柱、DEAE-Cellulose 52离子交换层析柱和Sephadex G-200层析柱纯化制得样品。
以对硝基酚磷酸酯(p-NPP)为底物测定该酶的性质，其最适温度为41.5℃，最适pH值为10.0，以双倒数法作图，测得该酶米氏反应常数K m=7.39mmol/L。
关键词：碱性磷酸酯酶、牦牛、分离和纯化中图分类号：Q9551．引言碱性磷酸酯酶（Alkaline phosphatase, ALP）是乳中普遍存在的一种酶，是乳细胞代谢的产物，缔合在乳脂球膜上，该酶热稳定性高，在巴氏杀菌条件下，62.8℃，30min或71.7℃，5s，可完全灭活，届时乳中其他无芽孢致病微生物也全部杀死[1]。
因此，其活性的测定被普遍用来作为检测巴氏杀菌效果是否完全和是否再被微生物污染常见方法[2, 3]。
据Hammer和Olson报道，经完全巴氏杀菌后的牛奶，如果检测出ALP活性，这是微生物产生热稳定性ALP的干扰[4]；Knight和Fryer，对此做了进一步研究，发现在实验室条件下重新进行完全巴氏杀菌后的所有样品均能检测出ALP活性[5]。
常规检测ALP活性的方法，大多采用磷酸苯酯为底物，以生成的苯酚作为测定的依据。
但是以测定苯酚浓度为依据，存在着诸多干扰，如人为添加杀虫剂，如残杀威和西维因[6]，或者抗生素，如青霉素和土霉素[7]，可引起假阳性干扰。
如添加磷胺[6]和链霉素红霉素[7]，可引起假阴性干扰。
牦牛是我国西部特有种，其乳制品干酪素是甘肃省以及西北地区重要、特色的出口贸易产品。
根据我国国家标准（GB 5424-85，GB 10797-89），对干酪素的产品要求未提及碱性磷酸酯酶活性。
欧盟是干酪素主要出口地区之一，欧盟委员会2003年发布了EC1774/2002 号非食用动物产品法规，在证书方面却要求阐明磷酸酯酶为阴性[8]。
目前国际上对乳制品中ALP活性的测定标准和方法很少见报道，据加拿大官方检测方法，仍采用分光光度法测定，存在着诸多干扰[9]。
目前，对牦牛乳中ALP的研究，未见报道。
对牦牛乳源干酪素中ALP 活性检测也未有相关标准。
因此，亟待制定我国自己的与国际标准相符合的检测标准。
本研究就我国青海牦牛牛乳中的碱性磷酸酯酶进行了分离和纯化，并对其性质进行了测定。
2．实验原料与方法2.1 原料与试剂新鲜的青海牦牛牛乳，葡聚糖G-25凝胶，葡聚糖G-200凝胶，DEAE-Cellulose 52离子交换树脂。
2.2 实验方法*本课题得到国家质检总局科技计划项目（2006IK025）的资助。
2.2.1 粗酶液的制备将新鲜牦牛乳冷却至4℃，取1L预冷的牛乳，不断搅拌条件下，缓慢加入预冷的等体积正丁醇，搅拌均匀，2,500g 4℃下离心30min，取下层水相，为粗酶液。
2.2.2 硫酸铵分级沉淀取800ml粗酶液，冰浴下逐渐加入研碎的冷硫酸铵，不断搅拌，防止局部浓度过大，使其饱和度达到30%，0℃放置30min。
4,000g离心5min，取上清，继续加入研碎的冷硫酸铵，使其最终饱和度达到60%，0℃放置30min，0℃下4,000g离心5min，弃上清。
用0.2M pH 7.0的PBS溶解沉淀。
2.2.3 葡聚糖G-25凝胶过滤脱盐将溶解后酶样品用考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度[10]，蛋白浓度<70mg/ml情况下，过Sephadex G-25层析柱进行脱盐，用0.2M pH 7.0的PBS平衡和洗脱。
2.2.4 DEAE-Cellulose 52离子交换层析将G-25凝胶过滤后酶样品，4℃下用0.005M pH 6.0的PBS透析24小时后，过DEAE-Cellulose 52离子交换层析柱，分别用含0、0.05、0.15、0.25、0.35、0.45、0.55、0.65、0.75、0.85、0.95M NaCl的0.005M pH 6.0的PBS洗脱。
合并0.15M NaCl洗脱液，此处为洗脱峰。
2.2.5 酶液的浓缩将收集液测量体积，缓慢搅拌下加入10倍体积的0℃冷丙酮，低温放置4h。
7,000g离心30min。
沉淀用0.01M pH7.2的PBS溶解，测定蛋白浓度，控制其浓度50mg/ml左右，已备下步使用。
2.2.6 葡聚糖G-200凝胶过滤将酶样品过Sephadex G-200层析柱过滤，用0.01M pH7.2的PBS缓冲液洗脱。
2.2.7 磷酸酯酶活性测定蛋白含量测定用考马斯亮蓝法[10]。
活性的测定用对硝基酚磷酸酯法[11]（p-NPP）：以4mmol/L对硝基酚磷酸酯为底物，1min催化生成1nmol硝基酚的酶量为一个酶活力单位(1u=1nmol/min)。
3．实验结果与分析3.1 分离纯化效果在乳中，ALP是缔合在乳脂球膜上的，制备粗酶液时，必须将其从膜上释放出来。
据报道，含50%体积分数正丁醇的乳液，其膜上ALP释放比率最高,游离的酶活性最大[12]。
因此，制备粗酶液时，采用等体积的冷正丁醇进行处理。
表1 牦牛乳中碱性磷酸酯酶纯化效果Tab.1 Purification of alkaline phosphatase in yak milk纯化过程酶液总体积(ml) 总蛋白(mg)总活性(u) 比活(u/mg)收率(100%) 纯化倍数 粗酶液800 18613.36 2671 0.1435 100 1 葡聚糖G-25脱盐86 2525.46 1026 0.4060 48.4 2.83 DEAE-Cellulose 离子交换层析 19 542.73 370.7 0.6831 13.9 4.76粗酶液经硫酸铵分级沉淀，葡聚糖G-25脱盐和DEAE-Cellulose 52离子交换层析步骤后，其纯化倍数为4.76倍，收率13.9%（表1）。
3.1.1 硫酸铵分级沉淀效果各取粗酶液10ml ，0℃分别加入硫酸铵达到硫酸铵饱和浓度10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%，0℃下放置30min ，4,000g 离心测上清酶活度，以原活度为100%，为了去除杂蛋白并提高收率，根据图1的结果，取硫酸铵30%相对饱和浓度时的上清。
然后再继续添加硫酸铵，至饱和浓度达60%，取此时沉淀，溶解后进行脱盐。
3.1.2 DEAE-Cellulose 52离子交换层析洗脱效果分别用含0、0.05、0.15、0.25、0.35、0.45、0.55、0.65、0.75、0.85、0.95M NaCl 的0.005M pH 6.0的PBS 洗脱，合并各浓度洗脱液，测酶活性，得0.15M NaCl 处的洗脱液相对活性最高（图2）。
3.1.3 葡聚糖G-200凝胶过滤经葡聚糖G-200凝胶过滤后，收集洗脱液分析酶活力仅有一个峰值，收集该峰值处洗脱液，经浓缩后，其浓度为91μg/ml3.2 碱性磷酸酯酶性质分析3.2.1 酶最适反应pH 值图3所示为pH 值对酶活性的影响。
在pH 值3-12之间，取pH=3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、图1 硫酸铵盐效果 Fig.1 Effect on salted out of ammonium sulfate 图 2 DEAE-Cellulose 离子交换层析分离效果 Fig.2 Isolation of phosphatase on DEAE-cellulose ion exchange column8.0、9.0、9.5、10.0、10.5、11.0、12.0，在37.5℃条件下测定酶活力。
从图上可以看出，在pH 3-6之间，碱性磷酸酯酶几乎没有活性。
当反应缓冲液pH 大于6后，酶活性逐渐升高，当pH=10.0时，酶活性最高。
当缓冲溶液pH 值大于10.0时，其活性又逐渐降低，且在pH 10-12间活性变化剧烈。
3.2.2 酶最适反应温度在pH=10.0，温度T=15℃、20℃、25℃、30℃、35℃、36℃、37℃、38℃、39℃、40℃、40.5℃、41℃、41.5℃、42℃、42.5℃、43℃、44℃、45℃条件下，测定酶活力，得温度T=41.5℃时，酶活力最大，以此点酶活力为100%相对活性（图4），从图中可知，该酶的在温度为41.5℃，有最大酶活性。
但是，由图4可以看出，在温度40-45℃内，酶活性变化较剧烈，与经典酶活力-温度动力学曲线有差异，这与温度稍高，酶液预热时间（5min ）长，蛋白质发生变性有关，也说明该酶的热稳定性不是很高。
所以，后续测该酶活性时，均选择以温度37.5℃为反映条件，与41.5℃条件下相比，此时仍有约82%的相对活性。
3.2.3 酶的米氏反应常数Ｋｍ值在pH=10.0 温度37.5℃下，以不同浓度底物浓度测定酶活力，用Lineweaver-Burk 法作图计算出牦牛乳中碱性磷酸酯酶的K m =7.39mmol/L 。
与长毛对虾磷酸酯酶[13]的K m =0.08mmol/L ，南方磷酸酯酶[14]的K m =1.72mmol ，小鼠肝脏碱性磷酸酯酶[15]K m =1.0mmol/L 相比，本实验所纯化牦牛乳中ALP 稍高，说明其对底物p-NPP 的亲和力稍低。
图3 pH 值对酶活性的影响 Fig.3 Effect of pH on the ALP activity 图4 温度对酶活性的影响 Fig.4 Effect of temperature on the ALP activity4．结论据普遍报道，该酶活性受阳离子的影响，Mg 2+具有较大的激活作用[11,15]。
然而，Mg 2+却对巴氏杀菌样品中的ALP 检测具有很大影响，可引起部分失活的ALP 复性，得到假阳性结果[9]。
因此，该实验中未涉及该酶的离子干扰实验综上所述，目前对牦牛乳中碱性酯酶的研究未见报道，而据了解我国西北重要的出口产品-干酪素，由于缺乏与国际相接轨的检测标准，在出口过程中，质量检测成为难题。
因此，对该酶分离纯化成为首要问题。
以可见分光光度法、荧光分光光度法[1]、电化学法[16]，测定酶活性，直接使得测样品中酶与底物反应，存在着复杂的阳性与阴性干扰，不能区分本身碱性磷酸酯酶与微生物产生的碱性磷酸酯酶，因此，灵敏度与准确度受到限制。
以免疫学方法检测，制备该酶的多克隆抗体或单克隆抗体，可以排除众多干扰。
而多克隆抗体存在着不同程度的交叉反应[17]，单克隆抗体具有很高特异性，因此，制备该酶得单克隆经行免疫学方法检测，可以得到很高的灵敏度与准确度[12]。
